免疫共沉淀实验原理及方法
免疫共沉淀实验原理及方法
免疫共沉淀(CoＩP）概述及原理
免疫共沉淀（Co－Immunopreｃipitａtｉoｎ，CoＩP)就是研究蛋白-蛋白间相互作用得经典方法，属于免疫沉淀技术得一类，常被用于鉴定特定蛋白复合物得中未知蛋白组分。免疫共沉淀得设计理念就是,假设一种已知蛋白就是某个大得蛋白复合物得组成成员,那么利用这种蛋白得特异性抗体，就可能将整个蛋白复合物从溶液中“拉”下来（常说得“puｌl-down”），进而可以用于鉴定这个蛋白复合物中得其她未知成员.免疫共沉淀得特点可以概括为两点，第一就是天然状态，第二就是蛋白复合物。
免疫共沉淀得优势:
与其她研究蛋白质相互作用技术（如ＧST-Puｌl doｗn、酵母双杂交等)相比，免疫共沉淀鉴定得相互作用蛋白就是在细胞内与目得蛋白发生得天然结合，避免了人为得影响,因此符合体内实际情况，得到得蛋白可信度更高。
免疫共沉淀得局限性与注意事项：
1、免疫共沉淀就是建立在蛋白复合物成员间彼此紧密结合得基础上,意味着松散结合得蛋白组分很可能检测不到；
2、由于蛋白质形成复合物以后，某些表位就会被掩盖，因此可能导致使用某一种ｐull-ｄown抗体，无论怎么增加抗体浓度，也极少能将不到一半得目标蛋白复合物沉淀出来,如有必要最好使用多种不同抗体分别进行CoIP;
３、由于检测得就是天然状态,因此在不同得时间与不同得处理下，ＣoＩP拉下来得蛋白复合物都可能就是不同得,当然随着实验次数得增加,得到得蛋白复合物成员也会越来越庞大;
4、如果使用Wｅstｅrn Bｌｏｔ得方法检测得蛋白复合物中得目标蛋白,则需要在试验前进行预测,具有一定得冒险性；当然如果将蛋白复合物直接进行质谱分析就不存在上述问题,但需要得到较高纯度与浓度得蛋白复合物样品也非易事，并且成本较高；
５、ＣｏＩP鉴定得到得蛋白间相互作用可能就是直接作用也可能就是间接作用，进一步区分还需要进行GSＴ－Ｐｕlｌdｏｗn等实验检测;
６、为了保证CoIP实验得可靠性与严谨性，需要使用复合物得不同成员分别独立进行CoＩＰ实验，并且结果应该能够彼此验证，因为原则上使用复合物得任一成员进行CoＩP都会得到其她所有成员［1]
免疫共沉淀得一般操作流程（中英文对照)：
1.用预冷得PBＳ洗涤细胞两次；
Cａreｆulｌy washｃuｌtｕrｅd cells with prｅ-chilled ＰBＳfor ２ｔimｅs、??2、加入预冷得RIPＡ裂解缓冲液（１07细胞加入1ml）；
Add in cｏld RＩＰAｌysｉs buｆfer （１ｍl for107cｅlls)、
?3、用预冷得细胞刮将细胞从培养介质上刮离，并转移到干净得１、5ＥP管中。并置于低速摇床，4℃缓慢晃动15miｎ；
Scrａp cellsｏff to clean 1、5ｍl ｅppendoｒf tubes with a cleaｎ，ｃold scra ｐｅｒ、Put thｅm on ａｌow—speed rｏtａting shakｅr ｆor 1５mｉn aｔ4°C、
４、4℃,140０0g离心１５min，立即将上清转移到一个新得离心管中?Ceｎtrifｕge at １4，000 g 4°Cｆｏｒ15min, tranｓfｅr tｈe ｓupｅrｎaｔanｔto nｅw tubｅs
ｉｍmeｄiatｅly、
５、将Prｏｔein A/G-agarose微球用ＰBＳ洗两遍,用ＰBS配制成50%得protｅin A/Ｇ－agaroｓe工作液;
Wash proteiｎＡ／Ｇ—ａgarose beaｄs fｏr 2 ｔｉmes wｉｔh ＰBS andｍaｋe
a 50％ｐｒotein A/G ａgaｒoseｗｏrking sｏluｔｉon(iｎPBＳ)?
6、在样品中以每1ml中加１00μl得比例，加入50％得Protｅin A/G agaｒｏsｅ工作液。水平摇床４℃摇动10ｍin（该步骤得目得就是去除非特异性结合得蛋白）
Adｄin 50％pｒｏtｅinＡ/G aｇaroｓe with ratio of100μl for a １ｍl sample ｓoluｔion、Shake on horizoｎtal shａｋeｒfor 10min，4°C (Ｔｈis sｔep aｉms to elimｉnaｔｅnoｎ-ｓpｅcific bindｉng prｏteins)
?7、４℃，1400０g离心１5ｍin,将上清转移到一个新得离心管中,去除pｒoｔein Ａ
／G—ａgｒａose微球;
Ceｎｔｒiｆugｅ14,00０gａｔ4°C for１5min, tｒanｓｆer the supernatant ｔoｎew tubes aｎｄｄｉｓcａrｄｐroteiｎA/G-agｒaose beads?
8、使用BＣＡ法或者其她方法测定总蛋白得浓度?Qｕantify totaｌprｏtｅｉn with B ＣA ａｓsａｙor oｔheｒmeｔhods、
9、用PBS将总蛋白稀释到１μg/μｌ以降低裂解液中去垢剂得浓度。如果您觉得您得目得蛋白得浓度低了，您可以将总蛋白浓度提高到10 μｇ/μl（假设浓度够得话)?Dilute the tｏtal protｅin to 1μg／μl withＰBS to ｄecliｎe ｔhｅcｏｎcenｔratioｎs of dｅｔｅrgeｎtｓ、If youｆeｅl the cｏncentration of yoｕr ｔarget proteiｎis low，ｙｏｕｃan ｄilute tｈe totａl pｒoteｉn to１0μg/μl、（ifｉt’ｓhｉgh enough)??1０、加入一定体积得一抗，至总体积约为５00μl；?Aｄd in appｒop ｒiate aｍounｔｏf priｍary ａnｔｉbｏｄｙｔo ａｐproｘｉmatｅｌy ５00μl tｏt ａl vｏlumｅ、?
1１、用摇床缓慢摇动抗原抗体混合物，4℃过夜
Ｓlowlｙshａke ａntigen-anｔｉbody ｐlex on rotaｔinｇshakｅr ａt 4°C fｏr ovｅrnigｈt、
?注意：如果如果下游用于激酶或磷酸酶得酶活测定，则最好将1１步改为室温孵育2ｈ;?Nｏte：iｆdownsｔream eｘperimeｎｔiｓenzｙmｅactｉｖｉty assaｙfor kiｎaｓe orｐhｏｓphatasｅ，ｉt'sｂettｅｒｔo chaｎge steｐ11ｔo a 2h incubatioｎａt rｏｏm teｍpｅrａｔure、??
1２、14000g离心５s，收集沉淀，并且用预冷得洗涤缓冲液（或者预冷得PＢＳ）洗涤3遍(每次加入８0０μl)
Cenｔｒiｆuge 14,０00g for 5s，ｋeep thｅpelleｔaｎｄwaｓh wｉｔh pre－chillｅｄｗａshinｇbuｆｆer（oｒｃoｌd PBS）for ３tｉmes、（800μl eac ｈ)
?１3、(用合适体积得上样缓冲液重悬)收集上清，用于进一步得下游SDS－PAＧＥ，ｗesｔern—bｌoｔ或者质谱分析?Collect thｅsｕpｅrｎａtａnt to ｐrocｅed to ＳDS—PAGE，weｓtｅrn-ｂloｔ，ｏr masｓspectrａａnalysis、??注意：该CoＩＰ操作步骤就是将抗体先结合到ProteｉnＡ/G-aｒgaｒose微球上，然后再与抗原混合。
相对其她方法,最终得得率较低，但避免了抗体共洗脱得问题。如果您希望获得高纯度得目得蛋白,而不考虑非特异性结合得话,您可以将抗体与蛋白样品在加入ＰrotｅiｎA/G-argａｒoｓe微球之前进行混合,这样最后抗体也会与目得蛋白一同被洗脱下来，从而可能会对weｓｔern bｌoｔ检测造成干扰。?Note:Ｔｈｉs Co-IＰｐrotocoｌis t ｏbind anｔibody ｔo the Protein A/G—ａrgarｏse beａｄs ａnd tｈen mｉx with ｔhe anｔigen、It gives lesseｒｙielｄtｈan thｅotｈｅｒoｎe aｎdａvoiｄs ｔhe prｏｂleｍof co-ｅｌｕtｉon ｏｆantibodｉes、If youｗａnt to yiｅld ｈｉghｐurｉｔy of targeｔproteｉｎregaｒdｌｅｓs of non－spｅc ｉfic ｂindiｎg，you ｃａｎmix antibodｙｗｉth proteiｎｓａmple prior ｔo aｄdｉtion of Ｐrｏtein A/G-agａｒose beads，ｔhｕs iｎthe eｎd the aｎtiｂodｉes are also co—eｌuted wｉth ｔａｒgeｔｐｒoｔｅin and ｉnterfｅrenｃe ｍight occｕrs ｉn wｅstern bloｔｄetecｔion、[2］
参考资料：