第二章蛋白质样品的制备32
第二章 蛋白质分离纯化技术(2)
几种盐在不同温度下的溶解度(克/100毫升水)
温度
0℃ 20℃ 80℃ 100℃
(NH4)2SO4 70.6 75.4
95.3
103
Na2SO4 4.9 18.9
43.3
42.2
NaH2PO4 1.6
7.8 93.8
101
1)硫酸铵在0℃时的溶解度,远远高于其它盐类
29
2) 分离效果好:有的提取液加入适量硫 酸铵盐析,一步就可以除去75%的杂 蛋白,纯度提高了四倍。
3) 温度:为防止变性和降解,制备具有活性的蛋白 质和酶,提取时一般在0℃~5℃的低温操作。
4) 防止蛋白酶的降解作用:加入抑制剂或调节提 取液的pH、离子强度或极性等方法使相应的水解 酶失去活性,防止它们对欲提纯的蛋白质、酶的降 解作用。
15
5) 搅拌与氧化:搅拌能促使被提取物的溶解, 一般采用温和搅拌为宜,速度太快容易产生大 量泡沫,增大了与空气的接触面,会引起酶等 物质的变性失活。因为一般蛋白质都含有相当 数量的巯基,有些巯基常常是活性部位的必需 基团,若提取液中有氧化剂或与空气中的氧气 接触过多都会使巯基氧化为分子内或分子间的 二硫键,导致酶活性的丧失。在提取液中加入 少量巯基乙醇或二硫苏糖醇以防止巯基氧化。
1) 盐浓度(即离子强度):
离子强度对生物大分子的溶解度有极大的影响,绝大多数蛋 白质和酶,在低离子强度的溶液中都有较大的溶解度,如在 纯水中加入少量中性盐,蛋白质的溶解度比在纯水时大大增 加,称为“盐溶”现象。盐溶现象的产生主要是少量离子的 活动,减少了偶极分子之间极性基团的静电吸引力,增加了 溶质和溶剂分子间相互作用力的结果。
带正电荷蛋白质
(疏水胶体)
阴离子
不稳定蛋白颗粒
第一章 蛋白质组学 绪论
Traditional gene function studies
Forward genetics
Using an observed mutant phenotype (or purified protein) as the starting point to map and identify the corresponding gene, then functional analysis this gene and its product
1.1 The history
The hierarchy of biological organism
From “molecule” to “organism” to “Ecologies”
Levels of biological information
DNA mRNA Protein Metabolites Pathways Networks Cells Organs Individuals Populations Ecologies
2010 3. 《蛋白质组学方法》 中国生物技术发展中心,南开大学 编著 科学出
版社 2012 4. 《药物蛋白质组学》郭葆玉主编 人民卫生出版社 2007 5. 《疾病蛋白质组学》陈主初、肖志强主编 化学工业出版社 2006 6. 《蛋白质组学:理论与方法》 钱小红、贺福初主编 科学出版社
2003 7. 《蛋白质组学实验技术精编》 魏开华、 应天翼 化学工业出版社
教材 Text book
1. 《Principles of Proteomics 》 R.M Tmyman 2004 中译本--《蛋白质组学原理》苏国富 主审 化学 工业出版社 2007
第二章样品的采取、制备、处理与保存
第二章样品的采取、制备、处理与保存第一节样品的采取●1、采样:从产品中抽取有一定代表性样品,供分析化验用,叫作采样。
●2、样品分类:●检样:由整批食物的各个部分采取的少量样品称为检样●原始样品:把许多份检样综合在一起称为原始样品。
其组成成分能代表全部物料的成分。
●平均样品:原始样品经过处理再抽取其中一部分作检验用者称为平均样品。
●2、采样的一般方法:样品不同所采用的方法也不同。
●(1)散粒状样品(如粮食、粉状食品)●可用双套回转取样管插入容器中,回转一百八十度取出样品,每一包装须由上、中、下三层取出三份检样,把许多检样合起来成为原始样品,原始样品用四分法做成平均样品,即将原始样品充分混合均匀后堆集在清洁的玻璃板上,压平成厚度在3厘米以下的正方形并划成对角线,将样品分成四份,取两对角的二份,再如上混合,分为四份,取两对角的二份,这样操作至取得所需数量为止,此即是平均样品。
或把样品做成圆形进行混合、四分,来取得平均样品。
●(2)较稠的半固体样品(如稀奶油)●可用采样器从上、中、下层分别取出检样,然后混合缩减至得到所需数量的平均样品。
●(3)液体样品●在采样前须充分混合,混合时可用混合器,如容器内被检物量不多时,可用由这一容器转移到另一容器的方法来混合。
采样用长形管或特制采样器。
一般可用虹吸法分层取样,每层各取500毫升左右,装入小口瓶中混匀。
●(4)小包装的样品●如罐头、瓶装奶粉等连包装一起采样。
●(5)鱼、肉、蔬菜等组成不均匀样品●视检验目的,可由被检物各个部分分别采样,须从有代表性的各部位(如肌肉、脂肪等,蔬菜之根、茎叶等)分别采样,经过充分打碎混合后成为平均样品。
将样品装入预先洗净烘干的广口瓶中,瓶签上注明名称、采样日期、交货数量、采样方法及其他应说明的情况,并由经手人签封。
第二节样品的制备与预处理●一、样品的制备●1、样品的制备:是指对采取的样品进行分取、粉碎及混匀等过程。
●制备的目的:要保证样品十分均匀,使在分析时取任何部分都能代表全部样品的成分。
2第二章蛋白质
O2N
R
室温
F + H2N CH COOH
O2N
pH8~9
NO2
R HN CH COOH+ HF
NO2
DNFB
DNP - 氨基酸 此反应最初被Sanger 用于测定
肽链 N-端氨基酸种类和数目
第二节 蛋白质的构件组成单位-氨基酸
蛋白质的水解(了解)
根据蛋白质的水解程度,可分为完全水解和部分 水解两种情况: —完全水解或彻底水解,得到的水解产物是各种 氨基酸的混合物; —部分水解(不完全水解),得到的产物是各种 大小不等的肽段和氨基酸.
① 酸水解:常用6 mol/L的盐酸或4 mol/L的硫酸在105110℃条件下进行水解,反应时间约20小时。
极 性 中 性 氨 基 酸
带负电荷的氨基酸 带正电荷的氨基酸
练习题 1:下列含有两个羧基的氨基酸是: A.精氨酸 B.甘氨酸 D.色氨酸 E.谷氨酸
练习题 2:下列含有咪唑环的氨基酸是: A.精氨酸 B.组氨酸 D.色氨酸 E.谷氨酸 练习题 3:下列哪种氨基酸为亚氨基酸: A.精氨酸 B.脯氨酸 D.色氨酸 E.谷氨酸
1899 1901 1901 1901 1904 1922 1935
Morner Fischer Fischer Hopkins Erhlich Mueller McCoy et al
牛角 奶酪 奶酪 奶酪 纤维蛋白 奶酪 奶酪
氨基酸的名称与符号
alanine
丙氨酸
AlaLeabharlann Aarginine
精氨酸
Arg
练习题:测得某一蛋白质样品的氮含量为0.40g,此 样品约含蛋白质多少? A.2.00g B.2.50g C.6.40g D.3.00g
gsg-第二章 生物样品的制备
细胞破碎相关的器械与器材
• 1)电动组织捣碎机
• 原理:用可调速电机驱动捣碎转子(头)在 高速旋转下将组织打碎达到匀浆目的。 • 市售仪器多数是可调速机型,有不同口径 、头端式样的转子供选择,平头转子适于 制备乳浊液及悬浮液,锯齿状转子适于制 备组织和含纤维物质的匀浆。 • 应用:一般用于动物组织,植物肉质种子, 柔嫩的叶、芽等材料。国产的捣碎机最高 转速可达1-2万转/分,因旋转刀刃的机械 切力很大,制备较大分子样品很少使用。 动、植物细胞30-45秒完全破碎,酵母菌和 细菌需加入石英砂加强效果。
2. 通过文献调研和预备性实验,掌握目标产物的物理、 化学以及生物学性质
3. 生物材料的破碎和预处理 4. 分离纯化方法的选择和探索 5. 选择相应、可靠的分析技术,建立鉴定生物分子制备 物的均一性(即纯度)的方法 6. 产物的浓缩、干燥和保存 基本原则: 以尽可能少的步骤、尽可能短的时间,获得 尽可能多的目标产品
可将自然流出的唾液1~2mL ,置干净容器内置冰冻保存 ,或者立即
放水浴中煮沸10min,灭活唾液中的血型分解酶活性,然后置4℃冰箱 保存。
18
生物材料的选择
(四)组织 1.匀浆化法(简单,回收率低)
2.蛋白沉淀法(简单,回收率低)
3.酸碱水解(适合于酸碱条件下稳定的药物或毒物) 4.酶水解法(避免高温降解,不适合碱性条件下水解的 药物或毒物)
33
超声波细胞破碎机
• 原理:仪器发出一定频率的超声波产生振动力破碎细胞壁和细胞器
。由超声波发生器和超声换能器两部分极成。
• 相应超声换能器的长度及尖端口径也可挑选不同长短、粗细,以满 足0.1~250ml的容量需要。 • 应用:用于各种动植物细胞、病毒细胞、细菌及组织的破碎,也可用 于各类高分子物质的破碎,同时可用来乳化、分离、匀化、提取、消
第二章 样品的采集、制备处理及保存
第二章 食品样品的采集与处理
图2-2 萃取操作示意 1-三角瓶;2-导管;3-冷 凝器;4-欲萃取相
图2-3 常压蒸馏装置
3、盐析法:溶液中加入某种盐类,降低了 某溶质在溶液中的溶解度,使 之从溶液中分离出来的方法。
4、超临界萃取法(SFE) Supercritical Fluid Extraction
超临界流体及其性质 a.流体是非液非气的,具有气体较强的穿透 能力和液体较大的密度及溶解度,有较大 的吸附能力,流动性好. b.萃取速度快
什么物质适合于二氧化碳超临界萃取 二氧化碳超临界萃取的优点
a. 接近常温, 对物质没有变解作用. b. 易达到Pc和Tc c. 化学稳定性好, 无毒, 无色, 无味, 无污染 d. 萃取时间短 e. 费用低 f. 适用热敏感样品 g. 有防氧化和抑菌作用
然后层从的样四品角堆和放中
的不心同点部用位双,套按回
采样转件取数样确器定各具取
体采少样量袋样(品桶,、得
箱)检,样再,用再双按套上回
转取法样处管理采得样平。均
将取样样品管。插入包
装中,回转180。
取出样品,每一
包装须由上、中、
下三层取出三份
检样;把许多检
样综合起来成为
原始样品:用
“四分法”
这类物料不易充 分混匀,可先 按 总件数/ 2 确 定采样件(桶、 罐)数。启开 包装,用采样 器从各桶(罐) 中分层(一般 分上、中、
特点:简便快速,破坏彻底,减少 金属挥发。酸气刺激性大, 腐蚀性大。
第二章 食品样品的采集与处理
(1)硫酸-硝酸法 如图2-1所示。
(2)高氯酸-硝酸-硫酸法
(3)高氯酸(过氧化氢)-硫 酸法
(4)硝酸-高氯酸法
第二章分析样品的制备
四、样品的保存 食品样品发生变化的因素 挥发或吸收:水分、挥发性成分 空气氧化 酶的作用 微生物
2019/12/22
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注意事项 容器: 清洁干燥,标签 (食品名称、采样日期、编号、分析项目等)
冷藏、避光、时间不宜过长
2019/12/22
55
保存措施: 密闭容器中冰冻保存,-45~50 ℃ 惰性气体(N2) 避光 保存时间1~3个月
2019/12/22
36
(2)H2SO4 + HNO3 + HCIO4分解法
注意事项:
HCIO4加热易爆炸,避免干枯
HNO3充分分解后加入HCIO4
74% HCIO4分解,强氧化剂
经常冲洗通风橱
2019/12/22
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(3)HNO3 + HCIO4分解法 高钙含量食品
2019/12/22
根据样品随空间(位置)、时间变化的规律,采
集能代表其相应部分组成和质量的样品
分层取样
生产过程流动、定时取样
组、批取样
定期抽取货架商品取样
亲自动手
2019/12/22
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(四)采样要求与注意事项 1、了解内容: 生产日期、批号、代表性、均匀性、采样数量
2、采样量: 三份:检验、复验、备查或仲裁,每份>0.5Kg 3、采样容器:硬质塑料瓶或聚乙烯制品
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特性
主要问题
应用
所需时间 可靠性 要求
职员 安全性 分工
有多快?需要多快? 从精确性和稳定性的角度而言·其可靠性如何? 是否能满足或更好地满足要求? 方法中任何变化是否会导致结果的变化?
是否需要专门的预防措施? 谁负责准备有关方法与试剂的书面材料? 谁负责进行必要的计算?
第二章蛋白质工程蛋白质设计ppt课件
篮球比赛是根据运动队在规定的比赛 时间里 得分多 少来决 定胜负 的,因 此,篮 球比赛 的计时 计分系 统是一 种得分 类型的 系统
三、蛋白质分子设计原则
❖1.活性设计: 是蛋白质分子设计的第一步,主要是考虑被研
究的蛋白质功能,涉及选择化学基团和化学 基团的空间取向。在这类设计中应采用天然 存在的氨基酸来提供所需的基团,尽管原则 上并不限制引入其他外来基团。同时还应该 考虑辅因子的使用。
篮球比赛是根据运动队在规定的比赛 时间里 得分多 少来决 定胜负 的,因 此,篮 球比赛 的计时 计分系 统是一 种得分 类型的 系统
第二章 蛋白质分子设计
❖第一节:蛋白质分子设计原理
❖第二节:基于蛋白质天然结构的分子 设计
❖第三节:全新蛋白质分子设计
LOGO
篮球比赛是根据运动队在规定的比赛 时间里 得分多 少来决 定胜负 的,因 此,篮 球比赛 的计时 计分系 统是一 种得分 类型的 系统
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三、蛋白质分子设计原则
❖4.疏水基团与亲水基团需合理分布 这种分布并不仅仅是简单地使暴露在外面的残 基具有亲水性,埋藏在内部的残基具有疏水 性而是还应安排少量的疏水残基在表面,少 量亲水残基在内部。在蛋白质分子设计过程 中要在原子水平上区分侧链的疏水部分与亲 水部分。
LOGO
篮球比赛是根据运动队在规定的比赛 时间里 得分多 少来决 定胜负 的,因 此,篮 球比赛 的计时 计分系 统是一 种得分 类型的 系统
三、蛋白质分子设计原则
❖ 3.框架设计: 是指对蛋白质分子的立体设计。天然蛋白质是框架 化的。也就是说,催化部位和底物结合部位要适当 地安装在大分子载体之中,给予各个基团以适当的 空间排布,才能具有催化活性功能。因此要设计的 蛋白质活性分子,也必须框架化。 但是对复杂的多肽链而言,需要预测三级结构,需 要大量的计算筛选所需的一级结构,其结果很难预 测。
蛋白质样品的制备
3. 裂解液裂解
含有去污剂的裂解液处理细胞、组织以裂解细胞 膜,使细胞内容物释放出来. 应用对象:组织培养细胞 操作步骤:将细胞直接置裂解液或样品液中,进行
悬浮处理.
4.酶裂解
有细胞壁的细胞可以通过酶解去除细胞壁得以温 和裂解. 应用对象:植物细胞、细菌细胞、真菌细胞. 操作步骤:将细胞悬浮于专一性酶的等渗溶液中.
⑴ 硫酸铵沉淀 盐析
原理:在高盐溶液中,蛋白倾向于聚合,并从溶液中沉淀下
来.许多潜在的杂质如核酸将保持在溶液中.
步骤:蛋白浓度大于lmg/ml,缓冲液浓度大于50mmol/L,并 含有EDTA,缓慢加入硫酸铵至饱和,搅拌10-30min,通过离 心沉淀蛋白.
然而许多蛋白在高盐溶液中是可溶的,因此,这种方法 只能被用来预分离或富集蛋白.并且,残存的硫酸铵会干扰 IEF,必须被清除.
二、裂解技术
⑴ 裂解液的组成
裂解液基本成分包括:脲、一种或几种去污剂还原剂、 固相PH梯度缓冲液也可以增强样品的溶解性
脲:可溶解和折叠大多数的蛋白质,形成完全随机的构 象,使所有的离子基团暴露于溶液中硫脲的加入可以进 一步提高溶解度,特别是对膜蛋白
去污剂:确保蛋白完全溶解和防止通过疏水相互作用 导致蛋白质聚合
3.消除各种细胞或组织混杂的影响
二、样品制备的原则
1.尽可能采用简单的方法进行样品的处理
2.尽可能的提高样品的溶解度,使所有待分析的蛋白质样品全部处 于溶解状态,且制备方法应具有可重现性.
3.细胞和组织样品的制备应尽可能减少蛋白的降解,低温和蛋白酶 抑制剂以防止蛋白的降解.
4.样品制备过程中,防止发生人为的蛋白质样品化学修饰.加入尿素 后加温不要超过37 ℃,防止氨甲酰化而修饰蛋白
第二章蛋白质的定性定量分析【共54张PPT】
2. SDS-PAGE凝胶的制备
制备分离胶
制备浓缩胶
装板
加样
电泳
卸板并进行凝胶染色
3. SDS-PAGE基本原理
➢ 影响迁移率的因素
➢ SDS 十二烷基硫酸钠 (Sodium Dodecyl Sulfate) 十二烷基磺酸钠 (Sodium Dodecyl Sulfonate )
SDS作用:与蛋白牢固结合,当其浓度大 于1 mmol/L 时,SDS与蛋白质的结合比例为 1.4g
4g SDS/1g蛋白质,由于十二烷基硫酸根带负电荷,使得样品中各种蛋白质与SDS形成的SDS-蛋白质复合物都带有相同密度的负电荷,掩盖了蛋白质分子间天然的 电荷差异
该法是基于考马斯亮蓝G-250有红、蓝两种不同颜色的形式。
对各种纯化蛋白质反应不同
这是一种迅速、可靠的通过染色法测定
SDS与蛋白质之间的结合程度
SDS-PAGE基本原理
封闭非特异结合位点 注意:设立阳性对照和阴性对照,阴性对照可用免疫前血清、非相关单克隆抗体;
Watch SDS-PAGE原理
Watch SDS-PAGE原理
80-100 ug/cm2
4g SDS/1g蛋白质,由于十二烷基硫酸根带负电荷,使得样品中各种蛋白质与SDS形成的SDS-蛋白质复合物都带有相同密度的负电荷,掩盖了蛋白
+
pH 3
pH 7.5
Isoelectric Focusing
–
pH 10
–
pH 10
–
pH 10
–
pH 10
3–10
3–10NL 4–7 3–6
5–8
7–10
ReadyStripTM IPG Strips
第2章 生物样品制备技术
5、用以收集细胞,细胞器,生物大分子等
6、分离条件温和 ,但是温度需要控制
.
(二)等电点沉淀法
等电点沉淀法利用蛋白质是具不同等电点的两性电解质
,在达到电中性时溶解度最低,易发生沉淀,从而实现分离 的方法 。 由于许多蛋白质的等电点十分接近,而且带有水膜的 蛋白质等生物大分子仍有一定的溶解度,因此单独使用此
价格昂贵 为小分子多肽,在双向电 泳结果中出现 抑肽素pepstatin在pH9时 不能发挥其抑制作用
1 mM EDTA , 1 mM EGTA
抑制金属蛋白酶
除去影响双向电泳的污染物 :
污染物
样品制备过程中带来的盐、残留缓冲液和 其它带电小分子
除杂技术
1、 透 析 2、 旋 转 透 析 3 、凝胶过滤 4 、沉淀 / 重悬法 1、DNase-l RNase-A 2、 超 速 离 心 3、 超 声 TCAI 丙酮沉淀法 离心
蛋白质样品处理中经常使用的添加剂:
1、变性剂 (尿素,打开氢键、增溶)
2、去垢剂 (CHAPS ,SDS等,消除疏水基团之间的相互
作用,增强蛋白质在其pI值处的溶解性)
3、两性电解质 (减少蛋白聚合,维持其溶解性)
4、还原剂 (DDT ,二硫苏糖醇,用于打开二硫键) 5、炕基化-SH (保护其不被再氧化)
由于样品可含有数千种乃至上万种生物分子同处于一个 体系中,因此不可能有一个适合于各类分子的固定的一劳永
逸的分离程序,但很多基本手段是相同的。为了避免盲目性
,节省实验探索时间,要认真参考和借鉴前人的经验 。
常用的分离纯化方法和技术有: 离心法、沉淀法(包括:
盐析、有机溶剂沉淀、选择性沉淀等)、透析法、色谱法、 等电聚焦制备电泳法等。
生物样品的制备与提取
第二章生物样品的制备§2. 1 生物分析化学分析对象的复杂性生物样品往往是一种具有高度复杂性的体系,这种复杂性表现在组成、含量、动力学范围、时空依存性等各个方面,这使得生物样品的处理有很大的难度。
因此,与经典分析化学的样品制备相比,生物分析化学的样品制备有以下特点:(1)生物样品的组成极其复杂,常常包含有数百种乃至几千种化合物。
如人类血浆蛋白质组学的阶段性研究结果表明,正常人血浆中的蛋白质至2005 年时已鉴定了3020 种。
有的生物分子在分离过程中还在不断的代谢,所以生物分子的分离纯化方法差别极大,想找到一种适合各种生物大分子分离制备的标准方法是很困难的。
(2)许多生物分子在生物材料中的含量极微,只有万分之一、几十万分之一,甚至几百万分之一。
分离纯化的步骤繁多,流程长,有的目的产物要经过十几步、几十步的操作才能达到所需纯度的要求。
(3)生物分子往往有很宽的动力学浓度范围。
如不同的蛋白质在细胞内的浓度分布范围相差106〜1010倍,而同一种蛋白质在不同的生理或病理状态下浓度相差有时也很大。
(4)许多生物分子一旦离开了生物体内的环境时就极易失活,因此分离过程中如何防止其失活,就是生物分子提取制备最困难之处。
过酸、过碱、高温、剧烈的搅拌、强辐射及本身的自溶等都会使生物大分子变性而失活。
(5)生物分子的分离和制备几乎都是在溶液中进行的,很难准确估计和判断温度、pH 值、离子强度等各种参数对溶液中各种成分的综合影响,因而实验结果常常带有很大的经验成份,实验的重复性较差,分析仪器、分析方法学、乃至个人的实验技术水平和经验对实验结果会有较大的影响。
制备生物分子的基本原则是:以尽可能少的步骤、尽可能短的时间,获得尽可能多的目标产品。
通常包括以下步骤:①确定要制备的生物分子的目的和要求;②通过文献调研和预备性实验,掌握目标产物的物理、化学以及生物学性质;③生物材料的破碎和预处理;④分离纯化方案的选择和探索;⑤选择相应的、可靠的分析技术,建立鉴定生物分子制备物的均一性(即纯度)的方法;⑥产物的浓缩、干燥和保存。
第二章 蛋白质测定
特点是区带窄而浓,扫描峰高而尖,基底部窄, 在γ区高与宽的比例≥2,β区则≥1(正常时小于 此比例),其他区带明显减少。
常见疾病的蛋白质改变:
肝疾病
急性肝炎
蛋白质:—AAT, IgM
肝硬化
—PA, Alb, Hp
蛋白质:—AAT, CER, CRP, IgG/A
—PA, Alb, AAG, Hp, AMG,
(2)先天性白蛋白缺陷型:主要特 征:由于血清白蛋白的显著降低, 血清总蛋白也随之降 低,α1、α2球 蛋白明显增高,γ球蛋白也增高。 严 重无白蛋白血症时,白蛋白有时可 降为零。 产生原因:本病是极少见的先天性 疾病,可能由于肝细胞内白 蛋白合 成功能遗传性缺陷或明显低下所致。 该病患 者的白蛋白含量尽管只有正 常人的0.05%, 而其血 浆胶渗透压 仍为正常人水平的 1/2左右, 这是 由于球蛋白代偿性增加所致,如传 铁蛋白为正常人的 2 -3倍, α1巨球 蛋白为正常人的3.5倍, β脂蛋白为3 倍,IgM为3倍,这时血清白蛋白的 半衰期也明显延长, 可为正常人的 3-4倍, 对维持血浆胶体渗透压 均 有一定作用。
降低的有:PA、Alb及TRF,称为负性APR。
3、类固醇激素
二、血清蛋白质电泳组分的临床分析
1、正常血清蛋白电泳(serum protein electrophoresis,SPE)
正常参考值: Alb: 57%-68% α1: 1.0%-5.7% α2: 4.9%-11.2% β: 7%-13% γ: 9.8%-18.2%
(3)低白蛋白血症型:
主要特征:血清总蛋白浓
度明显减低,其中以白蛋白
减低为主。
产生原因:由于合成蛋白
质所需的氨基酸长期供应不
足,以致 血清中的主要成分
第二章 蛋白质的合成、转运、加工与修饰
顺反子: 顺反子 : 编码一种多肽链并连同起始信号和终止 信号在内的DNA区段。 区段。 信号在内的 区段 单顺反子mRNA:编码一种多肽链的mRNA分子。 :编码一种多肽链的 分子。 单顺反子 分子 多顺反子mRNA: 编码数种不同多肽链的同一条 : 多顺反子 mRNA分子。多见于原核生物。 分子。 分子 多见于原核生物。 反义链/有意义链 ( ) 模板链 双链DNA分子中 模板链: 反义链 有意义链/(-)链/模板链:双链 有意义链 分子中 被转录成RNA转录本的链。 转录本的链。 被转录成 转录本的链 正义链/无意义链 ( ) 正义链 无意义链/(+)链 无意义链
(S) )
SD 序 列 / 核 糖 体 结 合 位 点 ( ribosomal binding site , RBS) : 原核细胞 的翻译起始密码子AUG的上游 ) 原核细胞mRNA的翻译起始密码子 的翻译起始密码子 的上游 相距8~ 个核苷酸处有一段由 个核苷酸处有一段由4~ 个核苷酸组成的富含 相距 ~13个核苷酸处有一段由 ~6个核苷酸组成的富含 嘌呤的序列, 为核心, 嘌呤的序列 , 以 5’-AGGA-3’为核心,它与核糖体小亚基 为核心 上的16S-rRNA 的近 末端处的一段短序列互补。 的近3’末端处的一段短序列互补 末端处的一段短序列互补。 上的 Kozak序列 Kozak序列:a favorable context for efficient eukaryotic 序列: translation initiation(PuNNATGPu)。(S) ( ) ) 典型的Poly(A)加尾信号:AATAAA。(S) 加尾信号: 典型的 加尾信号 。 ) cDNA 末 端 快 速 扩 增 法 ( rapid amplification of cDNA ends, RACE)(S) , ) )
生物化学 第2章 蛋白质(2)
目标蛋白质的分离纯化程序主要包括:
1 3 材料的选择; 蛋白质初步提纯;
2 组织匀浆的方法除去杂蛋白,直至完全纯化;
5 目标蛋白的鉴定。 用于研究目的蛋白质通常应保持它的生物活性。因此,在目标蛋白 质的整个分离纯化过程中要在较低温度下(0-4℃)操作,注意使用蛋 白酶(使蛋白质降解的酶)的抑制剂,避免使用剧烈条件,以免蛋白质 特定的折叠结构受到破坏。
600g,3 min.上清 沉淀:细胞核 6000g,8 min.上清 沉淀:线粒体,叶绿体, 溶酶体,过氧化酶体 沉淀:细胞质膜,高尔基 体和内质网膜的碎片 沉淀:核糖体亚基
40000g.30 min.上清 100000g.90 min.上清
细胞液
平衡密度梯度离心: 用不同的离心速度、依据被分离物的密度而进 行分离的效果;通常是将没有纯化的物质铺在密度 溶液(如蔗糖溶液,氯化铯溶液为介质,离心管内 的溶液密度从底部到顶部是浓至稀的梯度)的顶层, 通过离心(160000g,3h)细胞内各成分不停地下 沉分别达到与溶液的密度相等时的位置。其介质的 密度范围宽于被分离组分的密度。
二 蛋白质一级结构测定 蛋白质测序的一般步骤:
首先目标蛋白质分离纯化得到高度纯净的蛋白质 样品。 (1) 测定蛋白质分子中多肽链的数目,末端分析, 分析多肽链的N末端和C末端。 (2) 拆分蛋白质分子中的多肽链。断裂链内二硫键。 (3) 测定多肽链的氨基酸组成,酸水解或碱水解。 (4) 多肽链部分裂解成肽段,专一性酶解。 (5) 测定各个肽段的氨基酸顺序。 (6) 确定肽段在多肽链中的顺序。 (7) 确定多肽链中二硫键的位置。
(五)电泳后的蛋白质检测:
考马斯亮蓝染色是常用的一项电泳染色方法,是根据 考马斯亮蓝能与蛋白质多肽链定量结合的原理而建立起的。 对于一个混合蛋白质的电泳分离来说,它只能检测样品的 分离情况;如果被检蛋白质的位置可以确定,可以将该蛋 白质的色带切下之后进行脱色,测定脱色液光吸收值,能对 该蛋白质进行定量分析。
蛋白质结构分析-精选文档
第三节 蛋白水解酶酶解
一、 常用蛋白水解酶 (1)胰蛋白酶(trypsin) 专一作用在Arg和Lys(碱性氨基酸)的羧基端,但对Arg-Pro和Lys-Pro 键没作用。 我们常将胰蛋白酶配成1mg/ml,贮存在1mmol/LHCl中,-20℃ 保存数月,而未观察到酶的活性损失。如果样品溶解度差,可适量加入尿 素增加溶解度,因为胰蛋白酶在2mol/L尿素中,仍具有充分的活性。 (2)胰凝乳蛋白酶(α -chymotrypsin) 专一作用在芳香族氨基酸的羧基端。 (3)内肽酶Lys-C(endoproteinase Lys-c) 专一作用在Lys的羧基端。 (4)V8蛋白酶(staphylococcal protease) 专一作用在Asp和Glu(酸性氨基酸)的羧基端。pH 8.0的磷酸缓冲液 时,作用在Glu-X和Asp-X;pH 4.0的乙酸缓冲液时,仅作用于Glu-x 键。
对Met-Thr、Met-Ser键,则常常是低产率的,可能是β羟基产生下 面的一系列反应(Ⅲ和Ⅳ),最后形成高丝氨酸残基(V),而未裂解此肽 键,如图2.2所示。Met-Cys键也不易裂解。
典型的反应常常在20℃、70%甲酸(V/V)中进行24h, 副反应是部分Asp-Pro键会断裂,一些酰胺基团会部分丢 失,部分Asn-Gly会产生重排或环化,有时Trp会氧化。 操作:蛋白质先用5%巯基乙醇在pH 8.0室温下处理 24h,加色胺(tryptamine)或色氨酸(以每分子甲硫氨酸加 5分子色胺或色氨酸计算)以防止色氨酸氧化。 蛋白质以1~5mg/ml浓度溶解在70%甲酸中,加入50 倍 过量,小体积的BrCN/70%甲酸,通氮并置于暗处,室温 放置16~24h,结束后加15倍体积的水,冻干,重复加水 冻干。
二、HPLC纯化的样品 如果样品是用反相HPLC纯化的,因为流动相是挥发性溶剂,它们在 真空离心干燥或冻干样品时除去;如果蛋白质是用离子交换HPLC或疏水 HPLC或凝胶过滤HPLC精制的,则样品要进行脱盐。 脱盐或稀蛋白溶液的浓缩可用0.1%三氟乙酸(TFA)—乙腈(ACN)系统 的短柱反相HPLC;也可采用一次性的Sek-Pak,因为蛋白质是水溶性 的,所以先用能与水互溶的甲醇或乙腈(2ml)润之,再用5ml纯水洗 涤;然后样品液体通过Sep-Pak柱时,蛋白质保留在柱上,小分子的盐 类流过柱体,用水溶液充分洗涤后,最后用甲醇或乙腈抽提蛋白质。 小的超滤装置对浓缩蛋白质也是有效的。此外,有机溶剂或TCA沉淀 也可以考虑。 三、蛋白质样品中的二硫键和巯基(一SH) 当蛋白质样品纯度达到要求,盐和小分子也除得比较“干净”,在进行 酶解前,还要转变半胱氨酸残基成其他的稳定的衍生物。因为半胱氨酸 的巯基在分肽过程中易自动氧化成各种产物,包括形成无序的二硫键, 因此需要将半胱氨酸残基先转变成稳定的衍生物。 常用有碘代乙酸烷化,因为这个反应是快速和专一的;同时这类试剂 保存在暗处是很稳定的。而且,这类试剂的矫作物(artifact)容易得到放 射性标记物。蛋白质或肽在导入带电荷基团后也增加了其在水溶液中的 溶解度。胱氨酸也可在还原后再修饰。
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2020/3/22
蛋白质样品的制备是蛋白质组研究的第一 步,无论后续采用怎样的分离或鉴定手段,样 品制备都是关键步骤。从蛋白质组大规模研究 的角度而言,要求样品制备尽可能获得所有的 蛋白质,但是由于蛋白质种类多、丰度不一和 物化特性多样等,要达到真正的全息制备是具 有难度的。
2020/3/22
⑴ PMSF(苯甲基磺酰氟)
是一种不可逆抑制剂,通常浓度为 1mmol/L,灭活丝氨酸蛋白酶和一些半胱氨酸蛋 白酶,但是其局限在于在水溶液中迅速失活,因 此,现用现加效果较好;另外,在二硫苏糖醇( DTT)或者β-巯基乙醇溶液中PMSF的抑制效果 可能会减小,因此在含巯基的试剂中可在晚些时 候加入。
⑷ 肽蛋白酶抑制剂
亮抑酶肽(leupetin),它是可逆性蛋白酶抑制剂,在含 DTT的溶液中以低浓度的形式保持活性,抑制一些丝氨酸 和半胱氨酸蛋白酶的活性;胃蛋白酶抑制剂A(pepstatin A),抑制天冬氨酸蛋白酶的活性;抑蛋白酶肽( aprotinin),抑制许多丝氨酸蛋白酶;苯丁抑制素 (bestatin),抑制氨基蛋白酶。但是,这些蛋白酶抑制剂价 格昂贵,而且它们是小肽片段,可能会出现在二维电泳图谱 中,其中胃蛋白酶抑制剂A在PH=9的时候不能抑制蛋白酶 。
求为止。
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3. 裂解液裂解
含有去污剂的裂解液处理细胞、组织以裂解细胞 膜,使细胞内容物释放出来。 应用对象:组织培养细胞 操作步骤:将细胞直接置裂解液或样品液中,进行
悬浮处理。
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4.酶裂解
有细胞壁的细胞可以通过酶解去除细胞壁得以温 和裂解。 应用对象:植物细胞、细菌细胞、真菌细胞。 操作步骤:将细胞悬浮于专一性酶的等渗溶液中。
样品处理应在冰浴中进行。
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2.压力杯法
在高压下迫使细胞穿过小孔径而 产生剪切力,从而裂解细胞。 应用对象:微生物细胞,如细菌、
霉菌、酵母细胞及含有 细胞壁的细胞。 操作步骤:将细胞悬浮液置于预冷 的压力杯中,施加压 力,然后收集挤出液。
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3.研磨法
用研钵或研杵研磨细胞 应用对象:固体组织细胞、微生物细胞。 操作步骤:组织或细胞通常冻存于液氮中,随后研
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2020/3/22
样品制备的原则
➢ 尽可能采用简单方法进行样品处理,以避免蛋白丢失。 ➢ 细胞和组织样品的制备应尽可能减少蛋白的降解,低温和
蛋白酶抑制剂以防止蛋白的降解。 ➢ 样品裂解液应该新鲜配置,并且分装冻存于-80 ℃。勿反
复冻融已制备好的样品。 ➢ 通过超速离心清除所有的杂质。 ➢ 加入尿素后加温不要超过37 ℃,防止氨甲酰化而修饰蛋
蛋白酶在细胞破碎时很可能释放出来,其会导致某些 蛋白质降解而使双向电泳图谱的分析复杂化,因此蛋白质 样品应该利用蛋白酶抑制剂加以保护。
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(一)温和的裂解方法
通常应用于组分比较简单的样品,例如组织 培养的细胞、血细胞和一些微生物,或者用于分 析某一特定的细胞器,例如只需要裂解胞质蛋白、 完整的线粒体或其它的细胞器。有时这些技术联合 起来应用。
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二、剧烈的蛋白裂解
常用于难于破碎的细胞,如固体组织内的细胞, 或具有坚硬细胞壁的细胞,如酵母细胞,这种方 法可以使细胞完全破碎裂解。
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Байду номын сангаас
1. 超声裂解法
超声仪可以产生超声波,通过切应力来裂解细 胞。在剧烈搅拌的状态下会产生剪切效果。 应用对象:悬浮细胞 操作步骤:要进行间歇处理,减轻产生热和泡沫,
⑵ AEBSF
为不可逆抑制剂,通常工作浓度为4mmol/L ,作用与PMSF相似,但溶解性较好,且毒性低 。但
2是020/3A/22EBSF可能会改变蛋白的等电点。
⑶ 金属蛋白酶抑制剂乙二胺四乙(EDTA) 乙二醇双四乙酸(EGTA)
通常应用1mmol/L的工作浓度,通过螯合自由的金属离 子来抑制金属蛋白酶活性。
磨成粉状,加氧化铝或砂有助于研磨 。
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4. 机械匀浆法
使用匀浆器破碎细胞或组织 应用对象:固体组织,如心脏、肝
脏、肾脏组织和细胞悬 液。 操作步骤:先尽量将组织剪成块, 然后加有蛋白酶抑制剂 的冷匀浆液进行匀浆, 过滤或离心收集。
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5.玻璃珠匀浆法
剧烈震荡的玻璃珠打破细胞壁,释放细胞内容物 应用对象:细胞悬液或微生物 操作步骤:用等体积的预冷裂解液重悬细胞,置
4.可溶性样品 是可溶性液体样品,如血清、血浆、尿样、脑 脊液以及细胞和组织的水溶性提取物。
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二、组织与细胞破碎
为了完全分析所有的细胞内蛋白,组织与细胞必须进 行有效的破碎。破碎方法的选择依赖于样品来源(如细 胞、固体组织或者其它的生物材料),同时也依赖于这种 分析是获得所有的蛋白质还是特殊的亚细胞器组分。
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1. 渗透裂解
非常温和的裂解方法,可进一步进行亚细胞分级 应用对象: 血细胞、组织培养细胞。 操作步骤: 将细胞悬浮于渗透胞溶液中,细胞溶
胀而释放出细胞内容物。
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2. 冻融裂解
许多类型的细胞可以通过快速反复冻融得到裂解 应用对象:细菌细胞、组织培养细胞。 操作步骤:使用液氮,快速反复冻融至符合实验要
于结实的管子里。每克细胞(湿重) 加入1-3克玻璃珠,剧烈震荡1min, 冰浴1min。重复上述步骤。
2020/3/22
三、用蛋白酶抑制剂防止蛋白裂解
当进行细胞裂解时,蛋白酶会释放出来,这会 严重影响电泳的结果,因此需要采取一些策略。 如果可能的话,直接加入强变性剂。蛋白酶在低 温下无活性,因此尽可能在低温下进行样品制备 。另外,许多组织蛋白酶在PH超过9.0的时候会 失活,因此在样品裂解液中出现Tris、碳酸钠和 载体两性电解质时也可以抑制蛋白降解。虽然这 些方法可防止蛋白降解,但是有些蛋白酶在上述 条件下仍然保持降解蛋白的活性。此时,需要应 用蛋白酶抑制剂。
白。
2020/3/22
第一节 样品破碎与分离蛋白质
一、样品的类型
1.整体样品 是生物个体小的物种(如微生物),可以整体 取样。
2.组织样品 有一个采样的过程,就是从整体部分或整批器官 中抽取一定量具有代表性的样品进行实验。
3.细胞样品 包括固体基质中培养的细胞、体外悬浮培养生长 的细胞、周期性细胞样品(如红细胞、淋巴细 胞)和从组织中分离同类的细胞样品。