常用动物实验方法及检查方法

四、实验动物用药量的确定及计算方法
1．先用小鼠粗略地探索中毒剂 量或致死剂量，然后用小于中 毒量的剂量，或取致死量的若 干分之一为应用剂量，一般可 取1/10-1/5。
四、实验动物用药量的确定及计算方法
2．植物药粗制剂的剂量多按生药折 算。
3．化学药品可参考化学结构相似的 已知药物，特别是化学结构和作用 都相似的药物的剂量。
5.静脉注射必须缓慢。 6.控制麻醉浓度。
五、动物安乐死
（一）定义 安死术（euthanasia）是指公众认可的、以人 道主义的方法处死实验动物的过程，即达到没有 惊恐或焦虑而安静地、无痛苦地死亡。 （二）动物安乐死的方法 1.物理性安乐死方法。颈椎脱臼处死法、电 击。 2.化学性安乐死方法。过量麻醉处死法、二 氧化碳吸入处死法、异氟烷
四、实验动物用药量的确定及计算方法
5．用大动物进行实验时，开始的剂 量可采用给鼠类剂量的十五分之 一～二分之一，以后可根据动物的 反应调整剂量。
四、实验动物用药量的确定及计算方法
6．确定动物给药剂量时，要考虑给 药动物的年龄大小和体质强弱。一 般说确定的给药剂量是指成年动物 的，如是幼小动物，剂量应减少。 如以狗为例：6个月以上的狗给药 量为1份时，3-6个月的给1/2份，4589日1/4份，20-44日的给1/8份，1019日的给1/16份。
二、实验动物编号标记方法
编号的原则是：先左后右，从上到下。一般 把涂在左前腿上的计为1号，左侧腹部计为2 号，左后腿为3号，头顶部计为4号，腰背部 为5号，尾基部为6号，右前腿为7号，右侧腰 部为8号，右后腿计为9号。若动物编号超过 10或更大数字时，可使用上述两种不同颜色 的溶液，即把一种颜色作为个位数，另一种 颜色作为十位数，这种交互使用可编到99号， 假使把红的记为十位数，黄色记为个位数， 那么右后腿黄斑，头顶红斑，则表示是49号 鼠（见图示），其余类推。
第十二章 常用实验方法及检查方法
主要内容
一、实验动物的抓取、保定和标记 二、动物给药方法 三、动物检查方法 四、动物麻醉和安乐死方法
一、实验动物的抓取固定方法
正确的抓取固定动物，是为了不损 害动物健康，不影响观察指标，并 防止被动物咬伤，保证实验顺利进 行。抓取固定动物的方法依实验内 容和动物类而定。
三、实验动物给药途径和方法
（一）皮下注射 （二）皮内注射 可见皮肤表面鼓起一小皮丘。 （三）肌肉注射 （四）静脉注射 （五） 腹腔注射
三、实验动物给药途径和方法
（六）淋巴囊注射 （七）经口给药 （八）其它途径给药 1．呼吸道给药 2．皮肤给药 3．脊髓腔内给药 4．小脑延髓池给药 5．脑内给药 6．直肠内给药 7．关节腔内给药
颜 色 被 毛 涂 擦 标 记 法
二、实验动物编号标记方法
（二）烙印法 用刺数钳在动物耳上刺上号码，然后用 棉签蘸着溶在酒精中的黑墨在刺号上加以涂 抹，烙印前最好对烙印部位预先用酒精消毒。
二、实验动物编号标记方法
（三）号牌法 用金属制的牌号固定于实验动物的耳上，大 动物可系于颈上。 对猴、狗、猫等大动物有时可不做特别标记， 只记录它们的外表和毛色即可。
小白鼠
大白鼠 豚鼠 兔 猫 蛙
最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头
1ml 9(钝头) 1ml 静脉切开针 3ml 静脉切开针 20ml 10号导尿管 20ml 10号导尿管 淋巴囊注射
最大注射量
四、实验动物用药量的确定及计算方法 （一）动物给药量的确定 在观察一个药物的作用时，应该 给动物多大的剂量是实验开始时应 确定的一个重要问题。剂量太小， 作用不明显，剂量太大，又可能引 起动物中毒致死，可以按下述方法 确定动物的给药剂量：
四、实验动物用药量的确定及计算方法
4．确定剂量后，如第一次实验的作用不 明显，动物也没有中毒的表现（体重下 降、精神不振、活动减少或其他症状）， 可以加大剂量再次实验。如出现中毒现 象，作用也明显，则应降低剂量再次实 验。
四、实验动物用药量的确定及计算方法 在一般情况下，在适宜的剂量范围 内，药物的作用常随剂量的加大而 增强。所以有条件时，最好同时用 几个剂量作实验，以便迅速获得关 于药物作用的较完整的资料。如实 验结果出现剂量与作用强度之间毫 无规律时，则更应慎重分析。
五、实验动物的麻醉
（一）动物的麻醉方法 1．全身麻醉 2．局部麻醉
常用麻醉剂的用法及剂量
麻醉剂 动 物 给药方法 静脉 腹腔 腹腔 静脉 腹腔 剂量 (mg/kg) 30 40-50 40-50 15-20 40 常用 浓度% 3 3 2 2 1 维持时间 2-4小时中途加上1/5 量，可维持1小时以 上，麻醉力强，易抑 制呼吸。 15-30分钟，麻醉力 强，宜缓慢注射。 3-4小时，诱导期不 明显 2-4小时，毒性小， 主要适用小动物的麻 醉。
(二) 常用的麻醉剂
1. 挥发性麻醉剂：氯仿、异氟烷
2．非挥发性麻醉剂：苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、水合氯醛 3．中药麻醉剂：氢溴酸、东莨菪碱
五、实验动物的麻醉
（三）麻醉的注意事项 1.动物麻醉前宜禁食。 2.麻醉剂的用量 3. 配制的药物浓度要适中，便于给药量。
4. 动物在麻醉期间提问容易下降，要采取保温措施。
皮下注射
腹腔注射
静脉注射
小鼠的灌胃给药
几种动物不同给药途径的常用注射量（毫升）
注射途径 腹 腔 小鼠 0.2-1.0 大鼠 1-3 豚鼠 2-5 兔 5-10 狗 5-15
肌
静 皮
肉
脉 下
0.1-0.2
0.2-0.5 0.1-0.5
0.2-0.5
1-2 0.5-1.0
0.2-0.5
1-5 0.5-2
人
狗 12kg 4.8 人 60kg 9.01
折算系数W
小白鼠20g
小白鼠 (20g) 1.0
大白鼠 0.2Kg 1.6
豚鼠 0.4Kg 1.6
家兔 1.5kg 2.7
B 种 动 物 或 成 人
大白鼠0.2Kg
豚鼠0.4Kg 家兔1.5kg 猫2.0kg 狗12kg 人60kg
0.7
0.61 0.37 0.30 0.21 0.11
0.5-1.0
3-10 1-3
2-5
5-15 3-10
常用实验动物的最大给药量和使用针头规格
动物名称 项 目 灌 胃 皮下注射 0.4ml 5(1/2) 1ml 6 1ml 6(1/2) 2ml 6(1/2) 20ml 7 肌肉注射 0.4ml 5(1/2) 0.4ml 6 0.5ml 6(1/2) 2ml 6(1/2) 2ml 7 1ml/只 腹腔注射 1ml 5(1/2) 2ml 6 4ml 7 5ml 7 5ml 7 静脉注射 0.8ml 4 4ml 5 5ml 5 10ml 6 10ml 6
四、实验动物用药量的确定及计算方法
7．确定动物给药剂量时，要考虑因 给药途径不同，所用剂量也不同， 以口服量为100时，灌肠量应为 100-200，皮下注射量30-50，肌 肉注射量为25-30，静脉注射量为 25。
动物与人体的每公斤体重剂量折算系数表
A 组 动 物 或 成
猫 2.0kg 3.2
戊巴比 妥钠
狗、兔
大小鼠、豚 鼠
狗、兔 大白鼠
硫喷妥钠
小白鼠
氯醛糖 兔 大白鼠 兔 乌拉坦
腹腔
静脉 腹腔 静脉
15-20
80-100 50 750-1000
1
2 2 30
大小鼠
蛙 蟾蜍
皮下或肌肉
淋巴囊注射 淋巴囊注射
800-1000
0.1ml/100g 1ml/100g
20
20-25 10
五、实验动物的麻醉
1.0
0.87 0.52 0.42 0.28 0.16
1.14
1.0 0.6 0.48 0.34 0.18
1.88
1.65 1.0 0.81 0.56 0.304
2.3
2.05 1.23 1.0 0.68 0.371
3.6
3.0 1.76 1.44 1.0 0.531
6.25
5.55 2.30 2.70 1.88 1.0
一、实验动物的抓取固定方法
（一）大、小鼠抓取固定方法
一、实验动物的抓取固定方法
小 鼠 固 定 盒 固 定
一、实验动物的抓取固源自文库方法
大鼠固定盒固定
一、实验动物的抓取固定方法
(二)、豚鼠的抓取固定法
一、实验动物的抓取固定方法
(三)、家兔的抓取固定法
一、实验动物的抓取固定方法
(四)、犬的抓取固定法
二、实验动物编号标记方法
动物在实验前常常需要作适当的分 组，那么就要将其标记，使各组加 以区别。标记的方法很多，良好的 标记方法应满足标号清晰、耐久、 简便、适用的要求。 常用的标记法有染色、耳缘剪孔、 烙印、号牌等方法。
二、实验动物编号标记方法
（一）颜料涂染 这种标记方法在实验室最常使用， 也很方便。使用的颜料一般有3-5% 苦味酸（黄），2%硝酸银（咖啡色） 溶液和0.5%中性品红（红色）等。 标记时用毛笔或棉签蘸取上述溶液， 在动物体的不同部位涂上斑点，以 示不同号码。