RealtimePCR原理及其定量方法

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RealtimePCR原理及应用

RealtimePCR原理及应用
特征:可以使用96孔板,样品量大,
也可以使用8连管
PCR扩增原理
Real-time PCR探针工作原理
谢 谢!
RealtimePCR原理及应用
提纲
实时荧光定量PCR原理
实时荧光定量PCR的定量方法
平台定量PCR仪器介绍
实时荧光定量PCR的定义
定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信
号累积实现了实时监测整个PCR进程,对起始模板进
行定量分析的方法
与普通PCR的区别
普通PCR技术:

探针完整,R所发射的荧光能量被Q基团吸收,无荧
光,R与Q分开,则发出荧光

Taq酶有5’→3’外切核酸酶活性,可水解探针

TaqMan探针法工作原理
TaqMan探针法工作原理



每产生一条DNA链,就切断一条探针
每切断一条探针,就产生一个单位信号
信号强度与结合探针的DNA分子数成正比
TaqMan探针法的优缺点
优点:1、对目标序列的高特异性
2、引物设计相对简单
3、重复性比较好
缺点:1、只适合一个特定的目标
2、价格昂贵
如何对未知拷贝数的模板进行定量
平台PCR仪介绍
Rotor-Gene 6000
特征:36孔(0.2mlPCR管)或者72
孔(特殊0.1mlPCR管),离心式
检测
平台PCR仪介绍
Applied Biosystems 7500
线性图谱Βιβλιοθήκη 一些主要概念什么是基线?
基线就是扩增曲线中的水平部分
线性图谱
对数图谱
一些主要概念
荧光阈值:是在荧光扩增曲线上人为设定的一个值,

Real-Time_PCR技术

Real-Time_PCR技术

TaqMan法优缺点
优 点
对目标序列的高特异性 ---阴性结果确定 设计相对简单 ---与目标序列某一区域 互补 重复性比较好
缺 点
只适合一个特定的目标 委托公司标记,价格较高 不易找到本底低的探针
2:SYBR Green I 法(荧光染料法)
在PCR反应体系中,加入过量SYBR Green荧光染料,SYBR Green荧光染料特异性地掺入DNA双链后,发射荧光信号, 而不掺入链中的SYBR染料分子不会发射任何荧光信号, 从而保证荧光信号的增加与PCR产物的增加完全同步。
Real-TimePCR技术
许培祥
2013-10-24
主要内容
• Real-timePCR概述 • Real-timePCR的方法 • Real-time PCR定量方法
Real-timePCR概述
1.Real-time PCR
实时荧光定量PCR (Real-time quantitative
PCR )是在PCR反应体系中加入荧光基团,
Ct值的定义:PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信
号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数.
C(t) value
Ct值与模板起始浓度的关系
• 模板起始浓度越高,Ct值越小
• 如果模板浓度增加1倍,Ct值就提前1个循环到达
• 如果模板浓度减少1倍,Ct值就滞后1个循环到达
Ct值的特点
Ct值的特点: 同一个样品重复96次PCR的扩增曲线,终点处产物量不恒定; Ct值则极具重现性
RT-PCR定量的方法 • 标准曲线法的绝对定量 • 相对定量: 比较Ct法---最常用 双标准曲线法 比较定量法
1:标准曲线的绝对定量
通过已知起始拷贝数的标准品可作出 标准曲线, 根据样品Ct值,就可以计算出样品中 所含的模板量

实时荧光定量PCR技术详解和总结

实时荧光定量PCR技术详解和总结

实时荧光定量PCR技术详解和总结
一、什么是实时荧光定量PCR
实时荧光定量PCR(Real-Time Quantitative Polymerase Chain Reaction,简称RT-qPCR)是一种PCR扩增技术,具有灵敏度高、重复性好等特点,可以在实时监测PCR扩增过程中特定片段DNA的产生。

它可以用来检测细胞中其中一特定基因mRNA的表达水平,从而揭示基因活动和表达情况,同时用于特定基因检测,如非病毒性疾病的病原检测以及芯片高通量分析等。

二、实时荧光定量PCR的基本原理
实时荧光定量PCR其基本原理就是利用PCR技术,在特定温度、适当时间内,将少量的模板 DNA 放大成数十亿倍以上。

实时荧光定量PCR的一大特点就是,它能够在实时监测PCR的扩增过程中,随时得知扩增物(amplicon)的数量。

根据扩增的量,从而确定所检测样本中的特定片段DNA的数量,即“定量”。

实时荧光定量PCR可实现定量检测,是因为它引入了一种特殊的参考基因,即“内参基因”,其用来抵消PCR条件、酶种类、反应液等的影响,从而测定量结果的准确性。

三、实时荧光定量PCR的实验步骤
(一)模板提取和核酸纯化:根据实验材料,提取DNA或RNA模板,进行核酸纯化,获得纯度较高的核酸。

(二)制备PCR反应液:制备由dNTPs、PCR酶、聚合酶等试剂组成的PCR反应液,根据所要检测的基因。

Real-timePCR实验原理与技术

Real-timePCR实验原理与技术

实时荧光定量PCR技术原理
01
在实时荧光定量PCR反应中, DNA模板被扩增时,与荧光探 针结合,产生荧光信号。
02
随着DNA的扩增,荧光信号逐 渐增强,通过对荧光信号的实 时监测和分析,可以计算出 DNA的起始浓度。
03
通过标准曲线或内参基因的校 准,可以将起始浓度转化为目 标基因的表达量或基因拷贝数 。
实时监测荧光信号
实时监测荧光信号,确保PCR产物在指数扩增阶段被检测到。
标准化实验流程
建立标准化实验流程,确保实验结果的可靠性和可重复性。
未来展望
新技术应用
01
随着新技术的不断发展,如数字PCR、微流控PCR等,Real-
time PCR技术将得到进一步优化。
高通量检测
02
通过多重PCR和高通量检测平台,实现大规模样本的快速检测。
03
Real-time PCR 实验数 据分析
数据收集与整理
数据收集
在实时PCR实验中,数据收集通常涉 及记录每个循环的荧光信号强度。这 些数据通常以图表形式表示,其中横 轴表示循环数,纵轴表示荧光信号强 度。
数据整理
收集到的原始数据需要经过整理,包 括去噪、去除异常值和标准化等步骤, 以确保数据分析的准确性。
自动化与智能化
03
实现Real-time PCR的自动化和智能化,提高实验效率,减少人
为误差。
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感谢您的观看
real-timepcr实验原 理与技术
contents
目录
• Real-time PCR 实验原理 • Real-time PCR 实验技术 • Real-time PCR 实验数据分析 • Real-time PCR 实验应用 • Real-time PCR 实验注意事项与优化建

实验技术:RealtimePCR

实验技术:RealtimePCR

实验技术:RealtimePCR作为在实验室奋斗的“奋青”们,都知道Realtime PCR(RT-PCR)是并列于western blot的基础实验之一。

不会做PCR的人都不好意思说自己在搞科研,呵呵哒。

作为一门核心技术,也是相对来说出结果快速的技术,本次小笔将一改逗比风格,高冷正经脸来分享该技能,各位接好了啊。

RT-PCR原理的话简单来说,就是采用荧光基团标记的特异性探针来跟踪PCR产物,做到全程监控,后期结合电脑软件分析定量得出待测样品的初始量。

步骤如下:1. RNA提取和测定(1)平衡:-80℃取出TRIZOL裂解的细胞(也可以当时裂解;如果是组织,需要超声破碎后再进行后续步骤),置于室温使其完全溶解(3-5min左右);(2)分离:随后按照裂解液:氯仿(5:1)的比例加入氯仿,剧烈震摇30 S(自认为手劲儿大的就手动摇,扛不住的话也可以涡旋仪,当然我是一直手动的哈哈)后,室温静置3min,4℃,13,000rpm离心10 min,取上清置于干净的RNAfree的EP管中。

【小提示:取上清的时候很容易将中间层的絮状物吸出,导致蛋白质污染,可以采用PhaseLock Gel的离心管,有效分层水相和有机相,避免吸取的上清混杂杂质。

】(3)沉淀:在上清中加入等体积的异丙醇,轻微上下翻动混合,冰上孵育20min后,4℃,14,000rpm离心20 min,管底部有可见沉淀,即为RNA(如果裂解的细胞较少,沉淀可能肉眼看不见)。

(4)清洗干燥:轻柔的倒掉上清,每管加入1 ml 75%乙醇溶液(采用DEPC水配置),混匀,4℃,14,000 rpm离心15 min。

小心倒掉上清,于超净台边缘干燥5min。

(5)溶解测定:根据具体的RNA的量,加入适当的DEPC水溶解(沉淀可见,加入的DEPC水多一些,反之少加),静置后即可于nanodrop检测浓度(一般我们暂定A260/A280比值在1.8-2.0即可使用)。

Realtime PCR检测原理和问题处理(技术材料)

Realtime PCR检测原理和问题处理(技术材料)

技术研究
2
★实时荧光定量PCR检测技术
(Real-time PCR) 定量PCR的数学原理
定量PCR的化学原理
定量PCR的光学原理
技术研究
3
什么是PCR?
技术研究
4
PCR的反应过程
技术研究
5
RT-PCR原理图
技术研究
6
荧光定量PCR的数学原理
1、Baseline (基线) 2、Threshold (阈值)
推荐措施:提高引物设计质量,避免形成引物二聚体 补救措施:优化引物浓度和退火温度,专设高温度的收集信号步骤
技术研究
53
实例7:重复性不佳
正常的原始数据
技术研究
54
实例7:重复性不佳
不正常的原始数据
原因:盖子未盖紧,溶液蒸发。
技术研究
55
疾病监测中常用的反应Mix
ABI公司 AgPath-IDOne Step RT-PCR Kit(货号 AM1005)
8
阈值
阈值= 基线(背景)信号的标准偏差的10倍,即 PCR扩增信 号进入相对稳定对数增长的最下限,通常设定在S型扩增曲 线的增长拐点处附近。
技术研究
9Ct值Biblioteka 扩增反应中,当荧光信号增长到大于阈值时所对应的循 环数,即PCR增长信号与 Threshold发生交汇的循环数,也是 FQ-PCR判断阴阳性和进行定量分析的依据。
16
定量PCR的数学原理 定量PCR的化学原理 定量PCR的光学原理
技术研究
17
常用的荧光标记方法
1、DNA双链特异性染料 SYBR Green 、SYTO 9、LC Green、Evagreen
2、序列特异性探针

Realtime PCR实验原理与技术 ppt课件

Realtime PCR实验原理与技术 ppt课件
Realtime PCR实验原理与技术
qRT-PCR技术实验操作(优化)
标准品的选择: 理论上可以以目的基因的PCR扩增产物为标准品, 但是存在降解、污染等因素影响定量结果。
论坛网友给出了几种解决方法: ① 另设计一对引物用于荧光PCR; ② 将扩增序列插入T载体后作为标准品; ③ 设计一对外围引物扩增PCR,将产物连入T载体(①+②)
Realtime PCR实验原理与技术
qRT-PCR技术荧光标记方法的 分类
1. 非特异性的DNA结合染料法:荧光染料能非特异结合DNA
双链结构的小沟中,而游离的荧光染料不发出荧光。
常用染料:Pico Green (灵敏度高,>=25pg/mL) SYBR I
缺点:易受到非特异性扩增和引物二聚体的影响。 措施:设计特异性引物,优化PCR反应条件。
定量分析?
Realtime PCR实验原理与技术
qRT-PCR技术原理
a) Ct值(Cycle Threshold;每个反应管中荧光强度达到阈 值所需的循环数)与样本初始拷贝数存在正比线性关 系。
b) 以不同稀释倍数的已知模板制备标准曲线。 c) 实时监测未知样本的Ct值,对应标准曲线得到未知
样本的初始拷贝数。(定量分析)
Realtime PCR实验原理与技术
qRT-PCR技术实验操作(优 化)
有研究建议在每一个循环中 PCR 延伸后增加一步,即 将温度提高后再检测反应体系中的荧光。该检测温度 大于引物二聚体的退火温度 Tm,而小于特异性扩增 产物的 Tm值。在此温度下,引物二聚体都变性成单 链,因此只检测到与特异性 PCR 产物结合的 SYBR Green I 所发出的荧光,消除了引物二聚体的干扰,降 低了非特异性荧光,有助于目标基因的准确定量。

Realtime_PCR的原理和应用

Realtime_PCR的原理和应用

4
Real time PCR的原理
在扩增产物达到阈值线时: XCt=X0(1+Ex)Ct=M (1) XCt:荧光扩增信号达到阈值强度时扩增产物的量. 在阈值线设定以后,它是一个常数,我们设为M 方程式(1)两边同时取对数得: log M=log X0(1+Ex)Ct(2) 整理方程式(2)得: log X0= -log(1+Ex) *Ct+ log M (3) 最后结论: Log X0与Ct呈线性关系,根据样品扩增的Ct值就可计算出样品中所含的 模板量
影响效率的因素为:引物、镁离子以及探针的浓度
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Real time PCR数据处理方法
绝对定量的标准样品:
已知拷贝数的质粒DNA,做系列稀释。
标准样品的种类: •含有和待测样品相同扩增片段的克隆质粒 •含有和待测样品相同扩增片段的cDNA •PCR的产物 •含有已知数目的与待测样品相同的扩增片段的细胞
8
Real Time PCR的方法
分子信标的优点 对目标序列有很高的特异性 用于SNP检测的最灵敏的试剂之一 荧光背景低
分子信标的缺点 设计困难 无终点分析功能 只能用于一个特定的目标 价格较高
9
Real time PCR数据处理方法
绝对定量检测起始模板数的精确拷贝数, ������ 标准曲线法
SYBR-Green 的优点 使用方便 ---不必设计复杂的引物 没有序列特异性 ---可以用于不同的模板 便宜 灵敏 SYBR-Green 的缺点
特异性差,会与非特异性产物结合
7
Real Time PCR的方法
Taqman 的优点 对目标序列有很高的特异性 ---特别适合于SNP检测 与Molecular Beacons 相比设计相 对简单 Taqman 的缺点 价格较高 只适合于一个特定的目标 不能进行融解曲线分析

real time PCR

real time PCR

Real Time PCR实时荧光定量PCR其定量的基本原理是在PCR 反应体系中加入非特异性的荧光染料(如:SYBR GREEN I )或特异性的荧光探针(如:Taqman 探针),实时检测荧光量的变化,获得不同样品达到一定的荧光信号(阈值)时所需的循环次数:CT 值(Cycle Threshold );通过将已知浓度标准品的CT 值与其浓度的对数绘制标准曲线,就可以准确定量样品的浓度。

荧光定量PCR 技术具有简便、快捷的优点,能够有效扩增低拷贝的靶片段DNA ,对每克样品中20pg-10ng 的转基因成分进行有效检测。

同时,与Southern 法相比,荧光定量PCR 技术可对T-DNA 的不同序列进行扩增,因此能实现对转基因品系中的基因重组的检测(Giovanna 2002 )。

所谓实时荧光定量PCR技术,是指在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程,最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。

在实时荧光定量PCR技术的发展过程中,两个重要的发现起着关键的作用:(1)在90年代早期,Taq DNA多聚酶的5′核酸外切酶活性的发现,它能降解特异性荧光记探针,因此使得间接的检测PCR产物成为可能。

(2)此后荧光双标记探针的运用使在一密闭的反应管中能实时地监测反应全过程。

这两个发现的结合以及相应的仪器和试剂的商品化发展导致real-time Q-PCR 方法在研究工作中的运用。

PCR每进行一个循环,DNA呈2倍的指数关系增长,不久达到平台期,起始DNA量越多扩增产物量便越早达到检出值,也就是扩增曲线越早起峰,我们将已知浓度的标准品梯度稀释进行real time PCR,就会按照起始DNA量由多到少的顺序等间隔得到一系列扩增曲线,再有Ct值与起始模板数的对数值之间存在的线性关系就可以制作成下图所示的标准曲线。

未知浓度的样品与标准品相同,也可以得到Ct值,并将Ct值带入标准曲线,就可以求出未知浓度样品的起始模板量,这就是real time PCR的定量原理。

Real Time PCR 检测方法原理

Real Time PCR 检测方法原理

Real Time PCR 检测方法原理■嵌合荧光染料检测法(SYBR Green I)SYBR® Green I是荧光定量PCR最常用的DNA结合染料,能与双链DNA非特异性结合,结合后发出荧光,可以通过检测反应体系中的SYBR® Green I 荧光强度,达到检测PCR产物扩增量的目的。

通过PCR反应生成双链DNA,SYBR® Green I与双链DNA结合发出荧光,通过检测荧光不但可以检测反应体系中的DNA扩增量,同时还能测定扩增产物的DNA融解温度。

具体原理见下图。

嵌合荧光染料法原理图■双标记荧光探针法双标记荧光探针法是使用5’端带有荧光物质(如:FAM等),3’端带有淬灭物质(如:TAMRA等)的双标记荧光探针进行荧光检测的方法。

当探针完整时,5’端的荧光物质受到3’端的淬灭物质的制约,不能发出荧光。

而当双标记荧光探针被分解后,5’端的荧光物质便会游离出来,发出荧光。

当PCR反应液中加入荧光探针后,在PCR反应的退火过程中,荧光探针便会和模板杂交。

进一步在PCR反应的延伸过程中,Taq DNA聚合酶的5’→3’Exonuclease活性可以分解与模板杂交的荧光探针,游离荧光物质发出荧光。

通过检测反应体系中的荧光强度,可以达到检测PCR产物扩增量的目的。

具体原理见下图。

双标记荧光探针法原理图■ CycleavePCR法原理CycleavePCR法是由RNA和DNA构成的杂合Cycling 探针与RNase H组合使用的高灵敏度检测方法,能够高效率地检出目的基因。

Cycling 探针内部夹有RNA部分,一端标记荧光物质,另一端标记淬灭物质,当探针处于完整状态时,由于荧光淬灭作用抑制荧光物质发出荧光,但当探针与扩增产物中的互补序列杂交后,RNase H在RNA部分将探针切断,淬灭抑制作用解除,荧光物质发出荧光,通过测定荧光强度,能够实时监测扩增产物量。

如果探针的RNA部分与模板不匹配,RNase H就不能在RNA部分将探针切断,所以该检出方法是一种即使一碱基不同也能识别的高特异性检出方法,特别适合于SNP解析。

Real-time_PCR(从原理到实验方法及数据分析)

Real-time_PCR(从原理到实验方法及数据分析)


绝对定量:从荧光到拷贝数
The well contains 400 target copies
Y= mx+b
Ct values
0
Ct‘s
1
2
3
4
5
6
7
Log copy number
相对定量:参照因子 Calibrator
用以比较结果的基准
time t =0 t=12 t=24 t=48
total RNA total RNA
t=0 t=1h
2.0 1 0.1
t=6h t = 24 h
相对定量研究软件
• • • 同时分析多达10块反应板的基因表达数据 – 多至960个数据点的单击分析 – 数据直观 通过ΔΔCT (比较 Ct)法完全自动分析数据 无须将数据导出至电子数据表或多次数据导出
终点检测 终点检测
等位基因分型 等位基因分型 阴性阳性鉴定 阴性阳性鉴定
Workflow
mirVana™ miRNA Isolation Kit
TaqMan® MicroRNA RT kit TaqMan® MicroRNA Assays
TaqMan® Universal Master Mix,No UNG
Five Fully Integrated Systems for Real-Time PCR


正常与突变探针在同一管里反应的点突变检测
基因分型检测
FAM VIC Homozygote for FAM-specific allele
VIC FAM Homozygote for VIC-specific allele
FAM VIC
Heterozygote for both alleles

Real-time PCR

Real-time PCR

实时PCR实时PCR(real-time PCR),属于定量PCR(Q-PCR)的一种,以一定时间内DNA的增幅量为基础进行DNA的定量分析。

real time PCR 的定量使用荧光色素,目前有二种方法。

一种是在ds DNA中插入特异的荧光色素,例如SYBR Green荧光染料;另一种使用一种能与增幅DNA序列中特定寡核酸序列相结合的一种荧光探针(probe),如Taqman 探针。

、两种方法原理不同。

SYBR Green荧光染料游离时不发光,当反应体系中存在双链DNA时,SYBR Green与双链DNA结合,此时才发光。

Taqman探针带有一个荧光基团和一个淬灭基团,荧光基团连接在探针的5’末端,而淬灭基团则在3’末端。

PCR扩增时在加入一对引物的同时加入一个特异性的荧光探针,探针完整时,报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收;PCR扩增时,Taq酶的5'-3'外切酶活性将探针酶切降解,使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离,此时荧光基团发出的荧光信号可以被检测到。

real time PCR 与 reverse transcription PCR 相结合,能用微量的RNA来找出特定时间、细胞、组织内的特别表达的遗传基因。

这两种RT PCR的组合又被称之为“定量RT-PCR(quantitative RT-PCR)”反应体系oligo: 多聚体,相当于mRNA引物AMV RT:禽类成髓细胞瘤病毒逆转录酶MMLV RT:莫洛尼鼠白血病病毒逆转录酶dNTPs:脱氧核苷酸RNase:RNA酶抑制剂PCR Buffer:RT-PCR缓冲液MgCl2:2价镁离注意事项:绝对定量:几种可能:1. 你的cDNA浓度是不是通过紫外分光测定的?紫外的干扰因素很多,只能作为浓度参考,也就是可能会导致你的内参Ct有差异,正常现象。

2. 反转录的效率,如果你的内参扩增产物在靠近mRNA的3'端影响不大,如果在里面或者5'端,Ct值存在差异正常。

实时荧光定量pcr的方法

实时荧光定量pcr的方法

实时荧光定量pcr的方法实时荧光定量PCR(Real-time quantitative PCR,qPCR),也称为荧光定量PCR,是一种常用于检测和定量DNA或RNA的分子生物学技术。

相比传统的PCR方法,实时荧光定量PCR具有更高的灵敏度、准确性和特异性,能够量化目标核酸序列的含量。

实时荧光定量PCR的原理主要包括PCR反应的进行和荧光信号的检测与实时监测。

PCR反应是通过逐渐升高的温度循环,使DNA链解链、引物与模板相互结合,合成新的DNA链,不断扩增目标序列的过程。

荧光信号的检测是通过加入特定的荧光探针,在PCR反应过程中的每个循环都量化目标序列的含量,并以荧光信号的强度来表示。

下面将详细介绍实时荧光定量PCR的方法及其一般步骤。

1. 样品处理与提取:首先需要从待测样品中提取出目标DNA或RNA的模板,并进行适当的处理。

比如,可以使用细胞裂解液或提取试剂盒来裂解和纯化细胞或组织中的核酸。

2. 反转录:对于需要检测的RNA目标,需要先将其反转录为cDNA。

这一步骤通常使用反转录酶和适当的引物,在一定的温度条件下合成cDNA。

反转录反应通常在37-42C进行。

3. 扩增反应体系制备:根据实验需要和反应装置的规格,配制好PCR反应的体系。

体系中的成分通常包括模板DNA(cDNA或DNA模板)、引物(前向引物和逆向引物)、荧光标记探针(如TaqMan探针)、聚合酶(如Taq DNA聚合酶)、dNTPs等。

4. PCR扩增条件设置:根据模板DNA的长度和序列特性,设置PCR反应的温度和时间条件。

通常,PCR反应的温度包括初始变性(95C)、扩增(56-72C)和延伸(72C)等多个循环。

5. 荧光信号的检测与实时监测:PCR反应过程中,可以通过专用的实时荧光定量PCR仪器进行检测和监测。

这类仪器常常能够实时记录PCR反应的荧光信号强度,并产生实时的反应曲线图。

根据荧光信号的强度变化,可以推断目标DNA 或RNA的含量。

实时荧光定量pcr检测原理

实时荧光定量pcr检测原理

实时荧光定量pcr检测原理实时荧光定量PCR(Quantitative Real-time PCR)是一种在DNA扩增反应中,以荧光化学物质测每次聚合酶链式反应(PCR)循环后产物总量的方法。

这种方法通过内参或者外参法对待测样品中的特定DNA序列进行定量分析。

Real-timePCR是在PCR扩增过程中,通过荧光信号,对PCR进程进行实时检测。

由于在PCR扩增的指数时期,模板的Ct值和该模板的起始拷贝数存在线性关系,所以成为定量的依据。

实时荧光定量PCR的基本原理是利用DNA聚合酶的5’-3’外切酶活性,在DNA合成过程中检测荧光信号的变化。

当DNA聚合酶与特定荧光染料标记的DNA引物结合时,荧光染料会被标记在引物的3’端。

在PCR反应过程中,每当DNA聚合酶添加一个核苷酸到引物3’端时,聚合酶的外切酶活性将荧光染料从引物上切割下来,释放出荧光。

通过实时检测荧光信号的变化,可以实时监测DNA的合成过程。

实时荧光定量PCR的定量原理是利用PCR扩增的指数时期,模板的Ct值和该模板的起始拷贝数存在线性关系。

在PCR扩增的指数时期,随着循环次数的增加,DNA产物的量呈指数增长。

在这个阶段,每个循环的DNA产物量与上一个循环的DNA产物量成比例。

因此,通过实时检测荧光信号的变化,可以确定PCR进程中的DNA产物量。

由于每个模板的起始拷贝数不同,因此不同模板的Ct值也不同。

通过比较不同模板的Ct值,可以确定模板的起始拷贝数。

实时荧光定量PCR具有许多优点,如高灵敏度、高特异性和高自动化程度。

它可以用于多种类型的样本检测,包括血液、组织、细胞培养液等。

此外,实时荧光定量PCR还可以用于基因表达分析、突变检测和病原体鉴定等应用。

实时荧光定量PCR是一种非常有用的技术,可以用于多种类型的样本检测和分析。

它的基本原理是利用DNA聚合酶的外切酶活性和荧光染料标记的引物来实时监测DNA的合成过程。

通过比较不同模板的Ct值,可以确定模板的起始拷贝数,从而实现定量分析。

Real-time_PCR_原理(非常经典的PCR文档)

Real-time_PCR_原理(非常经典的PCR文档)

Real-time PCR 原理介绍实时荧光定量PCR技术于1996年由美国Applied Biosystems公司推出,由于该技术不仅实现了PCR从定性到定量的飞跃,而且与常规PCR相比,它具有特异性更强、有效解决PCR污染问题、自动化程度高等特点,目前已得到广泛应用。

本文试就其定量原理、方法及参照问题作一介绍。

一.实时荧光定量PCR原理所谓实时荧光定量PCR技术,是指在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程,最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。

1.Ct 值的定义在荧光定量PCR技术中,有一个很重要的概念 —— Ct值。

C代表Cycle,t代表threshold,Ct值的含义是:每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数(如图1所示)。

图1. Ct值的确定2.荧光域值(threshold)的设定PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号,荧光域值的缺省设置是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍,即:threshold = 10 ´ SDcycle 6-153.Ct值与起始模板的关系研究表明,每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系〔1〕,起始拷贝数越多,Ct值越小。

利用已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线,其中横坐标代表起始拷贝数的对数,纵坐标代Ct值(如图2所示)。

因此,只要获得未知样品的Ct值,即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。

图2. 荧光定量标准曲线4.荧光化学荧光定量PCR所使用的荧光化学可分为两种:荧光探针和荧光染料〔2〕。

现将其原理简述如下:1)TaqMan荧光探针:PCR扩增时在加入一对引物的同时加入一个特异性的荧光探针,该探针为一寡核苷酸,两端分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团。

探针完整时,报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收;PCR扩增时,Taq酶的5’-3’外切酶活性将探针酶切降解,使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离,从而荧光监测系统可接收到荧光信号,即每扩增一条DNA链,就有一个荧光分子形成,实现了荧光信号的累积与PCR产物形成完全同步。

Real Time PCR

Real Time PCR

相对定量
2 1
内参基因
1 2
目的基因
内参基因
内参基因:qRT-PCR时,每个标本都要做对应的内参 ,而且每次都是管家基因,一般用β -actin,有时也用 GAPDH。
管家基因:又称持家基因(house-keeping geቤተ መጻሕፍቲ ባይዱes), 生物体各类细胞中都表达,其产物是对维持细胞基本生命
活动所必需的蛋白质。如微管蛋白基因、糖酵解酶系基因 与核糖体蛋白基因等。是为维持细胞基本生命活动所需而 时刻都在表达的基因。
光信号强度急剧下降,此时的温度即溶解温度(Tm 值),Tm值与PCR扩增产物的序列有关,对于某一 PCR扩增产物,其值是固定的。
单一峰,无非特异性产物,定量准确
出现杂峰,存在非特异性扩增,定量不准确
荧光定量PCR的解析方法
绝对定量
样本中的核酸量(拷贝数,微克)
相对定量
不同样本中目的基因表达量的差异
数据处理(ΔΔ Ct法)
步骤一:内参基因均一化样本差异 Ct(目的基因)-Ct(内参基因)=Δ Ct 步骤二:其他和对照样本比较 Δ Ct(目的基因)-Δ Ct(内参基因)=ΔΔ Ct 步骤三:使用公式计算 倍数变化=2-ΔΔCt
Gene Expression
常 见 问 题
问题一:无Ct值出现 1、反应循环数不够:一般都要在 35 个循环以上,可根据实验 情况增加循环,但高于 45 个循环会增加过多的背景信号; 2、检测荧光信号的步骤有误:一般采用 72℃延伸时采集荧光; 3、引物或降解:可通过PAGE电泳检测其完整性; 4、模板量少:对未知浓度的样品应从系列稀释样品的最高浓度 做起。
产物的实时检测成为可能。
扩增曲线:用来描述PCR动态进程的曲线。

Real—timeqPCR技术的定量原理

Real—timeqPCR技术的定量原理

Real—timeqPCR技术的定量原理Real—time qPCR技术的定量原理:一、扩增曲线在Real—time qPCR中,对整个PCR反应扩增过程进行了实时的检测并记录其荧光信号,随着反应的进行,监测到的荧光信号可以绘制成一条曲线,即为扩增曲线。

荧光扩增曲线一般分为基线期、指数增长期和平台期。

在Real—time qPCR扩增早期,扩增的荧光信号被荧光背景信号所掩盖,无法推断产物量的变动,此时即为基线期。

PCR反应过程中产生的DNA拷贝数是呈指数形式加添的,随着反应循环数的加添,最终PCR反应不再以指数形式生成模板,从而进入“平台期”。

在该时期,扩增产物已不再呈指数级的加添,PCR 的终产物量与起始模板量之间无线性关系,所以依据最终的PCR产物量不能计算出初始模板量。

只有在荧光信号的指数增长期,PCR产物量的对数值与起始模板量之间存在线性关系,可以选择在这个阶段进行定量分析。

扩增曲线和Ct值二、荧光阈值为了便于对所检测样本进行比较,首先需设定一个荧光信号的阈值,荧光阈值是在扩增曲线上人为设定的一个值,它可以设定在指数扩增阶段任意位置上,一般荧光阈值设置为3~15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍,但实际应用时要结合扩增效率、线性回归系数等参数来综合考虑。

通常荧光阈值都是Real—time qPCR仪器自动设置,如无特殊情况,无需更改。

三、循环阈值循环阈值(Cycle threshold valve, Ct)即Real—time qPCR扩增过程中扩增产物的荧光信号实现设定的荧光阈值时所经过的扩增循环次数,Ct值与荧光阈值有关。

一般Ct值位于指数增长期的开始阶段,此时样品间细小物差尚未放大且扩增效率也相对恒定,因此该Ct值具有重复性,尽管平台期的DNA拷贝数波动很大,Ct值却是相对固定的。

Real time PCR 原理及其定量方法

Real time PCR 原理及其定量方法

TaqMan作用机理
在退火过程中,探针与靶序列结合
在延伸过程中,探针部分与靶序列分离
探针被Taq酶的5’- 3’ 外切酶活性剪切成片 断 游离报告基团发出荧光
TaqMan法优缺点Fra bibliotek优点 高度特异性
重复性好 灵敏度高
缺点
只适合一个特定的目标
委托公司标记,价格较高 背景高,不易找到本底低的探针
30.61
28.41 25.19 22.28 18.77 20.5
0.03
0.16 0.04 0.12 0.10 0.05
未知样品 空白对照
标准曲线拟合:利用Mean Ct 作图可得到标准曲线 y = -3.29x + 40.33 R2 = 0.9978 扩增效率E的计算
E = 10-1/斜率 -1
二荧光定量pcr的定量方法绝对定量和相对定量绝对定量loglog起始浓度与循环数呈线性关系起始浓度与循环数呈线性关系通过已知浓度的通过已知浓度的标准品标准品作出标准曲线作出标准曲线即得到该扩增反应存在的线性关系即得到该扩增反应存在的线性关系根据根据样品样品ctct值值就可以计算出初始样品中所含的模板量就可以计算出初始样品中所含的模板量标准品可以是标准品可以是纯化的质粒纯化的质粒dnadna体外转录的体外转录的rnarna或者体外或者体外合成的合成的ssdnassdnasample拷贝数计算对标准品进行梯度浓度稀释荧光定量pcr反应建立标准品未知样品ct代入标准曲线确定拷贝数质粒提取od值测定计算待测样本浓度样本分子量待测样本拷贝数标准品进行56个梯度稀释标准品稀释倍数为10绝对定量实验构建流程绝对定量分析要素一个一个目的基因目的基因即需要确定其量值的核酸序列
= 10-1/-3.29 -1 = 2.01-1 = 1.01
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定量PCR技术: 通过对PCR扩增反应中每一 个循环产物荧光信号的实 时检测从而实现对起始模 板定量及定性的分析
2、荧光定量PCR常用的三个概念
扩增曲线、阈值、CT值
plateau phase Liner phase
Exponential phase
Normalised reporter Fluorescence (Rn)
另一种思路
由于PCR反应体系中荧光物质的荧光强度与PCR产物的量成 正比,所以可以用荧光强度来代替PCR产物的量,同时考虑 荧光本底值,则:
Rn= RB+ X0(1+ Ex) Rs
总荧光信号强度=本底信号+分子数量×单位信号强度
Rn:第n个循环时的总信号 RB:本底 RS:单位信号强度 X0:起始DNA数目 Ex:PCR扩增效率
线性关系、扩增效率确认
相关系数(R2):大于0.98 标准曲线斜率: -3 到 -3.5 PCR扩增效率(Ex): 0.9到1.2
扩增效率
106 105 104 103 102 10
荧光强度---循环数曲线
初始模板量对数---C(T)循环数标准曲线
扩增效率理论值为1,即每增加一个循环PCR产物加倍。
实时荧光定量PCR原理和定量方法 一、荧光定量PCR的原理
在PCR反应体系中加入荧 光基团,利用荧光信号累积 实现了实时监测整个PCR进程, 对起始模板进行定量分析的 方法。
三个关键词: 实时,定量,荧光
1、定量与常规PCR的差别
常规PCR技术: 对 PCR 扩 增 反 应 的 终产物进行定量及 定性分析
非理想的PCR反应:
Xn=X0 ×(1+Ex)n
n:扩增循环数 X0:起始模板数量 Xn:第n次循环后扩增产物数量 Ex:PCR扩增效率
在扩增产物达到荧光阈值时所经历的循环数为Ct个循环,此 时:
XCt= X0×(1+Ex)Ct= M
XCt :荧光扩增信号达到阈值时扩增产物的量,在阈值设 定以后,它是一个常数,设为M
那么,根据扩增效率Ex与标准曲线斜率的关系,优化的标准
曲线斜率应该为-3.32。
4、荧光定量PCR的化学原理
处于基态的分子经某种波长的入射光照射,吸收电磁辐射后被激 发至激发态,然后通过发光的形式释放出能量,重新跃迁回基态。 所发射的光即为荧光。
荧光定量PCR反应体系
非特异性荧光标记 ➢ DNA结合染料 (SYBR Green) 特异性荧光标记 ➢ 探针 (Taqman、Beacon、FRET、Amplifluor) ➢引物 (Scorption primer、LUX primer)
上式两边同取对数得:
LogM=Log X0 ×(1+Ex)Ct
整理得:
LogX0 = -Ct Log(1+Ex)+ Log M
模板DNA量越多,荧光达 到阈值的循环数越少,即Ct 值越小。
Log模板起始浓度与Ct值 呈线性关系。
Sample
Ck 104
Ck 102
Cycle number
Lg of DNA concentration
Baseline Ct Value
Threshold line
Cycle
(1)扩增曲线(Amplification)
反映PCR循环次数和荧光强度变化的曲线。随着PCR反应的
进行,每经过一个循环,收集一次荧光信号,通过荧光强
度的变化监测扩增产物量的变化,从而得到扩增曲线图。
纵坐标:Rn(荧光值) 横坐标:cycle number(循环数)
类似的,当循环数n等于Ct值时,可推出:
Ct lg (1+Ex) = -lg X0 + lg (RT-RB) – lg Rs 变形得:
此时,PCR反应处于指数期阶段,所有样品的反应效率 Ex稳定且近似相等;lg(RT -RB)、Rs也都相同,只有Ct值 和-lgX0为变量,且这两个变量之间成线性关系。也就是说, 根据样品扩增达到域值的循环数即Ct值就可计算出样品中 所含的模板量。
(1)SYBR Green法
SYBR Green 染料可以与dsDNA小沟区结合并发出绿色荧光。游离 状态下SYBR Green仅发出微弱荧光,与dsDNA结合后荧光强度激增, 其荧光信号强度与dsDNA数量成正比。
热变性 引物退火 延伸反应
融解曲线(melt curve)
在PCR反应程序结束后,逐步提高温度,读取荧光值,得 到温度与荧光值的关系曲线。
Cycle(循环数)
(3)Ct值(Cycle threshold)
PCR过程中,每个反应管内扩增产物的荧光信号达到 设定的阈值时,所经过的扩增循环数。相同模板进行多次 扩增,终点处产物量不恒定,但Ct值极具重现性。
3、荧光定量PCR的数学原理
理想的PCR反应:
Xn=X0×2n
n:扩增循环数 X0:起始模板数量 Xn:第n次循环后扩增产物数量
平台期
前15个循环信号作为荧光 本底信号(baseline)
Rn(荧Байду номын сангаас强度)
荧光阈值的缺省设置是 3~15个循环的荧光信号的标 准偏差的10倍
Lg-liner phase
Threshold
手动设置:大于荧光背 景值和阴性对照的荧光最高 值;进入指数期的最初阶段
真正的信号:荧光信号超 过阈值
Baseline
融解温度(melting temperature, Tm值)
双 链DNA解 链 50%的 温度 。 一般而言 ,退火 ( annealing
temperature)温度等于Tm值减5℃。
荧光强 度
T m
温 度
融解曲线原始图
融解曲线的设置是在PCR反应完成后进行的。一般从60℃升 到90℃,得到的融解曲线随着温度的升高,双链DNA的解链, 荧光信号不断降低,且在Tm值下降速度最快。用荧光信号强 度改变的负的一次导数与温度做图,即得到单峰的融解曲线。 峰值代表斜率改变最大值,即为Tm值。
-d-IdI ddT T
TTmm
融解曲线单峰图
线性图
对数图
荧光信号变化与PCR循环数的变化 直观!
荧光信号变化的对数与PCR循环数的变化 确定阈值线!
(2)阈值(Threshold)
在荧光扩增曲线上人为设定的一个值。它可以设定在荧
光信号指数期任意位置上,一般荧光域值设置是基线荧光信 号(一般是PCR 3~15个循环荧光信号)的标准偏差的10倍。
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