蛋白相互作用-ThermoFisher
蛋白质相互作用的研究
![蛋白质相互作用的研究](https://img.taocdn.com/s3/m/f2f82d91250c844769eae009581b6bd97f19bc8e.png)
蛋白质相互作用的研究蛋白质是大分子生物化学中的重要组成部分。
它们主要由氨基酸组成,并且在生物体系中发挥着重要的功能。
在细胞内部,蛋白质相互作用是维持细胞生命周期稳定性的关键因素。
因此,蛋白质相互作用的研究,在生物化学、生物物理学和分子生物学等多个领域中都是一个重要的研究方向。
本文将从蛋白质相互作用的定义开始,逐步探讨蛋白质相互作用的分类、特点以及相关的实验技术和研究方法,以期为读者提供系统而又全面的知识储备。
一、蛋白质相互作用的定义蛋白质相互作用是指两个或多个蛋白质之间在生物体系中的结合和相互作用过程。
这种相互作用可以使两个蛋白质之间形成复合体,从而发挥一定的生物功能。
相互作用的结果可能是稳定性增加、功能的调节或协同作用,也可能是抵消性和竞争性作用等不同结果。
二、蛋白质相互作用的分类按参与蛋白质数量,蛋白质相互作用可分为二元、三元、多元相互作用。
其中二元相互作用是指两个蛋白质共同形成复合体,三元相互作用是指三个蛋白质之间形成复合体,而多元相互作用则指多个蛋白质一起结合形成复合体的过程。
按作用原理和机制的不同,蛋白质相互作用可分为静态相互作用和动态相互作用。
静态相互作用的结构相对稳定,很难被破坏或改变,并且其功能一般比较固定。
而动态相互作用则是动态的,随着生理条件的不同呈现出多样的结构和功能特征。
例如,蛋白酶的底物结合就属于动态相互作用的范畴。
三、蛋白质相互作用的特点蛋白质相互作用具有多种特征,最为突出的是其特殊的结构、不确定性和多样性。
其一,蛋白质相互作用形式多样,可以是氢键、离子键、范德华力、疏水作用等多种作用方式。
例如,氢键是通过氢原子与质子和δ-带有部位的非氢原子之间的相互作用而形成的共价化学键,是一种常见的相互作用方式。
其二,蛋白质相互作用具有不确定性。
与单独的蛋白质分子相比,蛋白质相互作用更加难以准确预测。
因为它不仅取决于相互作用双方的结构和性质,还取决于周围环境的作用和影响。
波动的温度、离子浓度和pH值等环境因素都会对蛋白质相互作用的过程和结构产生较大影响。
验证蛋白互作
![验证蛋白互作](https://img.taocdn.com/s3/m/319c9b0a66ec102de2bd960590c69ec3d4bbdb51.png)
百泰派克生物科技
验证蛋白互作
验证蛋白相互作用就是对已知的蛋白相互作用进行进一步确认,分析方法和原理与蛋白相互作用检测一样,可以通过(GST)Pull down和(Co-)IP技术进行验证。
值得一提的是,不管是使用什么方法进行验证,抗体的选择非常关键,由于两个相互作用的蛋白A和B是已知的,因此,就需要选择能特异性识别蛋白A或B的抗体,此时如果出现免疫沉淀复合物则说明溶液中确实存在待验证的蛋白相互作用。
百泰派克生物科技采用Thermo Fisher的Q ExactiveHF质谱平台结合Nano-LC提
供蛋白质相互作用分析服务技术包裹,用于验证已知的蛋白相互作用以及寻找未知的蛋白相互作用,以及后续基于液质联用技术(LC-MS/MS)对IP、Co-IP样品及GST融合蛋白Pull-down等纯化样本中的蛋白/蛋白混合物的质谱鉴定分析服务,
欢迎免费咨询。
检测蛋白质与蛋白质之间相互作用的实验技术
![检测蛋白质与蛋白质之间相互作用的实验技术](https://img.taocdn.com/s3/m/59566a33336c1eb91a375d93.png)
一、检测蛋白质与蛋白质相互作用①技术(),,即荧光共振能量转移技术。
该技术的原理是用一种波长的光激发某种荧光蛋白后,它释放的荧光刚好又能激发另一种荧光蛋白,使其释放另一波长的荧光,如下图所示:以下图为例,若要利用检测两种蛋白是否有相互作用,需将两种蛋白的基因分别与这两种荧光蛋白的基因融合,并在细胞内表达出两种融合蛋白。
然后只需用紫外光对进行激发,并检测是否放出绿色荧光。
如果能检测到绿色荧光,那么可以说明这两种蛋白可能有相互作用;反之,则是这两种蛋白没有相互作用。
②酵母双、三杂交技术()酵母双杂交系统主要用于考察两种蛋白是否有相互作用,其原理是典型的真核生长转录因子,如4、4等都含有二个不同的结构域,即和。
这些转录因子只有同时具有这两个结构域时才能起始转录。
由此,设计不同的两个载体,一个含有基因(假设为A载体),另一个含有基因(假设为B载体)。
一般将一个已知蛋白的基因连在B载体上,作为诱饵(),将未知蛋白的基因连在A载体上,将这两个载体都转到特定的酵母细胞内,看未知蛋白与已知蛋白是否有相互作用。
如果两者有相互作用,那么就可以启动报告基因的转录,从而使这个酵母细胞能在选择培养基上显现出来或者生存下来;如果两者无相互作用,那么报告基因就无法表达,那么这个酵母细胞就无法在择培养基上显现出来或者生存下来,如下图所示:由于酵母双杂交系统不能鉴定膜蛋白间的相互作用,因此又发展出了分离泛素酵母双杂交系统。
该系统的原理如下图所示:如图所示,将泛素蛋白拆分为两个片段,即C端段()和N端段(),并在C端段的N端接上一个16转录因子,此时它并不能激活基因转录(因为它被限制在了C端段上,不能进入细胞核发挥作用)。
将该C端段连到一个膜蛋白上,将N端段连接到另一个膜蛋白上。
若两个膜蛋白有相互作用,那么两个膜蛋白在相互靠近时会使泛素蛋白的N端段和C端段靠近结合,形成一个完整的泛素蛋白。
此时泛素蛋白酶体会将这一段被泛素标记的片段降解,那么连接C端段的16转录因子掉落,即可进入细胞核启动标记基因的表达。
受体相互作用蛋白激酶1(RIPK1)调控人结肠癌HT-29细胞程序性坏死的分子机制
![受体相互作用蛋白激酶1(RIPK1)调控人结肠癌HT-29细胞程序性坏死的分子机制](https://img.taocdn.com/s3/m/aec2c8c481eb6294dd88d0d233d4b14e85243eb9.png)
受体相互作用蛋白激酶1(RIPK1)调控人结肠癌HT-29细胞程序性坏死的分子机制王海玉;张波【摘要】目的研究受体相互作用蛋白激酶1 (receptor interacting protein kinase 1,RIPK1)在人结肠HT-29细胞程序性坏死过程中的作用,并探讨E3泛素连接酶三重结构域包含蛋白16 (tripartite domain containingprotein 16,Trim16)对其作用的潜在调控机制.方法用肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α,TNFα)建立HT-29细胞的程序性坏死模型,采用Annexin V-FITC/PI双染色法检测其对凋亡、坏死细胞数目的影响.分别用Western blot和qRT-PCR检测RIPK1在细胞程序性坏死中的表达.构建稳定表达Flag标记的RIPK1的HT-29细胞株,采用Flag 标记的pulldown试验结合质谱检测发现与RIPK1有相互作用的新蛋白.应用Ni-NTA pulldown试验检测筛选出的E3泛素连接酶对RIPK1泛素化的调控.结果TNFα能够成功诱导HT-29细胞程序性坏死.HT-29细胞在TNFα和半胱天蛋白酶抑制剂z-VAD处理后,表现出RIPK1、RIPK3、混合系列蛋白激酶样结构域(mixed lineage kinase domain-like protein,MLKL)表达水平显著增加,并伴随着炎性因子白介素1α(IL1α)和白介素6(IL6)水平明显升高.Flag标记的pulldown试验结合质谱检测发现一个与RIPK1有相互作用的E3泛素连接酶Trim16,体外实验表明Trim16可以增强RIPK1的泛素化程度,其可能调节RIPK1在程序性坏死过程中的作用.结论 RIPK1在TNFα和z-VAD诱导人结肠癌HT-29细胞的程序性坏死过程中起重要作用,E3泛素连接酶Trim16对此过程可能有重要调控作用.【期刊名称】《复旦学报(医学版)》【年(卷),期】2014(041)006【总页数】8页(P720-726,741)【关键词】受体相互作用蛋白激酶1 (RIPK1);人结肠癌细胞;程序性坏死;E3泛素连接酶;三重结构域包含蛋白16 (Trim16)【作者】王海玉;张波【作者单位】复旦大学附属中山医院普外科上海200032;复旦大学附属中山医院普外科上海200032【正文语种】中文【中图分类】R735.2programmed necrosis;E3 ubiquitin ligase;tripartite domain containing protein 16(Trim16)结肠癌在全球女性和男性恶性肿瘤发病率中分别居第2位和第3位[1],进展期的结肠癌患者辅助治疗后中位生存期仅为20个月左右[2]。
检测蛋白质相互作用的方法
![检测蛋白质相互作用的方法](https://img.taocdn.com/s3/m/0c84a99a7e192279168884868762caaedd33bab2.png)
检测蛋白质相互作用的方法蛋白质相互作用对于理解细胞内的生物过程以及研究疾病机制具有重要意义。
随着基因组学和蛋白质组学技术的发展,越来越多的蛋白质相互作用被鉴定出来,为进一步研究提供了基础。
本文将介绍几种常用的蛋白质相互作用检测方法,包括传统的生化方法以及近年来发展的高通量技术。
1. 免疫沉淀(Immunoprecipitation, IP):免疫沉淀是一种常用的生化方法,用于检测蛋白质与其他蛋白质的相互作用。
该方法利用特异性抗体与目标蛋白质结合,将其与结合蛋白质一起从混合溶液中沉淀下来。
通过检测共沉淀的蛋白质可以确定其相互作用伙伴。
这种方法可以应用于细胞培养液、组织样品以及原核和真核生物体内。
2. 酵母双杂交(Yeast Two-Hybrid, Y2H):酵母双杂交是一种用于检测蛋白质与其他蛋白质的直接相互作用的方法。
该方法利用酵母细胞内的转录激活子和靶蛋白质的交互作用来驱动报告基因的表达。
通过将靶蛋白质与转录激活子的两个域分别与两个不同的蛋白质结合区域相连,可以检测他们之间的相互作用。
该方法可用于鉴定蛋白质复合物的成员以及研究蛋白质与DNA、RNA、药物等的相互作用。
3. 蛋白质微阵列(Protein Microarray):蛋白质微阵列是一种高通量技术,用于同时检测大量蛋白质的相互作用。
该方法将数千种蛋白质固定在玻璃片或芯片上,并与待测蛋白质进行相互作用。
通过检测待测蛋白质与已知蛋白质之间的相互作用,可以快速鉴定蛋白质复合物的成员,以及确定蛋白质的结合亲和力和特异性。
4. 质谱法(Mass Spectrometry, MS):质谱法是一种基于蛋白质质量-电荷比的测量,用于鉴定蛋白质相互作用。
质谱法可分为两种类型:基于质量鉴定的质谱法(如蛋白质酶切质谱法)和基于质量比的质谱法(如蛋白质亲和质谱法)。
利用质谱法,可以鉴定蛋白质复合物的成员,并获得有关相互作用和结合位点的信息。
质谱法在高通量筛选和蛋白质组学研究中被广泛应用。
蛋白质相互作用和抑制剂的设计
![蛋白质相互作用和抑制剂的设计](https://img.taocdn.com/s3/m/877a331176232f60ddccda38376baf1ffc4fe305.png)
蛋白质相互作用和抑制剂的设计蛋白质是生命体的基本组成部分之一,也是实现生命功能的关键分子。
蛋白质分子通过相互作用形成复杂的蛋白质体系,从而实现各种生物学功能。
蛋白质相互作用研究的发展,促进了药物研发领域的进步。
本文将阐述蛋白质相互作用及其抑制剂的设计。
一、蛋白质相互作用蛋白质相互作用是指两个或多个蛋白质分子之间发生的物理或化学交互作用。
蛋白质相互作用是生命体机制的基础,不同蛋白质之间的相互作用所产生的生物功能也是多种多样的。
例如,酶与底物之间的相互作用可以催化生化反应;抗体与抗原之间的相互作用可以识别和中和病原体;受体与激素之间的相互作用可以传递信号等。
蛋白质相互作用的形式非常复杂,常见的包括氢键、离子键、范德华力、亲疏水作用、疏水效应、π-π作用等交互作用类型。
其中,氢键是最为常见的一种蛋白质相互作用类型,它是由氢原子分别与氧、氮、硫等电负性较强的原子形成的一种化学键。
离子键是由正、负电荷相互吸引而形成的一种化学键。
范德华力是由云电子的未对称排列产生的瞬时偶极子相互作用力、诱导力和色散力引发的相互作用。
亲疏水作用是由水与非极性化合物的相互作用形成的一种类型。
疏水效应是由蛋白质中非极性氨基酸侧链靠拢形成的疏水核心引起的作用。
π-π作用是特定分子之间相互作用中的一种类型。
这些相互作用类型可根据每个蛋白质分子的三维结构组合形成复杂的蛋白质体系。
二、抑制剂的设计蛋白质相互作用是正常生命活动的关键因素,同时也是许多疾病产生的原因之一。
抑制剂是一种广泛应用于药物设计领域的化合物,其作用是抑制生命活动中的特定分子相互作用。
近年来,设计和合成能够针对蛋白质相互作用靶点的抑制剂已成为了药物研发领域的热点。
蛋白质相互作用的抑制剂设计可以分为两种方式:一种是直接作用于蛋白质相互作用,另一种是干扰蛋白质的生理过程从而减弱相互作用。
直接作用于蛋白质相互作用的抑制剂是指能够与蛋白质靶点特定的结构域相互作用并引起体系结构的重要改变。
蛋白相互作用的分子生物学研究
![蛋白相互作用的分子生物学研究](https://img.taocdn.com/s3/m/751c0ac6f605cc1755270722192e453611665b57.png)
蛋白相互作用的分子生物学研究蛋白相互作用是分子生物学领域中的重要问题之一。
蛋白质在细胞生命活动中扮演着至关重要的作用,而并非所有的蛋白质都是独立的功能单元。
相反,许多蛋白质是通过相互作用来形成复合物,以执行不同的生物学功能。
因此,了解蛋白质相互作用的基础变成对细胞生命活动的理解的关键。
在分子生物学中,断言两个蛋白质之间的相互作用必须至少具备以下两个条件之一: 第一个条件是这两个蛋白质必须能够物理接触,且以一种特定的方式相互作用。
第二个条件是这两个蛋白质在各自的细胞环境中存在,并且其功能必须与另一蛋白质的功能相关联。
因此,研究蛋白相互作用可以涉及到物理性质的分析以及在细胞培养基和不同的医学组织中进行的实验。
蛋白质的相互作用解析具有重要的生物学医学意义。
蛋白的相互作用解析在许多生理和病理学条件下都具有重要作用。
诸如病毒和细菌感染,自身免疫疾病,肿瘤和其他一些疾病的调节都可以与蛋白互作关联。
许多在生物学和药学中使用的药物都是通过干预蛋白质相互作用而实现其作用的。
例如,高血压药洛托普利(Lopressor)通过抑制β-受体和心脏肌肉细胞中的谷氨酸羟化酶来降低血压。
这两个蛋白质之间的相互作用是洛托普利药理学作用的基础。
分析蛋白相互作用的生物学方法主要包括基于结构的方法、遗传方法和基于化学的方法。
基于结构的方法是指在了解了蛋白分子结构的基础上进行的相互作用分析。
采用这种方法,可以预测蛋白质的结构,判断它们之间的相互作用,并预测可能的作用机制。
此外,还可以通过与另一个蛋白质结合来诱导蛋白质的折叠,从而改变了它们的功能。
遗传方法是通过分析基因间遗传关系和模拟基因变异来研究蛋白质相互作用。
例如,可以对群体进行群体基因变异研究,以确定遗传单元如何影响蛋白质之间的相互作用,为药物设计和疾病治疗提供实用的信息。
基于化学的方法是针对已定量或鉴定的相互作用进行深入研究的方法,包括如荧光染色和化学交联等技术。
这些方法可用于测量蛋白质之间的距离和易位,以及预测一些氨基酸模式和依赖关系。
检测蛋白之间相互作用的方法
![检测蛋白之间相互作用的方法](https://img.taocdn.com/s3/m/6b742899d05abe23482fb4daa58da0116d171f67.png)
检测蛋白之间相互作用的方法蛋白质之间的相互作用是细胞内许多生物过程的基础。
因此,了解和研究蛋白质之间的相互作用对于理解细胞功能和疾病发展非常重要。
目前已经发展了许多方法来检测蛋白质之间的相互作用,本文将介绍其中一些重要的方法。
一、免疫共沉淀(Immunoprecipitation,IP)免疫共沉淀是一种经典的方法,用于检测蛋白质之间的相互作用。
它利用抗体的特异性与目标蛋白结合,然后通过沉淀的方法将目标蛋白及其结合的蛋白一起分离出来。
这种方法可以用于检测稳定和瞬时的蛋白相互作用,并可以在原位和体外条件下进行。
二、酵母双杂交(Yeast Two Hybrid,Y2H)酵母双杂交是一种常用的方法,用于检测蛋白质之间的相互作用。
这种方法利用酵母细胞内的转录活性报告基因,将目标蛋白与一个转录激活因子和一个报告基因组合起来。
如果目标蛋白与转录激活因子相互作用,则该报告基因将被激活,并通过对报告基因的表达进行检测。
三、荧光共振能量转移(Fluorescence Resonance Energy Transfer,FRET)荧光共振能量转移是一种基于能量传递的方法,用于检测蛋白质之间的相互作用。
这种方法基于两个蛋白质上的荧光标记物之间的能量传递效应。
当两个蛋白质相互作用时,一个荧光标记被激活并传递能量给另一个荧光标记,从而观察到荧光变化。
四、质谱法(Mass Spectrometry,MS)质谱法是一种高通量的方法,用于检测蛋白质之间的相互作用。
通过将目标蛋白和其结合的蛋白分离后,使用质谱仪对其进行分析和鉴定。
质谱法可以识别和定量蛋白质相互作用的数量和强度。
五、表面等离子共振(Surface Plasmon Resonance,SPR)表面等离子共振是一种基于光学原理的方法,用于检测蛋白质之间的相互作用。
这种方法基于蛋白质结合时的光学信号变化。
通过将一个蛋白质固定在表面上,并通过流通目标蛋白质,可以监测蛋白质结合的实时动态过程。
蛋白的生物素标记操作指南
![蛋白的生物素标记操作指南](https://img.taocdn.com/s3/m/e0a929065901020207409c8b.png)
蛋白的生物素标记操作指南(Octet分子互作仪器测定专用)概述链霉亲和素与生物素之间的相互作用是目前已知强度最高的非共价作用,并且二者的结合稳定性好,专一性强,不受试剂浓度,pH环境,抑或蛋白变性剂等有机溶剂影响。
因此,链霉亲和素与生物素快速,稳定和不可逆非共价的结合被广泛应用于研究生物分子间的相互作用。
Octet平台的链霉亲和素(SA/SAX/SSA)生物传感器已被开发用于蛋白定量和动力学,结合在SA//SAX/SSA传感器上的第一个蛋白质必须进行生物素化标记。
为方便利用Octet平台上的SA/SAX/SSA传感器进行动力学和定量分析,特制订本指南为利用生物素化试剂标记目标蛋白提供指导。
生物素试剂的选择Biotin为例。
生物素化试剂建议购买小包装,使用DMSO溶解配制成10 mM母液保存于-20℃备用。
产品货号:21312的NHS-PEG12-Biotin为例:10 mM母液的配制案例=(生物素化试剂质量1mg)÷(生物素分子量941 Da)×100=0.106 mL,1 mg生物素化试剂溶于0.106 mL DMSO中即为10 mM母液。
氨基偶联生物素化试剂反应示意图实验试剂和耗材1)缓冲液:DMSO,1×PBS,PBST(PBS+0.02% tween20)2)掌上离心机,一台3)生物素标记试剂EZ-Link NHS-PEG12-Biotin (Thermo,货号:21312) 1 mg,加入0.106 mL的DMSO配置成10 mM母液4)PD Min iTrap™ G-25 Desalting Column用于脱盐,蛋白样品体积0.1-0.5 mL,(GE, 货号:28-9180-07 )。
5)Zeba desalting spin columns脱盐柱:a)蛋白样品体积30-130 uL,使用0.5 mL脱盐柱(Thermo, 货号:89882)b)蛋白样品体积200-700 uL,使用2 mL脱盐柱(Thermo, 货号:89889)c)蛋白样品体积600-2000 uL,使用5 mL脱盐柱(Thermo, 货号:89891)6)透析装置:Slide-A-Lyzer™ Dialysis Cassettes(Thermo,具体型号根据目标蛋白样品体积以及目标蛋白的分子量进行选择。
赛默飞世尔科技免疫沉淀技术指南和实验方案说明书
![赛默飞世尔科技免疫沉淀技术指南和实验方案说明书](https://img.taocdn.com/s3/m/acf936cf6429647d27284b73f242336c1fb93069.png)
赛默飞世尔科技 www.thermo /proteinbiology 服务热线: 800 810 5118 400 650 5118 客服信箱:LifeScience-CNTS@thermo
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IP、Co-IP 和 Pull-Down 实验的通用介绍
A. 免疫沉淀 (IP)
最早的免疫沉淀方法,是将放射性前体 ( 如氨基酸 ) 加入细胞培养基中,使得细胞在生长的过程中,总蛋白可以直接 被标记。裂解细胞后,利用固定在微珠支持物上的特异抗体,从蛋白混合物中纯化获得抗原。纯化所得抗原用 SDSPAGE 分离后,再通过放射自显影,将凝胶上的放射性信号显示到胶片上。
这种放射性免疫检测方法仍在使用,但有关放射性材料使用的安全性、监管和成本问题促进了非同位素方法的开 发。不同于预先标记抗原,现在更常见的方法是从裂解物中纯化抗原,采用 SDS-PAGE 分离,然后转印至膜上进行 Western Blotting 检测。灵敏的化学发光底物的问世,意味着该方法可以轻松达到与放射性技术相当的灵敏度,在抗 体亲和力一致的条件下,提供了更高的特异性。
蛋白质相互作用实验报告
![蛋白质相互作用实验报告](https://img.taocdn.com/s3/m/18335245ae45b307e87101f69e3143323968f5ee.png)
蛋白质相互作用实验报告一、实验背景蛋白质是生命活动的主要承担者,它们在细胞内通过相互作用形成复杂的网络,共同执行各种生物学功能。
研究蛋白质相互作用对于理解生命过程、疾病发生机制以及药物研发具有重要意义。
本实验旨在探究两种特定蛋白质之间的相互作用关系。
二、实验目的1、确定目标蛋白质 A 和蛋白质 B 是否存在相互作用。
2、分析蛋白质相互作用的强度和特性。
三、实验材料与方法(一)实验材料1、蛋白质 A 和蛋白质 B 的纯品。
2、相关试剂,如缓冲液、抗体等。
3、实验仪器,包括离心机、移液器、电泳设备、荧光显微镜等。
(二)实验方法1、免疫共沉淀(CoImmunoprecipitation,CoIP)将蛋白质 A 和蛋白质 B 共同孵育,加入特异性抗体与其中一种蛋白质结合。
通过免疫沉淀将结合有抗体的复合物沉淀下来。
对沉淀下来的复合物进行 Western blot 检测,查看是否存在另一种蛋白质。
2、酵母双杂交系统(Yeast TwoHybrid System)构建分别含有蛋白质 A 和蛋白质 B 编码序列的载体。
将载体分别转化到酵母细胞中。
观察酵母细胞的生长情况和报告基因的表达,判断蛋白质相互作用。
3、荧光共振能量转移(Fluorescence Resonance Energy Transfer,FRET)对蛋白质 A 和蛋白质 B 分别进行荧光标记。
使标记后的蛋白质相互作用。
通过检测荧光信号的变化来判断是否发生能量转移,从而确定相互作用。
四、实验结果1、免疫共沉淀实验结果显示,在沉淀复合物中同时检测到了蛋白质 A 和蛋白质 B,表明它们之间存在直接的相互作用。
2、酵母双杂交系统中,酵母细胞在特定条件下生长良好,并且报告基因得以表达,进一步证实了蛋白质 A 和蛋白质 B 的相互作用。
3、荧光共振能量转移实验中,观察到了明显的荧光信号变化,支持了蛋白质 A 和蛋白质 B 相互作用的结论。
五、结果分析与讨论1、综合三种实验方法的结果,均有力地证明了蛋白质 A 和蛋白质B 之间存在相互作用。
Thermo Fisher 细胞刺激试剂 产品说明书
![Thermo Fisher 细胞刺激试剂 产品说明书](https://img.taocdn.com/s3/m/ee0788ac6aec0975f46527d3240c844769eaa02e.png)
流式细胞术整体解决方案Attune流式细胞仪|16,000+种流式抗体|60+种荧光染料|明星样品制备试剂|细胞功能试验|PrimeFlow 流式RNA分析2流式细胞术能够从单细胞水平同时分析细胞样本中的基因表达和蛋白表达,还可以检测细胞活性、细胞周期、细胞凋亡、细胞增殖和细胞氧化等细胞功能。
该技术不仅能获得在单个细胞水平上具有统计学意义的海量数据,还可以更加深入地了解异质性细胞群的详细信息。
无论进行细胞亚群鉴定还是细胞功能研究,流式细胞术都发挥着重要作用,大大推动了科学研究的发展。
前言图1. 流式细胞术实验流程。
合理进行实验设计是保证流式实验成功的关键。
• 免疫学• 炎症• 肿瘤免疫• 实体肿瘤• 神经炎症• 基因编辑• 微生物学了解更多多色流式实验相关信息,请访问 thermofi/flowcytometry完成流式实验通常需要将多种抗体搭配成多色流式实验方案。
这本流式细胞术整体解决方案手册不仅介绍了Invitrogen ™ eBioscience ™ 流式抗体和Invitrogen ™ 流式细胞功能检测试剂,还展示了Invitrogen ™ Attune ™ 流式细胞仪在以下不同研究领域中的应用:流式细胞术整体解决方案实验流程样品制备确定免疫分型抗体选择缓冲液细胞功能检测活细胞死细胞实验对照上机检测3免疫细胞通常需要刺激活化后才能快速增殖或分化为成熟细胞(图2)。
处于活化状态的细胞经常高表达转录因子、细胞因子、趋化因子以及其他调节因子,这些指标均可通过流式细胞术进行检测。
选择合适的激活剂/刺激剂需要根据细胞类型、目的蛋白的表达水平和表达动力学以及具体实验条件而定。
样品制备:免疫细胞刺激试剂图2. 各种免疫细胞刺激试剂。
(A) 功能级抗体(如CD3抗体和CD28抗体)可用于T 细胞的活化和扩增。
(B) eBioscience 细胞刺激剂(Cell stimulation cocktail ),包括PMA 和离子霉素(ionomycin ),可刺激T 细胞产生γ-干扰素(IFN-γ)、肿瘤坏死因子α(TNF-α)、白介素-2(IL -2)和白介素-4(IL -4)。
质谱分析蛋白质的相互作用
![质谱分析蛋白质的相互作用](https://img.taocdn.com/s3/m/535988370912a21614792942.png)
蛋白质间的相互作用存在于生物体每个细胞的生命活动过程中,互交叉形成网络,成细胞中一系列重要生理活动的基础。
其中,多数蛋白质是通过与配体分子结合或者是作为1个大的生物复合体的一部分,与细胞完整性维持、遗传物质复制、基因表达调控、信号转导、免疫应答等一系列生命过程。
研究蛋白质间相互作用的方式和程度,将有助于蛋白质功能的分析、疾病致病机理的阐明和治疗和新型药物的开发等众多难题的解决。
因此,确定蛋白质间相互作用关系、绘制相互作用图谱已成为蛋白质组学研究的热点。
近年来有许多方法被用于蛋白质相互作用的研究,酵母双杂交技术,免疫共沉淀技术,串联亲和纯化技术,化学交联技术,蛋白质芯片技术,荧光共振能量转移技术,噬菌体展示技术等。
酵母双杂交技术Fields和song等首先在研究真核基因转录调控中建立起来的,是在真核细胞中检测蛋白质与蛋白质之间的相互作用的方法。
该系统是通过两个分别称之为“诱饵蛋白”和“捕获蛋白”的融合蛋白形成一个完整的转录激活因子,从而激活报告基因的表达,通过在营养缺陷型培养基上生长或呈现显色反应来检测系统的功能。
酵母双杂交系统可在全基因组规模上进行蛋白质一蛋白质相互作用高通量的研究。
免疫共沉淀技术免疫共沉淀是利用抗原和抗体的特异性结合以及细菌的Protein A或G特异性地结合到免疫球蛋白的Fc片段的现象开发出来的方法。
其基本原理是,在细胞裂解液中加入抗兴趣蛋白的抗体,孵育后再加入与抗体特异结合的结合于Agarose珠上的Protein A或G,若细胞中有与兴趣蛋白结合的目的蛋白,就可以形成这样一种复合物:“目的蛋白—兴趣蛋白—抗兴趣蛋白抗体—Protein A或G”,经变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,复合物又被分开。
然后经免疫印迹或质谱检测目的蛋白。
这种方法得到的目的蛋白是在细胞内与兴趣蛋白天然结合的,符合体内实际情况,得到的结果可信度高。
这种方法常用于测定两种目标蛋白质是否在体内结合;也可用于确定一种特定蛋白质的新的作用搭档。
蛋白体外交联
![蛋白体外交联](https://img.taocdn.com/s3/m/d6abeeaa112de2bd960590c69ec3d5bbfd0adab4.png)
百泰派克生物科技
蛋白体外交联
蛋白质体外交联是一种在离体条件下利用蛋白质交联剂将相互作用的蛋白质交联起来研究蛋白质相互作用的技术。
蛋白质在机体内并不是相互独立的,而是会与其他蛋白质“并肩作战”,相互结合形成蛋白复合体发挥多样的生物学功能。
在正常的生理条件下这种蛋白质之间的相互作用可能比较微弱且持续时间较短,不容易被发现和捕获,为研究蛋白质相互作用带来了难题。
蛋白质交联剂是一类具有针对特殊基团的反应性末端的小分子化合物,可以将蛋白质分子偶联结合起来,交联剂的出现为研究蛋白质相互作用提供了新的思路。
百泰派克生物科技采用Thermo Fisher的Q ExactiveHF质谱平台结合Nano-LC色谱,提供快速高效的蛋白质体外交联服务技术包裹,可对体内瞬时蛋白质间相互作用以及低亲和力的体外蛋白质间相互作用进行分析,欢迎免费咨询。
Gibco层粘连蛋白赛默飞
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Gibco层粘连蛋白赛默飞范本一:正文:1. 简介Gibco层粘连蛋白赛默飞是赛默飞世尔维公司推出的一种优质细胞培养基。
该培养基通过添加层粘连蛋白,提供细胞黏附的支持,促进细胞生长和繁殖。
本文将介绍Gibco层粘连蛋白赛默飞的详细信息和使用方法。
2. 成分Gibco层粘连蛋白赛默飞的主要成分包括:- 层粘连蛋白:提供支持细胞黏附和生长的基质。
- 营养物质:提供细胞所需的营养物质,包括氨基酸、糖类和维生素等。
- 生长因子:促进细胞生长和分化的蛋白质因子。
- 补充物质:调节培养基的pH值和渗透压等重要参数。
3. 使用方法3.1 储存条件Gibco层粘连蛋白赛默飞应储存在-20℃下,避免阳光直射和高温。
3.2 培养基配制将适量的Gibco层粘连蛋白赛默飞加入无菌的培养基瓶中,按比例添加适量的补充物质,如生长因子和抗生素等。
用无菌胶头塞密封瓶口。
3.3 细胞培养将待培养的细胞加入含有Gibco层粘连蛋白赛默飞的培养基中。
根据细胞类型和要求,可以进行不同的培养条件,如温度、CO2浓度和培养时间等。
4. 注意事项- 使用前请确认培养基是否过期,过期的培养基可能影响细胞生长。
- 在培养细胞时,请注意无菌操作,避免细菌和真菌污染。
- 在使用过程中,如出现异常现象,请立即停止使用并与供应商连系。
5. 附件本文档附带的附件包括:- Gibco层粘连蛋白赛默飞产品说明书- Gibco层粘连蛋白赛默飞储存条件标签6. 法律名词及注释本文档涉及的法律名词及其注释如下:- 无范本二:正文:1. 概述Gibco层粘连蛋白赛默飞是赛默飞世尔维公司推出的一种细胞培养基。
本文将详细介绍Gibco层粘连蛋白赛默飞的成分、使用方法和注意事项等内容。
2. 成分Gibco层粘连蛋白赛默飞的主要成分包括:- 层粘连蛋白:提供细胞黏附的支持和生长的基质。
- 营养因子:包括氨基酸、糖类和维生素等,为细胞提供所需的营养物质。
- 生长因子:促进细胞生长和分化的蛋白质因子。
研究蛋白质相互作用的九种方法,写标书用得上
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研究蛋白质相互作用的九种方法,写标书用得上寒风凛冽,又到了一年一度写标书的季节,你开始准备了么?在分子机制的研究中,蛋白和蛋白之间的互作研究可以说是非常经典了,研究蛋白互作的方法有很多,今天我们来介绍九种。
1、免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation,CoIP)CoIP其实就是两个蛋白相互的IP(免疫沉淀反应)实验,在已知蛋白B和C之间有相互作用的前提下,这种前提一般需要有一个酵母双杂实验或者Pulldown实验来作为支持。
IP就是用来验证蛋白C和蛋白B之间相互作用的。
如果在Agarose珠上的Protean A/G所结合的抗体,可以结合并拉下蛋白B,那用Western Blot即可检测出蛋白C的表达,反之亦然,通过这种相互间免疫共沉淀的实验,就可以明确地验证出,B与C之间的相互作用了。
比如这份标书:PYK2促进肝癌细胞迁移的一个新的分子机制研究:结合并磷酸化E-cadherin?(百度检索题目可查到全文)2、Pull-down实验这个实验跟免疫共沉淀实验很像,不同的是免疫共沉淀是在细胞里进行的,在众多的蛋白里,拉住A蛋白的同时,把B蛋白也给拉出来了,这还不能证明是直接的结合,很有可能是A 拉住了C,而C拉住了B,这样拉住A蛋白的同时也能把B蛋白也给拉出来。
要证明直接的结合就是Pull-down实验。
提纯所要研究的两个蛋白(一般是在BL21等菌种表达提纯),这两个蛋白带上不同的标签(提纯蛋白一般带GST或者HIIS标签),然后将他们放在同一个体系里,使用GST-beads或者NI-beads,把其中一个蛋白拉下来,用WB检测另一个蛋白的存在。
比如这份标书:恶性肿瘤的发生、发展的细胞表观遗传学机制。
(同样可以百度检索到全文)3、免疫荧光(Immunofluorescence,IF)——共定位将免疫学方法(抗原抗体特异结合)与荧光标记技术结合起来研究特异蛋白抗原在细胞内分布的方法。
由于荧光素所发的荧光可在荧光显微镜下检出,从而可对抗原进行细胞定位。
Thermo Scientific粒子技术说明和参考指南
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Thermo Scientific粒子技术说明和参考指南粒子优化方法和步骤我们分享知识,帮助您走向成功这些技术说明指南提供了根据您的特定需求和应用的不同类型粒子的基本使用方法。
您将找到将粒子与蛋白质偶联,超声处理和粒子混合以及为诊断应用选择正确的粒子表面特性的方法。
您可以了解有关仪器校准的平均直径和不确定度的重要性,而且还阐述了各种类型的流式细胞仪粒子之间的差异。
甚至还有关于处理粒子的基本参考方法。
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目录聚苯乙烯基微粒(PS-MPS) (3)其他单体 (4)清洗方法 (5)蛋白质吸附:PS-MPS (6)粒子技术说明 (8)推荐吸附共价偶联程序 (8)超声混合 (16)粒子处理一般指南 (21)影响蛋白质与微粒共吸附和共价偶联的因素 (23)为诊断应用程序选择粒子表面属性 (34)粒子结合蛋白质分析快速洗脱技术 (36)从固体百分比推导每毫升计数 (42)用荧光微球评价生物膜的孔径 (46)质量控制/校准技术说明 (51)仪器校准和方法验证中测量组件的重要性 (51)用光学显微镜改进单分散球形颗粒尺寸校正的阵列方法 (53)光散射法校准球形颗粒 (60)用电子显微镜校准亚微米球形颗粒尺寸的内标法 (66)折射率 (71)0.05至0.5微米膜过滤器的颗粒保留测试 (72)粒子试剂的历史1956年Singer和Plotz首次提出用于类风湿因子检测的乳胶凝集试验(1)。
蛋白互作分析
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蛋白互作分析蛋白互作分析是对蛋白质的相互作用进行分析,在互作分析完成后常常结合质谱等技术对互作蛋白进行鉴定。
百泰派克生物科技提供质谱鉴定的服务。
蛋白相互作用是指两个或两个以上的蛋白质分子结合形成蛋白质复合体的一个过程。
一般情况下,蛋白质都是由多个蛋白质分子相互协调共同实现复杂的细胞功能。
因此研究蛋白相互作用有利于探索生命体的细胞功能、了解疾病的发生发展、找寻特定的疾病预测和治疗方法,并且为新药研发提供新的思路。
蛋白质互作分析的方法较多,这里简单的介绍一下免疫共沉淀法(CO-IP)结合质谱联用的蛋白互作分析、GST融合蛋白Pull-down技术结合质谱联用的蛋白互作分析以及SILAC与免疫共沉淀结合质谱联用的蛋白互作分析。
免疫共沉淀法(CO-IP)结合质谱联用的蛋白互作分析免疫共沉淀法(CO-IP)是利用抗原抗体之间的特异性来检测蛋白质之间的生理性相互作用的一种方式。
实验中使用非离子变性剂来裂解细胞,细胞内的蛋白相互作用被保存下来,在其中加入相应的抗体,使抗体与细胞中的特异蛋白质结合,再加入蛋白A/G形成抗体蛋白复合物,进行离心、分离,使抗体蛋白复合物沉淀,弃去上清液,最后用质谱技术鉴定沉淀下来的蛋白质,进而证明两者间的相互作用。
蛋白互作分析。
GST融合蛋白Pull-down技术结合质谱联用的蛋白互作分析GST融合蛋白pull-down沉降技术,利用基因重组将GST标签插入到目标蛋白上,谷胱甘肽包裹的磁珠与目标融合蛋白结合,加入细胞裂解液后,具有相互作用的蛋白被融合蛋白吸附,加入过量的谷胱甘肽进行洗脱,最后用MS技术分析。
SILAC与免疫共沉淀结合质谱联用的蛋白互作分析利用SILAC方法分别标记实验组和对照组细胞后进行Co-IP实验,依靠抗原与抗体之间的专一性反应分离得到免疫复合物;再通过LC-MS/MS来定性/定量检测免疫复合物中的蛋白;当实验组与对照组中某个蛋白质的含量达到统计学差异时,判定这个蛋白质与研究的蛋白具有相互作用,可极大降低蛋白质互作假阳性结果可能性。
thermo蛋白质表达手册
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thermo蛋白质表达手册
Thermo蛋白质表达手册是一个关于蛋白质表达的指南,旨在帮助研究人员在实验室中成功地表达目标蛋白质。
这样的手册通常包括从基本的实验室技术到最新的方法和技术的全面介绍,以及实验步骤的详细说明,以帮助研究人员克服在蛋白质表达过程中可能遇到的各种挑战。
在Thermo蛋白质表达手册中,通常会包括以下内容:
1. 蛋白质表达基础知识,介绍蛋白质表达的基本原理、常用的表达系统(如原核和真核表达系统)以及表达宿主的选择等内容。
2. 表达载体和宿主菌的选择,介绍不同类型的表达载体(如质粒、病毒载体等)以及宿主菌的选择原则,以及它们之间的相互作用。
3. 蛋白质表达的优化,包括诸如启动子的选择、译码子优化、信号肽的添加等技术,以提高目标蛋白质的表达水平。
4. 表达条件的优化,介绍温度、培养基成分、诱导条件等对蛋
白质表达的影响,以及如何优化这些条件以获得更高的表达水平。
5. 蛋白质纯化和分析,介绍蛋白质的纯化技术以及常用的蛋白质分析方法,如SDS-PAGE、Western blot等。
此外,Thermo蛋白质表达手册还可能包括一些实验注意事项、常见问题解决方法以及相关产品的推荐等内容,以帮助研究人员更好地进行蛋白质表达实验。
总的来说,这样的手册旨在为研究人员提供全面的、系统的蛋白质表达实验指导,帮助他们在实验室中取得成功。
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Thermo Scientific Pierce Th S i tifi Pi蛋 蛋白相互作用的研究方法和实践 实罗 莎 Rosa Luo Ph.D. Application Scientist Biosciences Division Thermo Fisher Scientific China酵母蛋白质相互作用图谱Thick blue lines represent literature-derived interactions from PreBIND+MIPS in the HMS-PCI dataset. Thin orange lines represent potential novel interactions. Courtesy MDS Proteomics2蛋白质相互作用技术Genetic Two Hybrid Phage Display Mutational analysis M t ti l l i Biochemical Immunoprecipitation (IP) Co-Immunoprecipitation (C IP) C I i it ti (Co-IP) Pull-Down Assays Far Western FRET (Fluorescence Resonance Energy Transfer) Chemical Crosslinking Label-transfer FeBABE F BABE mapping i Fluorescent Immunofluorescence colocalization3蛋白相互作用研究方法• 免疫沉淀 (IP)• 富集 纯化 检测兴趣蛋白 富集、纯化、检测兴趣蛋白 • 用抗体捕获抗原Prey• 免疫共沉淀 (Co-IP)• 富集、纯化、检测兴趣蛋白 • 用抗体捕获抗原和互作蛋白BaitPrey• Pull-Down• 确定蛋白之间的互作 • 用标签蛋白捕获结合蛋白BaitPrey4传统的免疫沉淀(IP)+Step 1. Immobilize antibody p y Step 2. Add sample p pStep 4. Elute antibody:protein complexStep 3. Bind protein and wash away unbound protein+ 琼脂介质5Protein A/G抗原传统的免疫沉淀碰到的困难IP)问题• • 选择适合的树脂 取液困难Either loss of beads or solution remains with beads, contaminating sample•抗体和抗原共洗脱 Ab Ag Ab+AgHeavy Chain AntigenLight Chain•抗体被破坏6免疫沉淀 (Immunoprecipitation)AntigenProtein P t i A/G7IgG结合蛋白比较Recombinant Protein A 天然来源 产品来源 分子量 SDS-PAGE SDS PAGE 表观分子量 IgG 结合位点数量 白蛋白结合位点 最佳反应pH Ig 结合位点Staphylococcus aureusRecombinant Protein GStreptococcusRecombinant Protein A/GN/ARecombinant Protein LPeptostreptococc us magnusE. coli 44,600 45 kDa 4 No 8.2 82 FcE. coli 21,600 32 kDa 2 No 5 FcE. coli 50,460 40-45 40 45 kDa 6 No 5-8.2 582 FcE. coli 35,800 36 kDa 4 No 7.5 75 VL-kappa8Pain: Selecting IgG binding resin• Protein A 和 Protein G 对不同来源和不 同亚型的抗体结合能力不同. • Protein A• • 只与 Fc 区域结合 对于IgG1 和大鼠抗体结合力弱Antigen•Protein G• • 结合Fc 结合F 区和轻链 对于IgA, IgM, IgE, 等相对结合力较弱Protein P t i A/GProtein G•Protein A/G• 蛋白质工程技术,将Protein A 的两个结 合位点和Protein G的4个抗体结合位点组 合到一起 • 能够分别与Protein A 和 G 结合的抗体均 可与之结合Protein G Protein A/G Protein A9A/G+ is the most robust IgG binding protienA/G+L FT PDA+FT PDG+ControlKey: L = Lysate Load FT = Flow Through PD = S Sample P ll Down l Pull D Control = Lysate + resin (no antibody)FT PD FT PDAnti-PP2A (Mouse) Anti-Cdk2 (Rabbit) ( ) Anti-p53 ( p (Sheep) p)Conclusion: Thermo Scientific Pierce Classic IP Kit is compatible with most IgG species isotypes.10Antibody Binding Protein SpecificityPierce Classic IP Kit 26146样品(如细胞裂解液)•抗体通过蛋白A/G与基质结合•用于从样品中纯化抗原•抗体与抗原一起被洗脱取液困难——离心柱的解决方案p•Thermo Scientific Pierce Spin Columns•Thermo Scientific Pierce IP Kits contain convenient spincolumns•Flip top cap for easy handling•Screw cap for longer storage•No decanting or transferring ofwashes or samplesg g p g•Centrifuging provides faster washing•Tapered bottom provides improvedsample recovery (smaller volumesand more concentrated sample recovery)p y)Pierce Classic IP Kit 特点结果稳定–Pierce使用离心管形式,使用方便,避免琼脂/抗体及样品的损失,降低非特异性快速–一小时之内完成洗脱条件温和–回收抗原不使用强烈的去污剂和还原剂适用于大多数抗体使用方便–试剂盒提供全套试剂缺点•抗体不能再利用•抗体在Western Blot上被显色,影响结果抗体影响实验结果I i i i f PP2A iImmunoprecipitation of PP2A protein AbAgAb + Ag抗原被抗体覆盖IgG Heavy Chain (55kD)抗体重链抗原PP2AIgG Light Chain (25kD )抗体轻链二抗检测Clean-Blot™ IP Detection Reagent•Clean-Blot™ IP 检测试剂•只结合未变性的一抗只结未变性抗•替代二抗•用于IP 结果检测或检测含内源IgG 的组织细胞裂解液•去除变性的抗体对Western Blotting 结果的干扰抗体重链Ab Ag Ab + AgAb Ag Ab + Ag抗体重链抗原抗体轻链抗原抗体轻链二抗检测Clean-Blot ™IP 检测试剂Clean-Blot™ IP Detection Reagent 让IP 结果更清晰Clean-Blot IP Detection Reagent (HRP)GAM-HRP•p53 IP :•Anti-p53 antibody (2 µg)A431total cell extract (500µg) Western blot :•Mouse anti-p53 antibody (BD Biosciences) (1 µg/ml)•Clean-Blot IP Detection Reagent (HRP)•A431 total cell extract (500 µg) •Protein A Agarose Resinor•Goat Anti-Mouse HRP (Product # 31430, 0.16 µg/ml)•SuperSignal West Pico ChemiluminescentSubstrate (Product # 34080).Clean-Blot™ IP 检测试剂•Clean-Blot™ IP Detection Reagent (HRP)•Product # 21230•Package Size: 2.5 mLPackage Size:25mL•Kit (HRP) Product # 21232Clean Blot IP Detection Reagent (HRP) 2.5 ml•Clean-Blot™IP Detection Reagent(HRP)2.5ml•StartingBlock T20 (TBS) Blocking Buffer 1L•Pierce ECL Detection Reagent 1, Peroxide Solution 125 ml•Pierce ECL Detection Reagent 2, Luminol Enhancer Solution 125 mlg,•Clean-Blot™ IP Detection Reagent (Alkaline Phosphatase)•Product # 21233•Package Size: 2.5 mLReferences:Journal of Biological Chemistry, 2010, Vol. 285, 5896-5906Molecular Biology of the Cell, 2009, Vol. 20, 4313–4323Science Signaling, 2008, Vol. 1, 4313–4323, ra17Science Signaling2008Vol143134323ra17Seize® X 抗体耦联26147Pierce Crosslink IP KitBeadProtein A or GDSS 交联剂BeadProtein Aor G未结合抗体抗体被共价结合到蛋白A ,G 上试剂盒组成Protein A/G Plus Agarose, 0.55mL DSS Crosslinker, 8 x 2mg Coupling Buffer (20X), 25mL IP L i /W h B ff 250L DSS 交联剂:将抗体共价耦联到琼脂固相化的IP Lysis/Wash Buffer, 2 x 50mL Conditioning Buffer (100X), 5mL Tris-Buffered Saline (20X), 25mL Elution Buffer, 50mL Protein A 或G 上,Lane Marker Sample Buffer (5X), 5mL Control Agarose Resin, 2mLSpin Columns and Collection Tubes26147 Pierce Crosslink IP Kit特点抗体非共价结合到蛋白A/G Plus上•A/G Plus•DSS 交联剂共价结合抗体和蛋白A/G Plus•抗体不被洗脱下来优点•高/中蛋白结合产量•可以使用纯化和未纯化的抗体•固定化抗体反复使用•抗体不被洗脱,不影响抗原的检测•DSS交联可能需要优化实用,但操作步骤较多实用但操作步骤较多Seize® Primary 抗体耦联26148Pierce Direct IP KitONH 2H CHBeadCBeadNAminoLink PlusSupportPrimary AntibodyImmobilized AntibodySupportAminoLink AminoLink Plus Coupling Resin , 2mL Coupling Buffer (20X), 25mL Quenching Buffer, 50mL Wash Solution,50mL 试剂盒组成Plus直接将抗体共价耦联到胺基活化的凝胶上Wash Solution, 50mLSodium Cyanoborohydride Solution (5 M), 0.5mL IP Lysis/Wash Buffer, 2 x 50mL Conditioning Buffer (100X), 5mL Tris-Buffered Saline (20X), 25mL (),Elution Buffer, 50mLLane Marker Sample Buffer (5X), 5mL Control Agarose Resin, 2mLSpin Columns and Collection Tubes pPierce Direct IP Kit 26148特点•无需蛋白A/G,抗体直接共价结合在基质上•无需交联剂,无需优化交联步骤•抗体不被洗脱下来优缺点•高/中蛋白结合产量•固定化抗体抗原反复使用•抗体不被洗脱,不影响抗原的检测•抗体缓冲液不能够含有干扰成分(胺基基团)¾Tris¾Glycine¾Gelatin¾BSA¾Other proteins三种IP 产品比较:Classic vs. Crosslink vs. DirectClassicCrosslinkDirectProtein A,G Antibodies交联剂不同IP结果比较GFP Protein spiked into MOPC cell lysate杂质少无干扰三种IP方法比较Traditional Pierce Pierce Pierce FeatureIP Method Classic IP Kit Crosslink IP Kit Direct IP KitUses high binding capacity resin Variable Yes+)Yes+)Yes(Protein A/G (Protein A/G (AminoLink+)Crosslinker mediatedimmobilizationNo No Yes NoRequires purified antibody inamine‐free and protein‐freestorage solutionNo No No YesAntibody covalently attached toresinNo No Yes Yes Antibody is oriented Yes Yes Yes No Antibody elutes with antigen Yes Yes No NoAntigen recovery method Boiling w/ SDS(Low pH)Low pH elution(Boiling w/Low pH elution Low pHelutionSDS)Relative antigen recovery Variable Highest High High Immobilized antibody can be No No Possible Possible reusedPierce Co-IP Kit 26149BaitPreyg gHighlights•与Direct IP kit原理相同•抗体直接与AminoLink bead交联•需要摸索适合蛋白质间相互作用和蛋白与抗体相互作用的条件Pierce HA-or c-Myc Tag IP/Co-IP Kit 23610/20Anti-HA Anti-cMyc 偶联常用抗体y适用于过表达并含有HA/c-Myc 蛋白标签的体系Previous Seize kits versus new Pierce IP KitsPrevious KitsNew KitsS i Cl i P t i APierce Classic IP Kit(26146)}Seize Classic Protein A Seize Classic Protein G Seize Classic Mammalian Pierce Crosslink IP Kit}Seize X Protein A Seize X Protein G(26147)Pi Di t IP KitSeize X Mammalian (G)Seize Primary}Pierce Direct IP Kit (26148)Seize Primary Seize Primary Mammalian ProFound Co IP}Pierce Co-IP Kit(26149)Co-IP ProFound Co-IP MammalianIP and co-IP方便可靠易于检测节约抗体Capturing Protein Interactions•使用交联剂•通过共价结合捕获相互作用(弱)的蛋白Diazirine Crosslinkers(双吖丙啶)•带有琥珀酰亚胺和双吖丙啶两个不同的功能基团•短化学链适于进行“fishing” 实验•可对蛋白进行标记,并找出与之发生相互作用的蛋白可对蛋白进行标记并找出与之发生相互作用的蛋白•In a protein mixture or inside cells•高度可控的交联操作–在适宜条件下,UV激活diazirine基团•短的化学链保证了交联是发生在真正发生相互作用的两个蛋白之间。