第九课电泳图谱的图像分析
《电泳原理》PPT课件
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三、电泳车返泳问题
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原因分析
1、设备原因:停台包括链子、摆杆、升降机等 设备意外故障。
2、烘干炉出口的电泳车不能及时被吊走,造成 堵车停线。
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改进措施
1、加强对电泳线设备的监控,以便及时发现 设备问题。
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(二)、F13、F14、F55、F33、F53过 滤袋更换频次和对应的泵压差范围问题
原因分析:对于电泳槽液、循环UF液以及循环DIW槽存在的杂质,包括灰 尘、材料夹带杂质、前处理随车带的焊渣、磷化渣、胶、油等应该及 时转移走,否则会引起电泳弊病。
解决措施:F13:组/天, F14:组/周, F55:组/两周, F33和F53超压 差就换;建议F13和F14内部放置磁棒和除油过滤袋。
H2O 水
-
HCOO 剩余酸
H2O
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(4)阴极电泳工艺 漆沉积
扩散
OH-
LOHLH-+ H2O
OH-
LH LOHLH-H+2O OHL-
LOHLH-++HH22OO
OH- LOLHH-+ H2O
OH-
H2O
OH- OH-
COH-
静止扩散区 大约 100 µm
对流
迁移
LH+
H2O LH+
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(三)、前处理到电泳入口横向转移链油太多
电泳基础说明(共50张PPT)
另外、pH和比电导度特性值虽然不能直接控制、但是也需考虑以下原因。 异常值出现时需再测定、同时与涂料厂家联络。
No. 管理項目 9. pH値
10. 比電導度
管理範囲 5.8 ~ 6.4
1200-1800
原因预测系统
↑ MEQ低下;UF 透过量、2次流挂低下 涂料稳定性低下
滤液废弃(漏)导致酸量下降 隔膜电导度低下导致酸量下降 杂质离子混入导致碱性上升 细菌繁殖导致酸量下降
↑
OH-
H2↑
R-NH3+ + OH- ---» R-NH2 + H2O
H+
R-NH2
阳极的化学反应 : 氧化反应 (R: 树脂)
–
(在电极表面)
2 H2O ---» 4H+ + O2 + 4e-
3. 一般的电泳涂装工序
温水洗、脱脂
空气 吹净
DIW
工水、RO 水洗工序
水洗
表面调整 皮膜化成处理
W0 : 皿重量
W1 : 样品重量 W2 : 烘烤后重量
R0 --- 皿重量
R1 --- 样品重量
R2 --- 烘烤后重量
C.) MEQ (酸含量)
MEQ = 100g 样品固体份 中的酸重量 (mg) ×100 酸的分子量
适用例 : 假定 ED槽的大小 = 約8 m3 (浴特性为NV=17% ; ASH=11 %的时候)
※ 洗浄
D.) 詳細説明
; 比电导度
涂膜性能FILM PROPERTIES MEQ每上升 1 个点
发生部位是局部、所以使容用易电判断传。导度测定装置测定。此时的涂料温度应为28℃。
②磷化处理后水洗不充分。
电泳测定法ppt课件
• 供试品溶液的制备 将供试品与供试品 缓冲液按3﹕1的比例混匀,100℃水浴加 热3~5分钟。
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• 测定法 • (1)制备分离胶溶液 按下表制成分
离胶溶液,灌入模具内至一定高度,加 水封顶,室温下聚合(室温不同,聚合 时间不同).
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• 将凝胶自银染液中取出,用水浸洗2次,每 次1分钟;然后将凝胶浸于显色液中,每隔 2分钟换液一次,直至蛋白条带显色完全; 将凝胶浸于终止液中10分钟后,取出凝胶 保存于水中。
• ②考马斯亮蓝法 将电泳后的凝胶浸入染 色液中过夜取出,浸入脱色液中,直至凝 胶底色几乎无色,取出凝胶保存在水中。
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(3) 分子质量要小,以便在等电点聚焦后 易于与被分离的高分子物质分离。
(4) 化学组成应与被分离的样品组分不同 ,以免干扰样品组分的检测。
(5) 与样品中各组分不会发生化学反应。
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• 两性电解质载体是由许多种多乙烯多胺( 如五乙烯六胺等)与丙烯酸进行加成反应 而制备得到的混合物。Ampholine, Pharmalyte等,相对 分子质量为300~ 1000,有不同的pH范围。如 pH3.5~5 、5~7、6~8、3~10、9~11等。
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用3层滤纸搭桥与巴比妥缓冲液(pH8.6) 接 触 , 100V 恒 压 条 件 下 电 泳 2 小 时 ( 指
示 剂迁移到前沿)。电泳结束后,用0.5% 氨基黑溶液染色,再用脱色液脱色至背 景无色。
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项目 品种 白喉抗毒素
破伤风抗毒素 多价气性坏疽抗毒素
肉毒抗毒素 抗蝮蛇血清 抗眼睛蛇毒血清
电泳分析法ppt课件
带电粒子的迁移速度=电泳和电渗流速度的矢量和。 正离子:两种效应的运动方向一致,在负极最先流出; 中性粒子:无电泳现象,受电渗流影响,在阳离子后流 出; 阴离子:两种效应的运动方向相
反;ν
电渗流
>ν
电泳时,阴离子在负极
最后流出,在这种情况下,不但可以按 类分离,同种类离子由于差速迁移被 相互分离。 最基本、应用最广的分离模式;
六、毛细管电泳的进样方式
injection method of HPCE
进样量:毛细管长度的1%-2%;纳升级、非常小;
1. 流体力学进样方式
(1)进样端加压
(2)出口端抽真空
(3)虹吸进样
2. 电动进样方式
毛细管一端插入样品瓶,加电压;
2 ( ) V π r ct eo ef 进样量 t L
板数高达几十万块/米,特殊柱子可以达到数百万。
高效毛细管电泳(CE)
2018/11/13
分离过程
电场作用下,毛细
管柱中出现:电泳现 象和电渗流现象。
带电粒子的迁移速度=电泳+电渗流;两种速度的矢量和。 正离子:两种效应的运动方向一致,在负极最先流出; 中性粒子无电泳现象,受电渗流影响,在阳离子后流出; 阴离子:两种效应的运动方向相反。ν 电渗流 >ν 电泳时,阴 离子在负极最后流出,在这种情况下,不但可以按类分离,除中 性粒子外,同种类离子由于受到的电场力大小不一样也同时被 相互分离。
(3)电场强度程序控制系统;
(4)电压稳定性:0.1%; (5)电源极性易转换;
2. 毛细管柱
(1)材料:石英:各项 性能好;玻璃:光学、机 械性能差; (2)规格:内径20~ 75μ m,外径350~400μ m; 长度≦1m
第9章电泳和电色谱PPT课件
A
B
6
(6)相对迁移率(relative mobility):用mR表示蛋白质样品 的迁移距离与示踪染料的迁移距离之比即为相对迁移率,即
蛋白质的迁移距离(cm) mR = —————————————
示踪染料的迁移距离(cm)
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1.4 电泳的基本原理 (1)带电颗粒 溶液中任何物质由于其本身的解离或表面吸附其它带电 质点而带电,在电场中就会发生迁移,移动方向取决于它 们的带电符号。
凝胶电泳的支持介质: 聚丙烯酰胺凝胶(polyacrylamide gel, PGA) 由丙烯酰胺和交联剂N,N’-甲叉双丙烯酰胺在引发 剂和增速剂的作用下,聚合而成; 琼脂糖凝胶: 从琼脂中精制分离出的胶状多糖,其分子结构大部 分是由1,3连接的β-D吡喃半乳糖和1,4连接的3,6脱水αD吡喃半乳糖交替形成的;
自由溶液中此阻力服从Stock定律:
f ' = 6πrηve
(2)
ve是在介质粘度为η的溶液中,半径为r的带电颗粒的移动速度。但在凝胶中
,这种阻力并不完全符合Stocks定律。 还取决于介质中的其它因素如凝胶厚度
、颗粒大小和介质的内渗等。
当f= f '时,荷电溶质恒速泳动,
eZ
ve= 6π rη E = u0E
在单位时间内,带电粒子在电场的作用下做定向运动的距离,单 位是cm /sec
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(4)电场强度(electric field strength):用E表示 在给定的电泳支持物两端电极施加电压后所形成的电效应,单位是 V/cm E = V /Lt 式中V为电压,Lt为两端电极的距离。
(5)电渗流(electroosmotic flow):用EOF表示 在电场中电泳溶液的正电荷与固体支持物表面上的负电荷之间相互作用, 形成 一个正离子层,导致流体朝负极方向移动,称为电渗流,这种现象也 称之为电渗(electroosmosis)现象。
电泳图谱
电泳图谱
血红蛋白电泳扫描及图谱
正常人Hb区带:从负极向正极泳速最快的HbA,占大部 分,约95%;HbA后有一较浅 区带为HbA2,正常人约23%,比下述NHP染色深,但不超过一倍。A2后距加样 线不 远处尚有一或二条区带较为集中,着色更浅的带为 红细胞内的非Hb蛋白质成份(NHP) ,如碳酸酐酶等。 HbF与HbA等电点接近,通常与HbA分不开。但如果含 量较大,与 同时电泳的正常成人Hb比较,还是可以看出 在HbA稍后的HbF带,但不能完全分开。 异常人Hb区带:以HbA为标准,异常Hb可分为较HbA泳 动快的快Hb和较HbA泳动慢 的慢Hb两部分。快Hb有 HbH和HbJ;慢Hb则按与HbA的距离依次为HbG、HbD 和HbE。
急性心肌梗塞发作早期,血清中LD1和 LD2活力均增高,但LD1增高更早,更明 显, 可导致LD1/LD2比值升高;溶血性疾 病、幼红细胞贫血症、肾坏死和假性肥大 性 肌营养不良患者血清中LD1和LD2也可 增高。LD2、LD3增高见于恶性病,尤其 是白 血病、淋巴瘤、急性肺损伤、胶原病、 心包炎和病毒感染。LD4、LD5增高见于 肝 细胞损害(坏死、炎症、充血),肌肉 损伤,心肌梗塞并发充血性心衰时LD5也 增高
肌肉创伤及肌肉注射后CK同工酶只检出 CK-MM。各种原因引起的缺氧性神经系统 疾病,缺氧后48-72小时脑脊液CK-BB升 高。血中CK-BB的出现与脑神经系统疾病 无一定规律。但血中CK-BB与肿瘤有一定 关系。
乳酸脱氢酶同功酶电泳扫描及图谱
仪器:Sebia Hydrasys LC、Hyrys 方法:琼脂凝胶电泳 染料:四氮唑盐
尿蛋白电泳扫描及图谱
电泳介绍PPT课件
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电子电器产品透明电泳保留金属本色或拉丝等表面处理效果透明电泳起防腐耐指纹作用彩色电泳在工件表面形成彩色漆膜达到高光半哑亚光的效果electroclearelectroclearelectroclear电泳膜层较薄因此在彩色电泳时应该考虑基体本色所带来的色差已经基体缺陷造成的外观不良基体选择不同前处理工艺会对外观光泽颜色带来差异清除涂膜与涂件表面的障碍排除影响二者结合的因素如油污锈渍氧化皮及其它杂质提高涂膜的附着力及其质量
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电泳调色 ❖素材选择以及前处理 ❖色浆与调色 ❖颜色变化
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基体素材选择以及前处理
▪ 导电性
▪ 在涂料固化温度下,不发生形变
▪ 电泳膜层较薄,因此在彩色电泳时,应 该考虑基体本色所带来的色差,已经基 体缺陷造成的外观不良
▪ 基体选择不同前处理工艺会对外观、光 泽、颜色带来差异
常规前处理流程 • 喷沙,拉丝,抛光等 • 脱脂 • 酸洗 • 磷化(铁件) • 钝化(有色金属) • 其他
电泳
▪ 电泳漆控制 温度、固体分、电导率、pH、溶剂含量等
电泳图片光密度分析原理与方法
电泳图片光密度分析原理与方法无论是DNA电泳图片还是RNA电泳图片,或者是蛋白的凝胶电泳图片包括Western blot膜、或者是化学发光膜图片,在图像分析的角度来看,都是同样的一种条带光密度分析的问题。
分析电泳条带有专门的一类图像分析软件。
常见的是Bandscan,Quantity One,而由各个凝胶电泳成像系统厂商自己编制的软件就更多了。
其中Labworks是UVP公司生产的凝胶电泳成像系统上配用的拍摄与分析软件,实际上就是传说中大名鼎鼎的gel-pro。
这个软件可以看作是Image-pro plus应用在电泳条带分析上的专业版。
实际上所有的电泳条带分析软件在分析原理与功能上都没什么差别。
只是软件界面与操作程序上各有不同。
所以,了解了条带的分析原理后也就能自己学会各种软件的使用了。
分析电泳条带也是从拍摄电泳照片开始的,用平时的数码相机拍摄的电泳条带一般不能用来进行定量的分析,而必须使用专门的拍摄设备,大家一般称它为“凝胶成像系统”。
它集中了观察,拍摄与分析凝胶的所有功能。
一个凝胶成像系统包括了三个部分,暗箱,相机与电脑上的控制分析程序。
让我们从使用成像系统的操作方法中来了解如何正确地拍摄与分析凝胶吧。
一、暗箱一个最简单的暗箱就是个不透光的箱子里面放了一个紫外灯箱,高级一点的暗箱则有好几组灯光照明。
当然,在箱子上面会有一个安放相机的地方。
紫外灯箱是观察与拍摄凝胶的必需照明设备。
它是用来观察EB染色的凝胶条带的。
里面的紫外灯光能提供256nm,302nm 及365nm的紫外光。
在观察EB的红色荧光条带时,一般用302nm。
在观察与拍摄蛋白凝胶的时候,必须使用透射白光照明。
有的暗箱里会有白板照明灯,平时向上掀起靠在后壁上,使用时拉下来。
简单的暗箱则是用一块荧光板放在紫外灯箱上面,用紫外光照射荧光板,发出白色光。
用白板的透射光照明来拍摄蛋白凝胶的道理有点像医院里用灯箱来观察X光片。
只有在透射光下,才能正确地反映凝胶上条带的光密度分布。
电泳条带图
血清蛋白电泳免疫固定电泳SEBIA 电泳条带图谱α1 α2 βγ本周氏蛋白电泳CSF S脑脊液电泳肾小管性蛋白 Proteins of tublar origin(<70Kda)白蛋白Al bu mi n(70Kda)肾小球性蛋白 Proteins of Glomerular origin(>70Kda)β2M icroglobulin(12Kda) β2 微球蛋白 Lysozyme(15Kda) 溶菌酶 RBP(21Kda) 视黄醇结合蛋白Free light chain (25Kda) 游离轻链 α1 M icroprotien(33Kda) α1微球蛋白Dimer of free light chains(50Kda) 游离轻链二聚体Albumin(70Kda) 白蛋白Transferrin(80Kda) 转铁蛋白IgG(160kDa) IgGIgA(165kDa) IgAHaptoglobins 结合珠蛋白α2 M acroglobulin-Ig M (800-900Kda) α2巨球蛋白(α2M )-Ig M Application point 点样尿蛋白电泳albumingamma globulinsbeta alpha 2alpha 1cystatinOrosomucoid 血清类粘蛋白α1-antitrypsin α1抗胰蛋白酶Gc globulin, Gc 球蛋白α2 macroglobulin, α2巨球蛋白α1-antichymotrypsin α1抗糜蛋白酶 α lipoprotein α脂蛋白Transthyretin前白蛋白(pre albumin)Desialylated transferrin (tau fraction)C3补体transferrin, 转铁蛋白hemopexin 血红素结合蛋白β lipoprotein β脂蛋白 haptoglobin, 结合球蛋白 ceruloplasmin 血浆铜蓝蛋白 H R 脑脊液 H R 血清 前白蛋白白蛋白α1 lipoprotein α1脂蛋白β脂蛋白,血色素结合蛋白G 1脂酶抑制剂 C3补体 β2 微球蛋白γ球蛋白HR 尿蛋LDH 1LDH 2LDH 3LDH 4LDH 5乳酸脱氢酶LDHBB----MB----巨CK1MM----点样巨CK2肌酸激酶同功酶 CKMB1MB2MM1MM2MM3 CK 同分异构体碱性磷酸酶—A L P糖化血红蛋白---Hb- ALCBart’sA0FA2SDH血红蛋白电泳LDL/HDL 胆固醇HDLLP(a)VLDLLDL点样脂蛋白 (a )电泳。
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由于在进行斑点检测时会错误的识别一些蛋白质斑点, 比如将一些污染的非蛋白质点识别为蛋白质点、将本来 是一个蛋白质点识别为两个蛋白质点或者反之。所以在 匹配之前最好进行处理,同时将gel scan 、gel image 和gel spot图打开,然后单击edit spot tool,出现一个 对话框,此对话框中有增加斑点(make a spot at cursor), 删除斑点(remove spot at cursor),合并斑 点(combine spot in box)等图标,可根据你的目的而 选择其中一个图标进行相应的斑点处理。这些处理只能 在gel image图象中处理,但相应的在gel spot图象中会 同时得到显示。
Scan。)
单击工具栏上的control the image display 图标,会出 现一个对话框,通过改变此对话框的High 和Low的值以改变明 亮度。
用工具栏的crop可以切割掉凝胶边缘没有蛋白质点的部 分,以减少分析的复杂性,但要注意对你要分析的多块凝 胶图像最好是切割成同样大小。 (在操作时先选择其中的一个凝胶图象并选定要切割的区 域,然后在image>advance crop>save crop settings下保 存crop的设定条件并输入保存的名称,其他的图象切割时 在image>advance crop>load crop settings中选定先前保 存的名称即可 )
归一化 Normalization
为了矫正银染对蛋白质点定量分析的影响,所有点的含量 通过单个点的光密度值比上胶上所有点光密度质而正常化 (Normalize), 单击Edit>Normalize, 出现一对话框,选择 左上角Enable Normalize,下面的窗口被激活,在Basis下 选择Total of all Valid Spots, 在Scaling下选择 PPM(×1000000), 然后单击 go。这样所有的点都正常化 (Normalize)了。
在Select Spots Which are 中可以选择Increased, Increased or Decreased 或者是Decreased 等,激活选 项后可以输入倍数关系, 默认的是2 times, 可以输入其他数 值, 如3 times。参数设好后就单击go, 在参考胶上就会出 现黄色圈标记的蛋白质斑点,如果你选择是Increased B>A 2 times, 那么这些黄色圈标记的蛋白质斑点即为在量 上B大于A 两倍的蛋白质点.
三 、斑点匹配 (Matching spots)
蛋白质斑点检测完了之后,为了比较和分析不同凝胶中蛋白 质斑点的改变,PDQUEST 可以建立一个Matchset。 单击match>creat matchset, 出现一个Matchset的对话框,输入 文件名称,保存路径,选择(select)或上载(load)gel spot 图像的文件名,然后单击creat, 出现一对话框,选择其中的一 个图象做为参考图象(standard member), 整个Matchset用单 个窗口(signal window)来表示,其中的亚窗口 (subwindow)分别用来表示参考图像(用REF来表示)和成 员胶(member gel)图像。
标志点以绿色三角标记,每块胶上匹配上的蛋白质 斑点以绿色字母标记,没有匹配上的蛋白质斑点用红 色圈来标记,即是有无差异表达的蛋白质点。
四 、数据分析及输出 (analysis and report)
为了分析蛋白质斑点之间差异表达,PDQUEST提供了多 个分析程序,包括蛋白质斑点量(Quantity)分析,散点图工 具(Satter Plot Tool) ,量的柱状图分析(Graph)等在内的 多种分析程序。
一、 图象采集与加工 (editing images)
1、扫描:凝Βιβλιοθήκη 染色后用清华紫光扫描仪扫描,透射模式,
全彩RGB,分辨率为400dpi-800dpi,尽量排除气泡,文件以 tiff格式保存。
2、图片加工:
在PDQUEST 2-D分析软件中打开以tiff格式保存的文件可以。 (单击“打开文件”图标和“File”菜单并选择“Open”命令, 选择保存2-D图象文件的磁盘、路径和文件名,双击文件名或单 击“Open”以打开2-D图象文件,此时tiff格式保存的文件会自 动另外创建一个为PDQUEST 2-D分析软件自定义的文件格式2D
Matchset 建成后,接着便是设立标志点(landmark),它的作用是对整个 凝胶上蛋白质斑点进行排列(align)与定位(position)以便进行匹配 (match)。 单击工具栏中的match tools图标会出现一个窗口,其中有 landmark, unlandmark, match gel, match all gels等斑点匹配的工具, 在match菜单中也有 这些工具。 标志点应选择分辨良好,且所有成员胶上均出现的蛋白质斑点,并尽量避开 蛋白质斑点聚集的地方,最好在不同的放大倍数下确定该蛋白质斑点为所有 成员胶上同一个蛋白质斑点。至少要设立两个标志点后便可利用PDQUEST的自 动匹配功能来完成不同凝胶上的蛋白质斑点的匹配了。一般设立的landmark 斑点个数为总斑点的10%左右,要用肉眼检查每一个应该能匹配上的斑点是否 匹配上了。
双向凝胶电泳技术是目前蛋白质组研究的主要技术 之一, 双向电泳根据等电点和分子量可一次性分离数 千种蛋白质,经染色后蛋白质再PAGE上可形成密度 不同、分布不均的复杂点图谱。 如何有效的对双向凝胶电泳图像分析,如何对图谱 上的蛋白质点进行检测、定量、比较、分析和归类, 挖掘有价值的蛋白质点的信息是双向电泳分析软件 所要解决的问题。
对错误匹配的蛋白质斑点或没有识别到的匹配可进行 手工方式编辑。在这里也可以进行编辑斑点功能,单击 view>interchange all images, 这样所有的成员胶和参考 胶有Gel spot 状态下变成了Gel image, 而在Gel image 状态下可进行Edit Spot Tools 以编辑蛋白质斑点。
量化柱状图 Graphs
单击Reports>More Graphs>Page Graphs, 在有边会出 现一对化框,显示所有蛋白质点在不同胶上的量化柱状图, 如果要显示所要分析的蛋白质点的量化柱状图,则在对话框 的Input下选择Analysis set, 出现一对话框,然后选择分析 的名称即可。在Reports>Quantity Graphs下可输出所有 的蛋白质点(All Match Spots)或者是特定分析的蛋白质 点(Specificd Analysis Set)在不同胶上的量化柱状图。
二 、斑点检测 (spots detection)
图象采集与加工后就要进行斑点检测,PDQUEST 2-D 分析软件通过一个称之为“蛋白质斑点检测向导 (spot identification wizard)”的程序来实现 的。
单击“spot”菜单,选择“spot identification wizard” 程序。 该程序首先需人工设定检测参数如最小斑点、最弱斑点、最 大斑点、最小斑点和背景值,然后程序进行自动检测并可调节 检测的灵敏度,若检测效果不理想,该步骤可反复进行。程序 允许人工调节脱尾(streaks)、背景、斑点(speckles)和 其他一些选项等。 这些参数设好后单击Find spot centers,其结果在凝胶图象 会显示检测到的斑点会用“ 字(Spot Crosshairs)”表示, 检测的蛋白质斑点应尽量与肉眼观测的相符。 在Parameter Set 项输入保存的名称,蛋白质斑点的参数可 被保存,并能用保存的参数自动检测所有2-D凝胶中蛋白质斑 点,单击Process all gels,会出现一个Auto-detect spots 窗口,其中可以选择需要进行斑点检测的凝胶图象(这些凝胶 图像需事先打开)。 蛋白质斑点检测完了之后,软件会自动创建另外两种格式分 别为gel image 和gel spot。
PDQuest 软件简介
PDQuest软件是显示(imaging)、分析 (analyzing)双向电泳图谱&数据库查询的一个 软件包
硬件:一定的电脑配置,Pentirm 166处理器,
64M内存,3G硬盘,1024*768分辨率 ,256色, SCI接口,windows操作系统 软件: PDQuest双向凝胶图像分析软件,BioRad Laboratory,Hercules,CA
散点图工具 Scatter plot
单击Reports 下的Scatter plot,会出现散点图分析的对话 框,可以选择x, y轴,分别代表一块胶,Markers 下可以选 择倍数,下面的散点图即显示了两个2-D胶图像中蛋白质点 之间的相关性,上面会显示二者的相关系数,如果相关系数 大于0.4,说明二者有较大的相关性,如果小于0.4大于0.2, 说明相关性较小,小于0.2, 说明没有相关性。在Reports >Scatter plots 下可以将所有的凝胶图之间的相关图都打印 出来。
PDQuest 软件的使用
以PDQUEST 2-D分析软件为例将双向电泳分 析的基本实验过程做一简单介绍。
凝胶的图像处理分析及细 胞蛋白谱的建立
典型流程
凝胶图像的扫描: 图像加工: 斑点检测和定量: 凝胶配比: 数据分析: 数据呈递(report) 2-DE数据库的建立:
PDQuest 软件
电泳图谱的图像分析
Differential analysis
回顾
State 1
2DE
PMF LCMS/MS State 2 Database search
?
Functional analysis
MS/MS
电泳图谱的图像分析简介 what can we get from image analysis?