淋巴细胞分离实验..
2--淋巴细胞分离技术及玫瑰花环试验
二、实验目的
了解血液中的各种细胞成分及特性。
掌握实验动物外周血中淋巴细胞的分离方法 掌握T、B淋巴细胞的区分方法及T淋巴细胞的计 数方法。
三、实验材料
1. 兔淋巴细胞分离液、 1%绵羊红细胞、 生理盐水、 pH6.4的PBS液、 Hank,s液、瑞氏染色液（I 液）、吉姆萨染色液（II液）、香柏油、二甲苯、 甲醇、 碘酊棉球、75%酒精棉球。 2. 50mL注射器，10ml玻璃离心管、50ml离心管、擦镜纸、 移液枪（枪头）、载玻片、巴氏吸管、镊子等。 3. 显微镜、离心机、
实验五
（一）淋巴细胞分离技术 （二）E玫瑰花环试验
一、实验原理
(一）淋巴细胞的分离：
兔淋巴细胞的方便来源是外周血，此次实验 采用的就是聚蔗糖溶液的密度梯度离心法。外周 血中各种细胞的密度不同，红细胞和多核白细胞 的比重密度较大，1.090左右，淋巴细胞和单核 细胞的密度为1.075～1.090。密度梯度离心法的 原理主要根据各类血细胞比重的差异，利用比重 介于某两类细胞之间的细胞分离液对血液离心， 使一定比重的血细胞依相应的密度梯度分布于不 同的独立带，从而达到分离的目的。
SRBC受体(Sheep red blood cell)
T细胞
SRBC
Erythocyte rosette test
红细胞玫瑰花环形成试验
T
B
T
erythrocyte antibody rosette formation test 红细胞抗体玫瑰花 环形成试验
erythrocyte antibody complement rosette formation test 红细胞抗体补体玫 瑰花环形成试验
四、实验步骤
人周血淋巴细胞分离液技术要求
人周血淋巴细胞分离液技术要求引言：人周血淋巴细胞是免疫系统中重要的组成部分，它们对于疾病的预防和治疗具有重要意义。
因此，人周血淋巴细胞分离液技术的发展和应用具有重要的临床和科研意义。
本文将从实验设备、试剂和实验操作等方面介绍人周血淋巴细胞分离液技术的要求。
一、实验设备1.高速离心机：用于离心样品，获得血细胞和血浆分离。
2.恒温振荡器：调节培养基的温度和震荡条件，确保细胞的生长和生存条件。
3.显微镜：观察细胞培养的状况，判断细胞的活性和纯度。
4.细胞计数仪：准确计算细胞数目，掌握细胞的生长和增殖情况。
二、试剂2.淋巴细胞分离液：选择合适的分离液，如密度梯度离心法、免疫磁珠分离法等。
分离液应具有高分离效率和良好的细胞生存率。
3.培养基：如RPMI-1640培养基等，含有必需氨基酸、维生素、矿物质和生长因子等，提供细胞所需的养分和生存环境。
4.细胞增殖试剂：如PHA（植物血球凝集素）、IL-2（白细胞介素-2）等，用于促进淋巴细胞的增殖和活化。
5.细胞保存液：含有冻存缓冲剂和细胞保存剂，保证细胞冷冻保存时的细胞活性和纯度。
三、实验操作2.制备分离液：根据所选的细胞分离方法，制备稀释好的分离液，注意消毒操作，避免污染。
3.样品离心：将血样离心分离，获得血浆和血细胞层。
4.加入分离液：将分离液缓慢注入离心管中，加入足量的分离液以确保细胞的分离效果。
5.离心分离：根据分离液的密度和离心速度，进行适当的离心分离操作，获得淋巴细胞层。
6.细胞计数和检测：使用细胞计数仪计数和检测细胞的活性和纯度，根据需求调整细胞浓度。
7.细胞培养：将分离得到的淋巴细胞进行培养，在恒温振荡器中培养细胞，提供养分和生长环境，促进细胞的增殖和活化。
8.细胞保存：将培养得到的淋巴细胞分装到冻存管中，添加细胞保存液，迅速置于液氮中进行冻存，保存好的细胞可供后续实验和应用。
结论：。
PBMC的分离培养及处理步骤
刘凤君实验步骤1.采血：抽取初治(初始抗病毒治疗）之前CHB、CHC患者外周静脉血6ml，注入肝素抗凝管中，轻轻摇匀。
2.稀释：室温下加入等体积的PBS，轻轻吹打混匀。
3.加样：取50ml离心管，吸取6ml Ficoll（淋巴细胞分离液）于离心管中，（Ficoll与稀释前血液的体积比为1:1），管倾斜45°，将稀释后的血液在Ficoll液面上方约1cm处沿管壁缓慢加至Ficoll上面。
4.离心：18-20℃,2000rpm，30min，离心后从管底至液面分四层，依次为红细胞和粒细胞层、分层液层、单个核细胞层、血浆层。
5.回收：将移液管直接插入云雾层（或者先吸去上层的血浆），轻轻吸出云雾层，放入新的离心管中。
6.洗涤：加入至少于PBMC（外周血单个核细胞）体积3倍的PBS，18-20℃,2000rpm，10min，两次。
7.细胞计数：弃上清，加1ml RPMI-1640培养基(含10%胎牛血清），吹打混匀，制备成PBMC细胞悬液。
①专用仪器测定：吸取一定量的PBMC细胞悬液于EP管中，取等量2%台盼蓝，吹打混匀后吸取1滴进行细胞浓度测定。
②血细胞计数板：取一滴PBMC悬液与一滴2%台盼蓝染液混匀后加于血细胞计数板中，在显微镜下计数4大格内细胞总数。
细胞数/ml=4个大方格细胞总数/4×104×2（稀释倍数）8.细胞培养：细胞计数后调整细胞浓度为2×105/ml培养基，加于6孔板或24孔板中进行培养。
（我们通常是培养过夜后再进行下一步处理）。
9.干扰素处理：加入500IU/ml（培养基的终浓度）的α-IFN（干扰素），同时设对照组，时间为8小时。
（家族性乙肝、丙肝患者中不准备抗病毒治疗者省去干扰素处理的步骤。
10.细胞收集：将6孔板或24孔板中的培养基吸出弃掉，每孔加200ulTrizol，用移液枪将孔壁吹打数次后，将Trizol转入EP管中。
11.细胞冻存：将收集的细胞放入-80℃冰箱中保存。
脾脏分离淋巴细胞
从小鼠脾脏中分离淋巴细胞
方法一:
１用注射器内芯或者研棒研磨过100目筛网，Hank’s液冲洗，收集分离的脾细胞悬液。
２另取无菌试管，先加入淋巴细胞分离液，然后将试管倾斜，略放平，吸取刚刚制备的细胞悬液缓慢的加入试管中，一般分离液和细胞悬液的体积比为１：２，要轻要慢，不要冲破了淋巴细胞分离液和细胞悬液的界面。
室温水平离心2000转/分钟，30分钟。
３离心后取出试管，可以看到不同的分层，一般上面是非细胞成分和细胞碎片，接下来是单个核细胞，再往下是红细胞等。
吸走上层非细胞层弃之，吸出单个核层在另外无菌试管中，因为淋巴细胞分离液对细胞有毒性作用，加入PBS离心洗两遍（1000转/分钟，10分钟）。
４倾倒上清，用RPMI-1640重悬细胞。
方法二：
用注射器内芯或者研棒研磨过100目筛网，Hank’s液冲洗，收集分离的脾细胞悬液，2000r/min离心3min，弃上清。
加红细胞裂解液8mL，混匀脾细胞，静置5-6min，待红细胞完全破碎，2000r/min离心3min，弃上清去除红细胞，Hank’s液洗1-2遍，用RPMI-1640（含10%胎牛血清）重悬细胞。
小鼠免疫器官摘取及淋巴细胞分离
“小鼠免疫器官摘取及淋巴细胞分离”实验过程
1.培养皿加入纱布，在纱布上滴2ml淋巴细胞分离液。
2.脱颈处死小鼠，在75%酒精中浸泡30s(示意消毒小鼠)。
3.无菌条件下将腹部剪开，脱皮。
(2min)
4.选取小鼠腹部左侧，剪开腹膜，深红色细长组织即脾脏（淋巴细胞组织）
5.用镊子从下方夹取脾脏，，剔除结缔组织和脂肪后，将组织置于滴有小鼠淋巴细胞分离液的纱布上。
6.脾脏用弯头镊子在纱布上研磨至无血色组织后，纱布上加入1ml淋巴细胞分离液，再用移液器吸取研磨的液体，移至1.5ml离心管内。
(3min)
7.离心（1500rpm,3min）留上清，移入新的15ml离心管中，去除红细胞，此时可以取胸腺。
(可以做到这里停止，示意淋巴细胞和免疫器官胸腺)
8.在装有上清的离心管中加入3ml 1640培养基，离心1500rpm，3min，取沉淀，弃上清，重复清洗2次。
（6min）
9.在显微镜下将细胞浓度调为5×106
个/ml备用。
1/ 1。
淋巴细胞分离实验报告
淋巴细胞分离实验报告淋巴细胞分离实验报告引言：淋巴细胞是免疫系统中的重要组成部分，具有免疫应答和免疫调节的功能。
淋巴细胞分离实验是研究淋巴细胞功能的重要手段之一。
本实验旨在通过离心法和梯度离心法分离和纯化淋巴细胞，并验证其纯度和活力。
实验材料：- 血液样本- PBS缓冲液- 淋巴细胞分离液- Ficoll梯度离心液- 离心管- 移液管- 显微镜- 细胞计数板- 无菌培养皿- 37℃恒温培养箱实验步骤：1. 血液预处理：将新鲜的血液样本加入无菌离心管中，加入等体积的PBS缓冲液，轻轻混合。
注意避免气泡的产生。
2. 离心分层：将离心管放入离心机中，以2000rpm的速度离心10分钟。
离心后，可观察到血液分为三个层次：上层为血浆，中层为白细胞和淋巴细胞，下层为红细胞。
3. 分离淋巴细胞：将中间层的白细胞和淋巴细胞转移至新的离心管中，加入等体积的PBS缓冲液。
轻轻混合后，以1000rpm的速度离心10分钟。
此步骤的目的是去除红细胞和血浆。
4. 梯度离心：将混合后的细胞悬液加入离心管中，并缓慢滴加Ficoll梯度离心液。
注意避免两种液体混合。
离心管中的液体应该形成明显的两层。
5. 离心分层：将离心管放入离心机中，以1500rpm的速度离心30分钟。
离心后，可观察到淋巴细胞在上层梯度液中形成一个白色的浑浊环。
6. 分离淋巴细胞：使用移液管将上层梯度液中的淋巴细胞转移至新的离心管中。
加入等体积的PBS缓冲液，轻轻混合。
以1000rpm的速度离心10分钟，去除梯度液。
7. 洗涤淋巴细胞：将淋巴细胞沉淀用PBS缓冲液洗涤三次，以去除梯度液和离心液中的残留物。
8. 细胞计数和活力检测：取适量的淋巴细胞悬液，用细胞计数板进行细胞计数，并观察细胞形态。
同时，使用显微镜观察细胞的活力和完整性。
结果与讨论：通过以上实验步骤，我们成功地分离和纯化了淋巴细胞。
在离心分层和梯度离心的过程中，红细胞和血浆被有效地去除，从而得到了较为纯净的淋巴细胞。
小鼠淋巴细胞的分离培养
小鼠淋巴细胞的分离培养
一、血液中淋巴细胞的分离：
1在1.5ML离心管中加入淋巴细胞分离液0.7ML；
2眼部采集小鼠的抗凝血，抗凝剂20%.。
3轻轻将血液加入淋巴细胞分离液的表面，立即以2000—2500转/分离心10MIN。
4小心吸取上层细胞，转移至另一1.5ML离心管中,再用HANK’S 悬浮至1.5ML，再离心，去上清，再悬浮，等待分型用。
二、鼠脾脏中淋巴细胞的分离：
1无菌采集鼠的脾脏，且灭菌注射器的弯针头轻轻扎取，尽可能使单个细胞分离，再分别用4层灭菌纱布过滤2次。
2将滤液小心加入淋巴细胞分离液中。
离心。
3 吸取上层淋巴细胞，HANK‘S液洗涤2次（尽可能去除淋巴
细胞分离液）。
4加入1640培养液进行培养。
、
*淋巴细胞分离液不低于全部液体的50%。
实验二：淋巴细胞分离实验
6
实验步骤
1.实验一获取的小鼠脾脏载玻片研磨 （研磨同时滴加1640培养液，保持细 胞活性）
2. 细胞混合液静置数分钟后吸管吸取， 沿倾斜的管壁缓缓加入淋巴细胞分层 液上方（Ficoll：血细胞=1：1）
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7
实验步骤
3.2000r/min，离心15min
4.沿管壁周缘轻轻吸取淋巴细胞层移 入另一试管中
实验二
小鼠脾脏淋巴细胞的分离
小鼠脾脏淋巴细胞的分离
目的 原理 实验步骤 注意事项
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2
目的
熟悉淋巴细胞和外周血单个核细胞 （PBMC）的分离方法
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3
原理
脾脏各种血细胞的密度不尽相同， 利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作 密度梯度离心，使一定比重的细胞 群按相应密度梯度分布，从而将各 种血细胞加以分离。
释不当，需重新制备细胞悬液、计数
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试验报告要求
原理, 步骤, 结果, 讨论。
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4
原理
外周血
红细胞
1.093
粒细胞
单个核细胞 (PBMC) 血小板
淋巴细胞 单核细胞
1.092 1.075~1.090
1.030~1.035
Ficoll：1.077±0.001
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5
稀
释
外
周
血
1500rpm,
20℃ , 30min
Ficoll
Ficoll
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稀释的血浆、 血小板 PBMC
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8
实验步骤
5.加足量稀释液充分洗涤，1000 r/min 离心5min ，弃上清
淋巴细胞分离的实验方法
肝脏免疫学实验室淋巴细胞分离技术肝脏淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后，剪开颈动脉处死，摘取肝脏。
2．将肝脏放在200目钢丝网上自边缘开始研磨，转至15ml离心管中。
3．650rpm×1min离心，将上层液体转至15ml离心管中。
4．1500prm×5min离心后弃上清，重复洗两次。
5．6ml 40% Percoll 溶液重悬沉淀，将3ml 70% Percoll溶液加于其底层，2000rpm×20min，升6降2。
6．吸取两层Percoll溶液之间的白细胞层至15ml离心管中，加满PBS后2000rpm×5min 离心收集细胞。
7．1ml PBS 重悬细胞后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
脾脏淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后剪开颈动脉处死，摘取脾脏。
2．用载玻片的粗糙面将脾脏一点一点磨碎，将收集的研磨悬液通过200目尼龙网过滤至15ml离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
3．8ml PBS重悬细胞沉淀，在底层加入3ml Ficoll , 2000rpm×20min，升6降2。
4．吸取两层溶液之间的白细胞层至15ml离心管，加满PBS后2000rpm×5min离心收集细胞。
5．6-8 ml PBS 重悬细胞后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
胸腺淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后，剪开颈动脉处死，摘取胸腺。
2．将胸腺放在200目钢丝网上研磨，将收集的研磨悬液通过尼龙网过滤至15ml离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
3．6-8ml PBS 重悬细胞沉淀，再次通过200目尼龙网过滤后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
淋巴结淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后脱臼处死，摘取淋巴结。
2．用载玻片的粗糙面将淋巴结磨碎，将收集的研磨悬液通过200目尼龙网过滤至15ml 离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
淋巴细胞分离
这是鄂征的《组织培养技术及其在医学研究中的应用》中关于分裂淋巴细胞的方法，可供参考。
1.概述：枸橼酸处理的全血，或加葡聚糖加速沉积去除红细胞的血浆，在Percoll-Paque分层液上分出致密层。
离心后，大多数淋巴细胞会积聚在Ficoll/Metrizoate(Ficoll/甲泛葡胺）和血浆之间。
2.方法：（1）枸橼酸或肝素抗凝血携入操作室或HOOD台面（2）用PBSA按1：1稀释，用9ml加入6mlPercoll-Paque分层液中进行分层，注入容量较大的、而且透明不带盖的离心管中，平衡（3）400×g离心15分钟（4）在不干扰交界面情况下，小心去除血浆/PBSA（5）用注射器或吸管吸出交界面液体（吸时最好用钝圆针头或吸管，而不要用尖的头吸（6）用20ml不含血清培养液稀释（7）从交界面来的稀释细胞悬浮，70g离心10分钟（8）去掉上清，重悬沉积物于2ml不含血清培养液中；如果需要去掉血清中因子，可用20ml无血清培养基反复漂洗、离心2～3次后，最后把沉积悬于2ml 不含血清培养基中（9）取少许细胞样品，台盼蓝染色，细胞计数器检测含有核的细胞数（10）接种入无血清或加血清培养基中培养注解：在第（3）步骤沉降中，淋巴细胞集中在杂有一些血小板和单核细胞的交界面上，可能也有一些粒性白细胞。
如欲获纯淋巴细胞，由于单核和粒性白血病喜欢贴壁，可采用贴壁法进行排除，如向悬液中置入无菌载物玻璃片，过一定时间，这些细胞便可附着其上，抽出玻璃片弃掉；或把悬液注入培养瓶或皿中，在镜下观察，过一定时间（10～30分钟），这些细胞如先贴附，而淋巴细胞尚处在悬浮状态下，把悬液倒入另瓶中即可。
当然也可应用更加复杂的方法如流式细胞仪等分离亦可所有的细胞培养都应该坚守无菌操作原则2.分层后的确有3层，准确说来是4层，最下面是红细胞，上面的一层不应该是稍微混浊的白色，应该也比较透明，这一层上面就是我们需要的薄细胞层，最上面是血清3.细节：a.淋巴细胞分离液要避光保存b.就您的试验看来，淋巴细胞分离液的问题可能是最主要的c.首先再离心管中加入淋巴细胞分离液，然后把标本缓慢加在淋巴细胞分离液表面上，一定要缓慢小心操作，切不可混匀d.所有操作都应在无菌环境进行e.把离心管放入离心机是也应小心，不要太大幅度的摇幌离心管，当然离心后拿出来也要小心就这么多了吧，这个操作是不是很难的，比较基本祝您好运了！补充两点:1.淋巴细胞分离液在使用前需从4度冷藏取出室温平衡30min.没有此步操作易导致分离失败.2.全血的抗凝一定要充分,不然就会很难出现漂亮的白膜层.即你的(紧接着是一层稍微混浊的白色大概有2CM)3.离心转数一般为2000转,25min.尝试改进下,应该很容易分离的.。
淋巴细胞分离记数及活性实验方案
▪ 密度梯度离心法 ▪ 流式细胞仪检测技术（FCM）
密度梯度离心法
原理：
根据各类血细胞的比重不同，采用分层液提取淋巴细 胞，PBMC与血液中的其他成分存在密度差异，利用密度在 1.077±0.001g/L之间而且近于等渗的淋巴细胞分层液做 密度梯度离心时，各种血液成分按密度梯度重新分布聚集， 血浆和血小板由于密度较低，故悬浮于分层液的上部，红 细胞和粒细胞由于密度较大,故沉于分层液的底部,PBMC密 度稍低于分层液，故位于分层液层面上，这样就可以获得 PBMC。本实验用比重为1.077聚蔗糖-泛影葡胺淋巴细胞分 离液分离出淋巴细胞。
▪ 经过密度梯度离心实验，仍需进一步分离淋巴 细胞和单核细胞，最终要舍弃单核细胞。
▪ 淋巴细胞有多个亚群，不同亚群的细胞有各自 的特征性表面标记，可利用这一点将不同亚群 细胞进行分离与提纯。
问题
密度梯度离心只是初步提纯，如何将单个核 的细胞进一步提纯，只获得淋巴细胞？
流式细胞仪检测技术
原理： 在一组混合的细胞群中，加入特异的针对特定靶细胞
实验步骤
5.此时可见液体分为4层，最下层是红细胞和粒细胞， 分离液在它的上层，最上层是血浆层，淋巴细胞在血浆 层和分离液之间。用滴管直接插入淋巴细胞层吸取淋巴 细胞。 6.将淋巴细胞放入Hanks细胞液5毫升试管中，充分混匀 1000转/min离心10min，弃去上清液及获得纯淋巴细胞。 7.取2滴细胞悬液，加入一滴2%台盼蓝静置5分钟，活性 95%左右。 8.淋巴细胞记数:PBMC数=（4大方格细胞数／4） ×10^4×稀释倍数 （1个大方格体积=长×宽×高 =1nm×1nm×0.1mm×0.1mm=10^(-4)ml）
免疫学实验 淋巴细胞分离
6、弃上清，用1ml D-Hanks定容细胞，混匀。
7、用瑞氏染液染色，观察所分离细胞的形态和结 构，并画图。
瑞氏染色
• 吸取淋巴细胞涂片，待涂片干燥后，滴 加瑞氏染料3-5d，铺满玻片，0.51min后滴加等量的瑞氏染料缓冲液，用 洗耳球吹匀，使染料混合均匀，510min后用流水冲洗，待干后镜检。
3、每组取已加入2ml淋巴细胞分离液的试管1支， 将离心管倾斜45角，在距分层液界面上 1cm处将稀释血液沿试管壁缓慢加至分层液 上面，每管4ml，注意保持两者界面清晰， 勿使血液混入分层液内。
4、2500转/分离心20min，离心后，管内可分为 四层：上层为血浆、血液稀释液及绝大部分血 小板；下层为红细胞及粒细胞；中层为细胞分 层液；分层液与血浆交界部位混浊的灰白色层 即为淋巴细胞层。
4、离心时的温度对分离效果亦有影响，温度过 低，离心时间需适当延长，淋巴细胞丢失增多； 温度过高，增加红细胞凝聚，且影响淋巴细胞 活性。离心时最适温度为18-25℃。
思考题
密度梯度离心法分离外周血淋巴细胞的的 原理和方法？
实验材料与试剂
①肝素（100U/毫升）、D-Hanks液、 淋巴细胞分离液（ficoll）、瑞氏染液
②离心机、显微镜、试管，吸管等。
实验方法与步骤
1、采集兔静脉血，注入盛有肝素（20U/ml） 的搪瓷缸中，立即轻轻摇匀，使血液抗凝。
2、每组用吸管吸取2ml抗凝血，加入等体积即 2ml的室温D-Hanks液，使血液等倍稀释。
实验五 淋巴细胞分离、 E花环
实验目的
淋巴细胞分离的常用方法及原理
贵州中公教育1淋巴细胞分离的常用方法及原理检验学中的淋巴细胞分离的常用方法及原理是事业单位考试中重要的考点之一，是需要我们着重掌握的内容。
今天让我们一起来学习相关的知识点吧。
纯淋巴细胞群的采集是利用单核细胞在37℃和Ca2+存在时，能主动粘附在玻璃、塑料、尼龙毛、棉花纤维或葡聚糖凝胶的特性，从单个核细胞悬液中除去单核细胞，从而获得纯淋巴细胞群。
主要的方法有：①粘附贴壁法;②吸附柱过滤法;③磁铁吸引法。
一、粘附贴壁法将已制备的单个核细胞悬液倾于玻璃或塑料平皿或扁平小瓶中，移至37℃温箱静置1h 左右，单核细胞和粒细胞均贴于平皿壁上，而未贴壁的非黏附细胞几乎为纯淋巴细胞，继用橡皮刮下贴壁的细胞即为纯单核细胞群。
因B 细胞也有贴壁现象，用本法分离的淋巴细胞群中B 细胞有所损失。
二、吸附柱过滤法将单个核细胞悬液注入装有玻璃纤维或葡聚糖凝胶SephadexG10的柱层中，凡有黏附能力的细胞绝大部分被吸附而黏滞在柱层中，从柱上洗脱下来的细胞主要是淋巴细胞。
此法简单易行，对细胞极少损害。
三、磁铁吸引法1.利用单核细胞具有吞噬的特性，在单个核细胞悬液中加直径为3µm 的羰基铁颗粒，置37℃温箱内短时旋转摇动，待单核细胞充分吞噬羰基铁颗粒后，用磁铁将细胞吸至管底，上层液中含较纯的淋巴细胞。
2.淋巴细胞亚群的分离原则：根据相应细胞的特性和不同的标志加以选择性纯化。
根据细胞的特性和标志选择纯化所需细胞的方法是阳性选择法，而选择性去除不要的细胞，仅留下所需的细胞为阴性选择。
常用的方法包括：①E 花环沉降法;②尼龙毛柱分离法;③亲和板结合分离法;④磁性微球分离法及荧光激活细胞分离仪分离法。
关于淋巴细胞分离的常用方法及原理大家都理解了吗?接下来我们来看一道习题，巩固一下!【例题】下列哪一种不是淋巴细胞分离方法A.粘附贴壁法B.吸附柱过滤法C.磁铁吸引法D.凝胶电泳法【答案】D 。
淋巴细胞分离实验报告
淋巴细胞分离实验报告淋巴细胞分离实验是一种常用于免疫学研究的技术。
该技术通过分离人或动物的淋巴组织，提取淋巴细胞，可以进行多种免疫学实验，如细胞增殖、细胞毒性等。
淋巴细胞分离技术最早是由Ficoll-Paque首创的。
本次实验中，我们基于Ficoll-Paque梯度离心分离技术，通过在人血液样本中离心沉淀淋巴细胞，进而提取出淋巴细胞。
实验步骤如下：首先，我们从志愿者的血液中提取出血浆和白细胞。
接着，我们添加PBS缓冲液，缓慢倒入Ficoll液，最后加入血浆和白细胞混匀后，将试管进行离心。
在离心的过程中，血液中的重质量分别在上下两个相邻稠度梯度之间分离开，从而使淋巴细胞与Ficoll液相互分离，最终沉淀到离心管梯度底部。
接下来，我们将离心管倾斜45度，使用洁净的滴管吸取淋巴细胞。
我们将沉淀的细胞用PBS缓冲液多次洗涤，去除残留的红细胞和粒细胞等杂质，从而得到较为纯净的淋巴细胞。
分离出的淋巴细胞可以用于多种免疫学实验，包括细胞东西分析、细胞毒性测定、细胞增殖、T细胞识别和细胞培养等。
由此可见，淋巴细胞分离技术是一种非常有用和重要的免疫学技术。
本次实验中，我们还可以从中总结一些技术经验。
例如，血浆和白细胞必须充分混合，并且Ficoll液需要缓慢倒入，以免对细胞造成伤害。
此外，在离心的过程中，需要保持离心时间、离心速度的一致性，同时在取样时要保持管子的倾斜角度不变，以确保淋巴细胞沉淀到尽量下面的梯度面上。
综上所述，淋巴细胞分离实验是一项十分重要的免疫学实验，能够提供纯净的淋巴细胞供科研家们进行相关实验。
同时，淋巴细胞分离技术在使用过程中要注意多方面的因素，保证实验结果的准确性和稳定性。
淋巴细胞分离计数实验报告
淋巴细胞分离计数实验报告一、实验目的本实验旨在通过淋巴细胞分离计数实验，了解淋巴细胞的分离过程和计数方法，并掌握相关技能。
二、实验原理1. 淋巴细胞的分离：通过梯度离心法将淋巴细胞与其他血液成分进行分离。
2. 细胞计数：使用显微镜和特殊计数板对淋巴细胞进行计数。
三、实验材料和设备1. 血液样品2. Ficoll-Paque液（用于梯度离心）3. 生理盐水4. 无菌注射器、针头5. 显微镜、计数板四、实验步骤1. 取适量血液样品加入无菌注射器中。
2. 将Ficoll-Paque液加入另一无菌注射器中。
3. 在针头上滴上生理盐水，避免空气进入。
4. 缓慢注入Ficoll-Paque液至血液样品上方。
注意不要将两种液体混合。
5. 离心20分钟，速度为400g。
此时，白色细胞会沉积到Ficoll-Paque层，红细胞会沉积到底部。
6. 用无菌注射器吸取上层白色细胞，转移到新的离心管中。
7. 加入适量生理盐水，混合均匀。
8. 离心10分钟，速度为200g。
此时，淋巴细胞会沉积到底部。
9. 弃去上层液体，用生理盐水洗涤淋巴细胞。
10. 在计数板上吸取适量淋巴细胞进行计数。
五、实验结果分析1. 淋巴细胞的分离效果：根据显微镜下观察到的细胞形态和数量来判断分离效果是否良好。
2. 细胞计数：根据计数板上的规则进行计数，并结合显微镜下观察到的图像来确定结果。
六、实验注意事项1. 操作过程要严格无菌，避免污染样品。
2. 离心过程中要注意速度和时间，以避免对样品产生影响。
3. 计数板要保持干燥和清洁。
七、实验结论通过本次淋巴细胞分离计数实验，我们成功地将淋巴细胞与其他血液成分进行了分离，并通过计数板对淋巴细胞进行了计数。
这些实验结果为我们进一步了解淋巴细胞的生物学特性和相关疾病提供了基础数据。
实验一外周血淋巴细胞的分离
Enzyme-linked immunoabsobant assays
融合剂
• PEG： • 亲水性，使细胞表面极性降低，导致脂质
双分子层不稳定，引起细胞融合。 • 分子量：1500-2000
HAT选择性培养
HAT: 次黄嘌呤（hypoxanthine，H） 氨基碟呤（aminopterin，A） 胸腺嘧啶（thymidine, T）
细胞的DNA生物合成有两条途径：
• 1、熟悉酶联免疫检测手段的原理。 • 2、掌握双抗夹心ELISA的试验操作。
实验四
B淋巴细胞杂交
杂交瘤的目的 --- 制备单克隆抗体
杂交瘤技术的基本原理
具有分泌抗体功能的B细胞难以在体外长期存活。 利用细胞融合技术，将免疫后的B细胞与在体外能 长期存活的骨髓瘤细胞进行融合，经过选择培养 获取杂交细胞，这种细胞称为杂交瘤细胞. （Hybridoma）
• 脾细胞和骨髓瘤细胞的异核融合体：即杂交瘤细胞，既从 脾细胞获得了HGPRT和TK，从而利用培养液中的H和T合 成DNA，又从骨髓瘤细胞获得了无限增殖的能力，因此能 在HAT选择培养液中生存下来。
实验步骤：免疫脾细胞的制备
处死小鼠，固定于解剖架上打开腹腔，取出脾脏。置 于120目的钢丝网中，将网移入盛有20ml生理盐水的 平皿中，用注射针芯轻轻压磨，使其成为单个细胞悬 液，吸取1ml细胞悬液（约5×106细胞）, 与骨髓瘤 细胞SP2/0（5×105细胞）混合，离心后弃上清 •骨髓瘤细胞:脾细胞为1:10 •一个脾脏可获约108个细胞
小鼠外周血淋巴细胞的分离实验失败的原因
小鼠外周血淋巴细胞的分离实验失败的原因做实验的时候，大家肯定都希望每一步都能顺利进行，对吧？尤其是像分离小鼠外周血淋巴细胞这种操作，看起来简单，做起来其实很有挑战。
结果总是有些意想不到的情况发生，就像你明明准备好了一切，却偏偏出了岔子。
为什么小鼠外周血淋巴细胞分离实验总是失败呢？不瞒你说，这问题可大可小，但从我经验来看，原因真的是五花八门，搞得人头大。
实验环境不合适的情况不在少数。
你想啊，实验室的温度、湿度、空气质量，连一个小小的偏差都可能让你的实验结果大打折扣。
要是空调太冷，或者温度控制不当，细胞可能根本不愿意“合作”，直接死掉，白忙一场。
尤其是分离血液这类的活儿，细胞对于环境的敏感度是出奇的高，稍微一个不小心就可能弄巧成拙。
你看，跟做饭似的，锅温不对，炒出来的菜味道都不对，细胞也是一样，环境稍微不对，分离出来的就不靠谱。
再说了，血液样本的处理也是一大关键。
你得知道，分离外周血淋巴细胞的过程中，血液如果处理得不够及时，稍微放置太久，细胞的活性就会受影响，分离出来的细胞也就成了“死尸”。
这就像你拿个熟透的西红柿去做沙拉，根本不可能做到新鲜的口感。
血液的处理过程中，一定要小心避免破坏细胞，尤其是如果离心速度没控制好，可能会让细胞膜受损，根本分不出来好的淋巴细胞。
你想想，一颗好苹果都怕碰坏了，何况是那些娇弱的细胞？不过，这还只是冰山一角。
接下来最麻烦的事就是使用的试剂了。
试剂的质量不达标或者过期了，整个实验就像打了一场空战。
想象一下，你的“武器”都不锋利，怎么能打赢实验这场硬仗？比如Ficoll层析液，这东西在分离淋巴细胞时可是关键角色，它不纯净，或者配比出错，分离效果直接掉链子。
就像你做饭少了盐，味道差的可不止一点点！你明明觉得自己配好了，结果实验室的小伙伴拿到结果一看——诶，哪里不对劲。
再说技术操作吧。
这个环节看起来也不复杂，但做起来简直是“千军万马过独木桥”，要求你手稳眼快。
分离细胞的过程中，有些操作，比如加入离心液体、吸取液体等等，都需要非常精准的时间控制和速度控制。
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细胞计数
试剂和仪器 实验步骤 注意事项
试剂和仪器
血球计数板，盖玻片，Hanks液， RPMI1640，2ml（5ml）吸管，华氏 管，移液尖，微量移液器，显微镜
实验步骤
1、准备计数板： 2 、制备细胞悬液：收集细胞，制成单个细胞 悬液 3 、加样：用吸管轻轻吹打细胞悬液，取少许 细胞悬液，在计数板上盖玻片的一侧加微量细 胞悬液， 4 、计数：在显微镜下，用 10×物镜观察计数 板四角大方格中的细胞数
实验要求
华氏管中加入血样后，用记号笔作好 标记 实验完毕后，请清洗试管、吸管和计 数板
试验报告要求
试验内容 (原理、步骤), 结果 试验注意事项
实验步骤
5、计算：将结果代入下式，得出细胞密度 细胞数/毫升原液 =（4大格细胞数之和/4）×104
注意事项
1.取样计数前，应充分混匀细胞悬液 2.加样量不要溢出盖玻片，也不要过少或带 气泡 3.细胞压中线时，数上不数下，数左不数右 4.本法要求细胞密度不低于104细胞/ml 5.镜下计数时，细胞数过少或过多，说明稀 释不当，需重新制备细胞悬液、计数
淋巴细胞分层液（ Ficoll ，低温避光保 存），Hanks液，RPMI1640，PBS，小 牛 血 清 ， 华 氏 管 ， 50ml 离 心 管 ， 2ml （5ml）吸管，水平离心机
注意事项
1.每毫升外周血液大约可获1×106单个核细胞 2.Ficoll应适量，外周血应充分稀释 2.温度直接影响到Ficoll的比重和分离效果 3.在Ficoll上加入稀释外周血时，应缓慢加， 以免冲散界面 4. 吸取单个核细胞层时，应避免吸出过多的上 清液或分层液而导致血小板污染
淋巴细胞 单核细胞
外周血
粒细胞
单个核细胞 (PBMC) 血小板
1.075~1.090 1.030~1.035
Ficoll：1.077±0.001
稀 释 外 周 血
稀释的血浆、 血小板
1500rpm, 20℃ , 30min
PBMC
Ficoll
Ficoll
红细胞 粒细胞
实验步骤
1.采血，稀释 （外周血：稀释液=1：2） 2.在离心管中加入Ficoll，沿倾斜的 管壁缓缓加入稀释的外周血 （Ficoll：稀释血=1：2）
实验步骤
3.20℃，1500r/min，离心30min
4.沿管壁周缘轻轻吸取PBMC层移入 另一试管中
实验步骤
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
5.加足量稀释液充分洗涤，1800 r/min 离心10min ，弃上清 6.重复洗涤一次，1400r/min离心10min， 弃上清 7.适量的培养基重悬细胞 ，计数
试剂和仪器
免疫学实验一
外周血单个核细胞的分离
外周血单个核细胞的分离 原理 试剂和仪器 实验步骤 注意事项
原理
外周血各种血细胞的密度不尽相同， 利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作 密度梯度离心，使一定比重的细胞 群按相应密度梯度分布，从而将各 种血细胞加以分离。
原理
红细胞
1.093 1.092