第二章 细胞生物学研究方法
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第二章细胞生物学研究方法
(the research method in the cell biology)
教学目的
1、了解主要工具和常用方法,侧重掌握基本原理和基本应用;
2、认识工具和方法与学科发展的相关性。
教学内容
本章从以下5个方面介绍了细胞生物学的研究方法:
1.显微成像技术
2.细胞化学技术
3.细胞分选技术
4.细胞工程技术
5.分离技术
6.分子生物学方法
计划学时及安排
本章计划3学时。
教学重点和难点
生命科学是实验科学,它的很多成果都是通过实验才得以发现和发展的。许多细胞生物学的重要进展以及新概念的形成,往往来自新技术的应用。因此,方法上的突破,对于理论和应用上的发展具有巨大的推动作用,这是学习本章应确立的基本思想。
1.显微成像包括直接成像和间接成像。显微技术是细胞生物学最基本的研究技术, 包括光学显微技术和电子显微技术。在光学显微技术中要掌握几种常用显微镜成像的基本原理,包括普通双筒显微镜、荧光显微镜、相差显微镜、暗视野显微镜、倒置显微镜。电子显微镜是研究亚显微结构的主要工具, 透射和扫描电镜的是两类主要的电子显微镜, 对其基本结构、工作原理和样品制备方法则是学习的重点。
2.细胞化学技术介绍了酶细胞化学技术、免疫细胞化学技术、细胞分选技术, 其中流式细胞分选技术是细胞生物学和现代生物技术中的重要技术, 应重点掌握。
3.细胞工程技术是细胞生物学与遗传学的交叉领域,主要利用细胞生物学的原理和方法,结合工程学的技术手段,按照人们预先的设计,有计划地改变或创造细胞遗传性的技术。包括体外大量培养和繁殖细胞,或获得细胞产品、或利用细胞体本身。主要内
容包括:细胞融合、细胞生物反应器、染色体转移、细胞器移植、基因转移、细胞及组织培养。
4.分离技术是一大类技术的总称,包括细胞组分的分离和生物大分子的分离, 应掌握各种分离技术的原理和用途。
本章对分子生物学方法作了简要介绍, 为今后的学习奠定基础。简言之,本章教学重点是仪器方法的基本原理和基本应用;教学难点是电镜制样及分子杂交技术。
教学方法 讲授、参观 教学过程 2.1显微成像技术
2.1.1、光学和电子显微镜成像原理
共同点:照明系统;被观察的样品;聚焦和成像的透镜系统 不同点:
• 光学显微镜:以可见光(或紫外线)为光源。 • 电子显微镜:以电子束为光源。
表3-1电镜与光镜的比较
电镜与光镜光路图比较电子显微镜的基本构造
2.2.2、常用的光学显微镜
⑴ 普通光学显微镜 ◆构成: • ①照明系统
利用样品对光的吸收形成明暗反差和颜色变化
利用样品对电子的散射和透射形成明暗反差
要求真空
不要求真空
要求真空 1.33x10-5~1.33x10-3Pa
玻璃透镜
玻璃透镜
电磁透镜
可见光(400-700) 紫外光 (约200nm)
电子束
(0.01-0.9)
200nm 100nm
LM FM EM
成像原
真空 透镜 光源
分辨本领
显微镜
• ②光学放大系统
• ③机械装置
◆原理:经物镜形成倒立实像,经目镜进一步放大成像。
◆分辨力:指分辨物体最小间隔的能力。
• R=0.61λ/n sin(α/2)或者R=0.61λ/N.A.
其中λ为入射光线波长;N.A.为物镜的数值孔径(numerical aperture),sinα/2,
n=介质折射率;α=镜口角(样品对物镜镜口的张角)。
• 思考:如何提高显微镜的分辨能力?
◆显微镜的几个光学特点:
•制作光学镜头所用的玻璃折射率为1.65-1.78,所用介质的折射率越接近玻璃的越好。
•sinα/2的最大值必然小于1;介质为空气,镜口率一般为0.05-0.95;油镜头用香柏油为介质,镜口率可接近1.5。
•普通光线的波长为400-700nm,分辨力数值不会小于0.2μm,人眼的分辨力为0.2mm,因此显微镜的最大设计倍数为1000X。
⑵荧光显微镜(Fluorescence microscope)
•特点:光源为紫外线,波长较短;
分辨力高于普通显微镜;
有两个特殊的滤光片;
照明方式通常为落射式。
•用于观察能激发出荧光的结构。
用途:免疫荧光观察、基因定位、疾病诊断。
⑶激光共聚焦扫描显微境(Laser confocal scanning microscope, LCSM)
•用激光作光源,逐点、逐行、逐面快速扫描。
•能显示细胞样品的立体结构。
•分辨力是普通光学显微镜的3倍。
•用途类似荧光显微镜,但能扫描不同层次,形成立体图像。
⑷相差显微镜
• 把透过标本的可见光的光程差变成振幅差,从而提高了各种结构间的对比度,使各种结构变得清晰可见。在构造上,相差显微镜有不同于普通光学显微镜两个特殊之处。
①环形光阑(annular diaphragm):位于光源与聚光器之间。
②相位板(annular phaseplate):物镜中加了涂有氟化镁的相位板,可将直射光或衍
射光的相位推迟1/4λ。
•用途:观察未经染色的玻片标本
⑸倒置显微镜(inverse microscope)
•物镜与照明系统颠倒,前者在载物台之下,后者在载物台之上,用于观察培养的活细胞,通常具有相差物镜,有的还具有荧光装置。
2.2.3、光学显微镜的样品制备
⑴样品的固定
⑵包埋和切片
⑶染色
⑷放射自显影
2.2.4、电子显微镜
⑴透射电子显微镜(transmission electron microscope, TEM)
◆原理:
• 以电子束作光源,电磁场作透镜。电子束的波长短,并且波长与加速电压(通常50~120KV)的平方根成反比。
• 由电子照明系统、电磁透镜成像系统、真空系统、记录系统、电源系统等5部分构成。
• 分辨力0.2nm,放大倍数可达百万倍。
• 用于观察超微结构(ultrastructure),即小于0.2μm、光学显微镜下无法看清的结构,又称亚显微结构(submicroscopic structures)。
◆制样技术
①超薄切片
•电子束穿透力很弱,用于电镜观察的标本须制成厚度仅50nm的超薄切片,用超薄切片机(ultramicrotome)制作。
•通常以锇酸和戊二醛固定样品,丙酮逐级脱水,环氧树脂包埋,以热膨胀或螺旋推进的方式切片,重金属(铀、铅)盐染色。
②负染技术
•用重金属盐(如磷钨酸)对铺展在载网上的样品染色;吸去染料,干燥后,样品凹陷处铺了一层重金属盐,而凸的出地方没有染料沉积,从而出现负染效果,分辨力可达1.5nm左右。
③冰冻蚀刻(freeze-etching)
• 亦称冰冻断裂。标本置于干冰或液氮中冰冻。然后断开,升温后,冰升华,暴露出了断面结构。向断裂面上喷涂一层蒸汽碳和铂。然后将组织溶掉,把碳和铂的膜剥下来,此膜即为复膜(replica)。
⑵扫描电子显微镜
•20世纪60年代问世,用来观察标本表面结构。