痰培养质量控制-简易
痰液及下呼吸道分泌物培养简易操作规程
、痰液及下呼吸道分泌物培养标准操作流程1观察标本合格后操作。
一般为晨痰，再留取痰之前刷牙、反复漱口，应从气管深部咳出痰，吐进无菌容器内送检。
涂片白细胞小于10，上皮细胞大于25 为不合格痰，相反白细胞大于25，上皮细胞小于10-25 为合格痰标本。
2点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌—待冷却后—取痰液—接种到血平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C 培养18-24 小时。
4观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验---- 报告结果。
便培养标准操作流程1、收取有粘液或脓血、稀水粪便标本。
2、点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3、接种环灭菌一待冷却后一取粪便一接种到血平板、SS平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C 培养。
4培养18-24 小时后观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验--- 报告结果。
尿培养标准操作流程1收取晨尿第一泡清洁中段尿。
（把外阴用肥皂清洗一遍，再用清水清洗两遍，待干或用干净布擦干）用导尿管得病号需新换导尿管后取标本2点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌一待冷却后将标本混匀，用定量接种环取尿液1ul（大约一接种环）一接种到血平板，接种环灭菌---待冷后取标本接种到中国兰平板（或麦康凯平板上）。
痰涂片检查与质量控制
(二) 室间质控：
质控模式：
跨国 参比 实验室
每年每省抽查一个县
国家 结核病 参比实验室
省(市、>1 次/年 地(市)
自治区)
细菌学
参比实验室
实验室
2 次/
每年抽查每地(市)一个县
县(市) 细菌学 实验室
质控范围： 1. 督导内容： —实验室布局 —实验室安全防护和污染物处理
—涂片、染色操作 —显微镜维护状况 —抽取痰涂片复验 —实验室日常工作记录(包括室内和室间质控) 2. 督导方式： —现场督导 上级实验室检验人员赴基层实验室现场指导，抽取痰片复验。 —非现场督导 基层实验室将保存近期 3 个月的全部痰片，及实验记录，送上级实验室 复验。 国家参比实验室以非现场督导为主。省级参比室应进行现场和非现场督导，但每年应对 一定比例的地(市)和县(市)实验室，作现场督导。 地(市)对县(市)实验室的督导，原则采取现场督导形式。 3. 痰涂片室间质控： —范围、内容同室内质控。 —痰片抽取方式 现场和非现场督导均抽取 30 份痰片，包括 20 份涂阴、10 份涂阳痰片。 对一些特定的项目和课题， 可按其规定进行痰片复验。但送国家参比实验室年报表中仍按 本规定执行。 4. 评价标准：评价分为痰菌镜检结果和制片质量两方面。 —痰片镜检：阳性片符合率≥98%，阴性片符合率≥96%。 —制片质量：痰细胞，痰膜面积、厚薄、脱落合格率应≥90%，染色合格率≥95% 。
(3)痰标本性质：按脓样痰、干酪样痰、血性样痰、脓性粘液痰和水样痰分类登记。
(4)“标本镜检结果”中的“日期”为实际镜检日期。
痰培养质量控制简易
详细描述
为避免实验操作问题，应加强实验人员的培训和考核，确保其熟练掌握痰培养的 各项操作技能。同时，应定期对实验操作进行质量检查，及时纠正不规范的操作 。
04 痰培养质量控制 的未自动化技术
通过自动化设备提高痰培 养的检测速度和准确性， 减少人为误差。
基因检测技术
通过与国际接轨的质量控制标准，促 进国际间的学术交流与合作，共同推 动痰培养技术的发展。
提高科研成果的可靠性
通过严格的质量控制，提高科研成果 的可靠性和可信度，推动微生物学研 究的进步。
02 痰培养质量控制 的关键环节
痰样的采集
痰样的采集是痰培养质量控制的第一步，采集过程需要注意以下几点
采集时间：选择在抗生素使用前采集痰样，以避免抗生素对细菌生长的抑制作用。
采集方法：采用自然咳痰法，即让患者自行咳出痰液，避免使用吸痰器等强制排痰方式，以 免对呼吸道造成损伤。- 采集容器：使用干燥、清洁、无菌的容器收集痰液，避免使用含有 消毒剂或防腐剂的容器，以免对痰液中的细菌产生抑制作用。
痰样的处理
• 痰样的处理是痰培养质量控制的重要环节，处理过程需要注意 以下几点：- 痰液稀释：对于黏稠的痰液，需要进行稀释处理 ，以便于细菌的分离和培养。- 微生物去除：在痰液处理过程 中，需要去除痰液中的微生物，如唾液、食物残渣等，以免对 细菌培养产生干扰。- 培养基的接种：将处理后的痰液接种到 适当的培养基上，以便于细菌的生长和繁殖。
痰培养质量控制简易
汇报人： 202X-12-30
目录
• 痰培养质量控制的重要性 • 痰培养质量控制的关键环节 • 痰培养质量控制的常见问题及解决方案 • 痰培养质量控制的未来展望
01 痰培养质量控制 的重要性
保证实验结果的准确性
痰培养标本质量控制
痰培养标本质量控制痰培养标本质量控制1、背景信息痰培养是临床微生物学常用的一种检验方法，用于寻找痰标本中的病原微生物并进行药敏测试。
为了确保痰培养结果准确可靠，需要进行标本质量控制。
2、标本采集2.1 标本收集痰标本应采集自早晨起床后的第一次深咳嗽产生的痰液。
应向患者解释痰标本采集的目的，要求患者用口腔水漱口清洁口腔，并尽量避免采集到口腔分泌物。
2.2 标本容器选择痰标本应收集于干净、干燥、无菌的容器中。
透明或浅黄色塑料容器是常用的标本容器，容器应具备密闭性。
2.3 标本采集方法在患者编写有关信息的标签上标记标本编号、患者姓名、采集日期和时间。
请患者在标签上签名以确认标本采集的准确性。
2.4 标本送检标本采集后应立即送至临床检验实验室，或者根据医院相关规定存放在冰箱中，并确保标本不受污染。
3、标本质量控制3.1 标本数量根据患者临床症状和医生的指示，应确保每个患者至少提交两份痰标本。
3.2 标本增强痰标本质量控制中的一个常用方法是提高标本的敏感性。
可以通过让患者进行气道湿化治疗、支气管扩张、进行肺部物理治疗等方式来增强痰标本的产量。
3.3 标本存储和运输收到标本后，应及时进行镜检和细菌培养等检验。
如果不立即检验，应将标本存储在2-8摄氏度的冰箱中，尽量减少存储时间，以免影响检验结果。
在运输过程中，应确保标本不受振荡和温度变化的影响。
4、相关附件本文档包含以下附件：附件1：痰培养标本采集流程图5、法律名词及注释5.1 标本：指采集于患者体内的组织、血液、体液等样本，用于临床检验分析。
5.2 病原微生物：指引起疾病的病菌、真菌等微生物。
5.3 药敏测试：对病原微生物进行药物敏感性测试，以指导治疗方法。
6、总结痰培养标本质量控制对于准确诊断和科学治疗具有重要意义。
该文档详细介绍了痰标本采集、标本质量控制等相关内容，希望能够对临床实验室的工作人员和医务人员提供参考和指导。
呼吸内科痰标本送检的持续质量改进
呼吸内科痰标本送检的持续质量改进江苏省常州市第二人民医院 213000呼吸内科患者留取痰标本是最常见，也是非常重要的检查项目之一。
持续质量改进（continuous quality improvement，CQI）是由美国戴明博士1986年提出的。
它是在质量控制（QC）和质量保证（QA）的基础上发展起来的，在全面质量管理基础上更注重过程环节的一种新的质量管理 [1]。
针对住院患者痰培养标本送检不及时、合格率低等情况、我科专门对其实施了持续质量改进，取得了满意的效果，现汇报如下。
1 痰标本质量问题原因分析1.1 护理方面部分护理人员缺乏责任心或技术不熟练，导致标本保存不当（标本未加盖，室温下保存、保存时间过长），送检不及时，容器被污染，容器破损等。
1.2 患者方面患者神志不清，肢体活动受限，不能很好的配合咳痰。
或者无力咳痰。
1.3 医院制度方面缺乏专人管理；是否应用抗生素无标识，实践中忽略抗生素的影响。
1.4化验室因素大多数实验室在痰标本培养前不做标本质量检查（将痰液直接涂片，行革兰染色镜检），因而培养结果的可靠性不强。
杨小青[2]曾在2002年收集各临床科室痰标本共456份，经涂片染色镜检合格标本为242份，占53.1%；不合格标本214 份，占46.9 %。
在242 份合格标本中呈现纯培养或优势生长的占57.4 %，说明痰标本筛选后分离培养，可提高阳性率，减少不合格标本培养结果对临床的误导。
2 质量改进2.1引入PDCA管理循环即计划、实施、检查、处理四个阶段，加强对痰培养的科学管理[3]。
其特点是大环套小环，互相促进且呈螺旋式上升。
把痰标本送检质量作为大循环系统，留取痰标本的指导、留取标本的容器使用、护士、患者、家属是大循环中的一个个小循环系统，各个流程环环紧扣，人人把关，把整个计划工作有机地联系起来，相互协调，使上级循环成为下级循环的依据，下级循环成为上级循环的保证。
2.2 改进痰液留取方法正确采集痰培养标本是检出病原菌的关键步骤之一，能明显提高痰菌的阳性率[4]。
痰培养标本质量控制
评估结果分析及改进措施
结果分析
根据评估指标和评估方法，对痰 培养标本的质量进行综合分析， 找出存在的问题和不足。
改进措施
针对存在的问题和不足，制定相 应的改进措施，以提高痰培养标 本的质量和可靠性。
THANKS
感谢观看
标本标识
标本送检及时性
评估标本标识是否清晰、准确，以避免混 淆和错误。
评估标本送检是否及时，以确保病原菌存 活率和培养结果的准确性。
评估方法
现场观察
观察痰培养标本的采集、标识、送检等环节，以 评估其规范性和及时性。
实验室检测
对痰培养标本进行实验室检测，以评估其质量和 可靠性。
对比分析
将痰培养结果与临床诊断进行对比，以评估痰培 养标本的准确性。
患者不配合
应耐心解释采集的重要性，并指导患者正确 的采集方法。
痰液质量差
可以通过调整采集方法或改善患者呼吸道状 况来提高痰液质量。
采集过程中发生呛咳或窒息
应立即停止采集，并采取相应措施处理。
02
痰培养标本处理
标本处理流程
运输
尽快将痰液送至实 验室，避免长时间 放置。
接种
将痰液接种于培养 基上，进行培养。
如痰培养标本未能按时送达实验室， 可能影响检验结果的准确性。应尽快 与运输方联系，了解延迟原因并采取 相应措施。
如痰培养标本在运输过程中受到污染 或与其他标本混淆，可能导致检验结 果不准确。应立即通知实验室，重新 采集标本并进行检验。
损坏或丢失
如痰培养标本在运输过程中发生损坏 或丢失，应立即与运输方联系，协商 解决方案，同时通知实验室重新采集 标本。
诱导痰法
通过雾化吸入生理盐水或 其他诱导剂，使患者产生 痰液并收集。
浅谈痰液细菌学检验的质量控制
浅谈痰液细菌学检验的质量控制摘要】介绍痰液细菌学检验的质量控制要求。
检验前质量控制:标本采集和送检时限及检验申请单规范书写。
检验中质量控制：痰液前处理、涂片染色、接种、菌种鉴定、药物敏感试验。
检验后质量控制：三级报告制度和限时报告制度及规范报告单内容。
加强和临床联系，提供细菌耐药性信息，防范抗生素滥用。
目的：探讨痰液细菌学检验标准操作程序，提高质量控制意识，加强人员培训再教育。
【关键词】痰液细菌学质量控制痰液细菌学检验在检验医学中具有重要的位置，但结果的准确性不易控制，主要表现在它的高干扰性：如标本采集、运送等过程中的诸多因素都会干扰检出率和正确性，因此必须要有良好的业务素质和敬业精神，要勤于学习和探索。
痰液细菌学检验的全面质量控制是一个连续的质量管理程序，包括从患者准备、申请单书写、标本采集、保存、运送、处理和检验、结果分析和报告等过程。
本文拟从检验前、检验中、检验后三方面提出质量控制要求。
1.检验前的质量控制1.1痰液细菌学检验项目的申请要有针对性和合理性。
临床医师应在熟悉人体各部位正常菌群以及常见致病菌的基础上，结合感染患者的症状、体征，科学的提出检验申请，包括普通细菌、结核杆菌、支原体、真菌等项目，并力争在使用抗菌药物之前送检标本。
细菌检验申请单必须提供临床信息，特别说明是否使用抗菌药及其名称。
1.2正确的采集、处理与运送细菌学检查的标本是临床细菌检验成功的关键。
正确的微生物检验始自正确的标本采集。
临床医师、护士及检验师都必须通晓其要领，以便指导监督患者规范留取痰标本。
呼吸道分泌物（痰液）目前存在着严重的标本质量问题，现多采用自然咳痰法、诱导咳痰法、体位引流法、咽拭子法、气管穿刺法、纤维支气管镜抽吸及胃液抽吸法（怀疑将痰咽下的情况）等。
容器应无菌、不漏和便于密封。
标本采集后立即送检力争一小时送达，实验室应立即进行标本的质量检查及培养接种。
Lis系统标本送检签收软件程序可有效地控制标本留取、送检、前处理时限[1]。
痰培养标本质量控制精简版
痰培养标本质量控制痰培养标本质量控制收集标本痰培养的第一步是收集标本。
正确的收集方法对于获得可靠的结果至关重要。
1. 收集时机：最好在早晨醒来后收集第一口深部痰液，这样可以确保标本的浓度足够高。
2. 收集方法：尽量避免口腔和咽部的污染，使用唾液替代样本的质量很差。
必须通过咳嗽将痰液从气道中带出来，并尽量避免唾液的混入。
3. 标本容器：使用无菌、干燥、密封的容器收集标本。
请确保容器上有正确的标签，标注患者的姓名、住院号以及收集日期和时间。
4. 标本数量：尽量收集足够量的痰液，以便进行多个培养和检测。
通常，推荐收集15-20毫升痰液。
样本传送收集完标本后，及时将其送往实验室进行处理。
正确的样本传送也对痰培养结果的准确性有着重要影响。
1. 保存条件：标本在传送前需要保存在2-8摄氏度的环境中。
过长的保存时间可能影响痰液中微生物的生存和生长。
2. 运输方式：尽快将标本送至实验室。
如果距离较远，可以使用冷藏包或干冰来保持低温。
3. 标本传递说明：为了确保实验室能够正确处理标本，建议提供必要的信息，包括患者的姓名、住院号、样本的类型和收集时间等。
实验室处理实验室在接收到标本后，需要进行一系列的操作来分离和鉴定病原微生物。
1. 样本处理：，需要将样本进行分离，将液体与固体分开。
然后，通过离心和过滤等方法，分离出微生物细胞。
2. 培养基选择：根据临床症状和怀疑感染的微生物类型，选择适当的培养基进行培养。
3. 培养条件：根据不同的微生物类型，设置适当的培养条件，包括温度、湿度和氧气含量等。
4. 结果分析：根据培养的结果，进行微生物的鉴定和药敏试验，以确定感染的病原体以及其对抗生素的耐药性。
质控措施为了确保痰培养的准确性和可靠性，质控措施是非常重要的。
1. 内部质控：实验室应定期进行内部质量控制，包括采用已知菌株进行培养和鉴定的比对实验，确保实验结果正确可靠。
2. 外部质控：参加外部质量控制项目，与其他实验室进行比对，以评估实验室的准确性和可靠性。
痰培养标本质量控制
5.审核报告：每日报告单由上级检验医师审查无误后，才签名发出
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三、痰培养分析前实验室内质量控制
痰涂片镜下观察注意点：
1.白细胞内吞噬细菌与感染相关度高。 2.粘液丝缠绕或包裹的细菌可能为目的菌。 3.与白细胞伴行的细菌可能为目的菌。 4.合格样本中的单一细菌可做为目标菌。 5.混合样本要注意白细胞相关及视野的层次感，多关注白细
入鼻咽分泌物。
3.做细菌培养时无菌采集痰标本，并先 用无菌水漱口
4.及时送检。Βιβλιοθήκη LOGO二、质量控制
痰标本留取有以下几种方法：
1.自然咳痰法
1.1 晨痰最佳。咳痰前指导病人用无菌生理盐水、温开水充分漱口，有假 牙者应取下假牙。
1.2 指导病人深呼吸数次后，用力深咳，咳出的深部痰直接吐入无菌、干 燥的广口带盖容器中，标本量≥1ml。不要在口腔中停留。
解读药敏报告单注意事项： 1.细菌全自动分析仪的药敏组合是固定的。 2.药敏试验室参照美国CLSI推荐的标准制定的。 3.某些细菌对某类抗生素天然耐药，则不需要做药敏试验 4.试验的药物代表一类药，而不是一种药。
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四、细菌药物敏感试验解说
解读药敏注意事项：
5.对葡萄球菌一代比三代头孢治疗效果好。 6.有些药物不适用于单独使用，仅用于联合用药。（利福平） 7.因为是体外药敏试验，有些药体外试验敏感，可能临床治疗无效。 8.同一菌株可能出现亚种，导致连续药敏结果不吻合。
24小时。 （4）晨痰如果在两小时之内不能送检或接种应考虑送随机痰 （痰液留取
后不能及时送检，降低了苛氧菌的分离率）。 原则：保持细菌活力，否则应拒收。
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痰培养操作经验分享精简版
痰液的接种
培养基基本组合：血平板、巧克力培养基 （含万古霉素）、麦康凯、CHROMagar； 特殊补充：
怀疑为军团菌的加种BCYE-а培养基 怀疑为百日咳的加种Boudet-Gengou培养基 怀疑为肺炎支原体感染的加种Hayflick双相培养 基 怀疑为结核的接种L-J培养基或Middlebrook 7H10
质量控制
狭义质量控制：对试剂和仪器的控制 广义质量控制：对所有影响试验结果可靠性的 因素进行的全面质量控制
试验人员技术能力的控制——操作的标准化与试验 结果判读的标准化 试剂的保存与正确使用 仪器的正确使用、定期维护与校准 试剂阴阳性结果的典型性与试剂的稳定性考察 严格但合理的首代分离培养基质控措施 流程中不同环节试验之间的相互印证
痰培养环境
苛养菌：35℃，5%CO2环境，相对湿度＞ 70% 普通细菌：35℃，普通大气环境，相对湿 度＞70% 丝状真菌:28℃，普通大气环境，相对湿度 ＞80%
读碟：目标菌落选取
结合镜下特征与菌落特征综合分析 挑选菌体特征与菌落特征一致的细菌作为 目标菌，作传代纯培养和进一步的鉴定药 敏
步骤1：搜寻脓细胞胞浆中有疑似吞噬的视 野，寻找其中细菌单一的吞噬细胞 步骤2：计数20-100个有吞噬或者无法区分 粘附的脓细胞，计算吞噬单一细菌的细胞 出现的概率， 占（吞噬+粘附）总数的30% 以上即可认定为感染菌
痰培养中常见感染菌 直接涂片镜下特点
痰液的消化
胰蛋白酶：1~2%的无菌 PBS或生理盐水溶 液 二硫苏糖醇（DTT）：0.1%生理盐水溶液 N-乙酰-L-半胱氨酸（NAC）：5%生理盐水溶 液
痰培养质量控制-简易简版修正
痰培养质量控制-简易引言痰培养是一种常见的临床实验室检测方法，用于检测病人体内的病原微生物。
为了保证痰培养的质量，需要进行一系列的质量控制措施，以确保结果的准确性和可靠性。
本文将介绍一种简易的痰培养质量控制方法，帮助实验室人员提高工作效率和检测结果的可靠性。
方法样本采集，需要注意的是，痰培养样本的采集需要严格按照规范操作。
医护人员应向患者解释采集的目的、方法和注意事项，确保患者的理解和配合。
应选择清晨起床后第一次咳嗽产生的痰作为样本，这样可以最大限度地提高病原微生物的检出率。
采集时应避免让唾液、口腔分泌物等混入痰样。
样本运输采集的痰样本需要尽快送至实验室进行处理和培养。
在运输过程中，应将样本放置在密封的容器中，以防止污染和溢漏。
要确保样本的标识清晰，避免混淆和误处理。
样本预处理在进行痰培养之前，需要对样本进行预处理。
应观察样本的颜色、黏稠度和异物情况，排除混有大量唾液和口腔分泌物的样本。
然后，将适量的痰样本取出，放入试管或培养皿中，配制适当的培养基。
培养条件接下来是痰样本的培养，需要提供适当的培养条件。
一般来说，痰培养需要在37摄氏度下进行，保持一定的湿度和氧气供应。
可以使用恒温培养箱或专门的培养仪器进行培养。
还需要控制培养时间，通常培养时间为24小时，但对于特定的病原微生物，可能需要更长的培养时间。
结果判读在痰培养中，需要进行结果的判读和鉴定。
根据培养结果，可以根据病原微生物的形态、生理特征和抗生素敏感性进行鉴定。
还需要注意结果的解读，准确判断是否存在病原微生物感染。
质量控制为了保证痰培养的质量，需要进行一系列质量控制措施。
需要建立标准操作程序，并定期进行培训和监督。
需要定期进行质量控制样本的检测，包括阴性对照样本和阳性对照样本，以确保培养的准确性和可靠性。
还应定期参加外部质量评价活动，与其他实验室进行交流和比对，提高自身的技术水平和操作规范。
痰培养是一项重要的临床实验室检测方法，可用于检测病人体内的病原微生物。
痰培养质量控制-简易
痰培养质量控制-简易目录：1.引言1.1 目的1.2 适用范围1.3 术语和定义2.质量控制的重要性2.1 质量控制的目标2.2 质量控制的原则3.痰培养质量控制3.1 样本采集3.2 样本运输3.3 样本储存3.4 样本处理3.5 培养基准备3.6 培养条件3.7 质控菌株选择3.8 质控菌株标识4.质量控制方案4.1 内部质控4.2 外部质控4.3 质量控制记录5.质量控制不符合的处理5.1 不符合分析5.2 纠正措施5.3 监测持续改进附件：附件一：痰培养质量控制记录表附件二：痰培养质量控制不符合处理记录表法律名词及注释：1.质量控制：指通过采取预防措施、技术措施、管理措施等方法，确保产品、服务或过程符合预先确定的质量要求的过程。
2.质控菌株：用于检测实验室培养菌株的一组参照菌株。
3.内部质控：由实验室自行开展的质量控制活动，包括将质量控制菌株与临床样本一同进行培养以检验培养方法和条件是否准确。
4.外部质控：由外部机构组织的质量控制活动，实验室以参加外部质控活动的方式进行质量评估和改进。
5.不符合：在质量控制过程中发现的与预期的结果或要求不一致的情况。
6.纠正措施：对不符合进行处理的行动，包括重新培养样本、检查设备、培养条件等。
7.监测持续改进：持续监测质量控制过程并进行改进的活动。
附件一：痰培养质量控制记录表---- 日期 ---- 标准菌株编号 ---- 样本编号 ---- 处理结果 ---------------------------------------------------------------------- 2021/01/01 ---- QC001 ---- S001 ---- 正常 -------- 2021/01/02 ---- QC002 ---- S002 ---- 正常 -------- 2021/01/03 ---- QC003 ---- S003 ---- 正常 ----附件二：痰培养质量控制不符合处理记录表---- 日期 ---- 标准菌株编号 ---- 样本编号 ---- 处理结果 ---- 不符合原因 ---- 纠正措施 -------------------------------------------------------------------------------------------------------------- 2021/01/04 ---- QC004 ---- S004 ---- 异常生长 ---- 培养条件不合适 ---- 重新培养样本 -------- 2021/01/05 ---- QC005 ---- S005 ---- 未生长 ---- 样本存储时间过长 ---- 重新采集和培养样本 ----以上是痰培养质量控制-简易文档的内容。
痰培养标本质量控制2023简版
痰培养标本质量控制痰培养标本质量控制引言痰培养是一项常见的临床实验室检查方法，用于确定病原体引起的呼吸道感染。
为了确保痰培养结果的准确性和可靠性，标本的质量控制非常重要。
本文将介绍痰培养标本的采集、存储和运送等方面的质量控制措施，以确保实验室可以得到可靠的检测结果。
1. 标本采集1.1 采集时间痰培养标本的采集时间应尽可能在早晨。
这是因为痰在清晨常常较为稠厚，有助于提高痰中病原体的检出率。
1.2 采集方法痰样可通过自主咳嗽或刺激咳嗽来采集。
采集前可以给患者提供清水漱口，以减少口腔中的细菌数量对结果的影响。
患者被要求深吸气，然后咳嗽将痰样吐入无菌容器中。
1.3 标本量痰培养所需的标本量应达到一定的要求，一般为5～10mL。
不足的标本量可能导致病原体无法得到充分的检测。
1.4 标本处理将采集到的痰样进行处理前，应该检查样本的外观，确保没有明显的污染或黏液，否则将会影响病原体的检测。
2. 标本存储和运送2.1 存储温度采集到的痰样应尽快送到实验室进行检测。
在运送过程中，痰样应存放在4℃以下的温度下，以防止细菌的生长和繁殖。
2.2 容器选择痰样应存放在无菌容器中，以避免外部细菌的污染。
常用的容器包括无菌塑料瓶和试管等。
2.3 运送方式痰样的运送方式多样，可以通过特快专递、邮政运输或专门的医院运输系统进行。
在运送过程中，应尽量避免剧烈的摇晃或震荡，以防止痰样的损坏。
3. 质控措施3.1 临床信息记录在进行痰培养之前，必须要有完整的临床信息记录。
这些信息包括患者的年龄、性别、病史、症状等，有助于判断痰中病原体的可能种类。
3.2 培养方法选择适当的培养方法对痰样进行处理。
常用的培养方法包括血培养、肉汤培养和专门的培养基等。
在处理过程中，要严格遵守实验室操作规范，避免污染。
3.3 负对照样本每次进行痰培养实验时，还需要设置相关的负对照样本。
负对照样本是一种不包含病菌的标本，用来验证实验操作的准确性和结果的可靠性。
痰培养标本质量控制简洁范本
痰培养标本质量控制痰培养标本质量控制引言痰培养是临床微生物学中的一项重要检验手段，可以帮助医生确定病原微生物的类型和其对药物的敏感性，从而指导临床治疗方案的制定。
痰培养结果的准确性和可靠性很大程度上依赖于标本的质量。
正确采集和处理痰标本并进行质量控制是非常重要的。
采集标本的注意事项1. 采样时间：最好在晨起后采集患者的第一次咳嗽产生的痰液。
2. 采集容器：使用无菌的干净容器，避免污染和杂质。
3. 采集方法：患者深呼吸数次，用力咳嗽后将痰液吐入容器中，尽量避免唾液和口腔分泌物的污染。
4. 采集量：标本量应足够，一般建议采集5-10ml的痰液。
5. 采集时间：尽量在采集后的30分钟内送至实验室，以减少细菌的繁殖和假阳性结果的发生。
标本处理的质量控制1. 标本的保存：标本应保存在4℃以下的冰箱中，避免细菌的生长和病原微生物的分解。
2. 标本的转运：标本在转运过程中应放置在专用的急诊运输箱中，避免振荡和温度的变化。
3. 标本的检验：检验之前应先观察标本的外观，如有异样应及时报告实验室负责人，并重新采集标本。
结果分析与解读的质量控制1. 结果的准确性：实验室应定期进行内部和外部质量控制，确保痰培养结果的准确性。
2. 结果的解读：对于初步结果为阳性的样本，应进行进一步的鉴定和药敏试验，以确定病原微生物的种类和对药物的敏感性。
3. 结果的报告：实验室应及时将检验结果报告给临床医生，并提供专业的解读和建议。
痰培养标本质量控制对于准确诊断和有效治疗具有重要意义。
医生和实验室人员应密切合作，严格按照规范操作流程进行标本采集、处理和检验，并进行质量控制，以提高痰培养结果的准确性和可靠性，为患者的健康保驾护航。
简述痰培养的操作流程及注意事项
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痰培养质量控制-简易
• 造成痰培养的局限性：虽然送检率高，但合格率低。
• 结果判读标准不好统一。
• 规范标准操作留取痰标本的重要性：分析前实验室质 控，分析前因素导致误差为50％左右。
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痰培养分析前质量控制
烟曲霉菌：丝状真菌菌落，35℃培养24-48h时菌落为白色泛绿，72h后菌落 迅速转为褐色，中心粉末状背面为黄褐色如烟熏状，该菌为条件致病菌，感染时 患者症状重，预后差。
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痰培养分析中实验室内质量控制
4.药敏试验： • 当痰涂片革兰染色镜检结果有临床诊断意义，分离培
养又检出优势菌时，即培养结果与镜检结果相符时， 需对该菌按规范操作鉴定到种，需做药敏试验； • 依据CLSI药物敏感性试验相关规定（采用上一年的标 准）选择抗生素种类，按照药物敏感性试验标准操作 规程进行药敏试验。
10％胆汁溶菌试验和奥普托新纸片抑制试验鉴定出。 2.3 草绿色链球菌：痰标本中的草绿色链球菌一般不具有临床意义。 2.4 肠球菌：一般不具有临床意义，不报告，除非达到90％纯培养。
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在麦康凯平板上生长良好的革兰阴性杆菌：
• 如果只有一种菌并数量达到有意义，而无其他致病菌，为肠道革 兰阴性杆菌尤其是肺炎克雷伯菌，做鉴定及药敏。
可见胞内细菌
提示感染
大量多形核细胞，主要见革 可以肺炎链球菌，电告临床
兰阳性球菌成对或成短链排 医生 Nhomakorabea列
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痰培养分析中实验室内质量控制
1.接种培养： 接种必须在II级生物安全柜中进行。
痰培养质量控制-简易
痰培养质量控制-简易
痰培养质量控制-简易
1、引言
- 背景介绍
- 目的和范围
2、质控目标
- 确保痰培养结果准确性和可靠性
- 降低假阳性和假阴性结果的比例
- 提高痰培养的敏感性和特异性
3、人员要求
- 实验室技术人员必须具备相关专业知识和技能 - 实验室应定期进行内部培训和外部资格认证4、样本采集
- 要求病人在清晨第一次咳嗽后取样
- 提供病人准确的采样指导
- 避免样本受到污染或稀释
5、样本运输和储存
- 样本应尽快送达实验室
- 采用适当的运输介质，如无菌容器或转运培养基 - 避免样本受到温度变化和其他不良条件的影响 - 在送达实验室前储存样本在适当的温度下
6、样本处理
- 检查样本是否完整和合适
- 记录样本信息，如病人号码、采集日期和时间 - 进行初步处理，如样本离心和稀释
7、培养方法
- 选择适当的培养基
- 确保培养条件符合要求，如适当的温度和湿度 - 培养时间的控制，以获得最佳结果
- 使用负对照和阳性对照进行质量控制
8、结果解读
- 根据培养结果进行鉴定和鉴别
- 与标准鉴定方法进行比对
- 记录和报告结果
9、质量控制记录
- 记录样本采集、运输、处理和培养过程中的关键环节
- 跟踪并记录质量控制结果
- 建立并维护相关质量控制文件和档案
10、附件
法律名词及注释：
- 痰培养：将痰样本进行细菌培养和鉴定，用于病原微生物的检测和诊断。
- 假阳性：指实际阴性的样本被错误地识别为阳性。
- 假阴性：指实际阳性的样本被错误地识别为阴性。
肺结核痰检质控制度 (1)
肺结核痰检质控制度一、结核病实验室在上级结核病实验室的技术指导下，开展质量有保证的结核病实验室检查工作，严格按照相关各项标准化、规范化操作程序进行实验室相关活动，并接受结核病实验室的质量控制。
二、按国家统一的标准化操作程序常规开展痰涂片镜检工作，逐步加强力量，开展结核菌培养。
三、接受上级实验室的督导、现场评估和定期培训。
四、痰结核菌检查质量控制内容及操作1、痰标本：合格标本为干酪痰、血痰、黏液痰；不合格标本为唾液痰、口水痰，不合格标本，坚决不用；初诊病人检查即时痰、夜间痰、晨痰各1份（共3份），治疗中病人每次取即时痰及晨痰各1份（共2份）；痰标本一般当天涂片检查，对不能在当天涂片检查的标本置冰箱保存以防干涸或污染，取痰标本容器使用统一规格纸制痰盒。
2、染色液及载玻片：按有关要求保存及使用，新载玻片用95%酒精擦拭，肉眼观察清洁、无划痕，1张玻片只使用1次，1张玻片只涂1份标本。
3、痰涂片制作及染色：于载玻片正面左侧1/3处标“实验室序号”，在右2/3中央使用折断毛茬的竹签挑取痰标本中合格部分，轻轻涂抹慢慢扩大呈大小为10 mm×20 mm，厚薄均匀的涂膜，自然干燥；按《痰涂片检查规范》操作染色（质量要求：将染色后的痰涂片放置于报纸上，如果透过痰膜不能分辨报纸上的文字则涂片过厚。
染色后的痰膜脱落应小于痰膜总面积的10%）。
4、镜检及结果报告：按《全国结核病细菌学检验规程报告标准》进行。
5、痰涂片保存：镜检后痰涂片及时用浸满二甲苯的擦镜纸揭取数次彻底去除涂片上的镜油并按涂片序号放入储片盒内保存。
五、质控方式1、室内质控由本实验室负责，抽查当日10%涂片，根据抽查结果填写《室内质量控制每日抽查复检登记表》，并对不符合要求者提出改进要求。
《室内质量控制每日涂片抽查复检登记表》妥善保存5年以上。
2、室间质控由上级业务指导机构（区疾控中心）按要求每季度抽查当季涂片，抽查结果与本实验室对照，找出薄弱环节并予以改进。
痰培养标本质量控制36页PPT
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❖ 知识就是财富 ❖ 丰富你的人生
71、既然我已经踏上这条道路，那么，任何东西都不应妨碍我沿着这条路走下去。——康德 72、家庭成为快乐的种子在外也不致成为障碍物但在旅行之际却是夜间的伴侣。——西塞罗 73、坚持意志伟大的事业需要始终不渝的精神。——伏尔泰 74、路漫漫其修道远，吾将上下而求索。——屈原 75、内外相应，言行相称。——韩非
1、不要轻言放弃，否则对不起自己。
2、要冒一次险!整个生命就是一场冒险。走得最远的人，常是愿意 去做，并愿意去冒险的人。“稳妥”之船，从未能从岸边走远。-戴尔．卡耐基。
梦 境
3、人生就像一杯没有加糖的咖啡，喝起来是苦涩的，回味起来却有 久久不会退去的余香。
痰培养标本质量控制4、守业的最好办法就是不断的发展。 5、当爱不能完美，我宁愿选择无悔，不管来生多么美丽，我不愿失 去今生对你的记忆，我不求天长地久的美景，我只要生生世世的轮 回里有你。
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痰标本镜下分类（细胞数/低倍镜）
分级 A
B
C
上皮细胞（个） 白细胞（个） 判定 ＜10 ＞25 合格，可用于细 菌培养 10-25 ＞25 混合样本，若比 值＜ 1:2.5 为基本 合格，可用于细 菌培养 ＞25 ＜10 不合格，建议重 送标本
痰涂片镜下观察注意点：
• • • • • 白细胞内吞噬细菌与感染相关度高。 粘液丝缠绕或包裹的细菌可能为目的菌。 与白细胞伴行的细菌可能为目的菌。 合格样本中的单一细菌可做为目标菌。 混合样本要注意白细胞相关及视野的层次感，多关注 白细胞集中的视野。 • 细菌特殊结构形态。
痰培养分析前实验室外质量控制
如何获得合格标本？ 标本就是产生检验报告的“原材料”，原材料的好坏直 接决定了产品质量。 当医生或护士交给病人一个痰杯，说吐一口痰检验检验， 病人很可能就会随便吐一口痰送至检验科，这样一个痰标 本大大地影响检验结果，会导致检验结果的不准确。那该 如何做呢？
Байду номын сангаас
痰培养的送检指征：
• 真菌：
• 念珠菌属：是口腔正常菌群。排除隐球菌，一般不能引起肺 炎，不用做进一步鉴定；除非是肿瘤患者（如：白血病）、 肺移植患者或者新生儿需要考虑。 • 隐球菌：宽厚荚膜、脲酶试验阳性。可引起肺部感染。 • 鉴定霉菌，注意排除菌株与实验室或环境有无污染（青霉菌 等）的情况，关注：
荚膜组织胞浆菌、球孢子菌：培养时间超过48h，为双向真菌，可引起肺部 感染。 烟曲霉菌：丝状真菌菌落，35℃培养24-48h时菌落为白色泛绿，72h后菌落 迅速转为褐色，中心粉末状背面为黄褐色如烟熏状，该菌为条件致病菌，感染时 患者症状重，预后差。
痰培养分析中实验室内质量控制
1.接种培养： 接种必须在II级生物安全柜中进行。
1.1尽快处理所有标本，尤其是急诊科、新入院病人和采取侵入性手 段获取的标本，要保证细菌的活力。 • 用无菌拭子挑取标本分别涂布于血琼脂平板、巧克力琼脂平板及 麦康凯平板的第一区，然后用接种环划第二、第三区；BA、Choc、 Meck置CO2、35℃潮湿环境培养。 1.2培养48小时，最好至72小时。 1.3对于侵入性方法采集的肺标本，培养延长至4天。
痰培养分析中实验室内质量控制
2.培养检查-读平板
2.1 观察培养24h后的平板；结合痰涂片镜检结果，仔细观察平板可 疑菌落生长状况：依靠溶血特征，菌落形态、菌落颜色、菌体形 态等特点区分：G+co、G+b、G-co、或G-b； 2.2 继续培养平板24-48h，为检出霉菌、慢生长菌、苟养的革兰阴 性杆菌如博德特菌属等。 2.3 继续观察培养48h的平板，可能会发现培养24h未发现的细菌形 态。 2.4用革兰染色结果解释培养结果。
革兰阴性双球菌：
• 卡他莫拉菌：检测菌落达有意义数量时经确认该菌，需要药敏试验； 其特点：菌落推动时可移动、氧化酶+、DNA酶+、不利用糖类产酸等。 • 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌：血平板上不生长或生长不好，经确认 鉴定为该菌时，不需做药敏试验。
革兰阳性杆菌：
• 奴卡菌：生长慢，该细菌可导致肺脓肿，标本脓性，有硫磺颗粒者 应高度怀疑该菌。鉴定确认需报告。 • 马红球菌：一般来自免疫抑制患者，任何数量，鉴定确认需报告。 • 棒状杆菌属： 除白喉棒状杆菌外，假白喉棒状杆菌（尿素酶阳性）、假结核棒状杆菌、 纹带棒状杆菌等均为条件致病菌，如：对来自ICU的插管患者，大量优势 菌，需鉴定报告。其他棒状杆菌、革兰阳性杆菌一般不会导致肺部感染。
1.肉眼观察 观察痰液的颜色、粘度、有无血丝和是否呈脓 性，可推测肺炎类型：如见有颗粒，则应注意可能与放线 菌属及奴卡菌属感染有关。 2.标本预处理：
2.1洗痰：于痰标本中加入适量（约10ml）无菌生理盐水，剧烈振荡 5~10s后，将生理盐水弃去（反复两次），可洗去痰中正常菌群。留 下沉淀于管底的浓痰。 2.2向洗涤过的痰液中加入等量PH7.6的1％胰酶溶液，放置37℃培养 90min，使痰液匀质化后备用。 建议以细胞学筛选代替洗痰。
苛氧革兰阴性杆菌（生长缓慢或麦康凯平板上不生长）：
• 流感嗜血杆菌：巧克力平板上生长，菌体多形态，球杆菌、丝 状；卫星试验阳性，需做β -内酰胺酶实验。一般副流感嗜血杆 菌不导致肺部感染，大量出现提示培养结果将是不可信的。 • 博德特菌在血平板上生长，培养48h肉眼可见菌落；触酶和尿素 酶阳性；有临床意义。 • 巴斯德菌：为动物口腔中正常菌群，吲哚和氧化酶菌阳性；在 有基础疾病患者中，该菌可定植在呼吸道，引起鼻窦炎、支气 管炎、肺炎和脓胸。 • 艾肯菌：为上呼吸道正常菌群，很少引起呼吸系统疾病，除非 呈大量优势生长。
• 实验室外的工作由临床医生、护士完成，从临床医生 申请检验到临床护士采集送到实验室止。包括：检验 项目的申请；检验标本的采集、保存、运送和验收。 • 该阶段是分析前质量管理的关键，因为采集的标本合 格与否是保证检验质量的基础。就标本的正确采集和 运送，实验室人员应该加强与临床医生、护士沟通， 加强联系，互相配合，以确保标本质量。
痰培养分析中实验室内质量控制
3.细菌鉴定： • 在痰标本革兰染色镜检结果的指导下进行分离鉴定， 用出现炎症细胞和有意义数量的细菌来决定对培养物 的进一步处理；即选择与白细胞有相关性和有以下临 床意义数量的可疑致病菌（目标菌）做分离鉴定。
3.1 结合痰涂片镜检结果（被白细胞吞噬或伴行的细菌），挑选菌 体特征与菌落特征一致的细菌作为目标菌； 3.2 观察目标菌菌落数量，确定有临床意义的菌落类型； 3.3 确定目标菌后的鉴定步骤； 3.4 如果培养和涂片镜检结果不符合时，应重新读片。
标本运送：
• 用防漏无菌杯收集标本，贴好标本信息（条码）。 • 尽快送检，须在2小时内运送到微生物实验室。 • 痰培养不能及时接种的，储存条件为4℃环境，储存时 间不应超过24小时。 • 晨痰如果在两小时之内不能送检或接种应考虑送随机 痰（痰液留取后不能及时送检，降低了苛养菌的分离 率）。 • 原则：保持细菌活力，否则应拒收。
痰涂片镜检结果报告解释：
• 包含读革兰染色结果，注明细胞、细菌数量及评价结 果。例如： 指征 解释 鳞状上皮细胞≥10/低倍视野 提示标本被唾液污染，不再 进行培养。 鳞状上皮细胞 ＜ 10 个 / 低倍 提示是一个好的深部痰标本 视野，可见大量多形核白细 胞 可见大量多形核白细胞 提示感染 可见胞内细菌 提示感染 大量多形核细胞，主要见革 可以肺炎链球菌，电告临床 兰阳性球菌成对或成短链排 医生 列
• 3.气管镜标本采集法 由临床医生按相应操作规程采集。气管镜标本包括支气管肺泡灌洗 液标本（BAL）、支气管灌洗液、保护毛刷标本（PSB）、支气管穿刺 活检标本。 • 取此类标本顺序应为： A.支气管灌洗液和支气管肺泡灌洗液标本（BAL）： B.毛刷标本和活检标本： • 操作中避免将血带入收集液中；标本量应大于1ml；为防止污染，尽 可能采用吸入麻醉剂为佳。 • 4.小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经压舌 刺激咳嗽时，可喷出肺部或器官分泌物粘在拭子上送检，由临床医生 采集。
标本采集：
• 标本采集应在临床工作人员指导（直视）下进行，并尽可能 在抗菌药物使用之前采集。有以下几种方法：
• 1.自然咳痰法 • 1.1晨痰最佳。咳痰前指导病人用无菌生理盐水、温开水充分漱口，有假 牙者应取下假牙。 • 1.2指导病人深呼吸数次后，用力深咳，咳出的深部痰直接吐入无菌、干 燥的广口带盖容器中，标本量≥1ML。不要在口腔中停留。 • 2.诱导痰（痰量少，无痰或咳痰困难者） • 2.1用湿牙刷和无菌生理盐水，漱口腔黏膜、舌头和牙龈约5分钟，勿用 牙膏;再用无菌生理盐水漱口； • 2.2用超声雾化器，是患者雾化吸入加温至45℃的3％~5％Nacl水溶液约 20-30ml，是痰液易于排出，用无菌杯收集诱导痰标本。
在麦康凯平板上生长良好的革兰阴性杆菌：
• 如果只有一种菌并数量达到有意义，而无其他致病菌，为肠道革 兰阴性杆菌尤其是肺炎克雷伯菌，做鉴定及药敏。 • 对于住院患者，不管是否有其他病原菌，检查有意义数量的铜绿 假单胞菌、不动杆菌、伯克霍尔德菌和嗜麦芽窄食单胞菌都应鉴 定，这些菌多为多重耐药，并可造成医院内流行。 • 如果有一种其他等量的革兰阴性菌生长，需要鉴定，可用初步生 化试验来描述细菌（如：根据在麦康凯平板上的气味和形态、菌 落色素、氧化酶、吲哚、双糖铁结果等）。
标本验收及拒收原则：
• • • • • 无标签者拒收。 标本信息不全、不符者拒收。 送检时间超过2小时拒收。 送检容器不当、溢漏、无盖者拒收。 痰标本呈水样或唾液样，有明显实物残渣、灰尘纸屑 者拒收。 • 不建议24小时内多次采集送检标本，除非痰液外观性 状出现变化，否则需要与申请医师协商处理。
痰培养分析前实验室内质量控制
常见呼吸道主要病原菌
革兰阳性球菌：
1.葡萄球菌：与白细胞有相关性的、鉴定有意义数量的金黄色葡萄球菌， 需要做药敏试验；当有意义数量（90％纯培养）的凝固酶阴性葡萄球菌， 无需鉴定到种，无需药敏，一般不具有临床意义。 2.链球菌：
2.1 β 溶血为溶血型链球菌： • A群链球菌：化脓性链球菌，致病力最强，任何数量都要报告。 • B群链球菌：婴幼儿标本检查鉴定出B群链球菌时，任何数量都要报告。 • C群、G群链球菌：主要是咽峡炎链球菌群，是人体上呼吸道正常菌群，当培养达到有意义 数量时，需报告。可引起肺部感染。 • 对于其他小菌落的β 溶血链球菌或F群链球菌不需报告，因为这些菌是上呼吸道正常菌群。 2.2 肺炎链球菌：是最常见的肺部感染病原菌，在社区获得性感染中有重要的地位；可通过 10％胆汁溶菌试验和奥普托新纸片抑制试验鉴定出。 2.3 草绿色链球菌：痰标本中的草绿色链球菌一般不具有临床意义。 2.4 肠球菌：一般不具有临床意义，不报告，除非达到90％纯培养。
痰培养质量控制
主要内容
• • • • 痰培养质量控制重要性 痰培养分析前质量控制 痰培养分析中质量控制 痰培养分析后质量控制