李属植物染色体数目观察1
植物细胞染色体标本的制作与观察-教案
植物细胞染色体标本的制作与观察-教案第一篇：植物细胞染色体标本的制作与观察-教案植物细胞染色体标本的制作与观察1.实验背景与原理染色体的研究在生物进化、发育、遗传和变异中都有十分重要的作用。
因此，染色体标本的制备技术是遗传学、细胞生物学、染色体工程、分类学等众多学科的基本实验技术。
物种细胞内染色体数目、形态、长度等信息的总和根据实验的观察和测量绘制成的模式图称为核型（karyotype）。
核型分析在物种亲缘鉴定，染色体变异分析，杂种分析，细胞分裂过程分析，孤雌生殖等研究中均有重要的作用。
染色体标本的常规制片方法有切片法、涂片法、压片法、滴片法（空气干燥法）等。
压片法操作简单，是常用的植物染色体标本制备的方法。
不过，该法在制备中要注意避免压片所造成的染色体的扭曲、变形和丢失的现象。
染色体制备的重要环节如下：（1）取材：应取分生旺盛的组织或细胞。
在植物中通常取根尖，在分裂高峰时取材，可得到大量分裂相细胞。
而在动物细胞中通常选取骨髓等分裂活跃的细胞，或是植物血球凝集素等刺激下的淋巴细胞，也可选取分裂旺盛的体外培养的癌细胞或转化细胞等。
（2）预处理：使用秋水仙胺等药品破坏纺锤体形成，不但可得到大量分裂相细胞，而且可使染色体缩短变粗，有利于观察。
（3）固定：渗透力强的固定液将细胞迅速杀死，蛋白质沉淀，并可尽量保持细胞原有状态。
（4）解离或低渗：植物细胞要除去细胞间的果胶层，并使细胞壁软化，从而使细胞得以膨胀，为染色体的分散提供了空间。
常用解离方法有酸解法和酶解法。
动物细胞无细胞壁，通常不需解离，而是用低渗液使细胞膨胀。
（5）染色体分散：通过压片、滴片等机械力量使染色体分散, 有利于观察。
2.实验目的（1）掌握常规压片技术制作植物染色体标本的一般方法。
（2）了解显微镜下常规显色的植物细胞染色体的形态特点,熟练掌握显微镜的使用。
（3）理解染色体与生命遗传的意义及染色体核型检查的应用。
3.实验材料与试剂（1）材料：市售大蒜、洋葱。
实验四 植物染色体组型分析
4、剪贴： 把上述已经排列的同源染色体按先后顺序粘贴在绘 剪贴： 图纸上。粘贴时，应使着丝点处于同一水平上， 图纸上。粘贴时，应使着丝点处于同一水平上，并一 律短臂在上，长臂在下。所得组型图。 律短臂在上，长臂在下。所得组型图。 5、分类： 分类： 臂比是反应着丝点在染色体上的位置。 臂比是反应着丝点在染色体上的位置。根据此可 确定染色体所属的形态类型。 确定染色体所属的形态类型。
7、综合描述 说明供试材料的染色体总数， 说明供试材料的染色体总数，染色体组型的 公式，如蚕豆的染色体组型公式2n=2m(SAT)+10t 2n=2m(SAT)+10t； 公式，如蚕豆的染色体组型公式2n=2m(SAT)+10t； 染色体的大小，染色体组型的分ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ。 染色体的大小，染色体组型的分类。 1）染色体大小描述：规定1um以下为极小染 染色体大小描述：规定1um以下为极小染 1um 色体； 4um为小染色体 为小染色体； 12um为中染色体 为中染色体； 色体；1—4um为小染色体；4—12um为中染色体； 12um以上的为大染色体 以上的为大染色体。 长12um以上的为大染色体。
核型类型 最长chr/最短 最长chr/最短 chr/ chr ＜2:1 2:1---4:1 2:1--4:1 ＞4:1
1A为最对称型 1A为最对称型
4C为最不对称型 4C为最不对称型
臂比＞ 臂比＞2：1的染色体的百分比 0.010.500.00 0.01-0.50 0.50-0.99 1A 2A 3A 1B 2B 3B 1C 2C 3C
染色体形态类型
臂比（长臂/短臂） 臂比（长臂/短臂） 1～1.7 1.71～ 1.71～3.0 3.01～ 3.01～7.0 ＞7.01 形态类型 m中着丝粒染色体 sm近中着丝粒染色体 sm近中着丝粒染色体 st近端着丝粒染色体 st近端着丝粒染色体 t端着丝粒染色体 sat随体染色体 sat随体染色体
植物染色体标本的制备和观察
植物染色体标本的制备和观察摘要：目的1、掌握常规压片法制备植物染色体标本的基本原理和方法；2、学会观察和统计植物细胞的染色体数目；3、了解和学习去壁低渗法进行植物染色体制片的基本原理和方法。
方法大蒜的根尖是分裂比较旺盛的，我们可以利用秋水仙素处理根尖使得大蒜根尖的细胞分裂处于分裂中期，然后经固定染色等处理将染色体染色固定，以便观察。
结果大蒜的染色体有16条，都被染色成红色的条状或细丝状物质。
结论大蒜染色体有16条。
关键词：植物染色体；大蒜；秋水仙素前言染色体是遗传物质的载体，本实验便是观察染色体的形态和数目。
植物染色体标本的制备，常用分生组织，如根尖、茎尖和嫩叶做材料。
常规压片法仍是当今观察植物染色体常用的方法。
其程序包括取材、预处理、固定、解离、染色和压片等步骤，即可观察到较多的、处于有丝分裂中期的细胞和染色体。
由于现在洋葱发根较难，我们采用的是大蒜根尖进行相关实验。
材料与方法1.实验材料大蒜根尖、白姜花的根尖、野百合的根尖等。
2.实验试剂：0.02%秋水仙素；改良苯酚品红染液；卡诺氏固定液，1N盐酸，浓盐酸：95%乙醇（1:1）解离液。
3. 实验用具显微镜、剪刀、镊子、刀片、培养皿、吸水纸、滴管、载玻片、盖玻片。
4.实验植物和试剂大蒜根尖、 0.02%秋水仙素；改良苯酚品红染液；卡诺氏固定液，1N盐酸；70%酒精；95％乙醇；85％乙醇；蒸馏水5.实验方法和步骤5.1 取材先将大蒜浸泡若干小时，然后转入一个垫有湿润滤纸的培养皿中，置25℃恒温培养箱中萌发，待幼根长至1~2cm时，于上午9~11时剪下根尖。
5.2 预处理将剪下的根尖放进装有0.02%秋水仙素溶液的烧杯中，浸泡处理3～4小时。
5.3 固定将经过预处理或没有预处理的材料，放到卡诺氏固定液中固定（固定液的量约为材料的10倍，要求一个容器中所装的材料不能太多，温度不能太高）。
固定2～24h后分别在95％和85％乙醇中各30min ，再转入70%酒精中，于4℃冰箱内保存，保存时间最好不超过二个月。
实验七 植物染色体标本的制备与观察实验报告(1)
细胞及遗传学实验报告陈香燕201008030103 生科1班实验七植物染色体标本的制备与观察(一实验目的学习植物染色体标本的制备技术,掌握染色体的技术方法,了解染色体的生物学意义。
(二实验原理植物染色体标本的制备,常用分生组织,如根尖、茎尖和嫩叶做材料。
常规压片法仍是当今观察植物染色体常用的方法,其程序包括取材、预处理、固定、解离、染色和压片等步骤。
由于秋水仙素可以阻断细胞在分裂中期纺锤体(微管二聚体的形成,以至于不能拉动染色体分开向细胞两极,因此可以使细胞分裂停止在分裂中期,再经过染色,压片,镜检之后便可观察到细胞的染色体形态。
(三实验用品一、材料:蚕豆二、试剂1.Carnoy固定液2.0.1%秋水仙素溶液3.1mol/L HCl4.Schiff试剂5.亚硫酸水溶液(漂洗液6.Carbor fuchsin (卡宝品红染液(四实验方法步骤1.取材:将蚕豆种子培养在培养皿内的湿滤纸上,室温或28°C下发芽,待胚根长达1~2cm时,切取0.5cm长的根尖部分。
2.预处理:将切下的根尖浸入0.1%秋水仙素液中,室温下处理3~4h。
3.水解:把根尖投入预热的58~60°C 1mol/L热HCl中,恒温条件下水解14~15min4.染色:倒去热HCl,滴加卡宝品红少许,染色5~10分钟。
5.洗涤:吸去卡宝品红试剂,用蒸馏水换洗2~3次,每次1~2min。
除去残留染色液后加几滴45%醋酸。
6.压片:用吸管从醋酸中吸取材料,置干净载玻片上,材料周围保留半滴45%醋酸,盖上盖玻片,其上放一片吸水纸。
左手指压住吸水纸的左边,右手指从吸水纸的左端向右方轻轻抹去,再用铅笔擦头从盖玻片上轻轻敲打,使细胞均用散开。
7.镜检:把压好的片子放在显微镜下,先观察细胞分散状况和中期分裂相的多少,再检查分裂中期细胞中染色体是否完全散开。
如若染色体分散不好而难以分辨和计数,可取下片子,平放桌面上,用手指隔着吸水纸在盖玻片上稍施压力,如果操作细心,用力适度,便可很容易得到染色体分散良好的压片标本,供观察,计数和照相用。
实验十四植物染色体组型分析
染色体组型分析的方法
01
02
03
显微观察
通过显微镜观察染色体的 形态和排列顺序，是进行 染色体组型分析的基础。
染色体测量
使用显微测微尺等工具对 染色体进行精确测量，获 取染色体的长度、宽度等 数据。
核型分析
将染色体按照大小、形态 进行排列，形成核型图谱， 可以直观地了解染色体的 特点和变异情况。
03 实验步骤
染色体组型分析
通过对染色体进行显微观察和测 量，将染色体的数目、形态特征 和排列顺序进行描述和分类，从 而确定生物的染色体组型。
染色体数目与形态特征的描述
染色体数目
每种生物都有一定数量的染色体，这 些染色体在细胞分裂过程中起到关键 作用。
形态特征
染色体的形态特征包括长度、着丝粒 位置、核型等，这些特征可以反映染 色体的功能和进化历程。
实验结果提示，该植物可能具有较好的遗传稳定性和适应性，对于农业 生产具有潜在的应用价值。
实验结果还表明，染色体组型分析技术在实际应用中需要综合考虑多种 因素，如染色体大小、着丝粒位置、核型对称性等，以确保结果的准确 性和可靠性。
对实验方法的改进与展望
在未来的研究中，可以采用更先进的染色体组型分析技术，如全染色体微列阵技术和高通量 测序技术等，以提高分析的准确性和分辨率。
可以进一步优化实验方法，如改进染色体制片技术、优化显微观察条件等，以提高实验效率 和结果的可靠性。
在应用方面，可以进一步拓展植物染色体组型分析在遗传资源评价、物种分类和进化生物学 等领域的应用，为相关领域的研究提供有力支持。
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径。
染色体数目和结构的变异是物种形成和 进化的基础，可以导致物种间的生殖隔
实验六 染色体数目的变异和染
总之，染色体结构变异其发生过程一般是 同源染色体或非同源染色体之间在断裂后重 接时发生差错的结果，在减数分裂过程中， 染色体结构变异的杂合体常表现出不正常的 细胞学行为，从而导致特殊的细胞学特征。
3、染色体结构变异的结果，一般可导致花
粉粒的半不育或部分不育，胚珠的育性降低，
产生性状改变，严重的可造成个体死亡。通
三、实验材料
1.有丝分裂、减数分裂幻灯片（玉米、蚕豆等） 2.染色体数目变异及结构变异幻灯片（玉米、蚕 豆等）
四、实验步骤
观看幻灯片后，了解各种染色体数目变异 及结构变异的细胞学特征。
②凡正常的二倍体的染色体（2n）减少可增加一个或几 个染色体的，称为非整倍体变异，如单体（2n-1=(n1)Ⅱ+Ⅰ） , 双单体（2n-1-1=（n-2）Ⅱ+2Ⅰ），缺体 （2n-2）=(n-1)Ⅱ，三体（2n+1=(n-1)Ⅱ+Ⅲ），双三体 （2n+1+1=(n-1)Ⅱ+2Ⅲ），四体（2n+2=(n-1)Ⅱ+Ⅳ）等， 其中染色体数少于2n者，称为亚倍体；其中染色体数多于 2n者，称为超倍体。
2、植物染色体结构变异：
缺失、重复、倒位、易位。对于缺失杂合 体及重复杂合体，及倒位杂合体来说均可在偶 线期联会后，在粗线期可观察到环状结构：缺 失环、重复环、倒位环、，这三者之间有本质 区别，前两者的仅由一条染色体构成，而后者 由2条染色体构成，而且臂内倒位杂合体在分 裂后期出现染色体桥；易位杂合体可见到十字 形联会，或在其终变期出现四体环或四体链等 特殊的细胞学特征。
过对染色体的观察，同时结合植株育性的异
常表现，可以鉴定和鉴别染色体结构变异的
类型。
染色体数目变异导致有丝分裂和减数分裂 过程中出现一些不正常的细胞学行为，进一 步影响雌雄配子的正常发育和受精，对其后 代个体也将产生不同的遗传效应。因此对于 染色体数目变异的植株，除根据形态变异进 行间接鉴别外，最可靠方法，就是通过根尖 细胞或花粉母细胞染色体制片观察，根据染 色体的行为直接鉴别染色体数目的变异类型。
实验一 植物染色体制备和观察
实验一植物染色体制备和观察
一、实验目的
1．学习植物染色体制片技术；
2．通过观察染色体在有丝分裂过程中，了解染色体的动态变化；
二、实验准备
（按每实验小组2人准备）
1．仪器
显微镜1台、水浴锅（大组合用一）、冰箱1、培养箱1、干燥箱1
2．器械（均放在小磁盘内）
镊子2、解剖针2、剪子2、50ml烧杯1、吸管1、玻片架1
3．药品（4人一套）
醋酸洋红、1mol HCl、二甲苯（通用）[均分装在60ml滴瓶]、蒸馏水10L（通用）4．耗材
载玻片4、盖玻片6、滤纸2、擦镜纸1本（通用）、
5．材料
洋葱或大蒜根尖（预先生根、固定、低温保存）
三、实验原理
温盐酸处理根尖的作用：
1．可破坏植物细胞间的连接物质，使细胞分散；
2．可破坏细胞壁，使根尖细胞软化，有利于压片；
3．使DNA潜在的醛基得以暴露，能被碱性染料染色，使整条染色体能均匀着色。
四、实验步骤
大蒜生根1cm→9:00固定→第二天9:00保存于75%酒精4℃→取根尖→水洗→1mol HCl 60℃处理8min→水洗→取一根尖置于干净载玻片上→取分生区→夹碎→滴染液1d染色→8min（搅拌至碎）→盖盖玻片→轻敲分散→覆盖滤纸→带液速压→吸去多余染液→观察→高倍镜下绘图
五、作业
1．温盐酸处理根尖的作用是什么？
2．绘图：间期、前期、中期、后期、末期实景图。
植物染色体核型分析ppt课件
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编号 绝对 长度 (μm)
1 2 3 4 5 6 ……
相对 长度
短臂 长臂 臂 着丝粒 随体 染色体 (μm) (μm) 比 指数 有无 类型
染色体类型由臂比值确定。 Total length: μm P217
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臂比（长臂/短臂）
形态特征
1-1.7
m 中着丝粒染色体
1.71-3.0
sm 近中着丝粒染色体
3.01-7.0
st 近端着丝粒染色体
＞7.01
t 端着丝粒染色体
染色体类型由臂比值确定。 Total length: μm P217
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核型分析之染色体自动核型分析系统
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核型分析之染色体自动核型分析系统
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核型分析之教师用图片
1-13 2- 9 3- 7 4-14 5- 6 8-11 10-12
3. 排列：染色体长的在前，带随体的染色体排在最后 （大随体在前，小随体在后）
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7
五、实验步骤：
染色体照片的测量和对比：
4. 剪贴：将上述染色体按顺序粘贴在实验报告上，粘贴 时，应使着丝点处于同一水平线上，一律短臂在上， 长臂在下，构成核型图。
要求：染色体从大到小，短臂向上，长臂向下，各染色 体着丝粒排在同一直线上。有特殊标记的染色体（如 含有随体的）及性染色体可单独排列。
实验三 植物染色体畸变的观察
* 孚尔根染色法的优点是制片清洁，染色体清晰， 组织软化好，易于压片。其缺点是，染色体较软， 容易缠绕，不易分散，在加强前处理使染色体缩短 的情况下，可获得较好的效果。
三）、细胞微核测试原理
• 微核(micronuclei, MCN) 是真核类生物细胞中的 一种异常结构，往往是细胞经辐射或化学药物的 作用而产生的不可逆遗传损伤。 • 一般认为微核是由有丝分裂后期丧失着丝粒的断 片产生的，整条染色体或几条染色体也能形成微 核。这些断片或染色体在细胞分裂末期被两个子 细胞核所排斥便形成第三个核块。即在间期细胞 形成时，核附近出现的一到几个很小的圆形结构， 直径大约是主核1/3以下呈圆形、椭圆形或不规则 形，这就是微核（micronucleus） • 微核测试用于辐射损伤、辐射防护、化学诱变剂、 新药试验、染色体遗传疾病及癌症前期诊断等各 方面,是一种比较理想的方法。
7、统计计算
微核千分率：MCN‰=（观察到的微核细胞 数/观察的细胞总数）×1000‰ 染色体畸变率：CAF﹪=（染色体畸变细胞数 /分裂期的染色体细胞数）×100﹪
五、实验结果
1. 染色体记数，区分染色体加倍和未加倍的 细胞； 2. 绘出所观察到的多倍体细胞的显微观察图； 3. 总结说明秋水仙素诱导洋葱根尖多倍体的 最佳浓度和时间。 4. 绘制细胞微核实物图； 5. 每个根尖统计1000个细胞，计算每一处理 （3个根尖）的平均微核千分率。
实验三 植物染色体畸变观察
实验学时：6学时 实验类型：设计性 每组人数： 4 人／组 实验内容：本实验分2部分进行 1．学生自行设计处理方案，用秋水仙素诱发植物 产生多倍体； 2．通过取材、固定、解离、孚尔根染色法制片、 镜检观察； 3. 找出根尖细胞中期分裂相，确定诱发成功的细胞， 观察加倍根尖细胞的染色体数目。 4．学生自行设计处理方案，用化学药剂或特定污 染物处理洋葱或蚕豆根尖细胞，观察细胞有丝分 裂时染色体畸变（微核、粘连、聚结、断裂等）。
实验02 植物染色体组型分析
实验二植物染色体组型分析一、实验目的1. 学习并掌握根尖处理、染色、压片及制片观察的方法。
2. 观察有丝分裂各时期染色体的形态变化，了解有丝分裂全过程。
3.观察分析植物细胞有丝分裂中期染色体的长短、臂比和随体等形态特征；学习染色体组型分析的方法。
二、实验原理植物根尖的分生细胞的有丝分裂，每天都有分裂高峰时间，此时把根尖固定，经过染色和压片，再置放在显微镜下观察，可以看到大量处于有丝分裂各时期的细胞和染色体。
各种生物染色体的形态、结构和数目都是相对稳定的。
每一细胞内特定的染色体组成叫染色体组型。
染色体组型分析就是研究一个物种细胞核内染色体的数目及各种染色体的形态特征，如对染色体的长度、着丝点位置、臂比、随体有无等观测，从而描述和阐明该生物的染色体组成，为细胞遗传学、分类学和进化遗传学等研究提供实验依据。
染色体组型分析大都采用植物根尖等分生组织的有丝分裂中期细胞，染色体制片要求分裂相为染色体分散，互不重叠，能清楚显示着丝点位置。
然后通过显微摄影，测量放大照片上的每个染色体的长度和其它形态特征，依次配对排列，编号，并对各对染色体的形态特征作出描述。
三、实验材料1.材料：洋葱（Aillumcepa）的鳞茎，黑麦，蚕豆（Viciafaba）的种子，2.用具：载玻片，盖玻片，50ml烧杯，温度计，恒温水浴锅，试剂瓶，镊子，解剖针，吸水纸，剪刀，绘图，纸胶水等。
3.药品：Carnoy固定液，70％酒精，酸酒精，0.002M8-羟基喹啉，饱和对二氯苯水溶液，秋水仙素，1mol/HCl，石碳酸品红染色液。
四、方法与步骤（一）植物有丝分裂1、材料处理先将种子用0.1～0.2%升汞（HgCl2）消毒10分钟，清水洗净后，置于23-25℃下发根至0.5cm，再移入0.05-0.1%秋水仙素溶液，根尖朝下且浸在药液中，25℃下培养直至根尖膨大。
将洋葱，或黑麦，或蚕豆发根，待根长到1.5-2.0cm左右时备用；在分裂高峰期前3h，用0.002M8-羟基喹啉，或对二氯苯饱和水溶液，或0.02％秋水仙素溶液中，预处理3—4h；或放入冰箱(0—4℃)中预处理24h。
植物染色体制片与观察实验报告(洋葱组).参考分享
植物染色体制片与观察实验报告（洋葱组）.参考分享植物染色体制片与观察实验报告（洋葱组）同组成员：曹鉴云陈锦容刘艳马彦霞一、中文摘要：染色体（ Chromosome ），是细胞内具有遗传性质的物体，易被碱性染料染成深色，又叫染色质。
其本质是脱氧核甘酸，是细胞核内由核蛋白组成、能用碱性染料染色、有结构的线状体，是遗传物质基因的载体。
这里我们用洋葱染色体作为代表使用压片法制片并且进行观察。
二、关键词：染色体洋葱压片法三、引言：洋葱（ onion ）是百合科（ Liliaceae ）葱属中以肉质鳞片和鳞芽构成鳞芽的 2 年生草本植物，其学名为Allium cepa L ，染色体数为2n=2x=16 。
由表 1 和图 1 可见 ,洋葱的 8 对染色体中 ,有 7 对 (第 1~7 对 )染色体 ,臂比在1·01~1 ·70 之间 ,为中部着丝点染色体 ,1 对 (第 8 对 ),臂比为 4 ·74, 为近端部着丝点且带随体的染色体 ; 依据 STEB-BINS[4] 的核型分类标准 ,洋葱的染色体核型在遗传进化上属较古老的 2A 型。
100多年来有关染色体与染色体组结构功能的研究一直是生命科学最活跃的研究领域之一，现今人们完成基因组测序后回到对染色体上进行基因定位和作图，因此有关染色体的研究在基因组合功能基因组时代都有重要意义，陈瑞阳教授历时 25 年的研究完成的《中国主要植物染色体研究》对我国 2834 种植物染色体数目进行了报道，完成了 1045 种植物的核型分析，积累了宝贵的染色体基础数据创建了我国植物染色体研究信息平台。
研究染色体进化与生物进化的有不可分割的关系, 国际对染色体的化学成分,DNA 含量 ,碱基组成和以染色体数目、形态、结构、大小等为特征的核型进化与物种形成和演化关系的研究,为揭示生物进化趋势提供染色体方面的科学资料，总的来说对染色体的研究在各类学科领域内都有着重要的意义。
植物染色体的制片与观察
植物染色体的制片与观察以及核型分析组员：郑石悦陈雨佳吴俊强植物染色体的制片与观察一.实验目的：1.了解预处理，固定，解离，染色，烤片，及压片的步骤和作用。
2.掌握植物有丝分裂染色体常规制片技术。
3.观察有丝分裂过程中染色体的形态特征以及动态变化。
二．实验原理：1.植物根尖分生组织的细胞有丝分裂比较旺盛，每天都有分裂高峰时期。
2.不同植物分裂高峰时期是不同的。
大蒜和洋葱细胞的有丝分裂高峰时期通常在上午九点到十一点。
3.把分裂时期的根尖用固定液固定，再经染色后压片，在显微镜下进行观察，就能看到处于有丝分裂各时期的细胞和染色体。
4.预处理可以使染色体缩短变粗，易于计数。
同时抑制细胞分裂过程中纺锤丝的形成，使更多细胞停留在分裂中期。
这时，染色体分散在整个细胞质中，有利于染色体的形态数目观察。
三．实验材料：洋葱实验用具：显微镜，载玻片，盖玻片，玻璃皿，镊子，解剖针，恒温培养箱，恒温水浴箱，棉签，刀片试剂：95%乙醇，冰醋酸，盐酸，醋酸洋红染色液，秋水仙素，2甲苯四.实验步骤：1.材料的培养：洋葱置于盛有湿沙的托盘中，20~25度培养至根长1~2厘米时取材。
取材时使用解剖针及镊子。
2.预处理：（1）化学药物处理：0.05%~0.2%秋水仙素水溶液在室温条件下处理2~4个小时（注意时间不能过长，过长染色体会变得很短，不利于研究）（2）冷冻处理：将根尖置于盛有冰雪混合物的烧杯中，保存于1~4度的冰箱20~24个小时（化学药物处理对染色体有破坏。
冷冻处理无破坏，对禾本科植物效果良好）3.固定:将材料再用蒸馏水冲洗两次，转入卡诺氏固定液（乙醇和冰醋酸以三比一混合）中固定24个小时（注意取材和固定时要在有丝分裂高峰期）。
4.解离：将根尖用蒸馏水冲洗后放入已经在60度恒温水浴箱中预热的1mol每升的盐酸中，60度水浴约十分钟，当根尖的伸长区变透明而分生区呈米黄色或乳白色时即可取出，用蒸馏水冲洗后备用。
5.染色及压片：取出根尖，去掉伸长区，留1~2mm的分生组织区滴一滴醋酸洋红染色液，染色2~3分钟，然后盖上盖玻片，在酒精火焰上方加热至手背触摸盖玻片时感到微烫（酒精灯加热的作用是1.软化细胞，易于压片2.使细胞质颜色变浅，使染色体颜色反差加大，利于观察）。
植物染色体倍性分析实用文档
染色体倍性分析的意义
染色体倍性分析有助于了解植物的进化历程和分类地位，对于植物学研究和植物资源保护具有重要意 义。
染色体倍性分析还可以指导育种工作，通过选择具有理想染色体倍数的亲本进行杂交，可以培育出具 有优良性状的植物新品种。
02 植物染色体倍性分析方法
形态学方法
总结词
通过观察植物形态特征来推断染色体倍性。
05 实际操作指南
实验材料的选择与准备
染色体倍性分析试剂盒
选择可靠的试剂盒，确保实验结果的准确性 和可靠性。
显微镜和成像系统
选择高分辨率的显微镜和成像系统，以便清 晰观察染色体形态。
植物组织样本
采集健康、生长良好的植物组织样本，确保 样本具有代表性。
其他实验器材
根据试剂盒要求准备相应的实验器材，如离 心管、吸管、染色剂等。
染色体倍性分析在植物进化研究中具有重要意义，有助于揭示植物的进化 历程和机制。
通过染色体倍性分析，可以研究植物种群遗传多样性和进化趋势，以及物 种形成和分化过程。
染色体倍性分析还可以用于研究植物对环境适应和进化的机制，为生物多 样性和生态系统的保护提供科学依据。
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植物染色体倍性分析的挑战与 前景
植物染色体倍性分析实 用文档
目录
Contents
• 植物染色体倍性分析用 • 植物染色体倍性分析的挑战与前景 • 实际操作指南 • 参考文献
01 植物染色体倍性分析简介
染色体倍性的定义
染色体倍性是指细胞中染色体数目变 异的情况，通常以染色体组倍数如二 倍体、四倍体、六倍体等来表示。
技术进步对染色体倍性分析的影响
基因组学技术的应用
基因组学技术的不断发展为染色体倍性分析提供了更精确、 全面的检测手段，有助于更深入地了解染色体倍性变异。
实验七 植物染色体标本的制备与观察
解离：取出根尖放入1mol/L HCl（58-60 ℃解离 对比）解离14-15min，软化去除细胞壁及果胶物 质，使细胞易于分散。 染色：倒去热HCl后，用改良苯酚品红染色液染 色5～10min。 漂洗：吸去染色液，用漂洗液换洗2-3次，每次12分钟。
酶解：在载玻片上切取根尖着色深的部分，浸入 小酒杯内1-2第混合酶液中，室温下酶解40min左 右或在28 ℃温箱中酶解20min左右。
取材：将小麦放在25℃温箱中发芽，待根长到 1~2cm左右，窃取0.5cm长的根尖部分。
前处理：剪下根尖用0.1％秋水仙素溶液处理3～ 4h。也可将剪下的根尖放在0～3℃蒸馏水中，置 冰箱中24小时，使分裂的细胞尽可能集中于分裂 中期。
固定：用水洗净处理过的根尖，经Carnoy固定2～ 24小时。换入70%的酒精，使细胞的分裂活动处 于停滞状态。 制片：有多种方法——切片、压片、滴片等。
洗涤：吸去酶液，加蒸馏水，用吸管换洗几次， 吸去残留的煤业后加入45%的醋酸。 压片：用吸管从醋酸中吸去材料，置于干净的载 玻片上，保留少许醋酸，盖上盖玻片，覆以吸水 纸，轻轻敲打盖片，使细胞和染色体分散。 镜检
四：实验观察结果
1．分裂细胞观察 低倍镜找分裂细胞区,高倍镜观察染色体形 态。估计染色体数目。
染色体组在细胞分裂中期的表型称为染色体组型 或称核型，包括染色体数目、形态、大小、着丝 点位置及副缢痕及随体的有无等特征。 染色体组型分析就是通过对染色体标本或其照片 进行测量、对比分析、配对、分组、排列，对组 内各染色体的形态进行测量、描述，从而阐明生 物染色体组成的过程。
三、实验材料
器具：恒温培养箱，显微镜
试剂：0.1％秋水仙素溶液，Carnoy固定液， 1mol/L HCL, 亚硫酸水溶液（漂洗液），纤维素酶 ，果胶酶，改良苯酚品红染色液（Carbor fuchsin ，）