透射电镜样品制备方法

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透射电镜制样流程

透射电镜制样流程

透射电镜制样流程透射电镜(Transmission Electron Microscopy,TEM)制样是指通过一系列的化学和物理方法来制取透射电镜所需的样品。

透射电镜是一种高分辨率的显微镜,可以在纳米尺度下观察材料的原子结构和微观形态。

为了获取高质量的TEM图像,制样过程非常关键。

下面将详细介绍透射电镜制样的流程。

1.样品制备:样品可以是纳米颗粒、薄膜、纤维或生物样品等。

首先,准备适宜的基底材料,如碳膜覆盖的铜网格或碳膜覆盖的铜刀片。

样品通常需要制成非常薄的切片,通常在50到100纳米的厚度范围内。

制备方法包括机械切割、电解石蠟切片、离子切割或电离蚀刻等。

2.固定和固化:对于生物样品,需要先进行固定处理,以保持样品的形态和结构。

常用的固定剂包括戊二醛、酸性醛或重金属盐。

然后,固定的样品需要进一步处理以固化,如用过氧化物、树脂或聚合物进行浸渍,以增加样品的稳定性。

3.切割和悬浮:将固化的样品切割成适当的尺寸和形状。

使用超微切割机、离子切割仪或其他切割工具进行切割。

切割后,样品通常会悬浮在水或有机溶液中,以便进一步处理。

4.脱水和对比染色:脱水是将样品从水中逐渐转移到有机溶剂中的过程。

这种处理可以控制样品的体积,以减少对比染色和观察中的伪影。

脱水通常通过渗透固定液逐渐转移,然后通过有机溶剂(如醋酸乙酯、丙酮或丙二醇)进行交换。

5.嵌入:将样品嵌入到透明的聚合物或树脂中。

嵌入过程中,通常采用逐渐增加浓度的树脂混合物,以确保样品得到完全浸透。

然后,将样品与树脂进行硬化,通常在高温下进行。

6.超薄切片:将固化的样品切割成非常薄的切片。

使用超薄切片机和钻磨刀片进行切割。

切割后的切片应尽快收集并转移到透明的铜网格或铜刀片上。

7.超薄切片处理:超薄切片通常需要进行后继处理以增强对比度和解决其他问题。

这可能包括染色、胶层增强或薄膜剥离等方法。

8.观察:将制备好的样品放入透射电镜中进行观察。

在观察前,样品需要在真空中或过氮气中去除气泡和其他杂质。

透射电镜样品制备步骤

透射电镜样品制备步骤

透射电镜样品制备步骤透射电镜是一种重要的材料表征技术,它利用电子的波动性和微粒性来观察材料的结构和性质。

为了能够使用透射电镜观察样品,首先需要对样品进行制备。

透射电镜样品制备步骤如下:1.选择合适的样品:透射电镜样品可以是固体、液体、薄膜或纳米颗粒等。

根据研究目的和样品性质选择合适的样品。

2.样品预处理:根据样品性质的不同,进行必要的预处理。

例如,对于固体样品,可以选择切割、抛光或电解抛光等方法来得到平滑的表面。

3.样品固定:将样品固定到透射电镜样品架上。

不同的样品有不同的固定方法。

例如,对于固体样品,可以使用导电胶将其固定在样品架上。

4.薄层制备:对于厚度过大的样品,需要将其制备成透明的薄层以便透射电镜观察。

常用的方法有机械研磨、电子束刻蚀或离子束刻蚀等。

5.样品清洁:将样品放入超声波清洗机中进行清洗,以去除可能附着在样品表面的杂质或污染物。

6.特殊处理:如果需要对样品进行特殊处理,例如加热、冷冻处理或受到特定环境气氛的影响等,根据需要进行相应的处理。

7.样品干燥:将样品放入真空或氮气环境中,以确保样品干燥。

避免样品受到水汽的污染。

8.获得薄片:使用切片机将固态样品切割成适当厚度的薄片。

为了获得高质量的薄片,可以选择特殊的切片工具和技术,例如离子束切片或低速钻磨切片。

9.薄片形状整理:使用不同的研磨和抛光方法,将薄片的形状和表面进行调整,以确保样品的平滑度和一致性。

10.网格制备:将薄片粘贴在透射电镜网格上。

网格可以增强样品的稳定性和保护,同时提供用于定位和标识的标记。

11.后续处理:根据研究目的和透射电镜分析的要求,可以对样品进行进一步处理。

例如,可以进行染色、脱膜、溅射或腐蚀等处理。

以上是透射电镜样品制备的一般步骤。

不同样品和研究目的可能会有所不同。

因此,根据具体的研究需求和样品特点,制备过程可以做相应的调整和优化。

透射电镜的样品制备方法详解

透射电镜的样品制备方法详解

透射电镜的样品制备透射电镜的样品制备是一项较复杂的技术,它对能否得到好的TEM像或衍射谱是至关重要的.投射电镜是利用样品对如射电子的散射能力的差异而形成衬度的,这要求制备出对电子束"透明"的样品,并要求保持高的分辨率和不失真.电子束穿透固体样品的能力主要取决加速电压,样品的厚度以及物质的原子序数.一般来说,加速电压愈高,原子序数愈低,电子束可穿透的样品厚度就愈大.对于100~200KV的透射电镜,要求样品的厚度为50~100nm,做透射电镜高分辨率,样品厚度要求约15nm(越薄越好).透射电镜样品可分为:粉末样品,薄膜样品,金属试样的表面复型.不同的样品有不同的制备手段,下面分别介绍各种样品的制备.(1)粉末样品因为透射电镜样品的厚度一般要求在100nm以下,如果样品厚于100nm,则先要用研钵把样品的尺寸磨到100nm以下,然后将粉末样品溶解在无水乙醇中,用超声分散的方法将样品尽量分散,然后用支持网捞起即可.(2)薄膜样品绝大多数的TEM样品是薄膜样品,薄膜样品可做静态观察,如金相组织;析出相形态;分布,结构及与基体取向关系,错位类型,分布,密度等;也可以做动态原位观察,如相变,形变,位错运动及其相互作用.制备薄膜样品分四个步骤:a将样品切成薄片(厚度100~200微米),对韧性材料(如金属),用线锯将样品割成小于200微米的薄片;对脆性材料(如Si,GaAs,NaCl,MgO)可以刀将其解理或用金刚石圆盘锯将其切割,或用超薄切片法直接切割.b切割成φ3mm的圆片用超声钻或puncher将φ3mm薄圆片从材料薄片上切下来.c预减薄使用凹坑减薄仪可将薄圆片磨至10μm厚.用研磨机磨(或使用砂纸),可磨至几十μm.d终减薄对于导电的样品如金属,采用电解抛光减薄,这方法速度快,没有机械损伤,但可能改变样品表面的电子状态,使用的化学试剂可能对身体有害.对非导电的样品如陶瓷,采用离子减薄,用离子轰击样品表面,使样品材料溅射出来,以达到减薄的目的.离子减薄要调整电压,角度,选用适合的参数,选得好,减薄速度快.离子减薄会产生热,使样品温度升至100~300度,故最好用液氮冷却样品.样品冷却对不耐高温的材料是非常重要的,否则材料会发生相变,样品冷却还可以减少污染和表面损伤.离子减薄是一种普适的减薄方法,可用于陶瓷,复合物,半导体,合金,界面样品,甚至纤维和粉末样品也可以离子减薄(把他们用树脂拌合后,装入φ3mm金属管,切片后,再离子减薄).也可以聚集离子术(FIB)对指定区域做离子减薄,但FIB很贵.对于软的生物和高分子样品,可用超薄切片方法将样品切成小于100nm的薄膜.这种技术的特点是样品不会改变,缺点是会引进形变.(3)金属试样的表面复型即把准备观察的试样的表面形貌(表面显微组织浮凸)用适宜的非晶薄膜复制下来,然后对这个复制膜(叫做复型)进行透射电镜观察与分析.复型适用于金相组织,断口形貌,形变条纹,磨损表面,第二相形态及分布,萃取和结构分析等.制备复型的材料本身必须是"无结构"的,即要求复型材料在高倍成像时也不显示其本身的任何结构细节,这样就不致干扰被复制表面的形貌观察和分析.常用的复型材料有塑料,真空蒸发沉积炭膜(均为非晶态物质).常用的复型有:a塑料一级复型,分辨率为10~20nm;b炭一级复型,分辨率2nm,c塑料-炭二级复型,分辨率10~20nm;d萃取复型,可以把要分析的粒子从基体中提取出来,这种分析时不会受到基体的干扰.除萃取复型外,其余复型只不过是试样表面的一个复制品,只能提供有关表面形貌的信息,而不能提供内部组成相,晶体结构,微区化学成分等本质信息,因而用复型做电子显微分析有很大的局限性,目前,除萃取复型外,其他复型用的很少.。

透射电镜样品的制备

透射电镜样品的制备

第二节透射电镜样品的制备一、表面复型和萃取复型技术(一)复型样品成像原理复型样品是一种间接试样,是用中间媒介物(碳、塑料薄膜)把样品表面浮雕复制下来,通过对浮雕的观察间接地得到样品表面组织形貌。

一定能量的入射电子照射到样品上要受到样品内原子核与核外电子的作用,产生弹性散射与非弹性散射。

非晶体复型样品成像主要取决于入射电子与试样中原子相互作用所产生的电子散射。

电子束穿过样品时在样品厚的区域或原子序数大的区域受散射程度大,反之则小。

这就是所谓的质厚衬度效应。

如果在样品下方加一光阑,那么散射角大于光阑孔径角的电子被光阑挡住或吸收,而不能穿过光阑孔参与成像。

散射角小于或等于光阑孔径角的电子就能穿过光阑孔参与成像,因此在荧光屏上就形成了明暗不同的衬度,产生了样品的图像。

图5—10为复型样品成像示意图。

(二)复型样品制备技术1.对金相试样的要求电镜的高分辨本领使它能够显示出金属组织的微细特征。

为使组织微细特征不在制备试样时失真,对图5—10 复型样品成像示意图金相试样的制备要求严格。

否则会造成假像影响对观察结果的分析。

试样要细心磨制,仔细抛光,力求避免产生微小的磨痕及变形层。

浸蚀剂与做金相试样时所用的浸蚀剂相同,浸蚀应浅些,这样可保留组织细节。

如果浸蚀过重就可能引起相界、晶界的过浸蚀,导致失真、脱落,甚至会出现腐蚀坑等假象。

2.AC纸的制作AC纸就是醋酸纤维素薄膜,是用6%醋酸纤维素丙酮溶液制作的塑料薄膜。

为了使AC 纸质地柔软、渗透性强并具有蓝色,在所配制的溶液中再加入2%磷酸三苯脂和几粒甲基酯。

待醋酸纤维素在丙酮中溶解后将其倒在干净、平滑的玻璃板上,倾斜转动玻璃板,使溶液均匀展开。

然后用玻璃钟罩扣上,让钟罩下边与下板间留有一定间隙以便于丙酮挥发。

大约经过24小时后AC纸干透,用小刀片轻划AC纸边缘,小心揭下即可。

3.塑料—碳二级复型塑料—碳二级复型由于其制备过程不损坏金相试样表面,重复性好,供观察的第二级复型—碳膜导电、导热性好,在电子束照射下较为稳定,因而得到广泛的应用。

透射电镜样品制备方法

透射电镜样品制备方法

透射电镜样品制备方法透射电镜(Transmission Electron Microscopy,简称TEM)是一种高分辨率的显微镜,能够观察到原子尺度的物质结构。

在进行透射电镜观察前,样品的制备是至关重要的一步。

本文将介绍透射电镜样品制备的方法,希望能够帮助大家更好地进行样品制备工作。

首先,样品的制备要求样品具有一定的薄度。

因此,在进行透射电镜观察前,通常需要将样品切割成极薄的切片。

对于生物样品,可以采用超薄切片机进行切割;对于金属、陶瓷等样品,可以采用离子蚀刻或机械打磨的方法制备薄片。

在进行切割或打磨时,需要保持样品表面的平整和光洁,以确保透射电镜观察时获得清晰的图像。

其次,样品的制备还需要考虑到样品的固定和染色。

对于生物样品,固定和染色是非常重要的步骤。

固定可以保持样品的形态和结构不变,而染色则可以使样品在透射电镜下更易于观察。

常用的固定剂包括乙醛、戊二醛等,而染色剂则根据需要选择不同的染色方法。

另外,样品的制备还需要考虑到样品的支撑。

在进行透射电镜观察时,样品通常需要支撑在一种载体上,以便于放置在透射电镜的样品台上。

常用的载体包括碳膜、网格和硅片等。

在选择载体时,需要考虑到载体的透明性、机械强度和热稳定性等因素。

最后,样品的制备还需要考虑到真空条件。

透射电镜通常在高真空环境下进行观察,因此样品制备时需要保证样品的干燥和密封。

特别是对于生物样品,需要进行脱水和干燥处理,以避免在真空环境下产生气泡或水蒸汽,影响透射电镜观察效果。

总之,透射电镜样品制备是透射电镜观察工作中至关重要的一步。

在进行样品制备时,需要考虑到样品的薄度、固定和染色、支撑和真空条件等因素,以确保最终获得清晰、准确的透射电镜图像。

希望本文介绍的方法能够对大家进行透射电镜样品制备工作有所帮助。

透射电镜样品制备方法

透射电镜样品制备方法

¾透射电子显微镜成像时,电子束是透过样品成像。

¾由于电子束的穿透能力比较低,用于透射电子显微镜分析的样品必须很薄。

¾根据样品的原子序数大小不同,一般在50~500nm之间。

透射电镜样品的要求:¾1. 样品必须对电子束透明。

¾2. 所制得样品必须具有代表性,以真实反映所分析材料的特征。

主要方法:粉末样品、复型、离子减薄、电解双喷。

¾透射电镜观察用的样品很薄,需放在专用的样品铜网上。

¾透射电子显微镜使用的铜网一般直径为3毫米,上面铳有许多微米大小的孔,在铜网上覆盖了一层很薄的火棉胶膜并在上面蒸镀了碳层以增加其膜的强度,被分析样品就承载在这种支撑膜上。

样品铜网的作用:¾承载样品,并使之在物镜极靴孔内平移、倾斜、旋转,寻找观察区。

¾样品通常放在外径3mm ,200目方孔或圆孔的铜网上,铜网牢固夹持在样品座中保持好的热、点接触,减少因电子照射引起的热或电荷积累而产生样品漂移或损伤。

样品台透射电子显微镜样品制备电镜观察时样品受到的影响:(1)真空的影响。

含有挥发溶剂或易升华的试样必须冷冻后观察。

(2)电子损伤的影响。

试样在电镜中受到l0-3~1A/cm2的电子束照射,电子束的能量部分转化为热,使试样内部结构或外形发生变化或污染。

观察有机物或聚合物试样时,为防止电子束对试样的损伤和污染,应提高电压。

(3)电子束透射能力的影响。

由于电子束透射能力较弱,一般100kv加速电压时,试样厚度必须在20~200nm之间。

粉末样品制备¾随着材料科学的发展,超细粉体及纳米材料发展很快,而粉末的颗粒尺寸大小、尺寸分布及形态对最终制成材料的性能有显著影响,因此,如何用透射电镜来观察超细粉末的尺寸和形态便成了电子显微分析的一的一项重要内容。

¾其关键工作是是粉末样品的制备,样品制备的关键是如何将超细粉的颗粒分散开来,使其均匀分散到支持膜上,各自独立而不团聚。

透射电镜样品制备方法及优缺点

透射电镜样品制备方法及优缺点

透射电镜样品制备方法及优缺点
透射电镜样品制备主要分为两步,即液体/固体样品处理和超薄切片制备。

1、液体/固体样品处理
第一种方法是基于普通电镜样品制备的双步处理法,即第一步用电子束处理样品表面,使其导电,再经过透射电子束进行处理。

在这种方法下,样品表面层只有几百到几千纳米厚,因此,只有比较薄的样品才能够得到满意的结果。

另一种方法是采用高真空下的固态电子涂覆,即将样品表面涂覆上薄层特殊金属。


如可以用铱、金、铂或其它金属的熔合物作为涂层,以获得特殊的涂层电导能力,从而保
证样品的电子图像分辨率和可视深度。

2、超薄切片制备
超薄切片制备分为超声切片和非超声切片两类。

超声切片通常是采用高能量超声波振
荡使容易被劈开的液体/固体样品形成自发非规则薄片,有时还可以加入一定量的碎薄片,从而使超声对样品的透射变的更容易,提高了结果的准确性。

非超声切片制备则采用比较稳定的技术来实现,如钻石刀片切割、钝型刀制备和原子
力显微镜焦点束来制备,具有薄层切片准确厚度的特点,且可以满足多层次数据获取。

优点:
1、透射电镜样品制备要求低,可以在常规实验室条件下完成,便于实验和分析;
2、采用精确远离样品表面的电子束,使放大比例高,且能够获得更高的分辨率和更
深的可视深度;
3、三维结构复杂的物质可以藉由采用不同的金属包覆来进行分析;
1、制备过程繁琐复杂,容易出现样品分析结果不精确的情况;
2、物质表面多层次结构信息分析难度大,可能会影响分析结果准确性;
3、结构深度较大时,获取信息较困难,分析效果受到影响。

简述透射电镜中样品制备的常用方法

简述透射电镜中样品制备的常用方法

简述透射电镜中样品制备的常用方法一、引言透射电镜是一种非常重要的材料表征工具,可以用来观察材料的微观结构和成分。

在进行透射电镜实验时,样品制备是非常关键的一步。

本文将介绍透射电镜中样品制备的常用方法。

二、样品制备前的准备工作在进行透射电镜实验之前,需要进行一些准备工作。

首先,需要选择合适的样品,通常需要具有高度纯度、均匀性和结晶度。

其次,需要选择合适的切片方法和切片仪器。

最后,在进行样品制备之前,需要对仪器进行检查和校准。

三、传统切片法传统切片法是最常见的一种样品制备方法。

该方法主要包括以下步骤:1.将样品固定在金属网格上。

2.使用超声波清洗器将金属网格浸泡在去离子水中清洗干净。

3.使用细针将金属网格放置在相应位置。

4.使用玻璃棒将金属网格压入薄膜中,并使其平整。

5.使用细针或玻璃棒将薄膜剪成小块。

6.使用切片机将薄膜切成适当大小的样品。

7.将样品放置在透射电镜上进行观察。

四、离子切割法离子切割法是一种比传统切片法更先进的样品制备方法。

该方法主要包括以下步骤:1.将样品固定在金属网格上。

2.使用超声波清洗器将金属网格浸泡在去离子水中清洗干净。

3.使用离子束磨削仪对样品进行加工处理,得到一块平整的样品表面。

4.使用离子束切割仪对样品进行切割,得到纳米级别的薄片。

5.将薄片放置在透射电镜上进行观察。

五、焦电流加工法焦电流加工法是一种新型的样品制备方法。

该方法主要包括以下步骤:1.将样品固定在金属网格上。

2.使用超声波清洗器将金属网格浸泡在去离子水中清洗干净。

3.使用焦电流加工仪对样品进行加工处理,得到高质量的薄片。

4.将薄片放置在透射电镜上进行观察。

六、结论样品制备是透射电镜实验中非常关键的一步。

传统切片法、离子切割法和焦电流加工法是常用的样品制备方法。

在进行样品制备之前,需要进行充分的准备工作,选择合适的样品和切片仪器,并对仪器进行检查和校准。

通过合理选择样品制备方法,可以得到高质量的样品,并为后续实验提供可靠的数据支持。

简述透射电镜中样品制备的常用方法

简述透射电镜中样品制备的常用方法

透射电镜中样品制备的常用方法透射电子显微镜(Transmission Electron Microscope,TEM)是一种重要的高分辨率显微镜,常用于研究物质的微观结构和性质。

在使用透射电镜观察样品之前,需要对样品进行制备,以确保样品的质量和形貌。

本文将介绍透射电镜中常用的样品制备方法,包括样品的选择、切片制备、薄膜制备等。

1. 样品的选择在进行透射电镜观察之前,样品的选择非常重要。

通常,样品需要满足以下要求:•样品具有一定的透明度,能够让电子束穿透。

•样品存在较为稳定的晶体结构,以便进行晶体学分析。

•样品的尺寸合适,不过大以免超出透射电镜的观察范围。

•样品的形状和厚度需适合观察操作。

常见的样品包括金属、有机物、无机晶体、陶瓷和生物样品等。

2. 切片制备透射电镜观察样品的常用方法之一是制备薄片,即切片制备。

切片制备的目的是将样品制备成适合透射电镜观察的薄片,通常要求薄片的厚度在几百纳米到几微米之间。

切片制备的步骤如下:步骤1:固定样品对于生物样品,首先需要将样品固定。

常用的固定方法包括冷冻固定、化学固定和凝胶固定等。

这些方法可以保持样品原有的结构和形态。

步骤2:取样从固定的样品中取出小块样品,通常使用显微针或者显微刀进行操作。

步骤3:去脂处理(可选)对于脂肪含量较高的样品,需要进行去脂处理。

常见的方法包括冷冻去脂、溶液去脂等。

步骤4:嵌培将取样得到的样品嵌入切片中,嵌培有多种方法。

常用的方法包括:冷冻嵌培、树脂嵌培等。

步骤5:切割将嵌培好的样品进行切割。

切割时需要使用马来酸酐刀或者超薄刀,在适当的位置进行切割,得到适合的样品。

步骤6:收集和保护薄片将切割好的薄片收集并放置在适当的载玻片或网格中,然后进行保护。

保护可以使用丙酮或乙醇进行漂洗、涂层等方法。

3. 薄膜制备除了切片制备外,透射电镜观察样品的另一种常用方法是薄膜制备。

相对于切片制备,薄膜制备更加灵活,可以制备更薄的样品。

薄膜制备的步骤如下:步骤1:样品制备制备需要制备的样品,并确保样品的表面较为光滑。

透射电镜的制样方法

透射电镜的制样方法
• 对复型材料的主要要求: • ①复型材料本身必须是“无结构”或非晶态的; • ②有足够的强度和刚度,良好的导电、导热和耐电子束轰击性能。 • ③复型材料的分子尺寸应尽量小,以利于提高复型的分辨率,更深入地揭示表面
形貌的细节特征。 • 常用的复型材料是对电子束透明的薄膜——非晶碳膜、各种塑料薄膜和氧化物薄
膜)。
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三、间接样品(复型)的制备
• 在电镜中易起变化的样品和难以制成薄膜的试样采用此方法. • 表面显微组织浮雕的复型膜,只能进行形貌观察和研究,不能研究试样的成分
分布和内部结构。
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复型的种类
• 按复型的制备方法,复型主要分为:

一级复型

二级复型

萃取复型(半直接样品)
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电解双喷 1 。 电 解 双 喷 时 , 一 般 要 进 行 冷 却 , 常 用 液 氮 加 酒 精 的 方 法 来 冷 却 , 尤 其 是 钢 铁 材 料 , 必 须 冷 却 , 而 且
最好用液氮。 2。电解双喷时,要调好电流和电压的值,只有电流和电压的值处于电解抛光的平台时,才能制造出好
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粉末(纤维)样品的断面
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2. 晶体薄膜样品
• 块状材料多采用此方法。 • 通过减薄制成对电子束透明的薄膜样品。 • 薄膜样品制备方法要求: ①薄膜样品的组织结构必须和大块样品相同,且制备过程中不引起材料组织的变
化。 ② 薄,相对电子束而言必须有足够的“透明度”,且避免薄膜内不同层次图像的
重叠,干扰分析。 ③ 具有一定的强度。
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晶体薄膜法
• 薄膜样品制备步骤: ① 切取:切取薄块(厚度<0.5mm) ② 预减薄:用机械研磨、 Dimpling、化学抛光等减薄成“薄片”(0.1mm) ③ 终减薄:用电解抛光、离子轰击减薄成“薄膜”(<500nm)(视材料而

透射电镜常规样品制备流程(精)

透射电镜常规样品制备流程(精)

透射电镜样品制备流程因为透射电镜能察看的样品一定很薄( 60~ 70nm),所以透射电镜的样品准备要求很严格,方法也很单调,仅有一下两种方法:一.负染色技术负染色技术简单迅速,能够显示生物大分子、细菌、分别的细胞器以及蛋白晶体等样品的形态、构造、大小以及表面构造的特点。

特别在病毒学中,负染色技术有着宽泛的应用。

样品要求:①样品悬液的纯度不要求很纯,可是假如杂质太多,如大批的细胞碎片,培育基残渣,糖类以及各样盐类结晶的存在都会扰乱染色反响和电镜的察看。

特别是不可以有过多的糖类,因为在电子束的轰击下,糖类简单碳化而有碍察看,所以样品要适合提纯。

②样品悬液的浓度要适中,太稀在电镜下很难找到样品,太浓样品聚积影响察看。

操作流程:汲取样品悬液滴到有膜的铜网上,静置数分钟,而后用滤纸吸去剩余的液体,滴上负染色液,染色1~2min 后滤纸吸去负染色液,待干后用于电镜察看。

二、超薄切片技术超薄切片技术是为透射电镜察看供给薄样品的特意技术,是生物学中研究细胞超微构造最常用的技术。

宽泛应用于生物体的各样细胞的超微构造察看。

一般厚度在10~100nm 的切片称为超薄切片,制作这类切片的技术叫做超薄切片技术。

超薄切片制作的过程包含取材、固定、脱水、浸透、包埋、聚合、切片和染色等几个环节,和一般光学显微镜的白腊切片过程相像。

可是,超薄切片切片过程更加仔细与复杂,要求更严格,并且所用的试剂比较昂贵、配制复杂、强致癌。

详细操作步骤、注意事项以下:1.取材和前固定:迅速的切取大小为0.5~1.0mm3 的样品块,一分钟内把组织(样品)块浸入 2.5%戊二醛(入口质量)溶液(取样前来平台领取),每个离心管内装20个以上的样品块,作为一个样送到平台。

要求:①取材前必定要和工作人员获得电话联系!②取材选择部位要正确靠谱,保证每块资料都是要察看的部位。

③全部植物样品必定要抽真空,能够沉底的样品也抽真空 15mins,不可以沉底的样品必定要抽真空致沉底!④细菌、散在细胞等不可以成块的样品,加戊二醛固定液,离心积淀后送到平台,由平台工作人员办理。

透射电镜生物样品制备步骤

透射电镜生物样品制备步骤

透射电镜生物样品制备步骤
一.取材:
组织块小于1立方毫米
二.固定:
%戊二醛,磷酸缓冲液配制固定2小时或更长时间。

用磷酸漂洗液漂洗15分三次
1%锇酸固定液固定2-3小时
用磷酸漂洗液漂洗15分三次
三.脱水:
50%乙醇15-20分
70%乙醇15-20分
90%乙醇15-20分
90%乙醇90%丙酮(1:1)15-20分
90%丙酮15-20分
以上在4度冰箱内进行
100%丙酮室温15-20分三次四.包埋:
纯丙酮+包埋液(2:1)室温3-4小时
纯丙酮+包埋液(1:2)室温过夜
纯包埋液37度2-3小时
五.固化:
37度烘箱内过夜
45度烘箱内12小时
60度烘箱内48小时
六.超薄切片机切片70 nm
七.3%醋酸铀-枸橼酸铅双染色
八.透射电镜JEOL JEM-1230(80KV)观察。

拍片。

透射电镜常规样品制备流程

透射电镜常规样品制备流程

透射电镜常规样品制备流程
透射电镜是电子显微镜技术中最重要的一种技术,普通晶体样品的常
规样品制备流程如下:
1、样品的准备:将样品、水、石蜡、助融剂(如NaCl)、磷酸盐、石墨、甲醛和电子源材料(碳粉)准备好备用,并配合温度控制装置使用。

2、样品处理:将样品用接近样品发热点的温度处理,一般为200?C,把样品放入室温保温的石蜡,再将该石蜡分别放入不同的温度槽,如助融
剂的温度可以高于样品放置温度。

3、镀膜:将样品放置在硝酸银或碳材料的固体膜下,镀膜时,将碳
气体经过电子枪加热,形成形状与原子相同的表面。

4、结晶:首先需要将样品放置在一定温度和压力下,进行结晶,再
将研磨剂如磷酸盐、石墨和水添加到样品中,使样品迅速结晶,并在腔内
升温至合适温度,加快结晶过程。

5、夹具的清洗:在滴定液中加入抗蚀剂,夹具进行清洗,确保样品
无几何不良影响。

6、取晶体:用软金属夹具取出晶体,放在清洗过的滴定液中浸泡,
以使样品重新渗透,然后将样品放入滴定液腔中,进行滴定,使样品表面
无污染物。

7、安装样品:用金刚石夹具将样品安装在金刚石台子上,并将其固定,以保证样品的准确安装。

tem透射电镜的样品制备方法

tem透射电镜的样品制备方法

tem透射电镜的样品制备方法TEM(透射电子显微镜)是一种高分辨率的显微镜,可以观察到物质的微观结构和原子级的细节。

TEM样品的制备是获取高质量TEM图像的关键步骤之一、下面将介绍一些常用的TEM样品制备方法。

1.机械切片法:通过将所研究物质切片成非常薄的片,以便电子束能够透过样品。

这种方法适用于硬材料或质地坚硬的样品。

首先,使用机械工具(如剪刀)或精密切割仪来制备尺寸较小的薄片。

随后,使用刮刀等工具,将薄片轻轻地转移到透明的TEM样品网格上。

最后,用气吹干净样品,并使用显微镜检查成果。

2.离心沉淀法:使用这种方法,可以制备到具有较大颗粒的样品。

首先,将所研究的材料分散在适当的溶剂中,并用超声波处理来消除聚集物。

然后,使用离心机将样品离心,使颗粒沉淀在薄网格上。

最后,将样品干燥,并用透明胶带密封以保持样品稳定。

3.冻脱水法:这种方法适用于液态或可溶性样品。

首先,将样品溶解在适当的溶剂中,然后将溶液滴到一片透明的TEM样品网格上。

接下来,将样品迅速冷冻,使其形成冻结状态,并使用真空甚至液氮将水从样品中去除。

最后,将样品干燥,并用透明胶带密封以保持样品稳定。

4.薄膜制备法:对于一些材料,可以通过溅射、蒸镀、离子束制备等方法制备薄膜样品。

这种方法适用于需要研究材料的表面结构和形貌的情况。

通过这些技术,可以在TEM样品网格上制备出具有亚纳米尺寸的薄膜。

无论使用哪种方法,请确保样品制备过程中防止氧化或其他污染物的入侵,以保持样品的原始状态。

此外,制备过程中的轻柔操作以及对透明度的注意,也是获得高质量TEM样品的关键。

最后,使用TEM显微镜观察样品前,确保样品在真空或干燥的环境中,以避免图像的模糊或扭曲。

透射电镜样品制备方法

透射电镜样品制备方法

透射电镜样品制备方法透射电子显微镜(Transmission Electron Microscope,简称TEM)是一种利用电子束穿透样品而观察样品结构的高分辨率显微镜。

为了获得高质量的透射电子显微镜图像,样品制备是非常重要的一步。

下面将介绍几种常见的透射电镜样品制备方法。

1.薄片制备法:薄片制备法是最常用的透射电镜样品制备方法之一、首先,将待观察的材料切割成薄片,通常使用切片机或者离心切片机进行切割。

然后,将薄片放置在网格上,并用显微镊夹持住。

接下来,使用离心机将网格和薄片一起离心,以去除多余的液体。

最后,将网格放入透射电镜中进行观察。

2.离解法:离解法适用于那些不易制备成薄片的样品。

首先,将待观察的样品制备成溶液或者悬浮液。

然后,将溶液滴在碳膜覆盖的网格上。

接下来,使用离心机将网格和溶液一起离心,使溶液在网格上均匀分布。

最后,将网格放入透射电镜中进行观察。

3.冻结法:冻结法适用于那些需要观察生物样品或者水溶液的样品。

首先,将待观察的样品制备成溶液或者悬浮液。

然后,在液氮中冷冻样品,使其迅速冻结成冰。

接下来,使用离心机将冰冻样品离心,以去除多余的液体。

最后,将网格放入透射电镜中进行观察。

4.脂溶法:脂溶法适用于那些不溶于水的样品。

首先,将待观察的样品制备成脂溶液。

然后,将脂溶液滴在碳膜覆盖的网格上。

接下来,使用离心机将网格和脂溶液一起离心,使脂溶液在网格上均匀分布。

最后,将网格放入透射电镜中进行观察。

除了以上几种常见的透射电镜样品制备方法,还有一些特殊的方法,如原位制备法、离子切割法等。

这些方法可以根据实际需求选择使用。

总结起来,透射电镜样品制备是透射电子显微镜观察样品结构的关键步骤。

合适的样品制备方法可以保证获得高质量的透射电镜图像。

不同的样品制备方法适用于不同类型的样品,研究人员可以根据实际情况选择合适的方法进行样品制备。

材料分析方法-15 透射电镜样品的制备

材料分析方法-15  透射电镜样品的制备
制备粉末试样的关键是要有一个能够支持粉末并易于 使电子透过的载膜。
常用方法:胶粉混合法和支持膜分散粉末法 常用支持膜的材料见下表
Grid
Figure 1. Top: Overhead view of a grid, showing the mesh. Bottom: Side view of a carbon coated grid showing the relative
注意:磨制过程中,要平稳,用力不要过大,注意冷却。
研磨薄片用的支座
三脚抛光器
②化学减薄 将切好的试片放入配制好的化学试剂中,使其表面
腐蚀而减薄。
优点: • 表面无机械硬化层 • 速度快 • 厚度可控制在20-50 μm,有利于终减薄
(3) 终减薄
①电解减薄
目前使用最广、效率最高、操作最简便的方法是双喷电解抛光 法。
等离子体激发--主要发生在金属中。当入射电子通过电子云时,金属中自由
电子基体发生振动,这种振动在10-15s内就消失了,且该振动局限在纳米范围 内,这就是等离子体激发(Plasma excitation)。等离子体激发是入射电子引 起的,因此入射电子要损失能量,这种能量损失随材料的不同而不同。利用 测量特征能量损失谱进行分析,就是能量分析显微术。若选择有特征能量的 电子成像,就是能量损失电子显微术。
薄膜样品的组织结构必须和大块样品相同,在制备过 程中,组织结构不变化;
❖ 样品相对于电子束必须有足够的透明度;
薄膜样品应有一定强度和刚度,在制备、夹持和操作 过程中不会引起变形和损坏;
在样品制备过程中不允许表面产生氧化和腐蚀。
平面样品制备的工艺过程
(1)切(取)薄片样品
从实物或大块试样上切割厚度一般厚 约200-300 μm的薄片,切割方法一般 分两类 。

透射电镜标本制备方法

透射电镜标本制备方法

透射电镜标本制备方法由于电镜电子束穿透能力的限制,必须把标本切成厚度小于0.1um以下的薄片才适用,这种薄片称为超薄切片。

常用的超薄切片厚度是50-70nm。

在透射电镜的样品制备方法中,超薄切片技术是最基本、最常用的制备技术。

超薄切片的制作过程基本上和石蜡切片相似,需要经过取材、固定、脱水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步骤。

一取材的基本要求组织从生物活体取下以后,如果不立即进行适当处理,会由于细胞内部各种酶的作用,出现细胞自溶现象。

此外,还可能由于污染,微生物在组织内繁殖使细胞的微细结构遭受破坏。

因此,为了使细胞结构尽可能保持生前状态,必须做到快、小、准、冷: (1)(动作迅速,组织从活体取下后应在最短时间内 (争取在1分钟内) 投入2.5%戊二醛固定液。

(2)(所取组织的体积要小,一般不超过1mm×1mm×1mm。

也可将组织修成1mm×1mm×2mm大小长条形。

因为固定剂的渗透能力较弱,组织块如果太大,块的内部将不能得到良好的固定。

(3)(机械损伤要小,解剖器械应锋利,操作宜轻,避免牵拉、挫伤与挤压。

(4)(操作最好在低温(0?,4?)下进行,以降低酶的活性,防止细胞自溶。

(5)(取材部位要准确。

取材方法:将取出的组织放在洁净的蜡版上,滴一滴预冷的固定液,用两片新的、锋利的刀片成“拉锯式”将组织切下并修小,然后用牙签或镊子将组织块移至盛有冷的固定液的小瓶中。

如果组织带有较多的血液和组织液,应先用固定液洗几遍,然后再切成小块固定。

二(固定固定的目的是尽可能使细胞中的各种细胞器以及大分子结构保持生活状态,并且牢固地固定在它们原来所在的位置上。

固定的方法有物理的和化学的两大类。

物理的方法系采用冰冻、干燥等手段来保持细胞结构;化学的方法是用一定的化学试剂来固定细胞结构。

现通常使用化学方法对组织或细胞进行固定。

常用固定剂有1、四氧化锇 (osmium tetroxide,)是一种强氧化剂,与氮原子有较强的亲和力,因而对于细胞结构中的蛋白质成分有良好的固定作用。

透射电镜样品制备方法

透射电镜样品制备方法

透射电镜样品制备方法透射电镜(Transmission Electron Microscope,TEM)是一种能够观察物质内部微观结构的高分辨率显微镜,广泛应用于材料科学、生物学、纳米技术等领域。

而透射电镜样品的制备质量直接影响到后续的观察结果。

因此,制备高质量的透射电镜样品至关重要。

下面将介绍一些常用的透射电镜样品制备方法。

首先,对于生物样品的制备,常用的方法是冷冻切片技术。

这种方法能够保持生物样品的原始结构,避免了传统化学固定和脱水过程中可能引起的伪形态。

在冷冻切片过程中,样品被快速冷冻,并在低温下切割成极薄的切片,然后通过透射电镜观察。

这种方法适用于观察生物细胞、组织等样品。

其次,对于材料样品的制备,常用的方法是机械切割和离子蚀刻。

机械切割是指利用超薄切片机或离心切片机将材料切割成极薄的切片,然后通过透射电镜观察。

而离子蚀刻则是利用离子束对材料进行加工,形成极薄的样品。

这两种方法适用于观察金属、陶瓷、半导体等材料样品。

另外,对于纳米材料的制备,常用的方法是原位制备技术。

这种方法通过在透射电镜下直接在样品表面进行原位制备,如原位成膜、原位合成等,可以观察到纳米材料的生长过程和结构特征。

这种方法适用于观察纳米颗粒、纳米线、纳米片等样品。

总的来说,透射电镜样品的制备方法多种多样,选择合适的制备方法需要根据具体样品的性质和要求来确定。

在制备过程中,需要注意样品的预处理、切割、薄化等步骤,确保样品的质量和结构完整。

通过精心制备的透射电镜样品,可以获得清晰、准确的观察结果,为后续的科研工作提供可靠的数据支持。

在透射电镜样品制备过程中,还需要注意操作规范、安全防护等问题,确保实验过程安全可靠。

同时,不同样品的制备方法可能存在差异,需要根据具体情况进行调整和改进。

希望本文介绍的透射电镜样品制备方法能够为相关科研工作者提供一些参考和帮助,促进透射电镜技术的应用和发展。

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透射电镜样品制备方法
由于电子束穿透能力限制,必须把标本切成厚度小于0.1um以下的薄片才适用,这种薄片称为超薄切片。

常用的超薄切片厚度是50-70nm。

在透射电镜的样品制备方法中,超薄切片技术是最基本、最常用的制备技术。

超薄切片的制作过程基本上和石蜡切片相似,需要经过取材、固定、脱水、渗透、包埋聚合、切片及染色等步骤。

一.取材的基本要求
组织从生物活体取下后,如果不立即进行适当处理,会由于细胞内部的各种酶作用,出现细胞自溶现象。

此外还可能由于污染,微生物在组织内繁殖使细胞的微细结构遭受破坏,因此,为了细胞结构尽可能保持天然状态,必须做到快、小、准、冷。

(1)动作迅速,组织从活体取下后应在最短的时间内(争取1分钟内)投入2.5%戊二醛固定液。

(2)所取组织的体积要小,一般不超过1mm*1mm*1mm。

也可将组织修成1mm*1mm*2mm大小长条形。

因为固定剂的渗
透能力较弱,组织块如果太大,块的内部将不能得到良好的
固定。

(3)机械损伤要小,解剖器械应锋利,操作宜轻,避免牵拉、挫伤与挤压。

(4)操作最好在低温(0℃~4℃)下进行,以降低酶的活性,防
止细胞自溶。

(5)取材部位要准确。

二.取材方法
将取出的组织放在洁净的蜡版上,滴一滴预冷的固定液,用新的、锋利的刀片将组织切下并修小,然后用牙签或者镊子将组织块移至盛有冷的固定液的1.5ml离心管中。

如果组织块带有较多的血液和组织液,应先用PBS洗几遍,然后切成小块固定。

1.动物及人体组织的取材(在冰浴上进行)
动物组织的取材,应麻醉(1%戊巴比铵5ml/kg体重腹腔注射)或断头急性处死,解剖出所需器官,用解剖剪刀剪取一
小块组织,放在干净的纸板上,滴一滴冷却的固定液,用新的、无油污的锋利双面刀片将材料切成大约1mm宽,2~3mm长的
小块并从中选出受损伤较小的小条,再将其切成1mm3的小块,最后用牙签将这些小块逐一放入盛有预冷的、新鲜固定液的
1.5ml管内,放入冰箱冷藏室低温固定(0~4℃)2-4小时或以
上。

*固定结束后,将固定液用PBS稀释三倍,样品于该溶液中在4℃冰箱保存。

送样前请用PBS浸泡清洗3次,贴好标签
送至电镜室。

2.体外培养细胞的取材(在冰浴上进行)
培养在培养瓶中的细胞取材时,先倒出部分培养液,然后用刮刀轻轻刮下瓶壁上的细胞,将细胞悬液转移到离心管中,
离心机4℃低速离心(2000转/分)10分钟,使细胞聚成团块,弃去上清,沿壁小心加入新鲜的固定液,保持细胞成团状态,于4℃冰箱中固定2小时以上。

*固定结束后,将固定液用PBS稀释三倍,样品于该溶液中在4℃冰箱保存。

送样前请用PBS浸泡清洗3次,贴好标签送至电镜室。

对于血液及其他细胞悬浮液,不宜直接固定,可在取材后将其放入离心管,以2000-4000转/分的速度离心10-15分钟,待样品在离心管底部集结成团块状后,用吸管吸出上清液,再缓缓滴入固定液稍加固定,然后用刮铲将样品取出并切割成小块,再行固定。

3.植物组织取材
植物组织的取材比较容易,它的细胞离体后变化不像动物细胞那么迅速,但植物细胞的细胞壁阻碍着固定液的迅速渗透,因此,植物材料的取材宜切成薄片状或牙签状,经适当的固定后再切成小方块。

*固定结束后,将固定液用PBS稀释三倍,样品于该溶液中在4℃冰箱保存。

送样前请用PBS浸泡清洗3次,贴好标签送至电镜室。

4.细菌及藻类等样品取材
对于不易成团的样品,需先清洗,加入固定液后吹散,于4℃冰箱中固定2小时,固定结束后,PBS清洗3次,继续按
照文献《琼脂铸模法制备透射电镜样品》(白焕红)内描述方
法进行琼脂预固定。

再将琼脂预包埋后的样品于4℃冰箱中固
定过夜。

*固定结束后,将固定液用PBS稀释三倍,样品于该溶液中在4℃冰箱保存。

送样前请用PBS浸泡清洗3次,贴好标签送至电镜室。

缓冲液配方
磷酸盐缓冲液(三个步骤)
1.磷酸盐缓冲液(0.2M)
甲液:0.2M的磷酸氢二钠溶液乙液:0.2M的磷酸二氢钠溶液
Na2HPO42H2O 35.61g (Na2HPO47H2O) 53.65g (Na2HPO412H2O) 71.64g NaH2PO4H2O 27.60g ( NaH2PO42H2O) 31.21g
加蒸馏水溶解成1000ml 加蒸馏水溶解成1000ml
2. 按下表混合甲、乙两液既得所需pH的0.2M缓冲液
0.2M磷酸盐缓冲液的配制
3.将溶液用蒸馏水1:1稀释,则配得0.1M的缓冲液。

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