家兔失血性休克及抢救-开题答辩
家兔的失血性休克及其抢救
机能学实验报告家兔的失血性休克及其抢救摘要：【目的】：复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】：采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】：短时间内的少量的失血是可以恢复；大量失血是不可恢复的；自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】：短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词：失血性休克；代偿期；失代偿期引言：休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的原因。
1、实验材料1.1实验动物：家兔；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2、实验步骤2.1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统2通道。
启动RM6240系统，关闭其他通道，2通道模式为血压，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度100ml/s；采样频率800Hz。
2.2. 麻醉手术家兔称重，以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。
将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头，行气管插管手术，左侧颈总动脉，右侧颈外静脉，股动脉。
输液瓶充满一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5～10滴/min。
股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器。
2.3. 颈部手术2.3.1. 备皮：左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）2.3.2. 切开皮肤：术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
家兔失血性休克实验报告【失血性休克及其抢救实验报告】
2.2 仪器调试：在菜单中选择“血压〞。
下方做一“V〞型斜口，向心脏方向插入静脉插管，用已穿好的丝线扎紧
双击一通道，调整增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕 ZY， 插入管尖嘴部分稍后处，并以远心端丝线将插管缚紧固定，结扎血管同时
便于观看。
防插管从插入处滑出，静脉插管胜利后马上开始输液，并将输液速度调慢。
1.2 试验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；
13.5ml 由兔耳缘静脉内缓慢注入，留意观看家兔的反应。待麻醉后，将
1.3 试验仪器：铁架 XX，婴儿秤，RM6240 生物信号采集系统，手术剪 家兔仰卧固定于兔手术 XX 上，先后固定四肢及兔头。(以上步骤在做血压
1 把，止血钳，镊子，兔手术 XX，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血 调整因素时已完成)
Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhgic shock; microcircultion 1 试验材料
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1.1 对象：家兔 2.7kg；
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2.3 麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以 5ml/kg 的体重剂量
microcomputer biologicl signl cquisition nd processing system, the fourth chpter niml experiment technology. 3. The result: few bloodletting, blood pressure nd breth of decline, but in short time, rebounded, lrge bloodletting (45 ml), blood pressure, respirtory decline fster nd self recover cpcity reduction; Intrvenous tretment mesures for blood trnsfusion, roughly returned to norml. 4. Conclusion: smll mount of blood, the bodys own compenstory function cn mke blood pressure returned to norml; Excessive blood loss, the body will hppen decompensted role; The blood trnsfusion intrvenous tretment, blood pressure my restore bsic norml.
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救[摘要]目的：学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其机制及通过药物及输液治疗，了解各种治疗的不同效果。
方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。
待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。
结果：放血后，家兔血压下降，大量放血后血压明显下降，输血后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
结论：家兔少量放血后，家兔血压下降，但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。
家兔大量放血后，家兔血压明显下降。
输血、输液后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
[关键词]失血性休克、抢救、输液治疗。
1、实验材料与方法1.1实验动物家兔1.2主要试剂及仪器家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器、生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。
1.3实验过程1.3.1打开RM6240生物信号采集处理系统，接通压力传感器。
从显示器的试验项目中找出“循环试验”的“家兔血压调节”，打开一通道，快速调零。
1.3.2家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。
用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
1.3.3右侧颈总动脉进行动动脉插管：将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎，近心端用动脉夹将动脉夹住。
在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”形切口，将动脉插管朝心脏方向插入动脉，确认插入动脉后用备用线将血管与插管结扎固定，再将结扎线固定于插管上，防止插管从血管中滑脱。
机能学实验 失血性休克及抢救
失血性休克及抢救学号xxxxxxx姓名xxxxxx 日期2010-5-28一．实验目的：1.复制家兔失血性休克模型2.探讨失血性休克的发病机制3.分析失血性休克的抢救措施二．实验准备：1．动物：家兔一只，2.05kg，雄性2．药品：20%乌拉坦、肝素溶液（125U/ml）、3:2:1溶液（7.5%高渗盐水：低分子右旋糖酐：5%葡萄糖）、4% NaHCO3溶液、肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、异丙肾上腺素、多巴胺等3．器械：手术器械（剪毛剪，组织剪，止血钳，眼科剪，玻璃分针，止血夹等），注射器（50ml，20ml，10ml，1ml），针头（9号，16号），头皮针，动脉导管，气管插管，兔手术台，听诊器，压力换能器，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生理信号采集处理系统。
三．实验步骤：1．家兔称后固定于手术台上，左耳耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦共12ml麻醉，待家兔麻醉后仰卧位固定于手术台上。
2．颈部剪毛，分离右侧颈总动脉，动脉插管，并连接三通管记录血压。
3．分离气管，做气管插管，插管另一端连接呼吸流量换能器。
4．将针形电极分别插入四肢踝部皮下，导联线按右前肢（绿）、左后肢（红）、右后肢（黑）的顺序连接，以记录心电图波形。
5．腹部左侧距中线2cm左右剪毛，做纵行切口，打开腹腔，牵出部分回肠，肉眼观察失血前后小肠微循环的变化。
6．连接RM6240信号采集处理系统，监测血压、呼吸、心电等生理指标。
7．从颈总动脉放血，至血压降至40mmHg左右停止放血，共放血20ml。
维持大约15min 后，做血气分析，并观察以上生理指标的变化。
8．失血性休克模型完成，实施抢救（以下均从耳缘静脉注射）：（1）依次输全血5ml，3：2：1溶液10ml；（2）注射4% NaHCO3溶液5ml；（3）注射肾上腺素0.3ml；（4）注射酚妥拉明0.2ml；（5）注射异丙肾上腺素0.1ml；（6）继续扩容，依次输全血10ml，3：2：1溶液5ml；（7）注射去甲肾上腺素0.1ml，10min后再次注射0.2ml；（8）由于家兔血压一直维持在20mmHg左右，故继续采取扩容，注射肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等措施，但均未使血压恢复到正常水平，宣布抢救失败，实验结束。
家兔失血性休克及抢救实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔失血性休克及抢救实验报告篇一：休克实验报告家兔失血性休克及其抢救实验人员5人第2组班一、实验目的1.复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。
探讨其发生机制。
2.用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
二、实验材料和方法实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通管，铁架台，棉线，纱布实验仪器：电脑，Rm6240生物信号采集系统实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水0.1ml/10g三、实验对象家兔1只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试：首先打开电脑，选择medLab生物信号处理系统；从第1、2、3通道中选择1个通道，记录动脉血压(记录平均动脉血压、收缩压、舒张压和脉压)。
其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmh2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：2.8Kg，用20%氨基甲酸乙酯以5ml/Kg （体重）,耳缘静脉缓慢注射麻醉,共注射14ml,至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。
把兔子以背位固定法固定。
3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管（1）颈部备皮，作颈部，正中3～5cm切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。
（2）左颈总动脉插管术---测血压动脉插管及换能器肝素化，左颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
放开动脉夹记录正常动脉血压(平均血压、脉压差、心率)。
（3）右颈外静脉插管术—输血输液排掉输液管中的空气。
右颈静脉近心端动脉夹夹闭，远心端结扎，静脉前壁倒“V”切口，输液管插入，固定。
缓慢输液，保持通畅。
（4）.右颈总动脉插管术——失血造模用肝素抗凝剂排掉50ml注射器（其中保留少许肝素液）和动脉插管中空气，右颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救（一）实验目的1.观察休克发展过程中机体的变化。
2.掌握急性失血性休克模型复制方法。
3.分析讨论急性失血性休克发病机制。
（二）实验原理抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。
实验中所采用的药物主要的作用是：●山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。
●异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。
③使收缩压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血压下降明显。
在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。
●去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩血管，使小动脉、小静脉收缩。
②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。
大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。
●此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。
可以逐一试加看动脉升高情况比较扩容升压效果。
（三）实验材料1.实验对象：家兔。
2.实验器材及药品静脉输液装置一套，三通开关，50 ml、20 ml、10 ml注射器各一个，肝素（500μ/ ml），1％普鲁卡因，生理盐水，动物手术器械一套，呼吸血压描记装置，低分子右旋糖苷，20％乌拉坦溶液、台氏液、去甲肾上腺素、山莨菪碱（654-2）。
（四）实验方法1.家兔称重后，以25％乌拉坦4ml/kg，经耳缘静脉注射。
麻醉后，将家兔仰卧背位固定于手术台上。
2.颈部手术：颈部剪毛，正中切口5～6cm，分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈外静脉（表浅、色深，较粗，刺激时可见血管收缩变细）。
穿两线，备用。
3.股部手术：一侧股三角区剪毛，触及股动脉搏动，辨明股动脉走向，沿动脉走向做长约3～5cm切口，在股三角区即可见股动脉、股静脉和股神经，分离股动脉。
穿两线备用。
4.肠系膜微循环标本的制备（示教）：腹正中切口，沿左腹直肌旁作约6cm长的纵行切口，钝性分离。
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救家兔失血性休克及其抢救【摘要】目的：复制兔失血性休克模型；观察兔在失血性休克时动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响；探讨失血性休克的发生机制及救治方法。
方法：麻醉家兔，行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管术，连接换能器，打开程序，记录正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化5min。
待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，记录并观察血压变化20min。
结果：少量放血时，家兔血压下降，但是在短时间内回升；大量放血时，血压下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。
结论：家兔少量失血，家兔血压下降，机体的自身代偿作用可以在短时间内使血压恢复正常；失血过多，家兔血压明显下降，机体会发生失代偿作用；进行输血输液等治疗措施后，血压急剧上升，可恢复基本正常。
【关键词】休克失血性休克抢救【abstract】objective: copy the rabbit model of uncontrolled hemorrhagic shock; Observe the rabbit in the arterial blood pressure and heart rate in uncontrolled hemorrhagic shock, the influence of the color of the skin and mucosa; To explore the mechanism of uncontrolled hemorrhagic shock and treatment methods. Anesthesia methods: rabbit, line left and right on both sides of common carotid artery and right external carotid venous cannula, connection transducer, open the program, record the normal blood pressure, rapid bloodletting, 60 MMHG keeping blood pressure, blood pressure stable, clip the right common carotid artery, 5 min record and observation of blood pressure change. Again after being stable blood pressure, bleeding, blood pressure reduced to 40 MMHG and maintain,record and observation of blood pressure changes in 20 min. Results: when a small amount of bleeding, the rabbit blood pressure to drop, but recovered in a short time; A large amount of bleeding, blood pressure drops faster and resilience reduces;After infusion treatment measures such as blood transfusion, roughly returned to normal. Conclusion: a small amount of blood loss on rabbit, rabbit blood pressure to drop, the body's own compensatory function can make blood pressure returned to normal in a short time; Bled, rabbit blood pressure significantly decreased, the body will happen decompensated role; After infusion treatment measures such as blood transfusion, blood pressure rose sharply, basic can return to normal.【key words】 shock ；uncontrolled hemorrhagic shock ；The rescue【引言】大量失血引起休克称为失血性休克,常见于外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等。
家兔失血性休克(95)
机能实验：家兔失血性休克及其实验性治疗（此作业得分95分仅供参考）一、实验目的1、复制家兔失血性休克模型。
2、观察失血性休克时和抢救过程中家兔各项观察指标变化并探讨发生机制。
二、实验原理失血会导致血容量减少，是休克的常见病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减超过总血量的25-30%，超出机体的代偿能力时，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。
对于失血性休克的治疗，首先是强调止血和补充血容量，以提高有效循环血量和心排血量，改善组织灌流。
除此之外，可根据休克的不同发展阶段合理使用血管活性药物，改善微循环，必要时可给予抗炎等治疗。
三、实验材料1.实验动物：家兔（体重2.0kg以上）。
2.器材与药品：兔手术台，手术器械一套，注射器，动脉导管，静脉导管，三通管，气管插管，输液装置，丝线，体温计，木夹，压力换能器等。
25%乌拉坦，肝素生理盐水，生理盐水等。
四、实验方法与步骤（一）手术操作1.称重、麻醉、固定：取家兔一只，称重后按5ml/kg的剂量自耳缘静脉20%的乌拉坦溶液麻醉。
麻醉完成后将家兔固定于手术台上。
2.分离气管、血管并插管：切开颈部正中皮肤4-5cm，分离皮下组织和肌肉，游离气管，然后作一倒T形切口，插入气管插管，连接呼吸换能器，描记呼吸曲线；游离左侧颈总动脉，插入颈动脉导管，连接压力换能器，描记血压曲线；游离右侧颈外静脉，插入静脉导管，连接压力换能器，描记中心静脉压曲线。
3.心电的描记：分别将白色、红色、黑色心电电极放置在动物的左后肢、右前肢和右后肢皮下，描记心电波形。
4.预先按1ml/kg的剂量，经颈外静脉输入肝素钠对家兔给予肝素化处理。
（二）休克模型复制1.打开三通开关，使血液从颈总动脉流入含少量肝素抗凝的注射器内。
先缓慢放血20ml，观察血压变化情况；再次放血10ml，观察血压变化情况，直至平均动脉压降低至约40mmHg。
然后观察一段时间，若血压回升至45mmHg以上，则再次抽血，直至平均动脉压可维持在40mmHg达10min以上。
家兔失血性休克和抢救专家讲座
三低: CVP, CO, BP↓ 一高: TPR ↑
家兔失血性休克和抢救专家讲座
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休克发展过程和发病机制
以失血性休克为例，按照休克发展过程分为三期： Ⅰ期： 休克代偿期 Ⅱ期： 休克进展期 Ⅲ期： 休克难治期
家兔失血性休克和抢救专家讲座
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一、休克代偿期
微循环改变
家兔失血性休克和抢救专家讲座
家兔失血性休克和抢救专家讲座
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松开股动脉上动脉夹，快速放血，在15min 内使平均动脉血压（MAP）降至 40mmHg，经过调整放血量，维持MAP 于40 mmHg 15~20min 。用500ml烧 杯盛所放血液，烧杯中预先加入肝素 2mg/kg。统计失血期间动物各项观察指 标改变 将所放出血液用50ml注射器从静脉缓缓回 输，输血完成后15min ，统计各项指标改 变。
家兔失血性休克和抢救专家讲座
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【试验结果】
观察指标
正常
普通情况
血压
呼吸
尿量
肠系膜微循环 （管径、流速、数目） 家兔失血性休克和抢救专家讲座
放血后
输血后
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【结果分析】
呼吸
血压 （mmH
g）
尿量
放血前 （参考 35----60
值）
90---130
正常
•早
期
加
深
加
放血后
紧，
•降
晚 35---45
家兔失血性休克和抢救专家讲座
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休克病因和分类
一、休克病因
失血与失液 hemorrhagic shock
创伤 traumatic shock 过敏 anaphylactic shock
失血性休克
南京大学医学院机能综合实验报告实验二题目失血性休克及抢救一、实验目的1.复制家兔失血性休克模型2.探讨失血性休克的发病机理。
3.分析失血性休克的抢救措施。
二、实验材料及药品材料：家兔，动物手术器械（包括手术刀、粗剪、组织剪、眼科剪、止血钳），动脉夹，动脉插管，血压换能器，HX200型呼吸流量换能器，气管插管，铁支架，玻璃分针，结扎线，注射器，烧杯，生物信号采集处理系统。
药品：生理盐水，20%乌拉坦，1%利多卡因，125U/ml肝素，地塞米松，7.5%氯化钠，低分子右旋糖酐。
三、实验方法及现象1.打开电脑实验软件，调节仪器参数。
2.将血压换能器固定于铁架台，并连接生物信号采集处理系统。
3.从动物房取家兔一只，称重。
本实验家兔体重为1.982kg。
4.用20%乌拉坦对家兔于耳缘静脉注射麻醉。
观察动物结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等。
5.将家兔固定于手术台，颈前正中切开皮肤6—8cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉。
暴露气管、颈总动脉、颈静脉和迷走神经。
过程中，有轻微出血，可用棉球擦净。
分离两侧颈总动脉、颈静脉，气管。
各穿一线备用。
6.腹侧剪毛，观察肠系膜血管。
做气管插管、颈动脉插管、静脉插管。
7.记录一段正常血压、呼吸心电图波动曲线。
从颈总动脉放血（约40ml），直至血压降低并维持在40mmHg，观察并记录上述指标的变化。
8.做血气检查。
9.抢救药品及顺序如下：药品剂量（ml）高渗液 6全血 15右旋糖酐 15地塞米松 1四、实验结果（一）血压分析图1，为实验过程中记录下来的所有血压变化图图1由图1，我们可以大体看出家兔血压变化。
给家兔放血后，家兔血压快速下降，在抢救前，家兔血压有一定代偿性升高。
注射高渗液后，家兔血压明显上升。
注入全血、右旋糖酐、地塞米松后，家兔血液维持在正常水平。
以上是从图中直接反应出来的，下面进行统计分析通道收缩压舒张压平均压脉压差心率号(mmHg) (mmHg) (mmHg) (mmHg) (次/分)正常114.25 86.82 98.63 27.42 321抽血后65.33 34.76 47.01 30.57 282高渗后102.02 71.61 83.09 30.41 236全血111.68 80.36 94.61 31.31 275 右旋糖酐109.53 78.07 91.84 31.46 282地塞米松114 80.12 95.74 31.88 290表1动脉血压图2由统计分析可以看出，家兔失血后，血压降低。
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救张丽丹（浙江中医药大学2010级口腔医学二班1组，20101160202）摘要【目的】：学会复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】短时间内的少量的失血是可恢复的，大量失血是不可恢复的，自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词失血性休克；静脉输血；代偿期；失代偿期引言休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
[1]失血性休克后大量输液与自身血液的输血，可以改善微循环，使血压快速恢复正常值。
1．材料和方法1.1实验材料1.1.1 实验动物：家兔1.1.2实验仪器：家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器1.1.3实验药品：生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。
1.2实验方法1.2.1麻醉手术家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。
用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
1.2.2切开皮肤左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）。
术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
实验 家兔失血性休克及其抢救 gyx
实验家兔失血性休克及其抢救【实验目的】1. 复制失血性休克的动物模型。
2. 观察失血性休克时机体的一般状态及呼吸、血压、心率、中心静脉压的变化及微循环改变，了解失血性休克的病理生理过程。
3.了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。
【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血性休克是临床上常见的急症，由于血容量减少，机体有效循环血量降低，从而使机体重要脏器血液灌流减少，而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器官的缺血，使器官功能进一步障碍。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。
但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
本实验采用颈总动脉放血方法，造成机体有效循环血量减少，复制失血性休克。
通过实验进一步了解失血性休克时心、肺、肾等器官的功能障碍，加深对失血性休克的认识。
由于微循环障碍是失血性休克的基础，治疗的主要措施就是改善微循环灌流，因此，实验中采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌流状态，对失血性休克进行抢救。
【实验对象】家兔【实验学时】4学时【器械与药品】常规手术器械，气管插管，动脉套管，动脉夹，婴儿秤，兔固定台，5ml、20ml、50ml 注射器，输液装置，水检压计，二道生理记录仪，滤纸，烧杯，丝线，粗棉线。
20%乌拉坦，1%肝素，3.8%枸橼酸钠，生理盐水。
【步骤与方法】1. 麻醉和固定家兔称重后，自耳缘静脉注射20%乌拉坦（5ml/kg.bw）进行全身麻醉，动物仰卧固定，剪去手术部位被毛。
家兔的失血性休克与抢救
家兔失血性休克及抢救实验目的：1.学习哺乳类动物动脉血压的直接描述方法，观察神经和某些体液因素对微循环机能的影响。
2.复制几种类型休克的动物模型，并通过电视录像，观察休克发生发展过程中血压和微循环血流等的变化，加深对于”休克发病的关键不在于血压，而在于血流“的理论认识。
3.设计抢救方案，加深对休克防治原则及所用药物药理作用的理解，培养独立分析问题，解决问题的能力。
实验原理：1. 动脉血压是动脉血管内的血液对于单位面积血管管壁产生的压力。
影响动脉血压的因素有心脏每搏输出量、心率、外周阻力、主动脉与大动脉的顺应性以及循环血量和血管系统的比例。
2. 动脉血压是心血管系统活动的的反映，影响心血管系统的神经与体液因素有交感神经、迷走神经、交感缩血管神经、肾上腺素与去甲肾上腺素。
减压反射是神经调节主要方式，减压反射的构成为感受器：颈动脉窦与主动脉弓传入神经：减压神经与迷走神经神经中枢：延髓传出神经：交感神经与迷走神经效应器：心肌细胞膜上的受体。
而血管舒缩功能及神经体液调节异常将导致循环系统功能紊乱，引起血压改变，甚至导致休克的发生。
4.休克：各种强烈的致病因子作用于机体引起的急性循环衰竭，其特点是微循环障碍、重要器官灌流不足和细胞功能代谢障碍，由此引起的全身危重的病理过程。
5.休克的分期：一期:缺血性缺氧期二期:淤血性缺氧期三期:微循环衰竭期6.休克的防治原则：快速输血并且大量补液，快速扩充血容量。
在快速扩充血容量的基础上，选择性的运用血管活性药物。
实验对象：家兔（1.15kg）实验步骤：1.动物称重，麻醉，仰卧固定。
2.颈部手术操作：切开皮肤→分离组织与肌肉→分离一侧颈总动脉→全身肝素化→动脉插管→描记动脉血压3.分离颈外静脉，向颈外静脉输入生理盐水。
4.分离股动脉向心方向插管。
5.少量放血开放股动脉上动脉夹，自股动脉少量放血，当放血量达全身血量10%时夹闭股动脉，观察各指标15分钟。
6.大量放血放血量约为全身血量的25%，观察各指标15分钟。
家兔失血性休克及抢救
烦躁 不安
实验内容
一、术前准备 称重，麻醉，固定 手术野备皮：颈部，腹部，左侧腹股沟，剑突处 二、颈部手术 颈部正中切口，钝性分离皮下组织，分离气管（可以不插） 左侧颈总动脉插管记录血压，右侧颈外静脉插管建立输液通道 剑突处连张力换能器记录呼吸曲线 三、股部手术：股动脉插管 四、腹部手术：膀胱插管
休克分期
1. 休克早期：缺血性缺氧期 2. 休克进展期：淤血性缺氧期 3. 休克晚期：休克难治期
机制 交感-肾上腺髓质系统兴奋
儿茶酚胺↑
心率↑
腹腔内脏、皮 汗腺
心肌收缩力↑ 肤小血管收缩 分泌↑
外周阻力↑ 肾缺血 皮肤缺血
中枢神 经系统
兴奋
BP (–) 脉搏细速 脉压差↓
少尿 面色苍白 出冷汗 四肢冰冷
新实验操作1：
记录尿滴：膀胱插管
新实验操作2：
颈外静脉插管：建立输液通道
[观察指标] 实验结果
平均动脉压
（mmHg）
心率 呼吸 尿量 耳朵口唇 体温
(次/分) (次/分) （滴/分） 颜色
实验前 少量失血 大量失血 输血 输血后5分钟 输血后15分钟
少量失血(少于10%, 约10ml) 快速大量失血(20%-30%, BP30-40mmHg)，维持20分钟
பைடு நூலகம்
[实验注意]：
1. 动静脉插管是必须掌握的基本技术，是本 次实验的关键。插管不要堵塞，不能滑脱！ 固定要结实！
2. 耳缘静脉要保护好，多次注射
[思考]：
1. 休克模型是否复制成功？根据是什么？ 2.少量失血家兔是否发生休克？ 3.判断本实验组家兔处于哪一个期。为什么？
家兔失血性休克及抢救
[实验目的]：
1.复制家兔失血性休克的动物模型 2. 观察分析休克发生发展过程中家兔主要体 征和血压的变化
失血性休克及其抢救
失血性休克及其抢救X X X（浙江中医药大学XXX（专业）XX（班级）XX（几组）XX（学号））【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。
观察兔在失血性休克的表现，探讨失血性休克的发生机制。
了解失血性休克的抢救。
方法：用右颈总动脉放血，左颈总动脉用以测量血压，右颈总静脉输血、输液进行抢救。
结果：少量放血(10ml)时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血，使，血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等抢救措施后，大致恢复正常。
结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。
【关键词】失血性休克抢救1材料和方法1.1实验动物：家兔（由浙江中医药大学动物中心提供）1.2实验器械：动物手术器械（手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针、丝线、注射器、兔台），动脉插管，测压管道，压力换能器，体重秤，电刺激连线，RM6240微机生物信号采集处理系统。
1.3药品和试剂：氨基甲酸乙酯，生理盐水，肝素。
1.4实验系统连接及参数设置：血压换能器固定在铁支柱上，高度与心脏同一平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
1.5麻醉固定取家兔一只，称重，用20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg沿耳缘静脉缓慢注射，至呼吸深而慢，皮肤夹捏反射迟钝为至，背位固定。
1.6颈部手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。
用玻璃分针分离两侧颈总动脉，穿两根线备用。
分离右侧颈外静脉，穿两根线备用。
1.7颈总动脉插管在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用。
用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。
打开动脉夹。
稍稍提起颈静脉远心端的细线，用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口，将插管向心方向插入颈静脉内，扎紧固定。
家兔失血性休克及抢救
实验目的
1. 掌握失血性休克动物模型的复制方法。 2. 观察失血性休克时机体的一般状态及呼
吸、血压、心率、中心静脉压、尿量的变 化，了解失血性休克的病理生理过程。 3. 了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。 。
实验原理
失血性休克是临床上常见的急症，由于血容量减少， 机体有效循环血量降低，从而使机体重要脏器血液 灌流减少，而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器 官的缺血，使器官功能进一步障碍。本实验采用颈 总动脉放血方法，造成机体有效循环血量减少，复 制失血性休克。通过实验进一步了解失血性休克时 心、肺、肾等器官的功能障碍，加深对失血性休克 的认识。由于微循环障碍是失血性休克的基础，治 疗的主要措施就是改善微循环灌流，因此，实验中 采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌 流状态，对失血性休克进行抢救。
9. 停止放血，倒掉输液瓶中剩余的生理盐水，将注 射器内的血液加入到输液瓶中，快速从静脉输回放 出的血液和生理盐水，进行抢救，输血输液总量为 3倍失血量，速度为80-100滴/min。
10. 输完血液及生理盐水后，观察动物一般状态及 各项生理指标，评价抢救效果。
11. 若实验中实验小组较多，输液治疗组还可分为： 与失血量等量的生理盐水＋失血全血＋去甲肾上腺 素（0.75mg/kg.bw），2倍失血量生理盐水＋失血 全血＋654-2（1mg/kg. bw）。
4. 本实验中各管道内最易发生凝血，当 出现以上情况后应如何处理？
3. 自耳缘静脉输入1%肝素1ml/kg. bw抗凝后，用丝线结扎颈总 动脉远心端，动脉夹夹闭近心端，插入充满枸橼酸钠的动脉套管 结扎固定，将套管一端连于压力换能器，经记录仪记录血压，另 一端备放血用。
4. 输液装置内加入生理盐水200ml，排净输液管道及水检压计内 的气泡，结扎颈浅静脉远心端，插入与输液装置及水检压计相连 的静脉插管，检查通畅后以10~15滴/分速度缓慢输入较多，要减少手术性出血。对部分 项目（如输尿管插管），手术可少做或不做，以确 保实验的成功。
家兔失血性休克及抢救-开题答辩
12法八 1小班 第1小组
左亦攸 韩启新
实验目的
• 复制家兔失血性休克模型。
• 观察失血性休克和抢救休克时， 动物的一般表现、主要生理指标 和微循环变化。 • 对比不同抢救方法对各项指标的 影响，探讨不同抢救方法的抢救 效果。
实验意义
• 了解失血性休克时，家兔一般表现、 主要生理指标和微循环变化。 • 探讨血管活性药物在家兔失血性休克 复苏中的作用。
实验动物
• 家兔2只 • 性别、年龄、 体重等各项指 标相近
实验器材
• • • • • • • PowerLab主机 微循环生物信号处理系统 桥式放大器 i-STAT血气分析仪 呼吸压力换能器 血压换能器 电子天平 • • • • • • • • 兔台 手术器械一套 动脉夹1个 动脉插管2个 气管插管 静脉插管 输尿管插管 5ml、20ml、50ml注射器 各2支 • 烧杯2个
颈内动脉插管
全身肝素化
记录正常情况
实验步骤—失血性休克造模
• 第一次放血： • 缓慢放血（＜2ml/min）至平均动脉 压降至原水平2/3，记录失血量。 • 稳定观察3分钟，记录一般表现和各 种指标的变化，注意机体是否出现 代偿和休克表现。 • 观察结束后将血液回输。
实验步骤—失血性休克造模
• 第二次放血：
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家兔失血性休克及治疗
实验设计书研究题目：家兔失血性休克及治疗班级：09级口腔设计人：王梦含设计组成员：李洋，崔聪聪，李易轩，吴佳梦【理论依据及研究现状】休克就是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
目前公认的是微循环障碍学说，根据休克过程中微循环的改变，把休克分为三期：休克早期（微循环缺血期、缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期、淤血性缺氧期）；休克晚期（DIC或多器官功能衰竭）。
不管是哪一种类型的休克，到了休克期，都存在有效循环血容量的严重不足和微循环功能的障碍，而且这两者可以相互促进，形成恶性循环。
所以在抢救休克时，首先要扩充血容量，在此基础上改善微循环的状态。
主要措施包括：充分补充血容量和适当选用血管活性药物。
去甲肾上腺素α受体激动药，主要作用有（1）激动血管α1受体，收缩血管，使小动脉、小静脉收缩。
（2）小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。
大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。
山莨菪碱，为阻断M胆碱受体的抗胆碱药，作用与阿托品相似或稍弱。
可使平滑肌明显松弛，并能解除血管痉挛（尤其是微血管），同时有镇痛作用。
【研究内容】1、复制家兔失血性休克。
2、了解失血性休克发病机理及各种急救治疗的不同效果。
【研究方法】实验并观察。
【实验对象】家兔。
性别：无要求。
规格：2.0~2.5kg 数量：2只【实验组与对照组的处理】第一只家兔在输液同时加入去甲肾上腺素。
第二只家兔在输液同时加入山莨菪碱。
对比两组的治疗效果。
【仪器与药品】仪器：Medlab生物信号采集处理系统、兔盒、称重天平、兔手术台、手术器械、输液输血装置、测中心静脉压装置、气管插管、动脉和静脉导管、输尿管插管、温度计。
药品：20％乌拉坦、0.5％肝素、生理盐水、去甲肾上腺素，山莨菪碱。
【实验步骤】1．称重，在耳缘静脉注入20％乌拉坦（4ml/kg）进行全身麻醉，固定在手术台上。
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颈内动脉插管
全身肝素化
记录正常情况
实验步骤—失血性休克造模
• 第一次放血： • 缓慢放血（＜2ml/min）至平均动脉 压降至原水平2/3，记录失血量。 • 稳定观察3分钟，记录一般表现和各 种指标的变化，注意机体是否出现 代偿和休克表现。 • 观察结束后将血液回输。
实验步骤—失血性休克造模
• 第二次放血：
实验步骤—失血性休克抢救
第一组 回输全身循环血量10%全血 生理盐水全身循环血量10% 生理盐水0.33ml/kg 5%葡萄糖溶液5ml 生理盐水0.33ml/kg 5%葡萄糖溶液5ml 生理盐水0.33ml/kg 5%葡萄糖溶液5ml
• 观察血压、呼吸频率 、心电图、心率、尿 量、微循环状态 • 记录恢复正常的时间 • 取血进行血气分析
家兔失血性休克及抢救
12法八 1小班 第1小组
左亦攸 韩启新
实验目的
• 复制家兔失血性休克模型。
• 观察失血性休克和抢救休克时， 动物的一般表现、主要生理指标 和微循环变化。 • 对比不同抢救方法对各项指标的 影响，探讨不同抢救方法的抢救 效果。
实验意义
• 了解失血性休克时，家兔一般表现、 主要生理指标和微循环变化。 • 探讨血管活性药物在家兔失血性休克 复苏中的作用。
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实验动物
• 家兔2只 • 性别、年龄、 体重等各项指 标相近
实验器材
• • • • • • • PowerLab主机 微循环生物信号处理系统 桥式放大器 i-STAT血气分析仪 呼吸压力换能器 血压换能器 电子天平 • • • • • • • • 兔台 手术器械一套 动脉夹1个 动脉插管2个 气管插管 静脉插管 输尿管插管 5ml、20ml、50ml注射器 各2支 • 烧杯2个
药品及用量
药品 戊巴比妥钠 生理盐水 肝素 山莨菪碱 多巴胺 浓度 1% 0.9% 0.7% 1% — 用量 3ml/kg 5ml/kg 3ml/kg 1ml/kg 0.5mg
实验步骤
手术
失血性休克 造模
失血性休克 抢救
实验步骤—手术
麻醉与固定 观察微循环 心电图描记
气管插管
颈外静脉插管
输尿管插管
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实验原理
• 多巴胺
• 一种中枢和外周神经递质，去甲肾上腺素的生物 前体。它作用于三种受体：血管多巴胺受体、心 脏β1-受体和血管α-受体。 • 1-3μg／(kg· min)时主要作用于脑、肾、和肠系膜 血管，使血管扩张，增加尿量； • 2-l0μg (kg· min)时主要作用于B-受体，通过增强心 肌收缩能力而增加心输出量，同时也增加心肌氧 耗； • >10μg (kg· min)时以血管α-受体兴奋为主，收缩血 管。
山莨菪碱-多巴胺组 放血前 抢救前 抢救后
Hb 结论
预期结果
• 少量失血机体能够代偿。
• 大量失血在有效的措施下均能抢救 成功。
• 交替使用血管活性药物的家兔各项 指标更快稳定，更早复苏，且肾功 能和形态学检查显示其肾脏损伤程 度较小。
参考文献
【1】《医学功能学科实验教程》第2版 【2】低血容量休克复苏指南（2007），《中国危重病 急救医学》 2008 【3】景炳文，创伤与失血性休克，《中华急诊医学杂 志》，2003年 3月第 12 卷第 3 期 【4】杜晓冬，余海放，王玲，ISS、补液量、BE 对创伤 失血性休克患者的影响，现代预防医学2005 年第32 卷第7 期 【5】魏海滨，陈锦华，王鑫，联合应用血管活性药物 治疗失血性休克的临床研究，基层医学论坛2011 年 第15 卷增刊 【6】王炫，王焕，多巴胺联合山莨菪碱治疗重度失血 性休克150例疗效分析，《医药世界》 2006年S2期 【7】方锦祥，家兔失血性休克模型建立及解救方法比 较，《赤峰学院学报》2012年3月第28卷第3期
实验步骤—失血性休克抢救
第二组 回输全身循环血量10%全血 生理盐水全身循环血量10% 1%山莨菪碱0.33mg/kg 0.1mg/kg多巴胺 （溶于5ml5%葡萄糖溶液） 1%山莨菪碱0.33mg/kg 0.1mg/kg多巴胺 （溶于5ml5%葡萄糖溶液） 1%山莨菪碱0.33mg/kg 0.1mg/kg多巴胺 （溶于5ml5%葡萄糖溶液）
生理盐水组 放血前 抢救前 抢救后 山莨菪碱多巴胺组 放血前 抢救前 抢救后
实验结果
分组 生理盐水组 山莨菪碱多巴胺组
血压
呼吸频率
心电图
心率
尿量
微循环状态
指标 温度 pH PCO2 PO2 BEecf [HCO3-] TCO2 SO2 Na+ K+ iCa2+ Hct
生理盐水组 放血前 抢救前 抢救后
• 由颈动脉快速放血，使全身循环源自 量下降30%。 • 稳定观察3分钟，记录一般表现和各 种指标的变化，注意机体是否出现 代偿和休克表现。 • 取血进行血气分析。
实验步骤—失血性休克抢救
第一组 回输全身循环血量10%全血 生理盐水全身循环血量10% 生理盐水0.33ml/kg 5%葡萄糖溶液5ml 生理盐水0.33ml/kg 5%葡萄糖溶液5ml 生理盐水0.33ml/kg 5%葡萄糖溶液5ml 第二组 回输全身循环血量10%全血 生理盐水全身循环血量10% 1%山莨菪碱0.33mg/kg 0.1mg/kg多巴胺 （溶于5ml5%葡萄糖溶液） 1%山莨菪碱0.33mg/kg 0.1mg/kg多巴胺 （溶于5ml5%葡萄糖溶液） 1%山莨菪碱0.33mg/kg 0.1mg/kg多巴胺 （溶于5ml5%葡萄糖溶液）
病因治疗
复苏指南 （2007）
维持体温 正常
实验原理
• 少量失血时，有效循环血量的减少 可通过机体的一系列机制代偿，使 血压不出现明显的降低。 • 当快速大量失血超过全身循环血量 20%时，有效循环血量急剧减少， 超出机体的代偿能力，引起心排出 量减少、血压降低、微循环障碍， 导致休克。
实验原理
• 血管活性药
• 低血容量休克的病人一般不常规使用 血管活性药，
• 研究证实这些药物有进一步加重器官 灌注不足和缺氧的风险。
• 临床通常仅对于足够的液体复苏后仍 存在低血压或者输液还未开始的严重 低血压病人。
实验原理
• 山莨菪碱 • M受体拮抗剂，可使平滑肌明显松弛，解除 血管痉挛，改善微循环灌流。
• 观察血压、呼吸频率 、心电图、心率、尿 量、微循环状态 • 记录恢复正常的时间 • 取血进行血气分析
实验步骤—肾脏的病理学检查
• 肾功能检查 • 观察肾脏大体和镜下 形态学改变 • 对比两种抢救方法对 肾脏灌注的影响 （仅设计，不实施）
实验结果
分组 时间 血压 呼吸频率 心电图 心率 尿量 微循环 状态
研究现状
• 休克的定义： • 由各种致病因素(创伤、感染、低血容量、心源性 和过敏性等) 引起 • 有效循环血量不足 • 急性微循环障碍、组织灌流不足
• 导致组织与细胞缺血、缺氧、代谢障碍和器官功 能受损 • 失血性休克常由创伤引起, 属低血容量性休克。
研究现状
血管活性 药物 液体复苏 纠正代酸