试验碱性磷酸酶的分离提取及比活力的测定

(5) 0.35饱和硫酸铵上清液，加入固体研磨成细粉的硫 酸铵至0.70饱和度（100 mL加入23.8 g ）。缓 慢加入，不断搅拌溶解，置冰箱静置1-2 h。 (6) 室温离心，4000 r/m 10 min，收集沉淀物。 (7) 得到沉淀物，溶于5 mL含0.1 mol/L NaCl 的0.01 mol/L Tris-HCl缓冲液（pH 7.5）。装入透析袋，对 0.01 mol/L Tris-HCl pH 7.5缓冲液透析平衡，至无 SO42-被检测出为止（可用一定浓度BaCl2溶液检 验）。 (8) 取出酶溶液，冷冻高速离心（0℃ 25000 r/m 30 min）。 (9) 离心上清液即为粗酶制剂，检测酶的比活力。装入 棕色瓶于4℃冰箱保存。

硫酸铵溶液饱和度计算表（25℃）
硫酸铵终浓度,%饱和度 10 20 25 30 33 35 40 45 50 55 60 65 70 75 80 90 100
每1升溶液加固体硫酸铵的克数① 硫 酸 铵 初 浓 度 ， % 饱 和 度 0 10 20 25 30 33 35 40 45 50 55 60 65 70 56 114 57 144 86 29 176 118 59 30 196 137 78 49 19 209 150 91 61 30 12 243 183 123 93 62 43 31 277 216 155 125 94 74 63 31 313 251 190 158 127 107 94 63 32 351 288 225 193 162 142 129 97 65 33 390 326 262 230 198 177 164 132 99 66 33 430 365 300 267 235 214 200 168 134 101 67 34 472 406 340 307 273 252 238 205 171 137 103 69 34 516 449 382 348 314 292 178 245 210 176 141 105 70 35 561 494 424 390 356 333 319 285 250 214 179 143 107 72 662 592 520 485 449 426 411 375 339 302 264 227 190 153 767 694 619 583 546 522 506 469 431 392 353 314 275 237
沉淀
粗酶液
溶于5 mL含0.1 mol/L NaCl 的0.01 mol/L Tris-HCl pH 7.5。装入透 析袋，对0.01 mol/L Tris-HCl pH 7.5缓冲液透析平衡，至无SO42-被 检测出为止
离心机的使用 (1) 离心机要置水平位置，以保证旋转轴垂直地 球水平面。 (2) 样品倾入离心杯后应与离心管套一起两两平 衡，平衡后把它们放置于转子的对称位置。 (3) 盖好盖子，打开电源开关，调整离心时间和 离心速度。 (4) 启动离心后等转速达到所要求的转速后才能 离开(一般要2~3min)。 (6) 离心结束后要等到转速为零时才能打开离心 机盖，取出样品。
（3）盐分级沉淀是一种应用非常广泛的方法 高浓度的盐离子在蛋白质溶液中可与蛋白质竞 争水分子，从而破坏蛋白质表面的水化膜，降低 其溶解度，使之从溶液中沉淀出来。 各种蛋白质的溶解度不同，因而可利用不同浓 度的盐溶液来沉淀不同的蛋白质。这种方法称之 为盐析。
硫酸铵因其溶解度大，温度系数小和不易使蛋 白质变性而应用最广。硫酸铵沉淀法可用于从大 量粗制剂中浓缩和部分纯化蛋白质。
2. 操作方法 2.1 牡蛎碱性磷酸酶的分离提取 (1) 每组称取25 g牡蛎（蒸馏水洗净），加入50 mL 预先冷却的0.01 mol/L Tris-HCl 缓冲液（pH 7.5， 含0.1 mol/L NaCl），（两组一起）于高速组织 捣碎机匀浆1 min，于冰箱4℃放置1 h左右进行抽 提。 (2) 室温离心，4000 r/m 20 min，收集离心上清液并 量体积（两组分开） 。（留3 mL上清液，待测 酶的比活力。） (3) 在上清液中加入研磨成细粉的固体硫酸铵至0.35 饱和度（100 mL加入20.9 g ）。缓慢加入， 不断搅拌溶解，置冰箱静置1 h左右。 (4) 室温离心，4000 r/m 10 min，收集离心上清液， 并量体积。（留3 mL上清液，对0.01 mol/L TrisHCl 缓冲液pH 7.5含0.1 mol/L NaCl 透析平衡， 待测酶的比活力。）
25 g牡蛎
匀浆液
加入50 mL预先冷却的0.01 mol/L Tris-HCl 缓冲液（pH 7.5， 含0.1 mol/L NaCl），于高速组织捣粹机匀浆1 min，于冰箱 4℃放置1 h左右进行抽提。
室温离心，4000 r/m 20 min，收集离心上清液，并量体积。 （留3 mL上清液，待测酶的比活力。）
上清液
缓慢加入研磨细粉的固体硫酸铵至0.35饱和度（100 mL加入20.9 g），不断搅拌溶解，置冰箱静置1 h左右。 室温离心，4000 r/m 10 min，收集离心上清液，并量体积。 （留
3 mL上清液，待测酶的比活力。） 0.35饱和硫酸铵上清液 加入固体研磨成细粉的硫酸铵至0.70饱和度（100 mL加入23.8 g）。缓慢加入，不断搅拌溶解，置冰箱静置1-2 h。 室温离心，4000 r/m 10 min，收集沉淀物。

在蛋白质或酶的分离提取过程中由于酶蛋白容易变 性而失活，为了获得较好的分离ຫໍສະໝຸດ Baidu取效果，在工作 中特别注意以下几点：
(1)
(2)
取用新鲜的材料，提取工作应在获得材料后立刻开 始，否则应在低温下保存。选择来源丰富，酶含量 高的材料。 在酶的制备过程中，每经一步处理，都需测定酶的 活力和比活力。酶的比活力定义为每mg蛋白所具有 的酶活力单位数。唯有比活力提高较大，提纯步骤 才有效。
实验 碱性磷酸酶的分离提取
目的要求： 1.学习蛋白质分离纯化的一般原理和步骤 2.掌握碱性磷酸酶制备的操作技术

1.原理

碱性磷酸酶 (Alkaline phosphatase EC 3.1.3.1 简称为ALPase)广泛存在于微生物界和动物界。 ALPase能催化几乎所有的磷酸单酯的水解反应， 产生无机磷酸和相应的醇、酚或糖。它也可以 催化磷酸基团的转移反应，磷酸基团从磷酸酯 转移到醇、酚或糖等磷酸受体上。