动物药剂学实验指导

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动物药学专业实习报告

动物药学专业实习报告

动物药学专业实习报告一、实习背景与目的在动物药学专业的学习过程中,我深知理论与实践相结合的重要性。

为了将课堂上学到的理论知识应用到实际工作中,提高自己的专业技能和综合素质,我选择了在[实习单位名称]进行为期三个月的动物药学专业实习。

本次实习的主要目的是通过参与动物药品的研发、生产、质量检测以及临床应用等环节,深入了解动物药学的实际应用,为未来的学习和工作奠定坚实的基础。

二、实习内容动物药品研发与生产在实习期间,我参与了动物药品的研发与生产工作。

通过参与实验室的科研项目,我了解了动物药品研发的基本流程和关键技术,如药物筛选、药效评价、制剂工艺等。

同时,我也参观了生产车间,了解了动物药品的生产流程和质量控制要求,对药品的生产过程有了更加直观的认识。

动物药品质量检测在实习过程中,我参与了动物药品的质量检测工作。

通过学习和操作各种检测仪器和设备,我掌握了动物药品的质量检测方法和标准,如理化性质检测、微生物限度检测、药效学评价等。

我参与了样品的采集、处理和检测工作,学会了如何根据检测结果判断药品的质量,并对不合格药品进行了处理。

动物药品临床应用在导师的指导下,我参与了动物药品的临床应用工作。

通过参与临床试验和病例分析,我了解了动物药品在实际应用中的效果、副作用以及注意事项。

同时,我也与兽医进行了深入的交流,了解了他们在临床实践中对动物药品的需求和建议,为药品的研发和生产提供了有益的参考。

法律法规与伦理培训在实习期间,我还参加了动物药品相关法律法规和伦理规范的培训。

通过学习,我了解了动物药品的研发、生产和销售需要遵守的法律法规和伦理规范,以及如何在实际工作中遵守这些规定。

这对我未来的职业发展和行为规范具有重要的指导意义。

三、实习收获与体会实践能力的提升通过本次实习,我的实践能力得到了显著提升。

我不仅掌握了动物药品的研发、生产、质量检测以及临床应用等基本技能,还学会了如何运用所学知识解决实际问题。

这些实践经验对我未来的学习和工作具有重要的指导意义。

理学小学期药理实验动物基本知识及基本操作实验方法

理学小学期药理实验动物基本知识及基本操作实验方法
本次实验内容
实验一 利尿药、脱水药的利尿作用的观察 实验二 尼可刹米对兔呼吸兴奋作用观察 实验三 组胺与抗组胺药对离体肠肌和离体子宫作用的观察 实验三 缩宫素和麦角新碱对离体子宫兴奋作用的观察
目的:
1.验证所学理论,加深对理论知识的理解,巩固兽医药理学的知识。 2.通过实验掌握有关兽医药理学的技术和方法,培养学生客观地对生命进行观察、比较和综合分析能力以及创新思维和创新能力。
一、 实验动物(experimental animal)
婚垫
雄蟾
(一)实验动物的种类
蟾蜍(Toad)
蟾蜍属两栖动物,其一些基本生命活动与哺乳动物近似,其离体组织和器官所需的生理环境比较简单 (无须供氧和恒温)。 蟾蜍常用于神经生理、肌肉生理、心脏生理,微循环、水肿等实验。
三、实验动物的麻醉
常用麻醉方法 全身麻醉 吸入麻醉 注射麻醉 局部麻醉
三、实验动物的麻醉
麻醉操作要求 麻醉的基本原则 注意不同个体的耐受性 及时判断麻醉的深浅 静脉麻醉坚持先快后慢原则 补充麻醉 麻醉注意事项
四、实验动物手术
术前准备 理论准备:了解结构、方法、应急措施等 材料准备:动物准备、器械准备 药品准备、其他准备 仪器准备
手术器械与使用
1.手术刀
执刀姿势视切口大小、位置等不同而有指压
执刀姿势视切口大小、位置等不同而有指压式(又称琴弓式或执弓式)、捉刀式(或称抓持式)、执笔式及反挑式(外向执笔式)等持法,见图6中a-d。指压式为最常用的一种执刀方法,发挥腕和手指的力量,多用于腹部皮肤切开及切断钳夹的组织。抓持式用于切割范围较广、用力较大的坚硬组织,如筋腱、坏死组织、慢性增生组织等,力量在手腕。执笔式用以切割短小切口,用力轻柔而操作精细,如分离血管和神经以及切开腹膜小口等,动作和力量主要在手指。反挑式的手法是刀刃由内向外挑开,以避免深部组织或器官损伤,如腹膜切开或挑开狭窄的腱鞘等。

动物药理实训实验报告总结

动物药理实训实验报告总结

一、实验背景药理学是研究药物与生物体相互作用及其规律的学科,是医学科学的重要基础学科之一。

为了加深对药理学知识的理解,提高实验技能,我们开展了动物药理实训实验。

本次实验通过动物实验模型,对药物的药效、毒性、代谢等药理学特性进行观察和测定。

二、实验目的1. 熟悉动物实验操作流程,掌握实验动物的选择、处理、给药、观察、记录和数据分析等基本技能。

2. 理解药物作用机制,观察药物在不同剂量下的药效和毒性反应。

3. 培养科学思维和实验操作能力,提高实验报告撰写水平。

三、实验内容1. 实验动物的选择与处理本次实验选用小鼠作为实验动物,实验前对小鼠进行编号、称重、性别鉴定等处理,确保实验数据的准确性。

2. 药物给药根据实验设计,采用口服或腹腔注射等方式给药,观察药物在不同剂量下的药效和毒性反应。

3. 观察与记录在实验过程中,密切观察动物的行为、生理指标及不良反应,详细记录实验数据。

4. 数据分析与处理对实验数据进行统计分析,计算药效指标、毒性指标等,得出结论。

四、实验结果与分析1. 药物对动物行为的影响实验结果显示,不同剂量药物对动物行为产生显著影响。

低剂量药物对动物行为无明显影响,随着剂量增加,动物表现出兴奋、躁动、肌肉震颤等症状。

2. 药物对动物生理指标的影响实验结果显示,药物对动物生理指标产生显著影响。

随着剂量增加,动物的体温、心率、呼吸频率等生理指标发生改变。

3. 药物毒性反应实验过程中,部分动物出现不良反应,如呕吐、腹泻、昏迷等。

经统计分析,药物在一定剂量范围内具有一定的毒性。

五、实验结论1. 本实验成功观察了药物在不同剂量下的药效和毒性反应,为药物的临床应用提供了实验依据。

2. 通过实验操作,提高了学生的实验技能和数据分析能力,培养了科学思维。

3. 实验过程中,学生掌握了动物实验操作流程,为今后的科研工作打下了基础。

六、实验体会1. 实验过程中,严格遵守实验操作规程,确保实验数据的准确性。

2. 注重观察动物的行为和生理指标,及时发现问题,调整实验方案。

兽医药剂实验四

兽医药剂实验四
1.药物的亲水性与疏水性观察
取白瓷板,将凹槽里装满水,然后用针尖挑取少量以下药物粉末:氧 化锌、硫磺、樟脑、磺胺、培氟沙星、枸橼酸钠于水面上,观察其与水的 接触情况,分辨哪些是亲水性药物,哪些是疏水性药物,并记录。 加入药物不宜过多,否则会导致难于观察。
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2. 混悬剂的制备
处方一: 组成
沉降曲线,讨论其结果。 3. 观察处方二两组样品的不同现象,讨论吐温是否对混悬剂中固体药物有分散作
用。 【思考题】 1. 处方一的设计依据及各辅料的作用是什么? 2. 影响混悬剂稳定性的因素有哪些?如何最大程度降低不稳定性? 3. 概念:亲水性、疏水性、沉降体积比。
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9
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质量检查:
待两个样品都做好后,同时摇匀,过30 min后比较两个样品中硫磺的分散情 况。
注意:在混悬剂制备时应充分研磨、混匀、分散,否则会导致后期沉降过 快。
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【实验结果和讨论】 1. 记录亲水性药物与疏水性药物的实验结果 2. 根据表中数据,以沉降体积比F=H/H0为纵坐标,时间为横坐标,绘出各处方的
水将药物全洗涤到具塞量筒中定容即可。
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质量检查:
待2组样品全制备好后,同时将它们倒转相同次数,然后分别记录它们 在5 min、10 min、30 min、60 min时的沉降体积比F=H/H0。待时间结束的 时候,将具塞量筒倒置翻转,记录放置48h后(实际实验时可在观察一小 时后)使管底沉降物完全分散的翻转次数。
1
2
氧化锌
0.75 g
0.75 g
Байду номын сангаас
三氯化铝
0.018g

动物药理实验讲义

动物药理实验讲义

动物药理实验实训指导书试行金华职业技术学院农业与生物工程学院二00九年十月前言药理学实验课是药理教学的一个重要组成部分,通过实验可使学生熟悉药理实验的基本操作方法,掌握药理实验的基本技能,验证药理学的基本理论,加强对理论知识的理解,体验科学研究的基本程序。

本实验指导选择的实验内容实用,做到既与理论课有密切联系,又有实验课的独特体系;既有整体动物(包括清醒动物和麻醉动物)实验,又有器官水平实验;既有验证性实验,又有设计性实验,还有综合性实验。

在实验课的全过程中培养与提高学生独立思考、独立操作以及科学严谨的工作作风和严密的工作方法,使学生初步具备对客观事物进行观察、比较、分析、综合和解决问题的能力,并验证、巩固和加深理解基本理论,从而初步掌握药理学实验的基本方法。

为了达到上述目的,要求同学们做到下列事项:1.预习仔细阅读所进行的实验内容,结合所学理论,认真领会实验目的和原理,熟悉操作方法与步骤,并对实验结果进行理论推测,做到心中有数,以便在实验结果不理想时能及时纠正操作上的错误。

2.清点药品器材实验操作前要对照实验讲义检查药品名称和浓度、器材的数量和性能,以防错拿错放。

3.正确操作包括调试仪器、动物手术、药量换算、给药方法等都应做到准确无误。

4.认真观察和记录实验时要仔细观察实验现象,如动物用药前后的反应差异、反应持续时间及转归,并如实记录在原始记录本上,不许随意涂改。

5.遵守实验室规则、注意作风培养要安全操作,防止触电、药物中毒、动物咬伤等事故。

必须保持实验室的整洁与安静。

实验结束后,要将所用器材擦洗干净,放回指定位置;检查仪器性能,填写使用单,如有损坏要报告带教老师。

实验死亡动物放于指定处,存活动物送回动物室或兽医院。

6.整理实验资料、书写实验报告药理实验资料可分为量反应资料(如血压、心率、平滑肌收缩幅度等)和质反应资料(如动物死亡与存活数)。

将实验资料加以整理,如设计表格进行比较分析或统计学处理(必要时,综合全实验室的实验资料),按要求写出实验报告,交带教老师评阅。

动物药学实习报告

动物药学实习报告

一、实习目的通过本次动物药学实习,使我对动物药学专业有一个更加深入的了解,掌握动物药物的基本知识,熟悉药物在动物身上的作用机理,提高自己的动手操作能力和实际工作能力。

二、实习时间及地点实习时间为2021年6月至2021年8月,实习地点为XX市XX动物医院。

三、实习内容1. 动物药物的基本知识在实习期间,我学习了动物药物的基本知识,包括药物的定义、分类、作用机理、适应症、禁忌症、剂量、用法、注意事项等。

通过学习,我对动物药物有了全面的认识。

2. 动物药物的使用方法在实习过程中,我学习了动物药物的使用方法,包括口服、注射、外用等。

同时,我还了解了不同给药途径的优缺点,以及如何根据动物的具体情况选择合适的给药途径。

3. 动物药物的临床应用在实习期间,我参与了动物医院的治疗工作,观察了医生如何根据动物的病情开具药物处方,了解了药物在临床治疗中的应用。

通过实践,我掌握了如何根据动物的病情选择合适的药物,并能够独立开具药物处方。

4. 动物药物的储存与保管在实习过程中,我学习了动物药物的储存与保管知识,了解了不同药物的储存条件、有效期、报废标准等。

同时,我还学会了如何进行药物盘点,确保药物的安全使用。

5. 动物药物不良反应的观察与处理在实习期间,我学习了动物药物不良反应的观察与处理方法。

通过观察病例,我掌握了如何识别药物不良反应,并能够根据病情给予相应的处理措施。

四、实习收获1. 提高了理论知识水平:通过实习,我对动物药物的基本知识、作用机理、临床应用等有了更加深入的了解,为今后的工作打下了坚实的基础。

2. 增强了实践能力:在实习过程中,我参与了动物医院的治疗工作,学会了如何根据动物的病情开具药物处方,提高了自己的动手操作能力。

3. 培养了团队协作精神:在实习期间,我与同事们共同完成工作任务,学会了与他人沟通、协作,提高了自己的团队协作能力。

4. 增强了职业素养:在实习过程中,我遵循职业道德,认真对待每一个病例,不断提高自己的职业素养。

药剂学实验报告详解演示文稿

药剂学实验报告详解演示文稿

药剂学实验报告详解演示文稿(引言)各位老师,同学们,大家好!我今天要向大家演示的是一份药剂学实验报告详解。

本次实验我们选取了其中一种药物的小鼠体内药物代谢实验作为研究对象。

下面我将为大家详细介绍实验的背景、目的、方法、结果和结论。

(正文)1.实验背景在药剂学研究中,了解药物在动物体内的代谢过程是非常重要的。

药物的代谢可以影响其活性、毒性以及药代动力学等方面。

因此,研究药物体内代谢过程对于药物的设计和优化具有重要意义。

2.实验目的本次实验的目的是通过小鼠体内代谢实验,了解药物在小鼠体内的代谢过程和代谢产物。

通过分析药物的代谢通路和代谢产物,研究药物的代谢动力学。

3.实验方法-选取适宜的小鼠作为实验动物,确定药物的给药途径和剂量。

-给药后,收集一定时间内小鼠的血液和尿液样品。

-通过高效液相色谱-质谱联用仪(HPLC-MS)等仪器分析样品中药物和代谢产物的浓度。

-进行数据处理和分析,得出药物的代谢动力学参数。

4.实验结果根据测定的数据,我们得出了药物的代谢速率常数、半衰期、清除率等代谢动力学参数。

同时,我们还得到了药物在小鼠体内的代谢通路和代谢产物。

通过分析代谢产物的结构和特性,我们得出了药物的代谢途径和代谢产物的生成路径。

5.结果讨论根据实验结果,可以对药物的代谢过程进行进一步讨论。

例如,我们可以探究药物的主要代谢途径和代谢产物的生成机制,以及这些代谢产物对于药物的功效和毒性的影响。

进一步了解药物的代谢过程可以为药物的剂量设计和药物的疗效评价提供依据。

(结论)通过本次实验,我们成功地研究了其中一种药物在小鼠体内的代谢过程,并得出了药物的代谢动力学参数和代谢产物的生成路径。

这些结果对于药物的设计和优化具有重要意义。

进一步研究药物的代谢过程有助于降低药物的毒性、提高药物的疗效,并对药物的剂量和给药方式的选择提供科学依据。

(致谢)最后,我要感谢实验组的组员们在实验过程中的合作和努力,感谢指导老师对我们的指导和帮助。

动物药学专业的实验操作与技能培训

动物药学专业的实验操作与技能培训

动物药学专业的实验操作与技能培训动物药学是一门研究与动物相关的药物治疗和医疗保健的学科。

在这个领域中,实验操作和技能培训起着至关重要的作用。

本文将探讨动物药学专业的实验操作与技能培训的重要性以及相关的内容和方法。

一、实验操作的重要性实验操作是动物药学专业的核心部分,它帮助学生掌握药物的制备、分析和评估的技能。

通过实验操作,学生可以了解药物在动物体内的作用机制、药物与宿主的相互作用以及药物的安全性和有效性评估等方面的知识。

实验操作还可以培养学生的实际操作能力和解决问题的能力,为将来的工作和研究打下坚实的基础。

二、实验操作的内容动物药学专业的实验操作内容包括以下几个方面:1. 动物模型的制备:选择适当的动物模型进行实验是了解药物作用的重要步骤。

实验操作涉及到动物的养殖和管理,包括动物的饲养环境、喂养方法和健康状况等。

2. 药物的制备和分析:药物的制备是动物药学实验的核心内容。

实验操作包括选择合适的药物制备方法、药物的提取与纯化,以及药物的质量控制等。

药物的分析是为了确定药物的含量和纯度,常用的方法包括高效液相色谱和气相色谱等。

3. 药物的疗效评估:实验操作还需要对药物的疗效进行评估,包括对动物的生理指标、生化指标和行为指标等进行观察和测量。

通过这些评估,可以判断药物的安全性和有效性。

三、技能培训的方法为了有效地进行动物药学专业的实验操作与技能培训,以下方法是必不可少的:1. 实验室课程:通过实验课程的安排,学生可以亲自进行实验操作,并学习实验的基本原理和方法。

实验室课程应该注重实践能力的培养,鼓励学生参与实验设计和数据分析等环节。

2. 实习实践:学生在实验室或药企进行实习实践,亲身参与项目研究和实验操作。

这样可以将理论知识与实际操作相结合,培养学生的实际工作能力和解决问题的能力。

3. 学术会议和讲座:举办学术会议和邀请行业专家进行讲座,使学生了解最新的研究进展和技术发展趋势。

学生可以通过参加学术会议和讲座,扩展知识面,提高实验操作的技能水平。

药剂试验实施方案

药剂试验实施方案

药剂试验实施方案一、试验目的。

本次药剂试验的目的在于验证新药剂在动物体内的安全性和有效性,为进一步的临床试验和应用提供科学依据。

二、试验对象。

本次试验选取健康的实验动物作为试验对象,确保试验结果的可靠性和科学性。

三、试验准备。

1. 药剂准备,根据试验需要,准备好各种浓度和剂量的药剂,确保试验的全面性和准确性。

2. 实验动物准备,对实验动物进行严格的筛选和检测,确保其健康状态符合试验要求。

3. 试验设备准备,准备好各种实验设备和仪器,确保试验的顺利进行和数据的准确记录。

四、试验流程。

1. 药剂给药,按照试验计划和药剂方案,对实验动物进行药剂给药,确保给药的准确性和一致性。

2. 观察记录,对实验动物的行为、体温、体重、食欲等进行定期观察和记录,发现异常情况及时处理。

3. 样本采集,按照试验计划,定期采集实验动物的血液、组织等样本,进行相关指标的检测和分析。

4. 数据分析,对试验过程中获得的数据进行统计和分析,得出科学客观的结论和结论。

五、试验安全。

1. 实验室安全,严格遵守实验室安全操作规程,确保实验过程中人员和动物的安全。

2. 药剂安全,对药剂的使用和处理要严格遵守相关规定,确保药剂的安全性和稳定性。

3. 实验动物保护,对实验动物的保护和使用要符合相关法律法规和伦理规范,确保动物福利。

六、试验结果。

通过本次药剂试验,得出了药剂在动物体内的安全性和有效性数据,为进一步的临床试验和应用提供了重要的科学依据。

七、试验总结。

本次药剂试验的实施方案严谨、科学,取得了预期的试验目的,为新药剂的研发和应用奠定了坚实的基础。

以上即是本次药剂试验实施方案的详细内容,希望能够得到各位专家和同行的认可和支持,谢谢!。

兽医药理学实验目与要求及基本技术

兽医药理学实验目与要求及基本技术

2、按照实验步骤,以严肃认真的态度循序操作, 不得进行与实验无关的活动。注意保护实验动 物和标本,节省实验器材和药品。
3、仔细、耐心地观察实验过程中出现的现象;要 随时记录并联系讲授内容进行思考。 如:1>.发生了什么现象? 2>.为什么出现这种现象?
三、实验结束后 1、将实验用具整理就绪,所用器械擦洗干净。
手食指摸到心搏,右手取注射器选择心搏 最强处穿刺。
6、颈静脉 作一般颈外静脉分离手术。颈静脉
暴露楚后,用注射器针头沿静脉平行方 向刺入,抽取所需血量,采用此法取血 ,体重20克的小鼠可取0.6ml左右,体重 300克的大鼠可取血8ml左右。
二、家兔和豚鼠
1、心脏:
将兔仰卧固定在手术台上,把左侧胸部相当 于心脏的部位的被毛剪去,用碘伏、酒精消毒皮 肤。实验者用左手触摸左侧第3-4肋间,选择心 跳最明显处作穿刺。一般由胸骨左缘外3mm处将 注射针头插入第三肋间隙。穿刺时最好用左手触 诊心跳,在触诊的配合下穿刺。 经6-7天后,可以重复进行心脏穿刺术。家兔一 次可采取全血量的1/6-1/5。
用金属制的牌号固定于实验动物的耳上。
大动物可将号码烙压在圆形或方形金属牌上(最 好用塑料、铝或不锈钢的,它可长期使用不生锈) ,或将号码按实验分组编号烙在栓动物颈部的皮带 上,将此颈圈固定在动物颈部。该法适用于狗等大 型动物。
打孔或剪缺口法
可用打孔机在兔耳一定位置打一小孔来表示一 定的号码。如用剪子剪缺口,应在剪后用滑石粉捻 一下,以免愈合后看不出来。该法可以编至1~9999 号,此种方法常在饲养大量动物时作为终身号采用
2020/6/24
2020/6/24
实验课的要求
一、实验前
1、仔细阅读实验指导,了解实验的目的、要 求、实验步骤和操作程序。 2、结合实验内容,复习有关理论,做到充分 理解。 3、预测该实验各个步骤应得的结果。 4、注意和估计实验中可能发生的误差。

兽医药理学实验报告

兽医药理学实验报告

实验名称:抗生素的药效学实验实验目的:1. 了解抗生素的药效学特点。

2. 掌握抗生素的药效学实验方法。

3. 分析抗生素在不同动物模型中的药效差异。

实验材料:1. 实验动物:小鼠、豚鼠、兔各10只,体重分别为20g、200g、2kg。

2. 药物:青霉素、链霉素、土霉素。

3. 实验仪器:电子天平、量筒、移液器、显微镜、培养皿、试管等。

实验方法:1. 实验动物分组:将实验动物随机分为四组,分别为青霉素组、链霉素组、土霉素组及对照组。

2. 药物配制:将青霉素、链霉素、土霉素分别配制成不同浓度的溶液。

3. 实验操作:a. 青霉素组:将小鼠、豚鼠、兔分别注射青霉素溶液,观察动物反应。

b. 链霉素组:将小鼠、豚鼠、兔分别注射链霉素溶液,观察动物反应。

c. 土霉素组:将小鼠、豚鼠、兔分别注射土霉素溶液,观察动物反应。

d. 对照组:不给予任何药物,仅观察动物反应。

4. 数据记录:记录每组动物的反应时间、反应程度等数据。

实验结果:1. 青霉素组:小鼠、豚鼠、兔注射青霉素溶液后,动物出现短暂的颤抖、呼吸加快等症状,但很快恢复。

2. 链霉素组:小鼠、豚鼠、兔注射链霉素溶液后,动物出现明显的颤抖、呼吸急促、昏迷等症状,部分动物死亡。

3. 土霉素组:小鼠、豚鼠、兔注射土霉素溶液后,动物出现轻微的颤抖、呼吸加快等症状,但很快恢复。

4. 对照组:动物无任何异常反应。

实验分析:1. 青霉素对小鼠、豚鼠、兔具有较好的疗效,动物反应轻微,恢复较快。

2. 链霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效较差,动物反应明显,部分动物死亡。

3. 土霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效介于青霉素和链霉素之间,动物反应轻微,恢复较快。

实验结论:1. 青霉素对小鼠、豚鼠、兔具有较好的疗效,是治疗相应疾病的理想药物。

2. 链霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效较差,不建议用于治疗相应疾病。

3. 土霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效介于青霉素和链霉素之间,可根据实际情况选择使用。

实验注意事项:1. 实验过程中应严格遵守操作规程,确保实验数据的准确性。

动物常用给药实训报告

动物常用给药实训报告

一、实训目的本次实训旨在使学生掌握动物实验中常用的给药途径和方法,提高实验操作技能,为今后从事相关研究工作打下基础。

二、实训时间2023年X月X日三、实训地点动物实验室四、实训对象小白鼠(雄性,体重约20g)五、实训内容1. 动物给药途径本次实训主要学习了以下动物给药途径:- 灌胃法- 腹腔注射法- 皮下注射法- 静脉注射法2. 给药方法(1)灌胃法1. 将小白鼠固定在实验台上,头部朝向实验者。

2. 用左手抓住小白鼠头部,右手持灌胃器,将灌胃针从鼠的口角插入口腔,从舌背沿上腭插入食道。

3. 将药物注入胃内,注入量约为0.2~0.5ml/10g。

4. 慢慢抽出灌胃针,并轻轻抚摸小白鼠的腹部,帮助药物进入胃内。

(2)腹腔注射法1. 将小白鼠固定在实验台上,头部朝向实验者。

2. 用左手抓住小白鼠腹部,右手持注射器,将针头从小白鼠腹部正中线处刺入腹腔。

3. 将药物注入腹腔,注入量约为0.2~0.5ml/10g。

4. 缓慢抽出针头,并轻轻抚摸小白鼠腹部,帮助药物进入腹腔。

(3)皮下注射法1. 将小白鼠固定在实验台上,头部朝向实验者。

2. 在小白鼠背部或腹部选择合适的注射部位。

3. 用左手抓住注射部位上方皮肤,右手持注射器,将针头刺入皮下。

4. 将药物注入皮下,注入量约为0.2~0.5ml/10g。

5. 缓慢抽出针头,并轻轻抚摸注射部位,帮助药物进入皮下。

(4)静脉注射法1. 将小白鼠固定在实验台上,头部朝向实验者。

2. 在小白鼠耳静脉选择合适的注射部位。

3. 用左手抓住小白鼠耳朵,右手持注射器,将针头刺入耳静脉。

4. 将药物注入耳静脉,注入量约为0.2~0.5ml/10g。

5. 缓慢抽出针头,并轻轻抚摸注射部位,帮助药物进入耳静脉。

六、实训结果本次实训中,所有动物均成功接受了给药,给药过程顺利,无意外发生。

七、实训总结1. 通过本次实训,学生掌握了动物实验中常用的给药途径和方法,提高了实验操作技能。

2. 在实际操作过程中,应注意以下几点:- 操作前,仔细观察动物的状态,确保动物健康。

动物药学专业的实验技巧和方法论

动物药学专业的实验技巧和方法论

动物药学专业的实验技巧和方法论动物药学是研究动物用药学的学科领域,旨在研究和应用药物对动物健康和疾病的影响,以及发展新的动物药物治疗方法。

实验技巧和方法论是动物药学研究中至关重要的一部分,对于保证实验结果的准确性和可重复性起着关键作用。

本文将探讨动物药学专业的实验技巧和方法论的相关内容。

一、实验的前期准备在进行动物药学实验之前,需要进行充分的前期准备工作,以确保实验的顺利进行。

首先,应明确研究目的和实验设计,并制定详细的实验方案。

这包括确定实验对象、样本数量、药物剂量和给药方式等实验参数。

其次,需要准备实验所需的设备、试剂和动物宿主等物质资源,并按要求对其进行质量检测和消毒处理,以确保实验环境的洁净和实验材料的纯度。

此外,还需要完善实验室人员的安全保护措施,如佩戴实验服、戴手套和口罩等,以防止实验过程中的交叉感染。

二、动物实验的技巧动物实验是动物药学研究的核心内容之一,良好的实验技巧对于获得可靠的结果至关重要。

在进行动物实验时,应按照严格的操作规程进行。

首先,需要选择合适的动物宿主,并确保它们的健康状况符合实验要求。

其次,应正确进行药物给药,包括口服、注射、局部涂抹等不同给药方式,并根据实验目的合理调整药物剂量。

另外,还需要监测动物体温、呼吸和心率等生理指标,并随时记录和观察动物行为和病征。

在实验过程中,需要注意动物的福利和保护,避免对动物造成不必要的伤害和痛苦。

三、实验结果的统计分析在动物药学研究中,实验结果的统计分析能够从统计学的角度对实验数据进行客观、科学的评价。

在对实验结果进行统计分析时,首先需要选择适当的统计方法,如方差分析、t检验、回归分析等,以检验实验数据之间的差异或相关性。

其次,需要设置合适的对照组进行比较,并进行必要的数据处理和转换,以提高数据的可靠性和分析的准确性。

最后,在分析结果时,应综合考虑数据的均值、标准差和显著性水平等指标,以得出准确的结论和科学的推论。

四、实验结果的报告和交流实验结果的报告和交流是动物药学研究的一部分,通过与他人分享实验结果,可以促进学术交流和研究合作。

2.兽用化学药物非临床药代动力学试验指导原则

2.兽用化学药物非临床药代动力学试验指导原则

兽用化学药物非临床药代动力学试验指导原则一、概述(一)定义与目的非临床药代动力学研究是指通过实验动物(有时还有靶动物)体内、外及靶动物体外的试验,获取基本的药代动力学参数,从而阐明药物吸收、分布、代谢、排泄过程与特点。

药物在体内的动态过程受药物的理化性质、剂型等影响。

理化性质包括解离常数、脂溶性、溶解性、粒度、晶型和稳定性(如在胃肠道)等。

剂型因素包括制剂、制备工艺、给药途径等。

非临床药代动力学是药物非临床有效性和安全性研究的重要内容,在新药研究开发中占有重要地位。

药物或其代谢物的体内、外浓度及其药代动力学参数,能帮助确定剂量、定量阐明药物的作用(药效或毒性)及机理、认识药物相互作用的规律,是药理学研究的主要内容之一;能帮助选择剂型、评价制剂的特点和质量,是药剂学的基本数据;能为临床研究方案的设计与优化提供必要信息,是临床有效性和安全性研究的前提与基础;能揭示药物代谢及动力学参数的种属差异,是兽药残留及动物源食品安全性研究的重要内容。

(二)适用范围本指导原则适用于非临床药代动力学各项研究内容的试验设计和要求。

研究者应根据临床需要,结合药物和制剂的特点,参考本指导原则制订出合理、可行的研究方案,并对试验结果进行综合评价。

二、分析方法(一)分析方法选择合适、可靠的分析方法是药代动力学研究的关键。

全血、血浆、血清、尿、粪、各种组织等样品的取样量少,药物浓度低,内源性物质(如无机盐、脂质、蛋白质、代谢物以及其他药物)干扰大,个体差异明显,影响样品中活性成分含量的测定。

因此,必须根据被测物的结构、性质、浓度范围和样品介质等具体情况,建立相应的分析方法。

生物样品中药物测定法有色谱法,如高效液相色谱法(HPLC),气相色谱法(GC);色谱-质谱联用法,如液相色谱-质谱联用法(LC-MS),液相色谱-串联质谱法(LC-MS/MS),气相色谱-质谱联用法(GC-MS),气相色谱-串联质谱法(GC-MS/MS);放射性同位素标记法,免疫学法,如酶免疫分析法,荧光免疫分析法,放射免疫分析法;微生物学法。

药物研究的动物实验方法

药物研究的动物实验方法
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给药途径和容积:两种途径,注意容量。
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给药剂量与分组:首先进行预试验。动物分4-6组,每组至少10只以上。给药剂量按等比级数增减。
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观察记录:即刻观察动物反应,记录中毒症状、体征和死亡情况。观察周期为两周。
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解剖记录:动物死亡应及时进行剖检。
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二、急性毒性试验LD50 LC50 计算方法 1、改进寇氏法 要求:每组动物数相等;剂量按等比级数;Pn<0.2 Pm>0.8 根据试验条件及试验结果,选用LD50的计算公式 此法易于了解计算简便可信限不大结果可靠特别是在试验前对受试样品的急性毒性程度了解不多时尤为适用 2、概率单位-对数图解法 预试验以每组2~3 只动物找出全死和全不死的剂量。 动物数一般每组不少于10 只各组动物数量不一定要求相等。 剂量及分组一般在预试验中得到的两个剂量组之间拟出等比的六个剂量组或更多的组此法不要求剂量组间呈等比关系但等比可使各点距离相等有利于作图。 作图计算 三、测定LD50应注意的几个问题 1、测定前,应进行预试验。 2、注意动物因素对试验结果的影响。 3、注意环境因素的影响。 4、注意操作因素的影响。 5、注意实验条件的一致性。 6、观察时间一般为14天。 7、一般情况下,各剂量组的死亡分布有一定规律。
什么是急性毒性试验?
哪些家兔需经预测体温后方可供热原实验用?
为什么要对人与动物的用药量进行换算?
异常毒性对动物的要求?
供热原试验用的注射器等物品应如何处理?
本章重点:
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经口半数致死剂量Oral Median Lethal Dose : 经口一次或24h内多次经口给予受试样品后引起实验动物总体中半数死亡的毒物的统计学剂量以单位体重接受受试样品的质量(mg/kg 或g/kg)来表示。

动物药剂学试验指导

动物药剂学试验指导

动物药剂学实验指导动物药剂学基础是一门综合性应用技术学科,具有工艺学性质。

在整个教学过程中,实验课占总学时数的二分之一。

实验教学以突出动物药剂学理论知识的应用与实际动手能力的培养,强调实用性、应用性为原则,把掌握基本操作、基本技能放在首位,通过实验应使学生掌握药物配制的基本操作,会使用常见的衡器、量器及制剂设备,能制备常用的动物药物制剂,通过实验使学生具有一定的分析问题、解决问题和独力工作的能力。

实验内容选编了具有代表性的常用剂型的制备及质量评定、质量检查方法,介绍了动物药剂学实验中常用仪器和设备的应用。

实验时要求学生做到以下各项:1.实验前充分做好预习,明确本次实验的目的和操作要点。

2.进入实验室必须穿好实验服,准备好实验仪器药品,并保持实验室的整洁安静,以利实验进行。

3.严格遵守操作规程,特别是称取或量取药品,在拿取、称量、放回时应进行三次认真核对,以免发生差错。

称量任何药品,在操作完毕后应立即盖好瓶塞,放回原处,凡已取出的药品不能任意倒回原瓶。

4.要以严肃认真的科学态度进行操作,如实验失败时,先要找出失败的原因,考虑如何改正,再征询指导老师意见,是否重做。

5.实验中要认真观察,联系所学理论,对实验中出现的问题进行分析讨论,如实记录实验结果,写好实验报告。

6.严格遵守实验室的规章制度,包括:报损制度、赔偿制度、清洁卫生制度、安全操作规则以及课堂纪律等。

7.要重视制品质量实验成品须按规定检查合格后,再由指导老师验收。

8.注意节约,爱护公物,尽力避免破损。

实验室的药品、器材、用具以及实验成品,一律不准擅自携出室外。

9.实验结束后,须将所用器材洗涤清洁,妥善安放保存。

值日生负责实验室的清洁、卫生、安全检查工作,将水、电、门、窗关好,经指导老师允许后,方得离开实验室。

实验一溶液型液体药剂的制备一、实验目的1.掌握溶液型液体药剂的制备方法。

2.掌握液体药剂制备过程的各项基本操作。

二、实验指导溶液型液体药剂是指小分子药物以分子或离子(直径在1nm以下)状态分散在溶剂中所形成的液体药剂。

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动物药剂学实验指导动物药剂学基础是一门综合性应用技术学科,具有工艺学性质。

在整个教学过程中,实验课占总学时数的二分之一。

实验教学以突出动物药剂学理论知识的应用与实际动手能力的培养,强调实用性、应用性为原则,把掌握基本操作、基本技能放在首位,通过实验应使学生掌握药物配制的基本操作,会使用常见的衡器、量器及制剂设备,能制备常用的动物药物制剂,通过实验使学生具有一定的分析问题、解决问题和独力工作的能力。

实验内容选编了具有代表性的常用剂型的制备及质量评定、质量检查方法,介绍了动物药剂学实验中常用仪器和设备的应用。

实验时要求学生做到以下各项:1.实验前充分做好预习,明确本次实验的目的和操作要点。

2.进入实验室必须穿好实验服,准备好实验仪器药品,并保持实验室的整洁安静,以利实验进行。

3.严格遵守操作规程,特别是称取或量取药品,在拿取、称量、放回时应进行三次认真核对,以免发生差错。

称量任何药品,在操作完毕后应立即盖好瓶塞,放回原处,凡已取出的药品不能任意倒回原瓶。

4.要以严肃认真的科学态度进行操作,如实验失败时,先要找出失败的原因,考虑如何改正,再征询指导老师意见,是否重做。

5.实验中要认真观察,联系所学理论,对实验中出现的问题进行分析讨论,如实记录实验结果,写好实验报告。

6.严格遵守实验室的规章制度,包括:报损制度、赔偿制度、清洁卫生制度、安全操作规则以及课堂纪律等。

7.要重视制品质量实验成品须按规定检查合格后,再由指导老师验收。

8.注意节约,爱护公物,尽力避免破损。

实验室的药品、器材、用具以及实验成品,一律不准擅自携出室外。

9.实验结束后,须将所用器材洗涤清洁,妥善安放保存。

值日生负责实验室的清洁、卫生、安全检查工作,将水、电、门、窗关好,经指导老师允许后,方得离开实验室。

实验一溶液型液体药剂的制备一、实验目的1.掌握溶液型液体药剂的制备方法。

2.掌握液体药剂制备过程的各项基本操作。

二、实验指导溶液型液体药剂是指小分子药物以分子或离子(直径在1nm以下)状态分散在溶剂中所形成的液体药剂。

常用的溶剂有水、乙醇、甘油、丙二醇、液状石蜡、植物油等。

属于溶液型液体药剂有:溶液剂、糖浆剂、甘油剂、芳香水剂和醑剂等。

这些剂型是基于溶质和溶剂的差别而命名的。

从分散系统来看都属于低分子溶液(真溶液),从制备工艺上来看,这些剂型的制法虽然不完全相同,并各有其特点,但作为溶液的基本制法是溶解法。

其制备原则和操作步骤如下:1.药物的称量固体药物常以克为单位,根据药物量的多少,选用不同的架盘天平称重。

液体药物常以毫升为单位,选用不同的量杯或量筒进行量取。

用量较少的液体药物,也可采用滴管计滴数量取(标准滴管在20℃时,1mL水应为20滴),量取液体药物后,应用少许水洗涤量器,洗液并于容器中,以减少药物的损失。

2.溶解及加入药物取处方配制量的1/2~3/4溶剂,加入药物搅拌溶解。

溶解度大的药物可直接加入溶解;对不易溶解的药物,应先研细,搅拌使溶,必要时可加热以促进其溶解;但对遇热易分解的药物则不宜加热溶解;小量药物(如毒药)或附加剂(如助溶剂、抗氧剂等)应先溶解;难溶性药物应先加入溶解,亦可采用增溶、助溶或选用混合溶剂等方法使之溶解;无防腐能力的药物应加防腐剂;易氧化不稳定的药物可加入抗氧剂、金属络合剂等稳定剂以及调节pH值等;浓配易发生变化的可分别稀配后再混合;醇性制剂如酊剂加至水溶液中时,加入速度要慢,且应边加边搅拌;液体药物及挥发性药物应最后加入。

3.过滤固体药物溶解后,一般都要过滤,可根据需要选用玻璃漏斗、布氏漏斗、垂熔玻璃漏斗等,滤材有脱脂棉、滤纸、纱布、绢布等。

4.质量检查成品应进行质量检查。

5.包装及贴标签质量检查合格后,定量分装于适当的洁净容器中,加贴符合要求的标签。

三、仪器与材料仪器:烧杯(50mL、250mL)、量筒、普通天平、玻棒、玻璃漏斗、电炉、酒精灯、具塞锥形瓶材料:碘、碘化钾、对乙酰氨基酚、丙二醇、甘油、乙醇、单糖浆、薄荷醑、纯化水、聚乙烯吡咯烷酮四、实验内容1. 复方碘溶液的制备【处方】碘 5.0g碘化钾10.0g蒸馏水100.0mL【制法】先将碘化钾溶于适量水中,使饱和溶液,再加入碘,待全部溶解后,添加水至足量、搅匀、即得。

【附注】(1)本品又称卢戈氏溶液。

(2)碘有腐蚀性、挥发性,称量、制备、贮存时应注意选择适当条件。

(3)碘在水中的溶解度1:2950,加入KI生成络盐,易溶于水,并增加其稳定性。

2. 碘伏溶液的制备【处方】碘50g碘化钾100g聚乙烯吡咯烷酮20g蒸馏水1000mL3. 对乙酰氨基酚口服溶液的制备【处方】对乙酰氨基酚24g丙二醇100mL甘油100mL乙醇100mL纯化水加至1000mL【鉴别】(1)取本品2mL,加稀盐酸5mL,置水浴上加热30分钟,放冷,加亚硝酸钠试液4mL,摇匀后,取2mL置白瓷皿中,滴加碱性β-萘酚试液,即产生沉淀,而溶液显红色。

(2)取含量测定项下的溶液,照分光光度法(中国药典2000年版二部附录Ⅳ A)测定,在257nm的波长处有最大吸收。

【检查】对氨基酚取本品1mL,加水20mL,摇匀后,加1%苯酚溶液1mL和次亚溴酸钠溶液[取0.5mol/L碳酸钠溶液20mL,加溴试液1mL,摇匀,临用新配制]3mL,摇匀。

如显色,与对照液(0.012%对氨基酚溶液1mL,加0.005%苋菜红溶液1mL,加水稀释至20mL,摇匀,加1%苯酚溶液1mL和次亚溴酸钠溶液3mL,摇匀)比较,不得更深(0.5%)。

其他应符合口服溶液剂项下有关的各项规定(中国药典2000年版二部附录Ⅳ A)。

【含量测定】精密量取本品10mL,置100mL量瓶中,加水适量,振摇使溶解,再加水稀释至刻度,摇匀;精密量取10mL,置200mL量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀;精密量取5mL,置100mL量瓶中,加0.1mol/L氢氧化钠溶液10mL,再加水稀释至刻度,摇匀,照分光光度法(中国药典2000年版二部附录Ⅳ A),在257nm的波长处测定吸收度,按C8H9NO2的吸收系数(E)为715计算。

A = EC实验二胶体溶液型液体药剂的制备一、实验目的1.掌握胶体药物的溶解特性和制备方法。

2.掌握胶体溶液与溶液的区别。

二、实验指导胶体溶液型液体药剂按分散系统分类,包括两类:一类属于分子(或离子)分散体系的高分子溶液。

如羧甲基纤维素钠、西黄蓍胶、阿拉伯胶、琼脂、白芨胶等胶浆剂,以及胃蛋白酶、明胶等蛋白质溶液,另一类属于微粒(多分子聚集体)分散体系的胶体溶液。

如氧化银溶胶、氢氧化铁溶胶以及由表面活性剂作增溶剂的某些溶液(如甲酚皂溶液)等。

由于胶体质点介于真溶液与混悬剂二者之间,所以胶体溶液既具有溶液的某些性质,又具有混悬剂的部分性质;但胶体溶液既不同于真溶液,也不同于混悬剂,它有其独特的性质。

胶体溶液型液体药剂的溶剂大多数是水,但也有乙醇、乙醚、丙酮等非水溶剂。

按胶体与溶剂之间亲和力不同,胶体可分亲液(或亲水)胶体和疏液(或疏水)胶体。

常用的多为亲水胶体溶液。

亲水胶体溶液的制备与溶液的制备基本相同。

唯溶解时要经过溶胀过程。

宜将胶体粉末分次撒在液面上,使其充分吸水自然膨胀而胶溶;或将胶体粉末置于干燥容器内,先加少量乙醇或甘油使其均匀润湿,然后加大量水振摇或搅拌使之胶溶。

如直接将水加到粉末中,往往黏结成团,使水难以透入团块中心,以致长时间不能制成均匀的胶体溶液。

操作时应加注意。

片状、块状原料(如明胶等),应加少量水放置,令其充分吸水膨胀,然后于水浴(60℃左右)加热使溶。

处方中需要加入电解质或高浓度醇、糖浆、甘油等具有脱水作用的液体时,应用溶剂稀释后再加入,且用量不宜过大。

胶体溶液如需滤过时,所用的滤材应与胶体溶液荷电性相同。

最好选用不带电荷的滤器,以免凝聚。

胶体溶液以新鲜配制为佳,以免发生陈化现象或污染微生物。

必要时可加适宜的防腐剂,以增加制剂的稳定性。

三、仪器与材料仪器:烧杯、量筒、天平、玻棒、水浴锅、电炉材料:甲酚、植物油、氢氧化钠、水、酚酞指示液、硫酸、标准硫酸钾溶液、四、实验内容(一)甲酚皂溶液的制备【处方】甲酚50.0mL植物油17.3g氢氧化钠 2.7g蒸馏水加至100.0mL【制法】取氢氧化钠加水10mL溶解后,加植物油于水溶上加热至皂化完全,取溶液1滴加水9滴无油滴析出,即为皂化完全,趁热加入甲酚搅拌使溶解澄清,再加水至量。

【附注】(1)处方中生成的钠皂可用钾皂代替。

(2)皂化过程中可加少量乙醇以加速皂化反应进行。

【思考题】(1)何谓增溶?以该处为例说明增溶机理?(2)写出皂化化学反应式,加速皂化反应的方法有哪些?为了加快反应速度,可以在化学反应的过程中:▪保持系统的较高温度。

▪以物理方式不断搅拌溶液以增加分子碰撞的数量。

▪加入酒精,使混合得更充分。

向溶液中加入氯化钠可以分离出脂肪酸钠,这一过程叫盐析。

高级脂肪酸钠是肥皂的主要成分,经填充剂处理可得块状肥皂。

(二)羧甲基纤维素钠胶浆的制备【处方】羧甲基纤维素钠 2.5 g甘油30 mL尼泊金乙酯溶液(5%) 2 mL纯化水加至100 mL【制法】取羧甲基纤维素钠分次加入50 mL热纯化水中,轻加搅拌使其溶解,然后加入甘油、羟苯乙酯溶液(5%)、最后添加纯化水定容至100 mL,搅匀,即得【作用与用途】本品为润滑剂,用于腔道、器械检查或查肛时起润滑作用。

【用法与用量】取本品适量涂于器械表面或顶端。

【附注】(1)羧甲基纤维素钠为白色纤维状粉末或颗粒,无臭,在冷、热水中均能溶解,但在冷水中溶解缓慢,不溶于一般有机溶剂。

配制时,羧甲基纤维素钠如先用少量乙醇湿润,再按上法溶解则更为方便。

(2)羧甲基纤维素钠遇阳离子型药物及碱土金属、重金属盐能发生沉淀,故不能使用季铵盐类和汞类防腐剂。

(3)本品在pH值5~7时黏度最高,当pH值低于5或高于10时黏度迅速下降,一般选pH值为6~8。

(4)甘油可以起保湿、增稠和润滑作用。

(三)心电图导电胶的制备【处方】氯化钠18 g淀粉10 g甘油20 g羟苯乙酯溶液(5%)0.6mL纯化水加至100 mL【制法】取氯化钠溶于适量水中,加入羟苯乙酯溶液(5%)加热至沸;另取淀粉用少量冷水调匀,将上述氯化钠溶液趁热缓缓加入制成糊状,加入甘油,再加水使成100 mL,搅匀,分装,即得。

【作用与用途】供心电图及脑电图检查时电极导电用。

【用法与用量】局部涂擦。

【附注】本品为具流动性的无色黏稠液体。

应密闭保存。

实验三混悬剂的制备一、目的与要求1 掌握混悬剂的一般制备方法。

2熟悉混悬剂中附加剂的应用:助悬剂、(反)絮凝剂及润湿剂。

3了解混悬剂的质量评定方法。

二、基本概念和实验原理混悬剂系指固体微粒分散在液体介质中所形成的非均相分散体系。

分散质点一般在0.1~10 μm之间,但有的可达50 μm或更大。

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