微生物标本的正确采集运送及注意事项

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微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件

管理流程不严密
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和采集时间，影响后续检测和诊断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下降。
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REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采集，将土壤样品装入无菌袋中并标记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则摘要：一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.采集方法3.采集容器4.无菌操作三、微生物标本运送的基本原则1.快速送检2.妥善保存3.避免污染四、标本采集和运送的注意事项正文：临床微生物标本采集和运送基本原则是确保微生物检验结果准确、可靠的关键环节。

正确的采集和运送方法可以有效地捕捉与感染相关的病原菌，并保持其活性，同时减少其他与感染无关细菌的干扰。

一、微生物标本采集和运送的重要性微生物标本采集和运送在临床微生物学检验中具有重要意义。

它直接影响到病原菌的检出率和检验结果的准确性，为临床治疗提供重要依据。

二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：为避免漏检，确保病原体的检出，应尽量在抗菌药剂使用前采集标本。

2.采集方法：采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。

3.采集容器：标本采集时应使用专用的无菌容器，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂等添加剂。

4.无菌操作：采集过程中应严格执行无菌操作，避免微生物污染。

三、微生物标本运送的基本原则1.快速送检：标本采集后应尽快送检，避免细菌在室温下长时间保存导致活性降低。

2.妥善保存：标本在运输过程中应妥善保存，避免高温、湿度、振动等影响标本的质量。

3.避免污染：运输过程中应防止标本受到污染，避免与其他物品混放。

四、标本采集和运送的注意事项1.标本的唯一性：送检申请单必须惟一标识，以便实验室能针对该标本选用相应培养基和适宜培养环境。

2.信息完整：送检申请单应注明样品名称、型号、年月、性状、标本来源、采集时间、检验目的及添加物使用情况等。

3.特殊标本的处理：对于特殊类型的标本，如血液、脑脊液等，应严格按照相关操作规程进行采集和运送。

总之，临床微生物标本采集和运送基本原则对于确保微生物检验结果的准确性和可靠性至关重要。

微生物标本采集方法及注意事项

微⽣物标本采集⽅法及注意事项微⽣物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有⼗分密切的关系。

医⽣、护⼠、检验⼈员均应重视微⽣物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进⾏正确采集标本的宣传和指导。

下⾯是yjbys店铺为⼤家带来的微⽣物标本采集⽅法及注意事项，欢迎阅读。

⼀、粪便标本采集和处理 (1)采集⽅法 1.⾃然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓⾎、或絮状物等有意义成分，2～3g或 1～2 m1，盛⽆菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋⽩胨⽔中(PH8.6)。

2. 直肠拭⼦法：难以获得粪便或排便困难患者及幼⼉可采⽤此法，将拭⼦前端⽤⽆菌⽢油或⽣理盐⽔湿润,然后插⼊肛门约 4～5cm(幼⼉ 2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。

擦取直肠表⾯粘液后取出，盛于⽆菌试管中或保存液中送检。

(2) 注意事项 1.尽可能在抗⽣素使⽤之前采集标本。

2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混⼊尿液及其他异物，采集过程应尽量⽆菌操作。

3.不应⽤厕纸收集粪便。

4.对同⼀病⼈在同⼀天不宜重复送检。

5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。

6.下列腹泻患者应连续3d送检标本 --社区获得性腹泻(⼊院前或72h内出现症状) --医院腹泻(⼊院72h后出现症状)，且⾄少有下列情况之⼀：⼤于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似院内暴发。

--怀疑肠道感染的⾮腹泻性表现。

7.肠炎和发热病⼈建议做⾎培养。

8.伤寒沙门菌感染时⾻髓培养⾼出⾎培养。

9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。

(3)标本拒收⼲燥的拭⼦、含钡粪便、黄软成形便、⼲便、明显污染的粪便、⼀⽇内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。

⼆、尿液标本采集和处理 (1)采集⽅法 1. 中段尿采集法：清晨起床后⽤肥皂⽔清洗尿道⼝和外阴部，再⽤清⽔冲洗尿道⼝周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿 5～10ml盛于带盖的⽆菌容器内⽴即送检，采集后于0.5h内进⾏接种。

临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。

采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。

采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。

2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。

采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。

消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。

3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。

（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。

（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。

（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。

（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。

二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。

容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。

2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。

运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。

3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。

（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。

（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。

三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。

2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。

对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。

3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。

微生物标本的正确采集运送及注意事项

微生物标本的正确采集与运送
黄弋鸿
微生物检查样本采集原则
无菌采集无菌容器及时足量及时送检
送检标本种类与临床意义
临床意义低的标本： ❖ 痰、咽拭子（流感嗜血杆菌、肺炎链球菌除外） ❖ 粪便、肛拭子（艰难梭菌除外）临床意义中等的标本： ❖尿 ❖ 脓、伤口分泌物临床有意义的标本： ❖ 血、胸腹水、无菌体液
血液标本的采集运送
血培养采集的临床指证： 1、发热（≧38℃）或低温（≦36℃） 2、寒战 3、WBC↑（>10×109特别有“核左移”时） 4、粒细胞减少（成熟粒细胞<1×109） 5、PLT↓、皮肤黏膜出血 6、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP增高及呼吸加快、肝脾肿大 7、新生儿怀疑菌血症时应同时做脑脊液和尿液培养 8、老年菌血症可能不发热，如伴有身体不适、肌痛等，有可能是感染性心内膜炎重要指证
1发热38或低温362寒战3wbc1010特别有核左移时4粒细胞减少成熟粒细胞1105plt皮肤黏膜出血6昏迷多器官衰竭血压降低crp增高及呼吸加快肝脾肿大7新生儿怀疑菌血症时应同时做脑脊液和尿液培养8老年菌血症可能不发热如伴有身体不适肌痛等有可能是感染性心内膜炎重要指证血培养采集规范操作培养瓶消毒
脓液、伤口分泌物采集注意事项：
1、采集的标本应立即送检，如不能立即送检，放4℃保存，但不能超过2个分泌物标本的采集运送规范
培养用的标本尽可能取自深部（指的是脓液与组织的交界处），再用无菌拭子采取脓液及病灶深部分泌物。
对已破溃脓肿一般以无菌棉拭子采集脓液及病灶深部的分泌物，置入无菌试管中送检。
痰标本注意事项
1.痰以深咳排除后，应装有密封瓶盖的无菌塑料容器中，以免感染自己或他人。
2.标本应及时送检，室温≤2h。

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项
正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。

可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。

下面是yjbys小编为大家带来的微生物检验标本的正确采集及注意事项的知识，欢迎阅读。

一、血液标本的采集
1、采集方法
（1）75%酒精清洁局部皮肤。

（2）待皮肤干后，再用2%—2。

5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5—10ml，婴幼儿1—5ml。

（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。

2、注意事项
（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38。

5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。

（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。

切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

（3）培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20：1或大于这个比例。

微生物标本采集、送检及处理原则

微生物标本采集、送检及处理原则一、标本采集的一般原则：1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。

2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。

3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。

4、注意在不同病程采集不同部位标本。

5、采集标本时要防止传播和自身感染。

二、标本的处理：1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。

脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。

对环境敏感的细菌应保温并立即送检。

2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。

切勿污染环境。

对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。

3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。

Ⅰ血液及骨髓标本：血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。

如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。

常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。

1、采血时间及次数2、抽血部位及抽血量3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。

查见细菌报告菌名和药敏结果。

4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）；2）发病星期后血中抗体滴度上升。

Ⅱ脑脊液标本：脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。

正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。

常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。

1、涂片检查：(1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。

(2)结核分枝杆菌涂片检查(3)新生隐球菌涂片检查2、分离培养3、报告方式：培养48小时，仍无菌生长者报告“培养2天无细菌生长”。

临床微生物检验标本的采集、运送及接种要点

针对不同的微生物种类和检验目的，选择适当的培养基和试剂，确保微生物能够在适宜的环境中生长繁殖。
检查采集器具和试剂的有效期
在采集前，检查采集器具和试剂的生产日期和有效期，确保采集过程中使用的物品符合质量要求。
无菌操作技术规范培训
01
02
03
培训采集人员
对采集人员进行无菌操作技术规范的培训，确保他们掌握正确的采集方法和注意事项。
报告审核
由经验丰富的专业人员对报告进行审核，确保报告的准确性和可靠性。
报告存档
对出具的报告进行存档管理，以备后续查询和追溯。
07 注意事项与常见问题解答
采集过程中注意事项
严格无菌操作
采集标本时应避免污染，确保无菌操作，以免影响检验结果。
采集适量标本
采集标本量应适中，过多或过少均可能影响检验结果。
定期监测
定期对保存条件进行监测和记录，确保标本保存环境稳定可靠。
超出保存期限处理
对于超出保存期限的标本，应按照相关规定进行处理，避免误用或浪费。
05 标本接种操作要点
接种前培养基准备工作
选择合适培养基
根据待检微生物种类选择合适的培养基，确保能够提供其生长所需的营养物质和环境条件。
培养基灭菌
对培养基进行高压蒸汽灭菌或干热灭菌，以消除杂菌和污染。
将拭子插入鼻腔至鼻咽部，轻轻旋转后取出。
03
02
咽拭子
用无菌拭子擦拭咽后壁及两侧扁桃体，避免触及舌部。
采集容器
应使用无菌、有盖、干燥的容器，痰标本也可使用无菌痰杯。
04
其他类型标本采集
脑脊液标本
由医生进行腰椎穿刺采集，过程中需严格无菌操作。
穿刺液标本

微生物检验标本的正确采集运送及处理

微生物检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系，医生、护士、检验人员均应重视微生物标本的正确采集的有关问题，并有责任向患者及家属进行正确采集标本的宣传和指导。

（一）微生物检验标本采集、运送、验收
1、标本的采集
不同的标本在采集时会在技术、方法和量方面的内容有所不同，但是最基本需要遵循的是以下几项：
（1）申请单必须标记清楚姓名、性别、年龄、病原号、标本来源（具体写明）、检查项目（目的要明确）等，以便试验室能够合理选择培养环境和培养基。

（2）尽量在抗生素应用前采集标本、以提**性检出率和避免漏检。

（3）标本采集应严格执行无菌操作。

（4）采集标本的容器必须经灭菌处理，不可用消毒剂。

2、标本运送
（1）标本采集后应尽快运送到细菌室。

（2）标本采集后在室温下超过2小时未送到细菌室的，可视为不合格标本。

3、标本验收
（1）实验室只接受和处理合格标本。

（2）实验室对不合格标本退回必须说明原因、并及时与临床联系。

4、注意事项
（1）微生物检验样本必须要求采集转运，否则将影响检查结果，并给评价其意义带来麻烦甚至误导。

（2）微生物样本极易被污染，污染的样本杂菌大量繁殖抑制病原菌生长，条件致病菌也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者的损害以及经济和时间的浪费。

（3）某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或立即保温送至实验室检验。

室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低；不能使用冷藏的样本检验。

（4）厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项微生物检验标本的采集直接影响微生物培养与鉴定结果，准确的结果可为临床诊疗提供指导，有助于科学用药、控制感染，进而延缓细菌耐药、监测医院感染、减少抗菌药物滥用，而正确采集微生物检验标本是最为关键、重要的一步。

为此，本文总结了微生物检验标本的正确采集方法和注意事项，下面让我们一起来了解一下。

一、采集血液标本应用75%酒精清洁局部皮肤，待皮肤干燥后应用1%--2%碘酊或者1%碘伏消毒穿刺点及周围皮肤，消毒范围至少需要3厘米，再次使用75%酒精脱碘后采集血液；对于碘过敏的患者，则采用75%酒精消毒30秒，自然干燥后再用75%酒精消毒60秒的消毒策略。

消毒后不可用手直接触摸穿刺部位，穿刺抽吸8--10毫升成人血液（婴幼儿及儿童患者采血量则不能超过总血量的1%），注入血培养瓶中并立刻颠倒混匀，以防血液凝固，但不可剧烈震动，以防标本溶血。

值得注意的是，血液标本作培养时需格外小心，皮肤表面含有较多微生物，消毒不规范则会污染血液，故应在采血前由内至外认真消毒；血液注入培养基之前不可更换针头，以防感染；采血前应用抗菌药物且无法停药者应在下次用药前采血，注意，不可在静脉穿刺处采集血液标本，除怀疑导管相关感染外亦不可经由静脉导管或动脉插管内抽血；采血量并不是越多越好，采血量太多，则会稀释培养液，营养成分不够；怀疑为菌血症的患者应尽早采血，避免延误最佳时机；怀疑为布鲁式病以及细菌性心内膜炎患者应选择肘动脉、股动脉穿刺采集血液，除发热期以外，均应多次采血，建议24小时内采集3--4次，且要增加采血量，以10毫升左右为宜。

二、采集痰液标本于清晨起床后使用凉白开多次漱口，去除口腔内的杂菌，并用力咳嗽，以咳出肺部深处的脓痰，吐入清洁、干燥的容器中送检。

如果患者痰液量比较少，可以应用25毫升45摄氏度3%--10%氯化钠溶液行雾化吸入，如果是患儿，则需要轻轻按压其胸骨上方的气管，在其咳痰后使用无菌棉棒采集痰液标本。

微生物检验标本的正确采集方法及注意事项

56医药健闻微生物检验标本的正确采集方法及注意事项刘洋（河南京城皮肤中医院，河南郑州 450000）常见的微生物检验标本包括以下几种类型：血、骨髓、静脉导管标本，痰及下呼吸道标本，尿液标本，大便标本，生殖道系统标本，眼、耳、鼻、咽拭子标本。

血、骨髓、静脉导管标本正确采集方法：（1）先用75%酒精对静脉穿刺部位擦拭消毒30 s 以上，用一根碘棉签从穿刺点向外1.5~2 cm 的直径范围内再次消毒60 s 。

（2）使用75%酒精对血培养瓶和橡皮塞子消毒60 s 。

在血液注入血培养瓶前，先用无菌纱布或者棉签将橡皮塞子表面的残余酒精清除干净。

（3）在穿刺前或穿刺期间，佩戴乳胶手套将静脉进行固定，防止滑动，但是不可接触穿刺点；使用注射器无菌穿刺取血后，可直接注入血培养瓶中；在血标本进入到培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检，以免血液凝固。

（4）成人的采血量是8~10 ml ，儿童的采血量是1~3 ml ，骨髓采血量是1~2 ml 。

注意事项：（1）静脉采血的部位通常为肘静脉，不建议从动脉采血。

患者疑是细菌性心内膜炎时，可以选择肘动脉或者股动脉采血，勿要在静脉滴注抗菌药物时进行采血。

（2）使用注射器无菌穿刺取血后勿换针头，直接注入血培养瓶。

如果需要进行第二次穿刺，需要更换针头。

（3）多次采血时，应在不同部位的血管穿刺，以排除皮肤菌丛污染的可能。

除非无法从静脉穿刺处取血，否则不能从静脉植入管内取血。

（4）若是从静脉植入管内取血，应该同时自外周静脉采集血液进行培养，以协助判读血培养阳性结果，同时在申请单上注明标本类型。

（5）采血前，应该将患者信息、采血时间、部位、采血量写在标签上，并贴在培养瓶上。

（6）有血的培养瓶若不能立即送检，可放室温保存，切不可放入冰箱。

痰及下呼吸道标本正确采集方法：（1）能够自行取痰的患者，在清晨起床后未进食前，先用漱口水漱口，去除口腔细菌，再用清水漱口，深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，放置于无菌集痰器中并盖好瓶盖；无法咳痰或者不合作的患者，需要帮助其采取卧位，由上而下叩击背部，并戴好无菌手套，将无菌集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰器，按吸痰法将痰吸入无菌集痰器内，并盖好瓶盖，收集好后立即送检。

临床微生物标本的正确采集及运送

临床微生物标本的正确采集及运送
主要内容
一、临床微生物标本正确采集的重要意义二、各种类型标本的正确采集和送捡
临床微生物标本正确采集和运送的重要意义
标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不当标本可导致假阴性、假阳性结果的出现。因此正确采集和运送微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。
血液标本的采集与运送
⑵ 血培养瓶消毒程序：用75%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s；用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精，然后注入血液。注入血液后，应轻轻颠倒混匀防止血液凝固。
血液标本的采集与运送
4、血培养采血量由于每毫升血量中含菌量很小，血培养的阳性率直接与血样本容量有关，据报道每增加1ml血样本可使血培养阳性率上升3%，所以采血量要足够。通常采血量与培养基之比以1:5~1:10为宜，成人一次采血10~20ml平均注入两个血培养（需氧、厌氧瓶）中，婴幼儿采血量为全血量的1%（1~2ml），儿童采血量3~5ml。当发生菌血症时，通常成人血液中含有的菌量小于 1CFU/ml,而儿童血液中含有的菌量常超过100CFU/ml ，所以婴幼儿、儿童Байду номын сангаас血量少于5ml时，不会影响培养的阳性率。
血液标本的采集与运送
有研究表明，只做1套血培养，病原菌的检出率仅为65%；2套血培养为80%；3套血培养为96%。对于成年患者的血培养，只采集单瓶是不允许的，因为单瓶的培养结果很难解释是致病菌还是污染菌。
血液标本的采集与运送

临床微生物标本的正确采集与运送图文

临床微生物标本的正确采集与运送图文微生物学在临床上发挥着重要作用，正确的采样和运送过程对于准确诊断和治疗具有决定性影响。

本文将介绍临床微生物标本采集和运送的基本原则。

一、标本采集前的准备工作1.1 了解患者的情况在进行采样之前，了解患者病史、症状、用药情况等可以帮助选择合适的采样部位和方法。

例如，对于胸腔感染，应在患侧插入穿刺针进行胸腔穿刺；对于泌尿系感染，应在初尿流进行尿液采集。

1.2 选择合适的采样部位和方法选择合适的采样部位和方法可以提高标本的阳性率。

下面介绍一些常见的采样部位和方法：血液标本血液标本是诊断血液感染和细菌性心内膜炎的关键。

采血前需要消毒采血部位，并选择合适的采血管和采血顺序。

常见的采血部位有手腕、肘窝、背侧手腕、踝部，而采血顺序为无菌采血管先于常规采血管。

尿液标本尿液标本是诊断泌尿系感染的重要手段。

采样前需要让患者清洁外阴，并选择合适的采样时机。

中段尿和早晨起床第一次排尿的尿液最为理想。

呼吸道标本呼吸道标本可用于诊断呼吸道感染、肺炎等疾病。

采样前需要清洁口腔和鼻腔，并采用合适的方法进行采样。

常见的方法有喉拭子和气管切开。

胃肠标本胃肠标本可用于诊断肠道感染、胃溃疡等疾病。

采样前需要清洁口腔和肛门，并选择合适的采样方法。

常见的方法有粪便标本、肠内容物吸取和胃液抽取。

1.3 配置必要的采样器材采集标本需要用到一些专门的器材，例如无菌采血针、采尿器、拭子、鱼雷管等。

采集前需要进行消毒和验证，并确保器材无损坏和过期。

二、标本采集时的注意事项2.1 彻底消毒采样部位对于需要皮肤穿刺的采样部位，必须进行彻底的消毒，以避免细菌污染。

消毒前应先清洁采样部位，并使用适宜的消毒剂进行消毒。

2.2 采样过程中遵循无菌原则采样过程中必须遵循无菌原则，以防止其他有害细菌或病毒的污染。

进行采样操作前，应先进行手卫生并配备隔离装备。

2.3 避免污染和误差在采集标本的过程中，必须避免污染和误差。

应严格按照标本类型、采样方法和储存条件进行操作，防止错误或污染发生。