唑来膦酸对破骨细胞的分化及骨吸收功能的影响

唑来膦酸对破骨细胞的分化及骨吸收功能的影响

发表时间：2014-04-02T16:29:05.467Z 来源：《中外健康文摘》2013年36期供稿作者：郑振雨朱明明李春娟李静

[导读] 再用α-MEM 培养液(1×106U/ L 青霉素，1g/ L 链霉素) 浸泡，置- 4℃冰箱内，用前紫外线照射2 面，每面2h。

郑振雨朱明明李春娟李静（新乡医学院第三附属医院脊柱手外科河南新乡 453003）

【摘要】目的研究唑来膦酸( ZOL) 对兔骨髓单核细胞向破骨细胞分化过程的影响及其对成熟破骨细胞骨吸收功能的影响，探索ZOL 治疗骨质疏松的机制。

方法采用唑来膦酸诱导兔骨髓单核细胞形成破骨细胞样细胞以及成熟破骨细胞与骨片共培养的方法，考察唑来膦酸对破骨细胞的形成及骨吸收功能的影响。

结果当浓度为10-6、10-7、10-8mmol/L 时，唑来膦酸组骨髓单核细胞形成破骨细胞样细胞的数目明显少于对照组, 且骨吸收陷窝数目及表面积亦明显少于对照组。结论唑来膦酸不仅可以明显抑制破骨细胞的分化，同时具有抑制成熟破骨细胞的骨吸收功能的作用。提示唑来膦酸具有改善骨吸收功能亢进的能力。

【关键词】唑来膦酸破骨细胞骨吸收Effect of zoledronate acid on osteoclastogenesis and bone resorption in vitroZheng zhenyu，Zhu mingming，Li chunjuan,li jing.The Third Affiliated Hospital of Xinxiang Medical College，Spine and Hand Surgery,Xinxiang 453003.【Abstract】 Objective To determine the effect of zoledronate acid (ZOL) on osteoclastogenesis and bone resorption in vitro. To investigate the efficacy of preventive and therapeuticeffect of zoledronic acid on osteoporosis. Methods Mature osteoclats were isolated from long bone of rabbit.Marrow cells of rabit were cultured with the induction of ZOL.Osteoclasts frommarrow cells and dentin resorption lacunae were observed in each groups. Results there were less Trap positive multi-nucleated osteoclasts in the ZOL treatment

group(concentration at10-6、10-7、10-8mmol/)than in the control group( P ＜ 0.01).ZOL treatment group also resulted in a significant decrease in resorption lacunae levels(P ＜ 0.01).Conclusion ZOL significantlyinhibits osteoclast formation and bone resorption，which might improve bone reconstruction .【Key words】zoledronate osteoclastogenesis bone resorption【中图分类号】R68 【文献标识码】A 【文章编号】1672-5085（2013）36-0055-02目前认为，骨质疏松症是一种全身性的代谢性骨骼疾病[1], 随着年龄的增加和延长骨密度呈下降趋[2], 绝经也和骨质疏松密切相关[3]。二膦酸盐是治疗骨质疏松的重要药物，已经发展到第三代[4]。Z O L 是第三代二膦酸盐。Z O L 抗骨质吸收的作用是第1 代和第2 代双膦酸盐的100-850 倍[5]，破骨细胞在调节骨重建和骨吸收的过程中起重要作用，因此深入研究ZOL 对破骨细胞及其功能的影响，可以为骨质疏松性骨折的治疗提供参考。

1 材料与方法1.1 材料新生新西兰大耳兔，购自新乡医学院实验室, T R A P 染色试剂盒（美国Sigma 公司），α-MEM 胎牛血清（美国GIBOL 公司），1,25- 二羟基维生素D3、胰蛋白酶PGE2（Sigma 公司）,TDL-40 台式离心机（上海安亭科学仪器厂），倒置显微镜( 上海长方光学仪器有限公司)，蒸馏机( 石家庄同惠环保设备有限公司)，电热恒温干燥箱 ( 上海吴淞五金厂)，电子天平( 上海第二天平厂)，培养板 ( 美国Coster)。

1.2 骨片的制备[6]：使用电钻将新鲜牛股骨皮质切成200μm 厚的薄片，粗、细金刚沙石磨成10μm，6mm×6mm 的骨片，清洗3 次。

再用α-MEM 培养液(1×106U/ L 青霉素，1g/ L 链霉素) 浸泡，置- 4℃冰箱内，用前紫外线照射2 面，每面2h。

1.3 成熟破骨细胞的分离[7]：将新西兰大白兔断颈处死，在无菌操作，取下四肢长骨，D-Hank 平衡盐溶液中剔除附着其上的软组织和骨骺，在α-MEM 培养基中，纵向剖开骨干，刮取骨髓直至其颜色变白，然后用培养液彻底冲洗，保留细胞悬液以备用。

1.4 骨髓单核细胞的分离[7]将新生新西兰大耳兔断颈处死，无菌操作，取下四肢长骨，D-Hank s 平衡盐溶液里剔除软组织和骨骺，以一次性注射器吸取α-MEM 全培养液冲洗骨髓腔，收集骨髓细胞，洗涤后离心，接种于平皿，10 小时后，弃掉上清液，缓冲液冲洗，然后将冲洗液加入离心管，用消化液(EDTA)消化5 min，离心管离心并弃上清液，然后加入α-MEM 培养液，所得细胞吹散后备用。

1.5 唑来膦酸对骨髓单核细胞向破骨细胞分化的影响将lα-MEM 培养液加入带有载玻片的24 孔培养板内，每孔1m，5%CO2，37℃孵育箱中孵育1 h, 以1.6×109 个/L、1ml/ 孔将骨髓单核细胞悬液接种于无菌24 孔板上，置于5% C O2,37℃孵育箱中培养10小时后，加入1,25-(OH)2D3 使其终浓度为10-8mmol/L，实验组加入唑来膦酸，使其终浓度分别为10-6、10-7、10-8mmol/L，对照组以加入等量D-Hanks 缓冲液和1,25-(OH)2D3，使其终浓度为10-8mmol/L，每隔2 天换液, 直至d7 行T R A P 染色检测，按照文献[7] 方法，以≥ 3个细胞核为阳性细胞计数。

1.6 唑来膦酸对骨吸收功能的影响分别在24 孔培养板内放置处理后的盖玻片和骨磨片, 加入1mlα-MEM 全培养液，置于37℃ 5% C O2孵箱内1 小时, 将备用细胞悬液以1ml/ 孔分别加入24 孔培养板( 每孔细胞数约为106 个) ，37℃ 5%CO2孵育箱中培养18 小时，为检测唑来膦酸对培养体系的作用，本实验分为实验组和对照组, 各组均含1, 25-(OH) 2D3，终浓度为10-8mmol/L，实验组：按唑来膦酸的不同浓度分设10-6mol/L、10-7 mol/L、10-8mol/L 共3 组，对照组：为D-Hanks 缓冲液培养的细胞。倒置相差显微镜观察培养d7 的牙本质磨片骨吸收陷窝的数目，在150 倍放大倍数下,每例骨片任选5 个视野拍照，用医学数码图像分析系统(StatView 4.02软件) 测量各视野吸收陷窝数目及陷窝面积。

1.7 统计学处理实验数据数据表示为x-±s，应用SPSS 13.0 统计软件对数据进行检验，各组总体上有无差别采用单因素方差分析，组间比较采用LSD 法分析，p<0.05 为有统计学意义。

2 结果2.1 细胞形态学观察成熟破骨细胞的证实采用T R A P 染色，染成红色的为破骨细胞，经过培养后2h，细胞的形态开始变的清晰，呈现出煎蛋形、漏斗形或不规则形状，并且有片状和丝状伪足，细胞核≥

3 个，胞核内有空泡形成,见图1。

图1: