动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。
犬、猫全身麻醉药物的使用方法
犬 、猫 全 身 麻 醉 药 物 的 使 用 方 法
张 宇 （吉林省九台市畜牧总站 吉林九 台 １５０３００）
１ 犬麻 醉 舒 泰 （含镇静剂替来他 明和 肌松 剂唑拉西泮 ），手术前先
皮下注射硫酸阿托品 ，０．１毫克 ，千克 ，１５分钟后注射舒泰 。诱 导剂量 ：７～２５毫克 ／千克 ，肌 肉注射 ；或 ５～１０毫克 ，千克 ，静脉 注射 。麻 醉持 续时间 ：根据 以上剂量 ，持 续 ２Ｏ～３０分钟 补充注 射 ：第 １次剂量的 １／２～１，３，最好是静脉注射 。
硫 喷妥钠 。静脉给药 ，２５毫 克 ，千克 。通常将硫 喷妥钠稀 释成 ２．５％的溶 液 ，按体重 折算 总药量 ，先 将 １／ ２ 或是 ２／３以较 快 的速 度静 脉注射 ，大约为 １毫升 ／秒 。在注射过程 中，动物很 快呈现肌松 ，全身松弱无力 ，眼睑反射 减弱 ，呼 吸均 匀平稳 ，睡 孔缩小 。剩余量需较慢给药 ，并密切注意观察动物在麻醉后的 临床表现 ，认 为 已达所需要 的深 度时 ，应 即停 止给药 。如果 静 脉 注射给药 过快 ，或是剂 量偏大 ，会 严重抑 制呼吸 ，甚至 会呼 吸停止 。故 为防止意外 ，应准备好 呼吸兴奋剂 以及人工呼吸装 置 。一 旦发生呼吸抑制 ，人工支持 呼吸比用 呼吸兴奋药物更有 实 际意义 。通常如上述一次麻醉 给药 ，可 以持续 １５～２５分 钟 ， 其恢 复期稍长 ，可达 ２￣３小 时。在ＩＩ缶床具体应用时 ，有时为 了 延长麻 醉的时间 ，常把静脉注射针 （头皮针 因连有软管较 为方 便 ）留置在静 脉内 （注意应 固定好 ），当动物有所觉 醒骚 动或 有 叫声时 ，再从静脉适量推人药 物 ，当然要 观察 动物体态 反应 以决定给药 的多少 ，用这种反复 多次给药的方式 ，则可 以延 长 所需 的麻醉时间 ，能更好地配合完成手术 。
动物麻醉技术
--硫酸镁为导泄、利胆、降压、抗惊厥药。口服不易吸收， 并使肠内容物渗透压升高，水分吸收减少，肠容积增大，刺激肠蠕动而泄下。注射给药可使血中Mg2+增加，它能阻止神经末梢释放乙酰胆碱，使骨骼肌松弛。本实验通过不同给药途径对硫酸镁作用的影响。
速眠新麻醉剂
---肾损伤模型
做药理学时，按照“章蕴毅主编.药理学实验指导.人民卫生出版社2007.8北京”实验3，做的。
An animal model of lung transplantation: damage, protection and immune response
---乳腺癌模型
有两条需要大家注意：1、术后肺不张不好处理。2、用大鼠的话，相关抗体偏少可能会给术后的研究带来不利，建议改用小鼠做模型。个人认为，从大鼠向小鼠过度约需一到两周时间。
---30例大鼠肺移植手术成功率为90%，移植后存活率100%，左供肺摘取需时(3±1) min，供肺完成体外套管时间分别为：肺动脉(2.0±0.5) min、肺静脉(3±1) min、支气管(2.0±0.5) min，供受体动静脉和支气管套管吻合时间分别为：肺动脉(4±1) min、肺静脉(8±3) min、支气管(2.0±0.5) min，总手术时间(55±10) min。提示改良的三袖套技术建立大鼠肺移植模型操作供稳定可靠的动物模型。
---煮沸消毒后的水合氯醛溶液可分解为酸性液，注入后可使动物发生酸中毒。因此不能高压灭菌，主要按照以下配置方法我想不会感染的。
其方法如下：
1、溶媒：通常用生理盐水，最好是5～l0％葡萄糖注射液或5%葡萄糖硫酸镁注射液(5%葡萄糖液l00ml加硫酸镁5g)。
2、浓度：高浓度刺激性大，易引起溶血；低浓度则增加注入药液量而加重心肺负担。临床常用浓度为5～10％。
实验动物麻醉
实验动物麻醉所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。
如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。
包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。
因此，在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度，以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。
足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标，在条件许可时，推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。
使用麻醉剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。
1．麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同。
一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。
在使用麻醉剂过程中，特别是使用巴比妥类药物时，一般应首先使用较小剂量，随时检查动物的反应情况，并逐步提高剂量。
2．动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。
相比清醒的动物，麻醉后的动物反应相对迟钝。
因此，推荐使用循环水浴保温垫，不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备，以免灼伤实验动物。
3．静脉注射麻醉剂发挥作用速度快，静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
实验操作涉及腹腔注射时，不应使用腹腔注射麻醉剂。
4．气温较低时，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
5．注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食，以防止食物回流。
注射前3小时应限制饮水。
6．如需使用抗生素以防止术后感染，手术前1小时应肌肉注射抗生素，并于手术过程中静脉注射抗生素。
动物麻醉方法及麻醉药剂量
常用xx的剂量和用法
1、戊巴比妥钠：
适用于犬、猫、兔时多采用静脉和腹腔注射的方法，静脉时剂量为３０mg/kg常用浓度为３％，用药量为１.０ml/kg，腹腔时剂量为４０-５０mg/kg，常用浓度为３％。
当对象为豚鼠时，用腹腔注射剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为２％。
大，小鼠时，用腹腔，剂量为４５mg/kg，常用浓度为２％。
2、氨基甲醛：
主要用于犬、猫、兔采用腹腔和静脉注射的方法，一般剂量为７５０-１０００mg/kg常用浓度为２５％。
3、氨基甲酸乙酯（xx）：
适用于豚鼠和大，小鼠时，多采用腹腔注射的方法，剂量为１３５０
mg/kg，常用浓度为２０％家兔，可以静脉，也可以腹腔注射。
剂量1g/kg。
4、异戊巴比妥：
适用于犬、猫、兔时，如果采用静脉时，剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为５％，用药量为０.８-１.０mg/kg，如果采用腹腔和肌肉注射时，剂量为８０-１００mg/kg常用浓度为１０％。
5、硫喷妥钠:
适用于犬、猫、兔时采用静脉和腹腔方法,剂量为25-50mg/kg,常用浓度为2％。
当是大白鼠时,采用静脉和腹腔方法,剂量为50-100/kg,常用浓度为1％。
麻醉时间为15-30min,效力强,宜慢注射。
6、乙醚：
适用于各种动物，采用器官内插入吸入。
实验动物麻醉药物使用指南
实验动物麻醉药物使用指南第一部分不同类型麻醉药物的一般特性一、镇静剂和安定剂镇静剂使用前动物的生理状态能显著影响镇静的程度。
给药前攻击性强的、不听话的、极其兴奋的动物会比较难处理，除非给予高剂量的呼吸抑制药物。
1.吩噻嗪类Phenothiazines⏹常用制剂：乙酰丙嗪acepromazine，氯丙嗪chlorpromazine，丙嗪promazine⏹理想疗效●增强麻醉剂、安眠药和麻醉性镇痛药的效果（包括减少药物剂量，延长作用时间和顺利地从麻醉中恢复）●止吐作用●促进骨骼肌松弛●引起兔耳静脉血管扩张⏹不良反应●中度低血压●导致低体温症⏹潜在的、与研究相关的并发症●基底神经节多巴胺阻塞●降低自发肌动活动●阻塞儿茶酚胺的外周作用●下丘脑儿茶酚胺耗尽引起的低体温症●高剂量阻碍FSH和LH的释放●提高鼠、绵羊和山羊的催乳素水平●发生肾上腺素通过肾上腺髓质释放引起的高血糖●应用于猫，小剂量可减小肾上腺素导致的血管加压作用，大剂量可翻转血管加压作用●减少动物的血细胞比容●拮抗阿朴吗啡诱发的犬呕吐●可能引起犬心律不齐●高剂量的氯丙嗪使猫产生颤动和僵硬●可能导致胎鼠产生唇裂和腭裂●长时间使用可产生眼部病变2.苯二氮平类药物Benzodiazepines⏹常用制剂：地西泮diazepam，咪达唑仑midazolam⏹理想疗效●镇静作用因物种而异（作用最小的是犬，最大的是兔子和鼠）●增强大部分麻醉药和麻醉镇痛药的药效●良好的松弛骨骼肌作用⏹不良反应●正常剂量下无不良反应●管制药物⏹潜在的、与研究相关的并发症●主要通过作用脑干网状结构抑制中枢神经系统●阻断脊髓多突触反射作用●减少大鼠脑和纹状体边缘区多巴胺的合成●增强GABA介导的中枢神经系统抑制●在犬静脉注射后产生瞬时的动脉降血压作用●人的腭裂的发生与怀孕期间母体摄入该药物有关⏹其他●应通过静脉注射地西泮，肌肉注射和皮下注射会引起全身不均一的吸收。
地西泮在溶液中不与其他药物相溶，因此不应与其他药物在同一注射器内混合（除氯胺酮）●咪达唑仑可以通过肌肉注射或皮下注射途径给药，也可与某些其他药物联合使用3.α-2-肾上腺素受体激动剂⏹常用制剂：美托咪定xylazine，甲苯噻嗪medetomidine，地托咪定detomidine⏹理想疗效●中枢神经系统抑制剂，镇痛肌肉松弛剂，非麻醉镇静剂●对大多数麻醉剂有增强作用⏹不良反应●当作为主要麻醉剂时，动物会出现疼痛反应●可产生高血糖和多尿症●心血管系统的影响多样，常见低血压现象●反刍动物需要的剂量是食肉动物的十分之一●引起缓慢性心律失常和心输出量减少⏹潜在的、与研究有关的并发症●由于直接刺激中枢神经系统的催吐中心，引起犬诱导性呕吐●抑制心肌收缩力，减少心输出量●增加心脏对肾上腺素的敏感性，导致室性心律失常，包括纤维性颤动●犬静脉注射后，动脉血压一过性升高，动脉血pH值，氧分压，二氧化碳分压不改变●对未经治疗的猪没有影响●犬的吞气症引发的气胀恶化●可能导致流产⏹其他●甲苯噻嗪（Xylazine）是一种强效的镇静药和中枢神经系统的抑制剂。
(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。
实验动物麻醉剂量表
實驗動物的麻醉劑量表表1. 小鼠(mouse)麻醉劑量表IM：肌肉注射 IV：靜脈注射 SC：皮下注射 IP：腹腔注射Inhalation：吸入 *：三級管制藥品Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2005) 表2. 大鼠(Rat)麻醉劑量表IM：肌肉注射IV：靜脈注射 SC：皮下注射 IP：腹腔注射 Inhalation：吸入*：三級管制藥品Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2005)2.Clinical laboratory animal medicine。
(K. Hrapkiewicz, Iowa StateUniversity Press1998)Inhalation：吸入 *：三級管制藥品Reference: 1.Clinical laboratory animal medicine。
(K. Hrapkiewicz, Iowa State University Press1998)Inhalation：吸入 *：三級管制藥品Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2005)2.Clinical laboratory animal medicine。
(K. Hrapkiewicz, Iowa StateUniversity Press1998)表5. 犬(Dog)麻醉劑量表Inhalation：吸入 *：三級管制藥品Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2005)表6. 天竺鼠(Guinea Pig)麻醉劑量表*：三級管制藥品Reference: 1.Clinical laboratory animal medicine。
(K. Hrapkiewicz, Iowa State University Press1998)表7. 兔(Rabbit)麻醉劑量表IM：肌肉注射 IV：靜脈注射 SC：皮下注射 IP：腹腔注射Inhalation：吸入 *：三級管制藥品Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
常用的麻醉剂和麻醉方法(人医和动物均有)
常用的麻醉剂和麻醉方法常用的麻醉剂大致分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。
麻醉方法一般分为吸入、注入（静脉、皮下、肌肉、腹腔等）、口服、灌胃等。
麻醉药物应用的方法和剂量如下：一最常用的挥发性麻醉药物为乙醚开放麻醉法是用脱脂棉浸湿乙醚后，小动物如大鼠、小鼠可将头部放入蘸有乙醚棉球的广口瓶内，4～6分钟后即处于麻醉状态。
适用于各种实验动物。
如实验过程较长，可在其鼻部放棉花或纱布，不时滴加乙醚维持，也可用乙醚先麻醉后再用非挥发性麻醉剂维持麻醉。
较大动物可用麻醉口罩滴药法。
封闭麻醉法是将小动物置于一封闭容器中，该容器中预先置于浸泡乙醚之棉球，乙醚挥发后使动物吸入而置麻醉。
在给药过程中必须随时观察动物的变化，如果发现动物的角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
防止麻醉过深，引起死亡。
常用全身麻醉剂：乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
动物实验中常用麻醉药应用
中， 林
量 监 督
麻 醉 药
常美 琼
用，
检 验 所 ， 广
影 响 因 素
麻郑东
醉保 婷
广 州
药
， 黄
应︶ 昱
用
DOI:10援3969/J.ISSN援1671-6027援2019援04.023 510663
全身麻醉是意识和全身感觉暂时 可逆的消失。在进行动物实验，特 别是手术等操作时，为减少动物的 挣扎和保持其安静，醉，麻醉可分 为 5 个阶段：诱导前、诱导、维持、 恢复、麻醉后阶段。本文主要介绍 动物实验中常用的麻醉药及其注 意事项。 1 常用麻醉剂
局部麻醉要常见的有三种：（1）普鲁卡因：浸润麻醉（封 闭疗法）0.25%~0.5%溶液、利多卡因：浸润麻醉：0.25%~0.5% 溶液，表面麻醉：2%~5%溶液、丁卡因：0.5%~1%等渗溶液用 于眼科表面麻醉，1%~2%用于鼻，喉头喷雾或气管插管手术， 0.1%~0.5%用于泌尿道粘膜麻醉。 3 麻醉注意事项
熟悉各种麻醉药性质，麻醉时正确选用麻醉药、给药途 径与剂量。
麻醉前做好准备，动物禁食 12h，防止麻醉过程中呕吐， 人员做好相应消毒，穿戴准备，操作室做好器械准备。
麻醉时需注意保温护理，同时注意监护，关注心率，呼 吸，毛细血管回血时间，准备好相应急救药物，常备急救药物 有阿托品、肾上腺素、尼可刹米、多巴胺等掌握其用法。
DOI:10援3969/J.ISSN援1671-6027援2019援04.024
实验动物的麻醉方法【范本模板】
实验动物麻醉方法麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小,见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0。
5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0。
25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉.(二)常用全身麻醉剂：1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大.但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快.其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg）及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸.待恢复自动呼吸后再进行操作。
2。
苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响.通常在实验前半至一小时用药。
动物园兽医的麻醉药物使用与剂量
动物园兽医的麻醉药物使用与剂量动物园中，兽医师承担着保护和照顾动物健康的重要角色。
在一些情况下，兽医需要使用麻醉药物来进行手术、诊断或治疗，以确保动物的安全和舒适。
本文将讨论动物园兽医在麻醉药物使用方面应注意的重要事项，包括适宜的药物选择和剂量。
一、麻醉药物的选择合适的麻醉药物选择是确保手术或治疗过程顺利进行的关键。
动物园中常用的麻醉药物主要分为两类：全身麻醉药和局部麻醉药。
1. 全身麻醉药物全身麻醉药物可使动物全身进入无痛觉状态。
在动物园，常见的全身麻醉药物包括巴比妥类药物、氯胺酮和异氟醚等。
巴比妥类药物具有镇静、麻痹和镇痛等作用，适用于较大型动物的手术。
氯胺酮则适用于较小型动物，具有快速作用和较短的麻醉时长。
异氟醚是一种气体麻醉药物，具有快速诱导和清醒迅速的特点。
2. 局部麻醉药物局部麻醉药物被兽医用于诊断和治疗过程中，可使特定局部区域麻木。
在动物园中，常用的局部麻醉药物包括利多卡因和布比卡因等。
这些药物通过阻断神经传导，使特定区域失去感觉。
二、麻醉药物的剂量正确的麻醉药物剂量对于动物的安全和康复至关重要。
兽医在使用麻醉药物时应根据动物的种类、体重、年龄和病情等因素，合理计算和控制剂量。
1. 全身麻醉药物的剂量全身麻醉药物的剂量通常根据动物的体重进行计算。
不同动物的药物敏感性存在差异，因此兽医在实际操作中需要结合自己的经验和专业知识来确定剂量。
此外，应注意遵循药物生产商的说明书和建议。
2. 局部麻醉药物的剂量局部麻醉药物的剂量也应考虑动物的体重和病情。
对于紧密肌肉或体积较小的动物，麻醉剂量应相对较低，以避免过量使用。
在注射或涂抹药物时，兽医应确保药物均匀分布于局部区域。
三、麻醉药物的监测与注意事项在使用麻醉药物时，兽医需要密切监测动物的生理指标和麻醉反应，以及维持动物的呼吸和循环功能。
以下是一些注意事项：1. 监测动物的生理指标：包括心率、呼吸频率、血压和体温等。
这些指标可以帮助兽医了解动物的麻醉深度和身体反应。
实验动物麻醉
实验动物麻醉所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。
如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。
包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。
因此，在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度，以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。
足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标，在条件许可时，推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。
使用麻醉剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。
1．麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同。
一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。
在使用麻醉剂过程中，特别是使用巴比妥类药物时，一般应首先使用较小剂量，随时检查动物的反应情况，并逐步提高剂量。
2．动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。
相比清醒的动物，麻醉后的动物反应相对迟钝。
因此，推荐使用循环水浴保温垫，不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备，以免灼伤实验动物。
3．静脉注射麻醉剂发挥作用速度快，静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
实验操作涉及腹腔注射时，不应使用腹腔注射麻醉剂。
4．气温较低时，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
5．注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食，以防止食物回流。
注射前3小时应限制饮水。
6．如需使用抗生素以防止术后感染，手术前1小时应肌肉注射抗生素，并于手术过程中静脉注射抗生素。
动物实验常用麻醉剂的比较与选择
第25卷 第2期2008年4月实验动物科学LABORAT ORY ANI M A L SCIE NCE V ol.25 N o.2April 2008综述・进展动物实验常用麻醉剂的比较与选择周 昆 屈彩芹(天津中医药大学中医药研究院,天津 300193)关键词:动物实验;戊巴比妥钠;水合氯醛;乌拉坦;氯胺酮;α2氯醛糖;乙醚中图分类号:Q95233 文献标识码:A 文章编号:1006-6179(2008)022*******收稿日期:2007208207作者简介:周 昆(1978-),男,助理研究员,主要从事中药药理毒理研究。
动物实验中经常需要进行麻醉,麻醉剂的选择和麻醉方式都对实验结果有很大的影响。
常用的有戊巴比妥钠、水合氯醛、乌拉坦(氨基甲酸乙酯)、氯胺酮、α2氯醛糖、苯戊巴比妥等非挥发性麻醉剂,另外还有吸入性麻醉剂乙醚。
动物实验中手术时间一般相对较短,最常用的是戊巴比妥钠、水合氯醛、乌拉坦,在某些情况下氯胺酮、α2氯醛糖、乙醚则更为合适,而苯巴比妥相对较少使用[1～2]。
这些麻醉剂都有着各自的特点,结合文献和作者的经验,对这些麻醉剂的常用麻醉方式、剂量和特点做了一个总结,并对各种实验适宜选用的麻醉剂给予建议。
1 常用麻醉方式、剂量和特点 戊巴比妥钠,白色粉末,麻醉持续时间2h 左右,使用较广。
用于犬、猫、兔麻醉时多用静脉注射,常用剂量为30mg Πkg 、浓度3%,如果使用腹腔注射麻醉,可以适当增大剂量;用于大鼠、小鼠、豚鼠麻醉时多用腹腔注射,常用剂量为40～50mg Πkg 、浓度2%;用于鸽子麻醉时多用肌肉注射,常用剂量为50～100mg Πkg 、浓度2%。
镇痛和肌肉松弛效果均中等。
水合氯醛,为无色透明棱状结晶,有穿透性的臭气及腐蚀性苦味。
配制后的溶液有沉淀时,可以先在水浴锅中适量加热促其融解。
麻醉持续时间2h 左右。
一般使用浓度10%,常用剂量为300mg Πkg 。
可与乌拉坦合用。
动物麻醉剂(各种实验动物)
实验动物的麻醉剂量表表1. 小鼠(mouse)麻醉剂量表IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.实验动物管理与使用指南。
(中华实验动物学会出版2005)表2. 大鼠(Rat)麻醉剂量表IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.实验动物管理与使用指南。
(中华实验动物学会出版2005)2.Clinical laboratory animal medicine。
(K. Hrapkiewicz, Iowa StateUniversity Press1998)IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.Clinical laboratory animal medicine。
(K. Hrapkiewicz, Iowa State University Press1998)IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.实验动物管理与使用指南。
(中华实验动物学会出版2005)2.Clinical laboratory animal medicine。
(K. Hrapkiewicz, Iowa StateUniversity Press1998)表5. 犬(Dog)麻醉剂量表IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.实验动物管理与使用指南。
(中华实验动物学会出版2005)表6. 天竺鼠(Guinea Pig)麻醉剂量表IM：肌肉注射IV：静脉注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.Clinical laboratory animal medicine。
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动物麻醉剂及麻醉剂量 Document serial number【NL89WT-NY98YT-NC8CB-NNUUT-NUT108】
动物麻醉方法及给药剂量
一、动物麻醉的目的
1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法
1.全身麻醉的方法：
吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。
随着吸入乙醚麻醉的加深，犬的呼吸加深，肌肉紧张度增加，可能会出现窒息。
预防的办法是：在犬每吸入数次乙醚后，取下口罩，让其呼吸一次新鲜空气。
非吸入麻醉：该方法是一种简单方便能够让动物很快进入麻醉期，而且没有明显的兴奋期麻醉方法。
一般采用注射的方法，有静脉注射、肌肉注射、腹腔注射等。
静脉注射、肌肉注射主要用于较大的动物的麻醉，如兔、猫、猪、犬等；腹腔注射多用于较小动物的麻醉，如小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠等。
静脉注射的部位是：兔、猫、猪由耳缘静脉注射，犬由后肢静脉注射，小鼠、大鼠由尾静脉注射。
肌肉注射多选择臀部。
腹腔注射部位约在腹部后1/3处略靠外侧（避开肝脏、膀胱）。
麻醉注意药物的浓度和使用量，后面的内容中介绍。
动物经注射麻醉药物后约几分钟到下，全身无力，反映消失，表明已经达到适宜的麻醉效果，是手术最佳的时间。
接近苏醒时，动物的四肢开始抖动，此时如果手术没有结束可采用乙醚麻醉。
在手术过程中如果发现动物抽搐、排尿，说明动物麻醉过深，是死亡的前兆，应立即进行急救。
动物做完手术后应注意保温，促使其苏醒。
注意事项
1）麻醉前注意：动物应禁食，大动物禁食10~12小时；不能使用泻剂，因为泻剂可降低血液的碱储，增加血液和组织的酸度，在麻醉和失血时容易发生酸中毒，容易降低损伤组织的抗感染能力；用犬做长时间的实验（1小时以上）时应灌肠，排除粪便；应检查麻醉剂质量、数量是否满足要求，麻醉固定器是否破损，深度麻醉应准备急救器材、药品；准确计算麻醉的剂量和浓度，书中介绍的麻醉剂量仅供参考；要考虑麻醉剂的纯度，如果使用国产的应增加麻醉剂的量。
2）麻醉时注意：静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉的紧张度、角膜反射和对皮肤疼痛的反应，当这些活动明显减弱或消失时，要立即停止注射并进行抢救。
3）麻醉后注意：采取保温措施，在麻醉期间动物的体温调节机能受到抑制，会出现提问下降，影响试验结果；必须保持动物的气道通畅和组织（眼球、舌、肠等）的营养；麻醉过深情况下应急救措施。
２．局部麻醉方法
局部麻醉的方法常采用的是浸润麻醉。
浸润麻醉时将麻醉药物注射在皮肤、肌下组织或手术视野深部组织，以阻断用药局部的神经传导，使其痛觉消失。
进行局部麻醉时应首先将动物固定好，后在实验操作的局部区域，用皮试针头作皮内注射，形成橘皮样皮丘。
然后换成局麻长针头，由皮点进针，放射到皮点周围继续注射，直到要求麻醉区域的皮肤都浸润到为止。
可以根据实验操作的要求的深度按照皮下、筋膜、肌肉、腹膜或骨膜的顺序，依次注入麻药，以达到麻醉神经末梢的目的。
三、麻醉药物与麻醉剂用量（后续）
不同动物的全身麻醉剂用量和用法
3、常用动物麻醉药物剂量及使用方法
各?论。