小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验报告小结(3篇)
第1篇一、实验背景缺氧是指生物体在氧气供应不足的情况下，无法满足正常生理活动所需的氧气量。
缺氧会导致细胞代谢紊乱，严重时甚至会引起细胞死亡。
为了研究缺氧对小鼠生理和生化指标的影响，我们进行了小鼠缺氧实验。
二、实验目的1. 观察缺氧对小鼠生理和行为的影响。
2. 分析缺氧对小鼠生化指标的影响。
3. 探讨缺氧的潜在机制。
三、实验方法1. 实验动物：选取健康成年雄性小鼠20只，体重约20g，随机分为两组，每组10只。
2. 缺氧模型建立：将一组小鼠放入密闭容器中，容器内氧气浓度控制在5%以下，另一组作为对照组，正常饲养。
3. 实验观察指标：（1）生理指标：观察小鼠活动能力、呼吸频率、心率等生理指标。
（2）生化指标：检测小鼠血液中的乳酸、丙酮酸、血糖、尿素氮等生化指标。
（3）组织学观察：取小鼠脑、心脏、肝脏等组织，进行组织学观察。
四、实验结果1. 生理指标：（1）缺氧组小鼠活动能力明显下降，表现为行动迟缓、反应迟钝。
（2）缺氧组小鼠呼吸频率加快，心率增加。
（3）缺氧组小鼠出现明显缺氧症状，如口唇发绀、呼吸急促等。
2. 生化指标：（1）缺氧组小鼠血液乳酸、丙酮酸含量显著升高，血糖含量降低。
（2）缺氧组小鼠血液尿素氮含量升高，表明肾脏负担加重。
3. 组织学观察：（1）缺氧组小鼠脑组织出现神经元损伤，表现为神经元肿胀、核固缩等。
（2）缺氧组小鼠心脏、肝脏组织出现细胞水肿、坏死等病理改变。
五、讨论1. 缺氧对小鼠生理和行为的影响：缺氧导致小鼠活动能力下降、呼吸频率加快、心率增加，表现为明显的缺氧症状。
这与缺氧导致细胞代谢紊乱、能量供应不足有关。
2. 缺氧对小鼠生化指标的影响：缺氧导致小鼠血液乳酸、丙酮酸含量升高，血糖含量降低，表明细胞能量代谢受到抑制。
同时，缺氧导致小鼠血液尿素氮含量升高，说明肾脏负担加重。
3. 缺氧的潜在机制：缺氧导致细胞内线粒体功能障碍，线粒体氧化磷酸化受阻，能量供应不足。
此外，缺氧还可能导致细胞内钙超载、活性氧（ROS）产生增加，进一步加重细胞损伤。
小鼠各型缺氧实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性、血液性、组织中毒性缺氧的分类。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响，以及血液颜色变化。
3. 了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理通过模拟不同类型的缺氧环境，观察小鼠的生理反应，了解缺氧对机体的影响。
实验分为三种缺氧类型：乏氧性缺氧、血液性缺氧、组织中毒性缺氧。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康小白鼠若干只。
2. 实验仪器：小鼠缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置广口瓶、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水、耗氧量测定装置、记录表格等。
四、实验方法与步骤1. 乏氧性缺氧实验- 将四只小鼠分别编号为甲、乙、丙、丁。
- 将甲、乙、丙鼠放入缺氧瓶中，每2分钟记录一次死亡情况（记录时间及耗氧量）。
- 观察并记录甲鼠尸体部分肝叶颜色变化。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验- 将一只小鼠放入一氧化碳发生装置的广口瓶中，观察并记录其死亡时间。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧实验- 将一只小鼠腹腔注射5%亚硝酸钠，观察并记录其死亡时间。
4. 缺氧耐受性实验- 将四只小鼠分为两组，一组为实验组，另一组为对照组。
- 实验组小鼠腹腔注射氯丙嗪，使其进入人工冬眠状态；对照组小鼠注射生理盐水。
- 将两组小鼠分别放入装有5g钠石灰的广口瓶中，塞紧瓶塞，连通测氧耗装置。
- 开始计时，每3分钟重复观察并记录上述指标一次，直至动物死亡。
五、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧实验- 甲、乙、丙鼠均死亡，耗氧量逐渐减少，肝叶颜色变暗。
- 结果表明，乏氧性缺氧会导致小鼠呼吸系统功能障碍，进而引起肝细胞缺氧，导致肝叶颜色变暗。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验- 小鼠死亡时间较短，耗氧量迅速下降。
- 结果表明，一氧化碳中毒会导致小鼠呼吸系统功能障碍，迅速引起缺氧。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧实验- 小鼠死亡时间较长，耗氧量逐渐减少。
小鼠缺氧抢救实验报告
一、实验目的1. 复制小鼠缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理机能的影响。
2. 探究不同抢救措施对小鼠缺氧状态的影响。
3. 评估不同抢救方法的疗效，为临床抢救提供理论依据。
二、实验原理缺氧是指机体组织因氧供应不足或利用障碍，导致细胞代谢障碍、器官功能损害的一种病理状态。
本实验通过复制小鼠缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理机能的影响，并探究不同抢救措施对小鼠缺氧状态的影响，以期为临床抢救提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：清洁级昆明小鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 实验仪器：动物呼吸机、动物血压计、动物心电图仪、显微镜、电子天平等。
3. 实验试剂：生理盐水、氨茶碱、吸氧面罩、氧气瓶等。
四、实验方法1. 将小鼠随机分为A、B、C、D四组，每组10只。
2. A组为缺氧组，将小鼠置于缺氧瓶中，模拟人体高原缺氧环境，观察小鼠生理指标变化。
3. B组为吸氧组，在缺氧状态下给予小鼠吸氧面罩，观察小鼠生理指标变化。
4. C组为氨茶碱组，在缺氧状态下给予小鼠氨茶碱，观察小鼠生理指标变化。
5. D组为对照组，正常饲养，观察小鼠生理指标变化。
6. 每组小鼠分别记录呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标，并进行统计分析。
五、实验结果1. 缺氧组小鼠呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标均明显低于对照组（P<0.05）。
2. 吸氧组小鼠呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标较缺氧组明显改善（P<0.05）。
3. 氨茶碱组小鼠呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标较缺氧组明显改善（P<0.05）。
4. 吸氧组和氨茶碱组小鼠存活率明显高于缺氧组（P<0.05）。
六、讨论1. 缺氧状态下，小鼠生理指标明显下降，表明缺氧对小鼠生理机能造成严重影响。
2. 吸氧和氨茶碱均可有效改善小鼠缺氧状态，提高小鼠存活率。
3. 吸氧通过提高血氧饱和度，缓解缺氧对组织细胞的损伤；氨茶碱通过扩张支气管、缓解平滑肌痉挛，改善通气功能，从而缓解缺氧。
缺氧模型复制实验报告(3篇)
第1篇一、实验背景缺氧是机体因氧供应不足或组织利用氧障碍而导致的生理和生化异常变化的病理过程。
缺氧在多种疾病中起着重要作用，如心血管疾病、呼吸系统疾病、神经系统疾病等。
为了研究缺氧对机体的影响，本实验旨在复制缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响。
二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型，包括乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。
2. 观察缺氧对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响。
3. 分析不同缺氧类型对小鼠的影响差异。
三、实验材料1. 实验动物：昆明种小白鼠，体重（20±2）g，雌雄各半。
2. 试剂与仪器：生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、10%葡萄糖溶液、0.1%氰化钾溶液、NaOH溶液、乙醇、甲醛、冰醋酸、中性树胶、显微镜、电子天平、移液器、离心机、水浴箱、高压蒸汽灭菌器等。
四、实验方法1. 缺氧模型复制（1）乏氧性缺氧：将小白鼠放入容积为1000ml的广口瓶中，加入NaOH溶液至瓶底，密封瓶口，使瓶内氧气被NaOH吸收，形成乏氧环境。
（2）血液性缺氧：将小白鼠放入含有5%亚硝酸钠溶液的广口瓶中，密封瓶口，使亚硝酸钠与血液中的血红蛋白结合，降低血液携氧能力。
（3）组织中毒性缺氧：将小白鼠放入含有0.1%氰化钾溶液的广口瓶中，密封瓶口，使氰化钾抑制细胞内呼吸酶活性，导致组织细胞缺氧。
2. 观察指标（1）生理指标：记录小白鼠的呼吸频率、心率、体温等生理指标。
（2）生化指标：采集小白鼠血液，检测血氧饱和度、血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性等生化指标。
（3）组织形态：取小白鼠肝脏、心脏、肾脏等组织，进行组织切片，观察细胞形态和结构变化。
3. 数据处理与分析采用统计学方法对实验数据进行统计分析，比较不同缺氧类型对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响差异。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧组：小白鼠呼吸频率明显降低，心率减慢，体温下降；血氧饱和度、血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性均明显降低；组织切片观察发现，细胞出现肿胀、变性等病理变化。
缺氧小鼠观察实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧对小鼠生理、行为的影响。
2. 掌握缺氧小鼠的观察方法及实验操作技能。
3. 分析缺氧对小鼠生理、行为的影响，为缺氧相关疾病的研究提供实验依据。
二、实验原理缺氧是指组织、细胞因供氧不足而发生的生理、生化反应。
缺氧小鼠实验是通过人为制造缺氧环境，观察缺氧对小鼠生理、行为的影响，从而了解缺氧对生物体的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄不限。
2. 仪器：缺氧箱、天平、显微镜、解剖镜、记号笔、记录纸等。
3. 药品与试剂：生理盐水、福尔马林固定液、苏木精-伊红染色液等。
四、实验方法1. 实验分组：将小鼠随机分为缺氧组和对照组，每组10只。
2. 缺氧处理：将缺氧组小鼠放入缺氧箱中，箱内氧浓度为5%左右，持续4小时。
3. 对照组小鼠正常饲养。
4. 观察指标：（1）生理指标：观察小鼠呼吸、心率、体温等生理指标。
（2）行为指标：观察小鼠活动能力、运动协调性、睡眠等行为表现。
（3）组织学观察：取小鼠大脑、心脏、肝脏等组织，进行苏木精-伊红染色，观察细胞结构变化。
5. 数据记录与分析：对观察到的指标进行记录，并进行统计学分析。
五、实验结果1. 生理指标：缺氧组小鼠呼吸频率、心率、体温均低于对照组，且有显著性差异（P<0.05）。
2. 行为指标：缺氧组小鼠活动能力、运动协调性明显下降，睡眠时间延长，与对照组相比有显著性差异（P<0.05）。
3. 组织学观察：缺氧组小鼠大脑、心脏、肝脏等组织细胞出现肿胀、空泡变性、核固缩等细胞损伤现象，与对照组相比有显著性差异（P<0.05）。
六、讨论1. 缺氧对小鼠生理、行为的影响：缺氧会导致小鼠呼吸、心率、体温等生理指标降低，活动能力、运动协调性下降，睡眠时间延长。
这说明缺氧对小鼠生理、行为有显著影响。
2. 缺氧对小鼠组织的影响：缺氧会导致小鼠大脑、心脏、肝脏等组织细胞出现肿胀、空泡变性、核固缩等细胞损伤现象。
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告一、实验目的本次实验旨在通过对小鼠进行不同类型的缺氧处理，观察和记录小鼠在缺氧环境中的生理反应和行为变化，深入了解缺氧对生物体的影响机制。
二、实验材料1、实验动物：健康昆明种小鼠若干只，体重 18 22g，雌雄不拘。
2、实验器材：密闭广口瓶、钠石灰、测氧仪、计时器、解剖器械等。
3、实验药品：生理盐水。
三、实验方法1、低张性缺氧（1）将小鼠放入盛有钠石灰的密闭广口瓶中，瓶容积约为 500ml，通过测氧仪监测瓶内氧浓度的变化。
（2）观察并记录小鼠的呼吸频率、深度、行为表现（如活动情况、精神状态）以及存活时间。
2、血液性缺氧（1）给部分小鼠腹腔注射亚硝酸盐溶液，剂量为 01ml/10g，建立血液性缺氧模型。
（2）观察注射后小鼠的皮肤黏膜颜色变化、呼吸状态和行为表现，并记录存活时间。
3、组织性缺氧（1）给另一部分小鼠腹腔注射氰化物溶液，剂量为 01ml/10g，造成组织性缺氧。
（2）同样观察并记录小鼠的各项生理指标和存活时间。
四、实验结果1、低张性缺氧（1）随着瓶内氧气逐渐减少，小鼠呼吸频率加快，深度加深，活动逐渐减少，精神状态变差。
（2）小鼠的存活时间个体之间存在一定差异，平均存活时间约为_____分钟。
2、血液性缺氧（1）注射亚硝酸盐溶液后，小鼠皮肤黏膜呈现青紫色，呼吸变得急促但浅弱。
（2）存活时间相对较短，平均约为_____分钟。
3、组织性缺氧（1）注射氰化物溶液后，小鼠很快出现呼吸困难，痉挛等症状。
（2）存活时间最短，平均仅为_____分钟。
五、结果分析1、低张性缺氧时，由于外界氧分压降低，刺激外周化学感受器，引起呼吸加深加快，以增加肺通气量，试图获取更多的氧气。
但随着缺氧时间延长，机体能量供应不足，导致活动减少和精神萎靡，最终因严重缺氧而死亡。
2、血液性缺氧是由于血红蛋白的性质改变，使其携氧能力下降，导致组织缺氧。
亚硝酸盐可使血红蛋白中的二价铁离子氧化为三价铁离子，形成高铁血红蛋白，失去携氧能力，从而引起皮肤黏膜青紫等症状。
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告小鼠缺氧实验报告一、实验目的：通过小鼠缺氧实验，观察小鼠在缺氧条件下的行为变化，了解缺氧对小鼠的影响。
二、实验原理：缺氧是指机体在吸入空气中氧分压低于正常时发生的异常状况。
缺氧可导致机体供氧不足，细胞及组织器官功能受损。
小鼠缺氧模型是常见的用于研究缺氧生物学效应的模型之一。
三、实验步骤：1. 将小鼠用柔软的纸巾包裹住，将其头部放入密封的缺氧箱中。
2. 打开缺氧箱的气阀，调控缺氧箱内的氧气浓度。
3. 观察小鼠在缺氧条件下的行为变化，记录观察结果。
四、实验结果：在缺氧条件下，小鼠的行为表现出明显的变化。
一开始，小鼠表现出不安和焦虑的行为，如不停地走动、尖叫等。
随着缺氧时间的延长，小鼠出现活动减少、呼吸急促、四肢抽搐等症状。
最终，小鼠停止活动并失去知觉。
五、实验讨论：小鼠在缺氧条件下的行为变化与人类相似。
当人体暴露在缺氧环境中时，也会出现焦虑、呼吸困难甚至失去知觉等症状。
这是因为缺氧导致机体能量代谢障碍，供氧不足，细胞功能受损。
六、实验结论：小鼠缺氧实验结果表明，缺氧对小鼠的行为和生理状态产生明显影响。
缺氧可导致小鼠出现焦虑、呼吸急促、四肢抽搐等症状，严重时会导致小鼠停止活动并失去知觉。
这与人类在缺氧环境中出现的症状相似，提示缺氧对生物体有重要影响。
七、改进方向：1. 增加实验样本的数量，提高结果可靠性。
2. 进一步研究小鼠缺氧后生化指标的变化，如血氧饱和度、乳酸酸中毒等。
3. 探究缺氧对不同组织和器官的影响，加深对缺氧机制的理解。
以上为小鼠缺氧实验的简要报告，实验结果可为缺氧研究提供参考依据。
小鼠缺氧病理实验报告
一、实验目的1. 复制小鼠缺氧模型，了解缺氧对机体的影响。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统及血液的影响。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指机体在供氧不足的情况下，组织细胞无法获得足够的氧气进行代谢，导致能量代谢障碍，引起一系列生理和病理变化。
本实验通过模拟不同类型的缺氧，观察缺氧对小鼠的影响，以期为临床治疗缺氧相关疾病提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠10只，体重20-25克。
2. 实验仪器：缺氧箱、呼吸机、显微镜、离心机、电子天平等。
3. 实验试剂：生理盐水、亚硝酸钠、氰化钾、钠石灰等。
四、实验方法1. 缺氧模型制备（1）低张性缺氧：将小白鼠放入缺氧箱中，箱内氧气浓度控制在5%以下，持续30分钟。
（2）一氧化碳中毒性缺氧：将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，持续吸入一氧化碳30分钟。
（3）氰化钾中毒性缺氧：将小白鼠腹腔注射氰化钾50mg/kg，观察动物中毒症状。
2. 实验分组将小白鼠随机分为五组：对照组、低张性缺氧组、一氧化碳中毒性缺氧组、氰化钾中毒性缺氧组和钠石灰组。
3. 指标检测（1）呼吸频率：观察并记录实验前后小鼠的呼吸频率。
（2）中枢神经系统功能：观察并记录小鼠的行为变化，如兴奋、抑制、抽搐等。
（3）血液指标：检测小鼠血红蛋白、血氧饱和度等指标。
（4）组织学观察：取小鼠脑组织、肺组织等，进行光镜和电镜观察。
五、实验结果1. 低张性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，表现为呼吸困难。
（2）中枢神经系统功能受到影响，出现兴奋、抑制等症状。
（3）血红蛋白和血氧饱和度明显降低。
（4）组织学观察：脑组织出现水肿、神经元变性等。
2. 一氧化碳中毒性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，出现紫绀。
（2）中枢神经系统功能受到影响，出现昏迷、抽搐等症状。
（3）血红蛋白和血氧饱和度明显降低。
（4）组织学观察：肺组织出现水肿、肺泡出血等。
3. 氰化钾中毒性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，出现紫绀。
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告1 缺氧实验简介小鼠缺氧实验是一种常用的实验方法，其旨在通过给小鼠施加缺氧刺激，来研究缺氧对小鼠生理和行为的影响。
缺氧条件下，小鼠的体内氧气供应不足，导致细胞功能受损，进一步影响各个系统的功能。
本文将介绍小鼠缺氧实验的具体步骤以及相关研究成果。
2 小鼠缺氧实验的步骤2.1 动物实验伦理小鼠缺氧实验需要对动物实验进行伦理审查，并经过合格的动物实验委员会批准。
实验过程中需要遵循动物实验规范，保证小鼠的生命和健康。
2.2 小鼠缺氧处理实验过程中，可以采用不同的方法给小鼠施加缺氧刺激。
最常用的方法是让小鼠置于缺氧箱内，让其暴露在一个低氧环境中，从而限制其氧气供应。
另一种方法是使用低氧气体注射技术，给小鼠直接注射低氧气体。
2.3 实验控制为了减少实验误差，需要对实验条件进行严格控制。
例如，需要标准化实验条件，如环境温度、湿度、光照等。
此外，为了确保实验结果的可靠性，需要设计对照组进行对比分析。
2.4 实验指标测定在实验过程中，需要对小鼠的各种指标进行测定，以评估缺氧刺激对小鼠的生理和行为的影响。
常用的指标包括血氧饱和度、动脉血气分析、神经元形态和功能等。
3 小鼠缺氧实验的应用小鼠缺氧实验常用于研究缺氧对感觉、运动、认知等行为的影响。
此外，该实验还常用于探索缺氧对神经系统、心血管系统、免疫系统等方面的影响。
针对不同的研究目的，可以采用不同的实验方案。
例如，可以通过不同的时间、强度和频率的缺氧刺激来了解缺氧对小鼠生理功能的影响。
也可以结合其他技术手段，如行为学、神经电生理学和影像学等，来对小鼠的行为和神经系统功能进行全面评估。
4 实验成果小鼠缺氧实验已被广泛应用于研究不同疾病的发生机制和治疗策略。
例如，研究表明缺氧可以通过激活心肌细胞代谢来促进心脏再生，从而有望成为心脏病治疗的一种新方法。
此外，缺氧刺激还可以促进神经系统的可塑性，可以作为治疗癫痫、帕金森病等神经系统疾病的潜在方法。
总之，小鼠缺氧实验是一种有效的实验方法，可以用于研究缺氧对小鼠生理和行为的影响，有望为研究不同疾病的发病机制和治疗策略提供新思路。
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告
实验目的，通过对小鼠进行缺氧实验，观察其在缺氧环境下的生理和行为变化，为研究缺氧相关疾病提供实验数据支持。
实验方法，选取健康小鼠若干只，置于缺氧箱内，通过控制缺氧箱内氧气浓度，模拟高原缺氧环境。
在实验过程中，记录小鼠的呼吸频率、心率、体温等生理指标变化，观察其行为活动，比较实验前后的差异。
实验结果，经过一定时间的缺氧处理，小鼠呼吸频率明显增加，心率加快，体
温略有下降。
在行为活动上，小鼠表现出明显的运动减少，精神萎靡，食欲不振等症状。
实验结论，缺氧环境对小鼠的生理和行为产生了明显的影响，呼吸、心率、体
温等生理指标均发生了变化，行为活动也受到一定程度的抑制。
这些结果为缺氧相关疾病的研究提供了重要的实验数据支持。
实验意义，缺氧是一些高原地区常见的自然环境，也是一些疾病的重要诱因。
通过对小鼠的缺氧实验，可以更好地理解缺氧对生物体的影响机制，为相关疾病的预防和治疗提供理论依据和实验支持。
实验展望，未来可以进一步深入研究缺氧对小鼠的影响机制，探索缺氧对器官
和组织的影响，为人类缺氧相关疾病的研究提供更多的实验数据和理论支持。
结语，通过对小鼠的缺氧实验，我们初步了解了缺氧对生物体的影响，这对于
缺氧相关疾病的研究具有重要的意义。
希望未来可以进一步深入研究，为人类的健康提供更多的科学依据。
小鼠缺氧实验报告结论
一、实验背景缺氧是生物体在氧气供应不足的情况下出现的一种生理状态，它会对生物体的生命活动产生严重影响。
为了研究缺氧对小鼠生理机能的影响，本实验采用模拟缺氧环境，观察小鼠在不同缺氧条件下的生理反应，探讨缺氧对小鼠的影响。
二、实验目的1. 观察小鼠在缺氧环境下的生理反应；2. 探讨缺氧对小鼠生理机能的影响；3. 为临床治疗缺氧相关疾病提供理论依据。
三、实验材料与方法1. 实验动物：健康成年雄性小鼠，体重（20±2）g，共40只。
2. 实验设备：缺氧箱、生理记录仪、电子天平、解剖显微镜等。
3. 实验方法：（1）将40只小鼠随机分为4组，每组10只，分别标记为A组、B组、C组和D组。
（2）A组为对照组，正常饲养，不进行缺氧处理。
（3）B组为轻度缺氧组，将小鼠放入缺氧箱中，模拟海拔3000m的缺氧环境，持续处理2小时。
（4）C组为中度缺氧组，将小鼠放入缺氧箱中，模拟海拔5000m的缺氧环境，持续处理2小时。
（5）D组为重度缺氧组，将小鼠放入缺氧箱中，模拟海拔8000m的缺氧环境，持续处理2小时。
（6）在缺氧处理前后，分别记录各组小鼠的体重、心率、呼吸频率、血氧饱和度等生理指标。
四、实验结果1. 体重变化：在缺氧处理后，各组小鼠体重均出现下降趋势，且随缺氧程度加重，体重下降幅度越大。
2. 心率变化：在缺氧处理后，各组小鼠心率均出现升高趋势，且随缺氧程度加重，心率升高幅度越大。
3. 呼吸频率变化：在缺氧处理后，各组小鼠呼吸频率均出现升高趋势，且随缺氧程度加重，呼吸频率升高幅度越大。
4. 血氧饱和度变化：在缺氧处理后，各组小鼠血氧饱和度均出现下降趋势，且随缺氧程度加重，血氧饱和度下降幅度越大。
五、实验结论1. 缺氧会对小鼠的生理机能产生显著影响，表现为体重下降、心率升高、呼吸频率升高和血氧饱和度下降。
2. 随着缺氧程度的加重，小鼠的生理反应越明显，说明缺氧对小鼠的生理机能损害程度越大。
3. 本实验为临床治疗缺氧相关疾病提供了理论依据，提示在缺氧环境下，应采取有效措施保障人体生理机能的稳定。
机能实验报告小鼠缺氧
一、实验目的1. 了解缺氧对小鼠生理功能的影响。
2. 掌握缺氧实验的基本操作方法。
3. 分析缺氧条件下小鼠生理指标的变化。
二、实验原理缺氧是指组织细胞在氧气供应不足的情况下，不能正常进行有氧代谢，导致能量供应不足，进而引起一系列生理和生化反应。
本实验通过人为制造缺氧环境，观察小鼠在缺氧条件下的生理反应，以探讨缺氧对小鼠生理功能的影响。
三、实验材料1. 实验动物：健康昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄不限。
2. 实验仪器：缺氧装置、电子天平、氧气传感器、显微镜、酶标仪等。
3. 实验试剂：生理盐水、碘酊、酒精、NaOH等。
四、实验方法1. 实验分组：将实验动物随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 缺氧处理：将实验组小鼠放入缺氧装置中，进行缺氧处理，时间为2小时。
对照组小鼠在正常环境中饲养。
3. 样本采集：缺氧处理结束后，分别采集实验组和对照组小鼠的血液、肝脏、肾脏、大脑等组织样本。
4. 生理指标检测：采用酶标仪检测小鼠血液中的血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性等指标；采用显微镜观察小鼠组织切片，观察细胞形态变化；采用氧气传感器检测小鼠呼吸频率和呼吸幅度。
5. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的生理指标差异。
五、实验结果1. 血液指标：实验组小鼠血红蛋白含量显著低于对照组，乳酸脱氢酶活性显著高于对照组。
2. 组织切片观察：实验组小鼠肝脏、肾脏、大脑等组织切片显示细胞肿胀、空泡化等病理变化，对照组细胞形态正常。
3. 呼吸指标：实验组小鼠呼吸频率和呼吸幅度均显著低于对照组。
六、实验讨论1. 缺氧对小鼠生理功能的影响：缺氧条件下，小鼠血红蛋白含量降低，乳酸脱氢酶活性升高，表明缺氧导致小鼠有氧代谢受阻，能量供应不足。
同时，组织切片观察发现细胞出现肿胀、空泡化等病理变化，进一步证实缺氧对小鼠生理功能的影响。
2. 缺氧处理时间的选择：本实验中缺氧处理时间为2小时，根据实验结果，缺氧时间过长可能导致小鼠死亡。
缺氧实验报告正常小鼠
一、实验目的1. 了解缺氧对小鼠生理功能的影响。
2. 探讨缺氧条件下小鼠的生命体征变化。
3. 分析缺氧对小鼠生存能力的影响。
二、实验材料1. 实验动物：正常小鼠10只，体重（20±2）g，雌雄各半。
2. 缺氧装置：自制缺氧箱，容量为1000mL。
3. 仪器：电子天平、秒表、温度计、血压计、呼吸计等。
4. 药品：生理盐水、乳酸钠等。
三、实验方法1. 将10只正常小鼠随机分为两组，每组5只，分别为实验组和对照组。
2. 实验组：将小鼠放入缺氧箱中，箱内氧浓度为10%，温度控制在（20±2）℃，观察小鼠在缺氧条件下的生命体征变化。
3. 对照组：将小鼠置于正常环境中，观察小鼠的生命体征变化。
4. 观察指标：（1）小鼠呼吸频率、心率、血压变化；（2）小鼠活动能力、行为变化；（3）小鼠存活时间。
四、实验结果1. 呼吸频率、心率、血压变化（1）实验组：在缺氧条件下，小鼠呼吸频率逐渐降低，心率减慢，血压降低。
缺氧30分钟后，呼吸频率降至（12±2）次/min，心率降至（80±5）次/min，血压降至（60±5）mmHg。
（2）对照组：在正常环境中，小鼠呼吸频率、心率、血压均处于正常范围。
2. 活动能力、行为变化（1）实验组：在缺氧条件下，小鼠活动能力逐渐减弱，表现为动作迟缓、精神萎靡。
缺氧30分钟后，小鼠出现明显的疲劳现象，甚至出现昏睡状态。
（2）对照组：在正常环境中，小鼠活动能力、行为正常。
3. 存活时间（1）实验组：在缺氧条件下，小鼠存活时间约为30分钟。
（2）对照组：在正常环境中，小鼠存活时间超过6小时。
五、讨论与分析1. 缺氧对小鼠生理功能的影响（1）呼吸频率、心率、血压变化：缺氧条件下，小鼠呼吸频率降低、心率减慢、血压降低，说明缺氧对小鼠的循环系统和呼吸系统产生了明显的影响。
（2）活动能力、行为变化：缺氧条件下，小鼠活动能力减弱、精神萎靡，说明缺氧对小鼠的神经系统产生了影响。
小鼠缺氧实验实验报告
1. 观察小鼠在缺氧条件下的生理反应；2. 探讨缺氧对小鼠生理功能的影响；3. 为临床医学研究提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：健康昆明小鼠10只，体重（20±2）g；2. 实验仪器：缺氧箱、呼吸机、生理记录仪、电子天平、手术器械等；3. 实验试剂：生理盐水、麻醉剂等。
三、实验方法1. 实验分组：将10只小鼠随机分为两组，每组5只，分别命名为A组和B组；2. 缺氧处理：将A组小鼠放入缺氧箱中，模拟缺氧环境，B组小鼠作为对照组，置于正常环境中；3. 实验时间：缺氧处理时间为2小时；4. 数据收集：在缺氧处理前后，记录小鼠的体重、呼吸频率、心率、血氧饱和度等生理指标；5. 数据分析：对实验数据进行统计学分析，比较A组和B组小鼠的生理指标差异。
四、实验结果1. 体重变化：缺氧处理后，A组小鼠体重明显下降，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）；2. 呼吸频率：缺氧处理后，A组小鼠呼吸频率明显增加，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）；3. 心率：缺氧处理后，A组小鼠心率明显加快，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）；4. 血氧饱和度：缺氧处理后，A组小鼠血氧饱和度明显下降，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
1. 缺氧对小鼠生理功能的影响：本实验结果显示，缺氧处理后，小鼠的体重、呼吸频率、心率和血氧饱和度等生理指标均发生了明显变化。
这表明缺氧对小鼠的生理功能产生了显著影响；2. 缺氧机制探讨：缺氧导致小鼠体内氧气供应不足，进而影响细胞的能量代谢和功能。
缺氧时，细胞内乳酸堆积，导致细胞内酸中毒，进而影响细胞功能和生命活动；3. 临床意义：本实验为临床医学研究提供了实验依据。
在临床工作中，了解缺氧对机体的影响，有助于预防和治疗因缺氧引起的疾病。
六、实验结论本实验结果表明，缺氧对小鼠的生理功能产生了显著影响，表现为体重下降、呼吸频率增加、心率加快和血氧饱和度下降。
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告一、实验目的本次实验旨在研究小鼠在不同缺氧条件下的生理反应和耐受性，以深入了解缺氧对生物体的影响机制。
二、实验原理缺氧是指组织或细胞得不到足够的氧供应或不能充分利用氧的情况。
当机体处于缺氧状态时，会通过一系列生理调节机制来维持生命活动，但如果缺氧程度严重或持续时间过长，可能会导致细胞损伤甚至死亡。
三、实验材料1、实验动物：健康成年小鼠若干只。
2、实验器材：密闭容器（如广口瓶）、测氧仪、计时器、解剖器械等。
3、实验药品：生理盐水。
四、实验方法1、低氧环境模拟（1）将小鼠分别放入装有一定量氮气和氧气混合气体的密闭容器中，通过调节氮气和氧气的比例来模拟不同程度的低氧环境。
（2）使用测氧仪监测容器内的氧气浓度，确保达到预定的低氧水平。
2、观察指标（1）在实验过程中，密切观察小鼠的行为表现，如活动情况、呼吸频率、精神状态等。
（2）每隔一定时间记录小鼠的存活时间。
3、实验分组（1）设立正常对照组，小鼠置于正常氧气环境中。
（2）设置不同程度低氧组，如轻度低氧组、中度低氧组和重度低氧组。
4、实验操作（1）将小鼠轻轻放入实验容器中，迅速封闭容器，开始计时。
（2）观察并记录小鼠在不同缺氧条件下的各项指标。
五、实验结果1、正常对照组小鼠在正常氧气环境中表现活跃，呼吸平稳，精神状态良好。
2、轻度低氧组小鼠在开始阶段活动略有减少，但仍能保持相对正常的状态，存活时间较长。
3、中度低氧组小鼠活动明显减少，呼吸频率加快，出现焦虑不安的表现，存活时间较轻度低氧组缩短。
4、重度低氧组小鼠很快出现呼吸困难、抽搐等症状，存活时间最短。
六、实验分析1、从行为表现来看，随着缺氧程度的加重，小鼠的活动能力和精神状态逐渐变差。
这是因为缺氧导致细胞能量代谢障碍，影响了神经系统和肌肉的功能。
2、呼吸频率的变化反映了小鼠对缺氧的代偿反应。
在轻度低氧时，呼吸频率可能会有所增加，以获取更多的氧气。
但在重度低氧时，呼吸功能严重受损，无法有效代偿。
缺氧病理生理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解缺氧的基本概念和分类。
2. 探讨不同类型缺氧对机体的影响和病理生理机制。
3. 通过实验观察缺氧对小鼠生理指标的影响，如呼吸频率、心率、血液pH值等。
4. 分析缺氧耐受性的影响因素。
二、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠（体重20克左右）10只。
2. 实验仪器：呼吸频率计、心率计、血液pH计、注射器、玻璃管、缺氧装置等。
3. 实验试剂：生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、1%美兰溶液、1%氰化钾溶液等。
三、实验方法1. 将小白鼠随机分为五组，每组2只。
2. 第一组（对照组）不做任何处理。
3. 第二组（低张性缺氧组）：将小白鼠放入缺氧装置中，通过通入氮气使氧气浓度降低至5%以下，持续观察其生理指标变化。
4. 第三组（一氧化碳中毒性缺氧组）：将小白鼠放入缺氧装置中，通入一定浓度的一氧化碳，持续观察其生理指标变化。
5. 第四组（亚硝酸钠中毒性缺氧组）：将小白鼠腹腔注射5%亚硝酸钠溶液，持续观察其生理指标变化。
6. 第五组（氰化钾中毒性缺氧组）：将小白鼠腹腔注射1%氰化钾溶液，持续观察其生理指标变化。
7. 观察并记录各组小白鼠的呼吸频率、心率、血液pH值等生理指标变化，直至动物死亡。
四、实验结果1. 对照组：小白鼠生理指标无明显变化。
2. 低张性缺氧组：呼吸频率和心率逐渐加快，血液pH值降低。
3. 一氧化碳中毒性缺氧组：呼吸频率和心率明显加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为30分钟。
4. 亚硝酸钠中毒性缺氧组：呼吸频率和心率逐渐加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为40分钟。
5. 氰化钾中毒性缺氧组：呼吸频率和心率迅速加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为10分钟。
五、实验分析1. 缺氧对机体的影响：缺氧会导致机体出现一系列生理和病理生理反应，如呼吸频率和心率加快、血液pH值降低等。
2. 不同类型缺氧的影响：低张性缺氧和一氧化碳中毒性缺氧对机体的影响较为相似，表现为呼吸频率和心率加快、血液pH值降低。
小鼠缺氧实验的实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧对小鼠生理和生化指标的影响。
2. 探讨缺氧对小鼠呼吸、循环和神经系统的作用。
3. 为进一步研究缺氧对生物体的生理影响提供实验依据。
二、实验原理缺氧是指机体在供氧不足的情况下，组织细胞不能正常进行有氧代谢，导致能量产生不足，进而影响细胞功能。
本实验通过模拟缺氧环境，观察小鼠在缺氧条件下的生理和生化指标变化，以期为缺氧对生物体的研究提供实验依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年小鼠10只，体重20-25g。
2. 仪器设备：动物呼吸机、血气分析仪、显微镜、离心机、酶标仪等。
3. 试剂：血红蛋白测定试剂盒、血清乳酸测定试剂盒、血清肌酸激酶测定试剂盒等。
四、实验方法1. 将10只小鼠随机分为两组，每组5只，分别命名为A组和B组。
2. A组为缺氧组，B组为对照组。
3. 缺氧组小鼠通过动物呼吸机模拟缺氧环境，将氧浓度降低至10%以下，持续2小时；对照组小鼠在正常氧浓度下进行相同时间段的观察。
4. 缺氧和对照组小鼠在实验前后分别进行以下指标的检测：a. 血红蛋白含量测定b. 血清乳酸含量测定c. 血清肌酸激酶含量测定d. 呼吸频率、心率、血压等生理指标观察e. 神经系统功能观察五、实验结果1. 血红蛋白含量：缺氧组小鼠血红蛋白含量较对照组显著降低（P<0.05）。
2. 血清乳酸含量：缺氧组小鼠血清乳酸含量较对照组显著升高（P<0.05）。
3. 血清肌酸激酶含量：缺氧组小鼠血清肌酸激酶含量较对照组显著升高（P<0.05）。
4. 生理指标：缺氧组小鼠呼吸频率、心率、血压等生理指标较对照组显著升高（P<0.05）。
5. 神经系统功能：缺氧组小鼠出现步态不稳、反应迟钝等神经系统功能障碍。
六、实验讨论1. 缺氧对小鼠血红蛋白含量的影响：血红蛋白是氧的载体，缺氧环境下血红蛋白含量降低，可能导致机体氧输送能力下降。
2. 缺氧对小鼠血清乳酸含量的影响：缺氧环境下，机体无法进行正常的有氧代谢，导致无氧酵解增强，乳酸生成增多。
小鼠缺氧实验报告总结(共6篇)
小鼠缺氧实验报告总结(共6篇)1. 实验目的分析小鼠缺氧对其器官和组织的影响，研究不同缺氧程度对小鼠的影响差异，探究相关治疗手段的有效性。
2. 实验方法将小鼠随机分为3组，分别进行正常供氧、缺氧15分钟和缺氧30分钟的实验，采用HE染色观察肝脏、肾脏、心脏和肺组织的形态学变化，使用ELISA测定血浆中的TNF-α、IL-1β和IL-6水平，应用脑功能评估仪对小鼠进行神经行为学评估。
3. 实验结果3.1 形态学变化与正常组相比，缺氧15分钟和缺氧30分钟组小鼠的肝脏、肾脏和心脏组织出现不同程度的细胞肿胀、坏死和炎症反应，肺组织出现明显的肺泡壁增厚。
缺氧30分钟组小鼠脏器组织损伤更为明显。
3.2 水平变化ELISA结果显示，与正常组相比，缺氧15分钟和缺氧30分钟组小鼠的血浆TNF-α、IL-1β和IL-6水平均明显升高，其中，缺氧30分钟组上升最为显著。
3.3 神经行为学评估缺氧30分钟组小鼠在神经行为学评估中表现出较低的活跃水平和运动能力，神经反应时间延长。
小鼠缺氧对其器官和组织造成了不同程度的损伤和炎症反应，在缺氧30分钟的情况下，损伤更为明显。
缺氧引起了血浆中炎症因子的水平升高，表明缺氧引起的器官和组织损伤可能与炎症反应有关。
缺氧也对小鼠的神经功能造成了影响。
针对小鼠缺氧造成的损伤和影响，有必要研究相应的治疗手段。
5. 实验启示缺氧对动物的影响是复杂的，需要采用多种评估方法进行综合评估。
炎症反应可能是缺氧造成的器官和组织损伤的机制之一。
在研究缺氧治疗手段时，需要考虑多个方面，包括药物、物理治疗和营养支持等。
小鼠密闭缺氧实验报告
一、实验目的1. 复制小鼠密闭缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理功能的影响。
2. 分析密闭缺氧条件下小鼠的存活时间及其影响因素。
3. 探讨密闭缺氧对小鼠呼吸系统、循环系统和神经系统的影响。
二、实验原理密闭缺氧实验是通过将小鼠置于密闭环境中，使小鼠处于缺氧状态，从而模拟实际生活中可能遇到的缺氧情况。
通过观察小鼠在缺氧条件下的生理反应和存活时间，可以了解缺氧对小鼠生理功能的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康昆明种小鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 实验仪器：密闭缺氧箱、温度计、计时器、电子天平、生理盐水、注射器、手术剪、镊子等。
四、实验方法与步骤1. 将小鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 实验组小鼠置于密闭缺氧箱中，对照组小鼠置于正常环境中。
3. 记录实验组小鼠从放入密闭缺氧箱开始至出现死亡的时间。
4. 观察记录小鼠在缺氧过程中的生理反应，如呼吸频率、心率、活动能力等。
5. 实验结束后，解剖小鼠，观察其呼吸系统、循环系统和神经系统等器官的病理变化。
五、实验结果1. 实验组小鼠在密闭缺氧箱中的存活时间显著短于对照组（P<0.05）。
2. 实验组小鼠在缺氧过程中出现呼吸频率加快、心率增快、活动能力下降等生理反应。
3. 实验组小鼠呼吸系统、循环系统和神经系统等器官出现不同程度的病理变化。
六、分析与讨论1. 密闭缺氧对小鼠生理功能产生显著影响，导致其存活时间缩短。
2. 缺氧条件下，小鼠呼吸系统、循环系统和神经系统等器官出现不同程度的病理变化，表明缺氧对小鼠生理功能产生多系统影响。
3. 缺氧条件下，小鼠的呼吸频率加快、心率增快、活动能力下降等生理反应，可能是机体对缺氧的代偿性反应。
4. 本实验结果表明，密闭缺氧对小鼠生理功能产生显著影响，提示在类似缺氧环境中，应注意对小鼠等实验动物的保护，避免因缺氧导致的生理功能损伤。
七、结论1. 密闭缺氧对小鼠生理功能产生显著影响，导致其存活时间缩短。
小鼠缺氧的实验报告
一、实验目的1. 观察小鼠在缺氧环境下的生理反应。
2. 探讨缺氧对小鼠呼吸系统、循环系统等器官功能的影响。
3. 为进一步研究缺氧条件下生物体的适应机制提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠10只，体重20-25g。
2. 实验设备：缺氧箱、电子天平、呼吸监测仪、血氧饱和度监测仪、生理盐水、注射器等。
3. 实验试剂：戊巴比妥钠、生理盐水、肝素钠等。
三、实验方法1. 将10只昆明小鼠随机分为两组，每组5只，分别命名为A组和B组。
2. A组为缺氧组，B组为对照组。
3. 将A组小鼠放入缺氧箱中，保持缺氧状态，缺氧箱内氧浓度为5%。
4. B组小鼠置于正常环境中，保持正常呼吸。
5. 每隔2小时对两组小鼠进行体重、呼吸频率、血氧饱和度等指标的监测。
6. 实验持续8小时，观察小鼠在缺氧环境下的生理反应。
7. 实验结束后，对A组小鼠进行安乐死，解剖观察呼吸系统、循环系统等器官的变化。
四、实验结果1. 体重变化：实验开始时，A组与B组小鼠体重无显著差异（P>0.05）。
实验过程中，A组小鼠体重逐渐下降，而B组小鼠体重无明显变化。
2. 呼吸频率：实验开始时，A组与B组小鼠呼吸频率无显著差异（P>0.05）。
实验过程中，A组小鼠呼吸频率逐渐升高，而B组小鼠呼吸频率无明显变化。
3. 血氧饱和度：实验开始时，A组与B组小鼠血氧饱和度无显著差异（P>0.05）。
实验过程中，A组小鼠血氧饱和度逐渐下降，而B组小鼠血氧饱和度无明显变化。
4. 器官观察：A组小鼠解剖后，发现肺组织出现充血、水肿、出血等病理变化；心脏出现心肌细胞变性、坏死等病变；肝脏出现脂肪变性、坏死等病变。
五、讨论与分析1. 缺氧对小鼠生理的影响：本实验结果显示，缺氧条件下，小鼠体重、呼吸频率、血氧饱和度等生理指标发生明显变化，说明缺氧对小鼠生理产生了显著影响。
2. 缺氧对器官的影响：本实验结果显示，缺氧条件下，小鼠呼吸系统、循环系统等器官出现明显病变，提示缺氧可能对器官功能产生损害。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
\篇二：缺氧缺氧动物模型复制及中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响【摘要】目的：本实验学习复制乏氧性缺氧和血液性缺氧的动物模型方法，观察缺氧过程中呼吸的反应及血液色泽和全身一般情况的变化，并了解温度和中枢神经系统机能状态对缺氧耐受的影响以及对照实验和控制实验条件重要性。
方法：通过复制缺氧动物模型，观察不同类型缺氧过程中呼吸、黏膜和血液色泽的变化。
通过测定耗氧量和小鼠的存活时间来观察中枢神经系统机能抑制和低温对缺氧的影响。
结果：中枢神经系统功能抑制和低温对动物耐受缺氧的影响与对照组相比，存活时间和总耗氧率有显著性差异；复制不同原因造成的不同缺氧类型小鼠都表现出了不同的呼吸频率和存活时间的变化。
结论：给小鼠注射氯丙嗪、冰浴降温可显著降低总耗氧率，延长其存活时间（p<0.01）。
co中毒、亚硝酸盐可显著缩短小鼠存活时间，降低呼吸频率。
美兰可以缓解亚硝酸盐对小鼠的作用，已定程度延长小鼠存活时间，延缓呼吸频率的下降。
【关键词】缺氧氯丙嗪总耗氧率 co 亚硝酸盐美兰存活时间当供应组织的氧不足，或组织利用氧障碍时，机体的机能和代谢可发生异常变化，这种病理过程称为缺氧。
根据缺氧的原因不同可将缺氧分为低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织中毒性缺氧四种类型，不同类型的缺氧，机体的代偿适应性反应和症状表现有所不同。
1.材料和方法1.1实验动物：小白鼠（雌性）。
1.2 药品：氯丙嗪(chlorpromazine) 、钠石灰（soda lime)，亚硝酸钠（ sodium nitrite ) 、亚甲基蓝(美蓝）（methylene blue，mb）、 0.9％nacl (physiological saline solution) 、co(carbon monoxide)。
1.3 器材：100、500ml广口瓶和测耗氧装置。
1.4 方法1.4.1 中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响取2只性别相同体重相近的小鼠，准确称取体重，并随机分为生理盐水组和氯丙嗪组。
氯丙嗪组按0.1ml/10g体重腹腔注射0.25％氯丙嗪，随即安放在冰浴的纱布上10~15min，使呼吸频率降至70~80次/min；生理盐水组按0.1ml/10g体重腹腔注射生理盐水，室温放置10－15min，作为对照。
之后将2只小鼠分别放入100ml的广口瓶内，连接好测耗氧装置。
如右图。
1.4.2 不同原因造成的缺氧取2只性别相同体重相近的小鼠随机分为乏氧性缺氧组和一氧化碳中毒组。
乏氧性缺氧组小鼠放入含有5g钠石灰的100ml密闭瓶中；一氧化碳中毒组小鼠放入500ml密闭瓶，注入10ml co气体。
另取2只性别相同体重相近的小鼠随机分为亚硝酸纳组和亚硝酸纳治疗组。
亚硝酸纳组小鼠腹腔注射50g/l亚硝酸纳0.2ml，并随即腹腔注射生理盐水0.2ml；亚硝酸纳治疗组小鼠腹腔注射50g/l亚硝酸纳0.2ml后即刻腹腔注射10g/l亚甲基蓝0.2ml 。
2.观察项目2.1 中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响记录下小鼠的体重w（g）。
从密闭测耗氧装置开始记时到小鼠死亡，分别观察氯丙嗪组和生理盐水组小鼠的存活时间t（min）、总耗氧量a（ml）。
按以下公式计算出总耗氧率r[ml/（g·min）]：r[ml/（g·min）]= a（ml）÷w（g）÷t（min）2.2 不同原因造成的缺氧乏氧性缺氧组和一氧化碳中毒组：处理前分别测出两鼠的正常呼吸频率（次/min）。
待塞紧瓶塞开始记时后，每隔5min测一次呼吸频率（次/min），并观察两鼠的行为以及耳、尾、口唇等的颜色变化，直至小鼠死亡。
记录死亡时间。
亚硝酸纳组和亚硝酸纳治疗组：处理前分别测出两鼠的正常呼吸频率（次/min）。
待注射药品后，每隔5min测一次呼吸频率（次/min），并观察两鼠的行为以及耳、尾、口唇等的颜色变化，直至小鼠死亡。
记录死亡时间。
将4只鼠分别解剖取出小块肝脏组织置于滤纸上观察颜色的不同。
3.实验结果3.1中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响氯丙嗪组小鼠体重与生理盐水组小鼠体重无显著性差异（p>0.05）；氯丙嗪组小鼠的耗氧量为12.7±5.02 ml，生理盐水组小鼠的耗氧量为16.0±3.01 ml，两者无明显差异（p>0.05）；氯丙嗪组小鼠耐缺氧存活时间为44.7±17.21 min，生理盐水组小鼠耐缺氧时间为21.0±3.61，两者相比有高度显著性差异（p<0.01）；氯丙嗪组小鼠的耗氧率为0.013±0.005 (ml/g/min)，生理盐水组小鼠的耗氧率0.03±0.002 (ml/g/min)，两者相比有高度显著性差异（p<0.01）。
见表1。
表1. 氯丙嗪、冰浴对小鼠缺氧耐受性的影响实验结果统计表小鼠体重（g）样本 1 2 3 4 5 6 7 8 9对照 23 19实验 22 25 22 25 24 22 23 22 22 23.0±1.32&总耗氧量（ml）对照 19.5 14.0 16.0 14.0 17.4 17.0 11.5 21.0 13.5 16.0± 3.01实验存活时间（min）总耗氧率（（ml/g/min) 对照实验 4752 35 23 24 59 31 60 71 44.7±17.21*对照 0.034 0.0350.033 0.035 0.033 0.034 0.031 0.037 0.029 0.03± 0.002实验 0.01 0.011 0.013 0.014 0.016 0.015 0.024 0.005 0.012 0.013±0.005# 10.5 25 14.3 21 10.0 8.0 9.5 19.9 17.0 6.0 19.0 12.7±5.02$ 22 16 21 22 15 26 21 21.0± 3.61 22 25 25 23 25 22 22 22.9±x?s1.96注：*p<0.01 vs对照组；p<0.01 vs对照组；&p>0.05 vs对照组,$p>0.05 vs 对照组 3.2不同原因造成的缺氧由表2可知，亚硝酸钠中毒小鼠的存活时间最短，其次为co中毒组。
存活时间最长的是亚硝酸钠＋美兰组，可见美兰具有抗亚硝酸钠中毒的作用。
表2. 乏氧、co中毒、亚硝酸钠中毒小鼠的呼吸频率(次/10秒）缺氧类型乏氧 co中毒亚硝酸钠亚硝酸钠＋美兰0min 29.7±4.90 29.7±5.90 29.7±3.54 29.7± 5.68 5min 31.2±6.96 24.7±8.72 26.1±7.13 25.9± 4.99 10min 30.4±7.52 26.8±9.31 28.7± 8.38 15min 25.0±8.9728.5± 6.0220min 30.1±6.8325min 29.5±6.0730min 28.9±6.243.3亚硝酸钠中毒与亚硝酸钠+美兰的两组小鼠的存活时间有显著性差异，美兰组存活时间显著延长(p<0.01)。
见表3。
表3. 亚硝酸盐中毒及其美兰的治疗效果缺氧类型亚硝酸盐中毒性缺氧亚硝酸盐中毒性+美兰存活时间 9.56±1.59 48.67±14.23* 注：p<0.013.4 分别观察乏氧性缺氧组、一氧化碳中毒组、亚硝酸纳组和亚硝酸纳治疗组的小鼠肝脏组织颜色，如表3。
表4. 乏氧、co中毒、亚硝酸钠中毒的小鼠存活时间和肝血、耳尾唇颜色比较类别乏氧体重(g) 19存活时间(min)18肝血颜色暗红色耳尾唇颜色青紫色（紫绀）co nano2 nano2+mb22 18 18.57 12 30樱桃红色深咖啡色浅咖啡色樱桃红色青石板色青石板色，稍浅4. 讨论4.1 实验结果显示氯丙嗪组的存活时间显著长于生理盐水组，耗氧率也显著低于生理盐水组。
氯丙嗪为吩噻嗪类抗精神病药物，主要阻断脑内多巴胺受体和α肾上腺素受体和m胆碱受体，具有神经安定作用，它对中枢神经系统有较强的抑制作用。
小鼠注射氯丙嗪后，置于低温使其进入假冬眠状态。
小鼠外界活动停止，新陈代谢率降至最低，因此能量利用减少，单位时间的耗氧量减少，即耗氧率减小。
在氧总量相等的情况下，存活时间就比生理盐水组长。
4.2 乏氧性缺氧，主要表现为动脉血氧分压降低，氧含量减少，组织供养不足。
正常毛细血管的血液中氧离血红蛋白浓度约为26g/l。
乏氧性缺氧时，动静脉血中的氧离血红蛋白浓度增高。
当毛细血管血液中氧离血红蛋白浓度达到或超过50 g/l时，可使皮肤和粘膜呈青紫色。
co与hb的亲和力比o2大210倍，hb与co结合形成碳氢hb，从而失去运氧功能。
co同时还能抑制红细胞内糖酵解，使其2,3-dpg生成减少，氧离曲线左移，妨碍hbo2中的氧解离，从而造成组织严重缺氧。
此时外呼吸功能正常，故动脉血氧分压及血氧饱和度正常，但hb数量减少或性质改变，使血氧容量降低。
组织中hbco增多，故皮肤、粘膜呈樱桃红色。
亚硝酸盐可使hb中二价铁氧化成三价铁，形成高铁hb（hbfe3+oh），三价铁因与羟基牢固结合而丧失携氧能力，加上hb四个二价铁中有一部分氧化为三价铁后使剩余的fe2+与氧亲和力增高，导致氧离曲线左移，使组织缺氧。
高铁hb呈咖啡色或青石板色，因而使皮肤和粘膜呈现相同颜色[2]。
低浓度美兰为还原剂，抑制了氧化剂（亚硝酸钠）的中毒反应，中毒后即刻肌注可有效使小鼠存活时间延长2倍以上。
本实验结果也显示，亚硝酸钠+美兰组小鼠的存活时间明显长于亚硝酸钠中毒小鼠的存活时间（表3），说明美兰具有较好的拮抗作用。
4.3 钠石灰的作用：钠石灰在两个实验中的用途也有很大区别：实验一中缺氧瓶内钠石灰吸收小鼠呼吸产生的co2造成负压，利于正确地测出耗氧量；实验二中加入钠石灰是为了排除高碳酸血症对缺氧实验的影响。
参考资料：1. 陆源,夏强. 生理科学实验教程. 杭州：浙江大学出版社,2004：240.2. 陈季强.基础医学各论（上册）.北京：科学出版社，2004：492，495－496.篇三：小鼠缺氧模型及其分析缺氧的类型及影响缺氧耐受性的因素高伟飞（浙江中医药大学滨江学院 10级临床专业临滨1班4组 20102090114）一、实验目的：1.观察原因和条件在疾病发生发展中的作用2.复制几种类型缺氧的模型，观察血液颜色的特点，分析其机制根据大纲要求：掌握概念：缺氧、低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织性缺氧，紫绀、肠源性紫绀。