Westernblot基本操作步骤
Western Blot技术详细操作步骤
Western Blot技术详细步骤蛋白质印记（Western Blot）是一种常用的生物技术，用于检测特定蛋白质在细胞提取物中的存在。
Western Blot基本步骤如下：1. 准备样品和设备：收集细胞或组织样品，然后使用适当的细胞裂解缓冲液将细胞破碎。
前处理样本并测定蛋白质浓度。
准备凝胶电泳设备，包括聚丙烯酰胺凝胶和Tris-glycine SDS运行缓冲液。
2. 凝胶电泳：将处理好的样品与样品缓冲液混合并加热，然后将其加载到凝胶孔中。
接着将预染蛋白质分子量标记也加载至凝胶中。
开始分子量依赖的电泳，使蛋白质在凝胶中分离。
3. 转印：将蛋白质从凝胶转移到结构更加稳定的膜载体，如聚偏氟乙烯 （PVDF）或者硝酸纤维素膜。
使用电转印或半干转印设备进行转移。
4. 封闭：为防止非特异性结合，使用5%无脂奶粉或BSA溶于TBST （Tris-缓冲的盐水加Tween 20）在膜上进行封闭。
一般封闭时间约为1小时，根据实验需求可调整。
5. 第一抗体孵育：将特异性的一抗稀释 （通常为多克隆或单克隆抗体），然后在封闭液中孵育膜。
根据抗体浓度与孵育时间进行相应优化。
6. 清洗：使用TBST清洗膜，以去除未结合的一抗。
通常需要清洗3次，每次5-10分钟不等，避免一抗非特异性结合。
7. 第二抗体孵育：将标记有荧光或酶的二抗稀释后，再次孵育膜。
封闭液中的二抗通常是与一抗长在不同宿主动物中的特异性抗体。
孵育时间需要优化。
8. 清洗：再次清洗膜，以去除未结合的二抗。
重复步骤6的清洗方法。
9. 检测：将膜放入检测设备中，如化学发光仪、荧光扫描仪等。
等待信号产生并记录结果。
测定蛋白质相对表达量的强度并进行定量分析。
10.数据分析：使用图像处理软件进行定量分析，如ImageJ等软件，并进行归一化处理，一般以内参蛋白（如β-actin, GAPDH等）数据为基准。
以上就是蛋白印记的基本操作步骤，具体细节及操作条件可能因实验室环境和试剂不同而有所差异。
Westernblot实验操作步骤
Western blot实验步骤一、制备蛋白样品（单层贴壁细胞总蛋白提取）1.倒掉细胞培养液,加3ml预冷的PBS洗涤细胞，重复两次，弃掉PBS后将细胞培养瓶置于冰上。
2.裂解液RIPA(强)1ml +PMSF10ul(100:1),两者混匀后加入培养瓶中裂解细胞，冰上裂解30min,为使细胞充分裂解,培养瓶要经常来回摇动。
3.裂解完后，用细胞刮将细胞刮于一侧（动作要快），转移至ep管中.4.4度，12000rpm,离心5min.离心后取上清至新的ep管中，用于后续实验（-80保存）常用蛋白收样：倒掉细胞培养基后，预冷PBS洗涤细胞2次，弃去，再加入1ml PBS，用细胞刮轻轻刮取细胞，转移至1.5ml ep管中，12000rpm，离心5min，尽量吸净上清，沉淀于-80保存，用于后续实验。
融化蛋白样品，加入RIPA+PMSF细胞裂解液（200ul/ep管），充分混匀，冰上裂解20min，4度离心，5min ，12000rpm，小心吸取上清至新的ep管中。
二、蛋白浓度测定(BCA法)BCA(碧云天)蛋白浓度测定试剂盒灵敏度高，检测浓度下限达到25ug/ml，最小检测蛋白量达到0.5ug，待测样品体积为1-20ul。
在50-2000ug/ml浓度范围内有较好的线性关系。
标准蛋白BSA浓度：5mg/ml (-20保存) ,完全溶解蛋白标准品，取10ul稀释至100ul，使终浓度为0.5mg/ml(ug/ul)。
蛋白样品在什么溶液中，标准品也宜用什么溶液稀释。
但为了简便起见，也可以用0.9%NaCl或PBS稀释标准品。
1. 配置BCA工作液A液： B液= 50 : 1 ，混匀 A液+B液=200ul (每个样本)样本数量： 7个标准品 + N 个待测蛋白样本2. 先将每孔加入200ul BCA工作液，再加入蛋白样本。
（96孔板）,总体积为10ul.待测蛋白样本先10倍稀释。
3.37度，温箱中孵育30min。
western blot实验流程(自己整理)
Western Blot实验步骤1.制胶2.细胞蛋白抽提步骤1.提前预冷离心机，溶解lysis buffer；2.将细胞沉淀置于冰上；1ml PBS重悬，4℃离心5min，（除去样中微量血清）；3.每107cells加裂解工作液100ul，轻轻重悬细胞沉淀；4.置冰上10min，其间振荡2-3次；5.13000rpm离心10min，4℃；6.将上清转到小离心管中；7.取出1ul，用于Bradford测定蛋白浓度（ug/ul）=（样本OD值的平均值-对照OD值平均值）*斜率100℃，5min；提前预热。
中间打开盖子1~2次。
6.上样电泳（100V，90min）向电泳槽中加入电泳缓冲液，使两块玻璃内侧电泳液高于上样孔，外侧电泳槽内电泳液浸没凝胶底部。
玻璃板内侧液面高于外侧。
然后开始上样，保证每孔总蛋白量在30-50ug,总上样量小于30ul,注意上样时间尽量短，避免样品扩散。
上样完毕，盖好电泳槽的盖子，注意正负极，并选择适当的电压进行电泳。
通常在不连续的系统中，上层浓缩胶的电泳电压(建议70-80V)要低于分离胶电泳电压(建议90-110V)，以达到更好的浓缩效果，使样品进入分离胶时被压缩在同一水平线上。
电泳直至溴酚蓝染料前沿下至凝胶末端处停止电泳，电泳时间约2-3 小时。
电泳时间根据具体情况定。
7.转膜（250mA，1h 30min）转膜顺序：阴极碳板+海绵+三滤+胶+膜+三滤+海绵+阳极碳板湿式电转膜1. 电泳结束后取出凝胶，在转膜缓冲液中漂洗数秒。
按“三明治”模式，打开电转印夹，每侧垫上一块专用的用转膜液浸泡透的海绵垫，再各放一块转膜液浸透的快速高效蛋白转移垫(定性滤纸），将凝胶平放在阴极侧滤纸上，最后将转膜液浸透博士德硝酸纤维素NC 膜平放在凝胶上，去除气泡，夹好电转印夹，注意NC 膜与胶，NC 膜与滤纸，滤纸与胶之间不可有气泡。
2. 转印槽加满转膜缓冲液，插入电转印夹，将转印槽放入冰箱内（-20℃），确保NC 膜最靠近正极，带负电的氨基酸和蛋白质向正极迁移。
Western Blotting 流程详细版
Western Blotting 流程详细版1，收细胞。
从细胞间取出要收样的细胞，可以用两种方式进行处理（处理前准备好碎冰，并配好细胞裂解液，在所需量的细胞裂解液中加入leupeptin和PMSF，两者均为100X）：（1）真空泵吸去培养基，加入预冷PBS洗一次，真空泵吸去残液（彻底吸干净）。
直接在板中加入裂解液（6孔板：100ul/well；6cm板：500ul/well；10cm板：1.5ml/well），冰上静置5min。
再吸入预冷的1.5mlEP管中，准备超声(10cm板的细胞裂解液请分装至2到3个EP管中，方便超声)。
（2）真空泵吸去培养基，加入预冷PBS洗一次，真空泵吸净。
再在板中加入PBS（6孔板：500ul/well；6cm板：2ml/well；10cm板：5ml/well），用干净的细胞刮将板中的细胞刮下，转移至1.5mlEP管中（推荐每个EP管500ul左右液体，方便超声）。
2000r，5min，4℃。
如果想尽可能多收细胞，可以在刮过的板里再重复加一次PBS（用量见前述），待之前的管离心之后，再加入，重复离心一次。
离心之后，真空泵或移液枪吸去上清（用200ul tip头，尽可能吸干净）。
加入裂解液（6孔板：100ul/well；6cm板：500ul/well；10cm板：1.5ml/well）。
准备超声。
2，超声破碎细胞。
EP管置于冰上，每管按如下程序超声：超声时间1~2s/次，间隔5~10s 再重复下一次，总共10~20次。
超声后的样品与未超声样品相比更澄清。
超声效率推荐为20%，持续时间不宜过长，否则容易出现泡沫以及焦化现象。
超声1~2s时，可以将EP管从冰上拿出，以便操作，超声后立即放回冰上。
3，超声后离心，最大转速，30min，4℃。
离心后将上清转入新的干净EP管中（沉淀可以加入10ulSDS loading buffer混匀后，煮沸，跑胶，以验证目的蛋白是否残留于沉淀中，或是只存留于沉淀中）。
WesternBlot操作流程
WesternBlot操作流程Western Blot操作流程本⼈将⾃⼰做WB实验时的具体操作流程，做了详细的记录并整理。
因为每个实验室的条件不⼀样，所以本流程仅供参考，具体适合⾃⼰的实验操作需要⼤家摸索。
由于知识量有限，有些描述⽤词并不专业，请⼤家谅解。
⼀、流程图制胶→→电泳跑胶(1.5-2.5h)→→转膜（3h）→→（可使⽤⽴春红检测是否蛋⽩是否成功转移）TBST清洗（10min）→→封闭（2h）→→TBST清洗（10min）→→附Ⅰ抗（内参：⼩⿏抗β-Actin，先摇床轻摇30min，再放冰箱4度过夜）→→TBST 清洗三次（10min/次）→→附Ⅱ抗（内参：⼭⽺抗⼩⿏，轻摇1.5h）→→TBST清洗三次（10min/次）→→显影⼆、物料及配制1、电泳液：⼀包电泳粉+1000ml双蒸⽔（可回收使⽤）2、10%过硫酸铵：1g过硫酸铵+10ml双蒸⽔3、转膜液：⼀包转膜粉+800ml双蒸⽔+200ml甲醇（可回收使⽤）4、TBST溶液：50ml 20*TBS+950ml双蒸⽔+1ml吐温20。
（⽆需回收）5、封闭液：购买6、Ⅰ抗（内参）：将⼩⿏抗β-Actin：Ⅰ稀释液按1:500稀释待⽤，4度保存。
Ⅰ抗（⽬的蛋⽩58kDa）：将smad2：Ⅰ稀释液按1:1000稀释待⽤，4度保存。
7、Ⅱ抗（内参）：将⼭⽺抗⼩⿏：Ⅱ抗稀释液按1:5000稀释代⽤，4度保存。
Ⅱ抗（⽬的蛋⽩58kDa）：将⼭⽺抗兔：Ⅱ抗稀释液按1:5000稀释待⽤，4度保存。
7、显影液：按说明书配制，避光可长期回收使⽤8、定影液：按说明书配制，可长期回收使⽤9、发光液：超敏发光液A液：B液=1:1三、步骤（⼀）制胶1、Tris-⽢氨酸SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳分离胶溶液的配制2、Tris-⽢氨酸SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳5%积层胶所⽤溶液3、1）将规格1.0mm或其它规格的玻璃板固定好。
2）依次将所需试剂加⼊烧杯中，加⼊TEMED之后，混匀，⽤1000ml的移液枪沿玻璃板缝左右两边的⾓交替加⼊分离胶溶液，也可从左到右连续加⼊（⽬的：两种⽅法都可以使液⾯快速达到⽔平状态）。
Western Blot 操作流程
Western 操作流程1.SDS-PAGE电泳，事先调整好蛋白质样品的浓度，保持一致。
2.转膜（电泳结束前20分钟开始准备，而垫片和滤纸至少1小时前浸泡于含SDS的转移缓冲液中）。
（1）. 剪适当大小的PVDF膜，正常大小：5.5cm*8cm。
?（2）. 甲醇10mL浸泡膜5min，然后按1：4体积比向浸泡膜的容器中加水40mL至甲醇终浓度为20％(慢加快摇) 计时2 MIN。
（3）. 将膜转入无SDS转移缓冲液中（至少浸泡15分钟），慢摇。
（4）. 同时将电泳好的胶转移至无SDS的转移缓冲液中，慢摇10min。
（5）. 按湿转芯，黑面-垫片-滤纸-胶-膜-滤纸-垫片-白面的顺序放好，并且每层都要用玻璃棒赶走气泡，装槽时要黑对黑，白对白，加入含SDS转移缓冲液。
（7）. 湿转100V 1h-1.5h，转移槽中放入冰盒，冰水混合物上进行或者磁力搅拌器搅拌4度层析柜进行。
3. 封闭。
转膜结束后，将膜与胶接触的面为正面朝上， TTBS 缓冲液中浸泡片刻或者直接转移至封闭液中（5%脱脂牛奶），封闭1-2h1.5H。
4.一抗孵育。
封闭结束后，将膜在TTBS缓冲液中洗2次，每次2分钟，将膜转移至一抗孵育盒（5% 牛奶+ 一抗）中，4°C过夜孵育或者室温孵育3h。
注意：4°C过夜孵育的一抗可收集起来放于4°C，一周之内应该没问题，但是在重复使用这些一抗时，还得再加入比原来比例低的一抗，例如，原来按1：5000加的一抗，那么这次可在回收的一抗中按1：10000加。
5. 膜在TTBS缓冲液洗3次，每次6min1.二抗孵育。
将膜转移至二抗孵育盒中（5%牛奶+二抗），1-2h1.5H。
7. TTBS洗膜三次，每次6min.8.ECL Plus检测液检测：（Western Blot 超敏发光液A和B按1：1比例混匀）注意：Western Blot 超敏发光液 4°C避光保存。
使用前需恢复至室温，所以要提前从冰箱中取出。
Westernblot实验操作详细步骤
Westernblot实验操作详细步骤1.样本制备：a.收集细胞或组织样本并加入提取缓冲液，破碎细胞或组织以释放蛋白质。
b.用超声波破碎机或搅拌器处理样本，使其彻底破碎。
c.避免加入蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂以防止蛋白质的降解。
2.蛋白质分离：a.将样本加入离心管中，并用高速离心分离细胞碎片和细胞核。
b.收集上清液，其中包含溶解的蛋白质。
3.蛋白质浓度测定：a. 使用BCA或Bradford等方法测定提取的蛋白质浓度。
b.根据需要调整蛋白质浓度，以确保每个样本使用相同的蛋白质量。
4.准备SDS-凝胶：a.准备解聚凝胶和浓缩凝胶以进行垂直电泳。
b.根据需要选择合适的胶百分比和凝胶组装器。
c.制备足够的凝胶和凝胶缓冲液。
5.蛋白质电泳：a.将蛋白质样本加入加载缓冲液，并在煮沸过程中使其变性。
b.将蛋白质样本加载至凝胶槽中。
c.根据需要在凝胶中加入预定分子量标记物，以便于蛋白质分子量的确定。
d.以恒定电流进行电泳，直到预定分子量标记物到达所需位置。
6.蛋白质转膜：a.选择合适的膜材料（例如聚偏氟乙烯或硝酸纤维素）。
b.用蛋白质转膜装置将凝胶上的蛋白质转移到膜上。
c.确保膜与凝胶完全贴合，并尽量避免气泡的产生。
7.阻塞和抗体孵育：a.将膜放入含有5%非脂奶粉或1%牛血清蛋白的TBST缓冲液中进行阻塞。
b.在蛋白质靶向抗体中稀释贮存液，并使用适当的稀释倍数进行孵育。
c.将膜和抗体一起放入摇床或孵育箱中，在适当的温度下进行孵育。
8.洗涤：a.用TBST缓冲液洗涤膜以去除未结合的抗体。
b.进行3至5次洗涤，每次洗涤持续5到10分钟。
9.二次抗体孵育：a.将膜放入稀释过的二抗溶液中进行孵育。
b.孵育时间和温度根据抗体种类和需求进行调整。
10.再洗涤：a.用TBST缓冲液进行大约3至5次洗涤。
b.确保彻底洗涤以去除未结合的二抗。
11.信号检测：a.使用化学发光或荧光探针对膜上的蛋白质进行检测。
b.按照探针供应商的说明进行操作。
westernblot法
Western blot，也称为蛋白质印迹或免疫印迹，是一种常用的生物化学技术，用于分析样品中特定蛋白质的存在、细胞中特异蛋白质的半定量分析以及蛋白质分子的相互作用研究等。
下面是Western blot的基本步骤和注意事项：一、实验步骤蛋白样品制备：从细胞或组织中提取蛋白质样品，常用的方法有细胞裂解、组织匀浆等。
蛋白定量：使用BCA蛋白浓度测定法等对蛋白质样品进行定量，以便后续的Western blot分析。
凝胶电泳：将蛋白质样品在聚丙烯酰胺凝胶中电泳分离，根据蛋白质的大小和电荷进行分离。
转膜：将电泳分离后的蛋白质样品转移到硝酸纤维素膜上，以便进行后续的免疫检测。
免疫检测：使用特异性抗体对转移后的蛋白质样品进行免疫检测，抗体与目标蛋白质结合后，通过显色反应呈现阳性结果。
数据分析：对免疫检测结果进行定量和定性分析，如条带大小、灰度值等。
二、注意事项实验前要充分了解实验原理和操作流程，确保实验的正确性和可行性。
蛋白样品制备过程中要保证细胞或组织充分裂解和匀浆，以获得更纯的蛋白质样品。
在进行Western blot分析前，要对蛋白质样品进行定量，以保证实验结果的准确性。
在转膜过程中，要选择合适的转移缓冲液和转移时间，以保证蛋白质样品的完整转移。
在免疫检测过程中，要选择合适的抗体和显色试剂，以保证免疫检测结果的特异性。
在数据分析过程中，要选择合适的分析方法和软件，以保证数据分析的准确性和可靠性。
总之，Western blot是一种常用的生物化学技术，在蛋白质分析领域具有广泛的应用价值。
在进行Western blot实验时，要严格遵守实验步骤和注意事项，以保证实验结果的准确性和可靠性。
western的操作步骤
western的操作步骤Western Blot操作全过程一，收蛋白a（如果要收集死细胞）1.取冰，将4°C离心机提前降温。
2.将死细胞收集到离心管：孔板内的细胞用PBS洗1-2遍，用适量的胰酶消化，用离心管内的原培养液将孔板内细胞吹打下来，收集到离心管，室温离心1000rpm，5min。
3.弃上清，将离心管倒扣在滤纸上，尽量吸尽残留上清。
4.视细胞量的多少加入细胞裂解液。
（1×Cell Lysis Buffer：PMSF=100：1，1×Cell Lysis Buffer，PMSF-20°C保存。
PMSF 常温易降解，拿出时间不得超过30min，必须放置冰上。
）5.冰上裂解15min，将裂解液转移至EP管离心，4°C，12000rpm，15min。
6.小心将上清转移至另一EP管，记下吸取的量。
如：100μL。
7.将收集好的蛋白保存与—20°C。
（可长期保存）b （如果不收集死细胞）1．弃上清，孔板PBS洗1-2遍，吸尽PBS。
在孔板中视细胞量的多少加入相应细胞裂解液。
（同上）2．冰上裂解15min，用细胞刮在孔板里将细胞刮刮。
（不同的孔不能用同一个刮子，刮前用水冲洗，擦干。
）3．将裂解液转移至EP管离心，4°C，12000rpm，15min。
4．小心将上清转移至另一EP管，记下吸取的量。
5．将收集好的蛋白保存与—20°C。
（可长期保存）二，测蛋白浓度BCA法（或者按照自己的试剂盒说明操作）1.需96孔板，测蛋白浓度的A液，B液，标准蛋白，要测的样品蛋白。
2.按要测的样品蛋白的数量来配AB液，每孔需AB混合液80μl （A：B=50：1）。
例：有5个样品，加上5个标准蛋白和空白对照。
共有11个孔。
则A液取11×80=880μl，B液取880÷50=17.6两液混匀，加入96孔板，每孔80μl。
然后加入标准蛋白及样品蛋白4μl。
Westernblot基本操作步骤
W e s t e r n b l o t基本操作步骤一、细胞蛋白的提取弃去培养基，加入预冷的PBS洗一遍，加入的RIPA裂解液（含1mM PMSF(100×)，每10ml加蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂各一片，六孔板每孔150-250μl，60mm×15mm培养皿300-400μl，），于冰上裂解约5分钟，裂解总液12000rpm离心10 min。
取上清，用BCA法测定蛋白浓度。
用于western blot的蛋白样品取一定量加4×loading buffer，10×reducing，再用裂解液补齐到所需上样体积。
离心，使蛋白沉底。
将EP管于沸水中煮5min，变性，之后再离心后准备上样。
二、BCA法测蛋白浓度操作步骤将蛋白标准配制溶液溶解蛋白标准（BSA），配制成5mg/ml的蛋白标准溶液，10μl 分l。
；水②将预制胶固定到电泳装置中，并在装置中加满Runnig Buffer(1×)，内槽加入0.5mL抗氧化剂，小心拔下梳子；③向上样孔中加入一定体积的蛋白样品（总蛋白量20μg以上）。
向marker孔中加入2.5μl marker（按照实验要求设定marker量），向空白孔中加入一定体积的加样缓冲液(loading buffer)。
注意采用相同（或相近）的上样体积，以保证蛋白的各带宽度相同。
防止体积较大的上样孔中的蛋白质将向相邻的泳道扩散。
3、电泳将电泳装置与电源连接。
调节电压为100-200V，电泳50min，直至溴酚兰接近分离胶的底部，然后关闭电源并撤去连接的导线。
拆除电泳装置：先倒掉电泳缓冲液，连同槽一起将凝胶夹层取出，小心的撬起凝胶外层塑料板，使凝胶暴露出来，切去浓缩胶以及无蛋白样品的凝胶部分（将胶留在短的一面塑料板上）。
4、转膜（湿转）①将转膜液（1× Transfer Buffer）放于大饭盒内，泡4片海绵，剪4片滤纸、1片PVDF膜，PVDF膜于甲醇中活化30s，取出置于转膜液中；②按照2层海绵+2层滤纸+胶+膜+2层滤纸+5层海绵（填满）的顺序组装转膜装置，注意组装此装置时一定要保证滤纸、膜、凝胶精确对齐并不留气泡；③将组装好的装置放入电转槽，合上盖子，电转槽置于冰浴，接通电源，调节电压为15V，时间为16~18h（或恒流300mA, 3h）。
Western_Blot操作步骤
Western Blot操作步骤一、 Western blot 实验步骤概述1. 组织取材：组织块称重2. 利用液氮、研钵粉碎组织块3. 加入RIPA缓冲液(每克组织3 ml RIPA)，PMSF(每克组织30μl，10 mg/ml PMSF)，利用Polytron进一步匀浆(15,000转/分*1分钟)维持4℃4. 加入PMSF(每克组织30μl，10 mg/ml PMSF)，冰上孵育30分钟5. 移入离心管4℃约20,000 g(约15,000转)15分钟6. 上清液为细胞裂解液可分装-20℃保存7. 进行Bradford比色法测定蛋白质浓度8. 取相同质量的细胞裂解液(体积*蛋白质浓度)，并加等体积的2×电泳加样缓冲液9. 沸水浴中3分钟10. 上样11. 电泳(浓缩胶20mA，分离胶35mA)12. 电转膜仪转膜(100mA 40分钟)13. 膜用丽春红染色，胶用考马斯亮蓝染色14. Westernblot 试剂盒显色15. 分析比较记录二、 Western具体实验步骤Western，也称Western blot、Western blotting、Western印迹，是用抗体检测蛋白的重要方法之一。
Western可以参考如下步骤进行操作。
1.收集蛋白样品(Protein sample preparation):可以使用适当的裂解液裂解贴壁细胞、悬浮细胞或组织样品。
对于某些特定的亚细胞组份蛋白，例如细胞核蛋白、细胞浆蛋白、线粒体蛋白等，可以参考相关文献提取这些亚细胞组份蛋白，也可以使用试剂盒进行抽提。
收集完蛋白样品后，为确保每个蛋白样品的上样量一致，需要测定每个蛋白样品的蛋白浓度。
根据所使用的裂解液的不同，需要采用适当的蛋白浓度测定方法。
因为不同的蛋白浓度测定方法对于一些去垢剂和还原剂等的兼容性差别很大。
如果使用北京博奥森生物技术公司生产的WIP细胞裂解液，可以使用BCA蛋白浓度测定试剂盒。
Western blot(蛋白印迹法)详细步骤
Western blot（蛋白印迹法）详细步骤一、组织的研磨准备：研钵、研磨棒、EP管、药匙、液氮、液氮匙、自封袋、一次性手套、棉手套步骤：①用研磨棒将装有冻存组织的EP管敲碎，取出组织，在研钵中盛满液氮，用力敲碎组织，研磨。
②研磨过程中一旦液氮干了，立即加入液氮，保持研磨在液氮中进行，直至组织呈干粉状。
③用在液氮中浸泡过的药匙将研磨好的粉末盛入新的EP管中。
④装有组织粉末的EP管现在液氮中保存，待所有组织都研磨结束后装入自封袋，于-80℃保存。
注意：1.研钵使用前要用锡纸包口、研磨棒用锡纸包头，在烘箱中烘烤180℃至少3h 以上。
2.组织研磨成粉末后待液氮全部挥发后再将组织粉末装管。
3.每种样品都最好留有副管，备用。
二、裂解提蛋白准备：裂解液配制比例RIPA:PMSF=1000：10=100：1若需要加入蛋白酶抑制剂，则比例一般为1:1000（即1ml裂解液加1μl蛋白酶抑制剂）步骤：①将RIPA和PMSF按比例混匀，加入到装有组织粉末的EP管中，一般加入300~500μl左右（浓度尽量高点）。
②盖好盖子，在冰上裂解30~40min.③到时间后于4℃，12000rpm离心10min，取上清液转移到新的离心管中，于-20℃保存。
注意：1.裂解液加入后用手指弹一下混匀，当加入量很少时，成粘稠状，有必要时应用枪头混匀。
三、BCA法测定蛋白浓度（BCA试剂盒）准备：BCA试剂盒（BCA试剂A、BCA试剂B、蛋白标准液）、酶标板、酶标仪、摇床步骤：①按1:15或1:30稀释待测样品，即取1μl样品+14μl水。
③按50体积BCA试剂A加1体积BCA试剂B（50:1）根据样品数量配制BCA工作液。
④每个标准品孔加入200μl BCA工作液，样品孔加入待测样品10μl和200μlBCA工作液，充分混匀，在摇床上震荡30s，37℃放置30min，于492nm下测定OD值。
⑤标准曲线以蛋白含量（μg）为横坐标，吸光度为纵坐标，根据样品的吸光度可以在标准曲线上查得相应的蛋白含量。
Western Blotting操作步骤及说明
Western Blot操作方法及步骤1).蛋白质提取Extraction buffer组成:蔗糖0.7 MTris/HCl0.5 MEDTA 50 mMKCl0.1 M配制成母液pH 9.4巯基乙醇2%蛋白酶抑制剂25×取100-200 mg植物叶片，用液氮速冻后用研磨仪打碎（若量比较大可用液氮研磨，分装到多管中），加入500 µl 提取缓冲液，涡旋；完全混匀后加入500 µl 苯酚（分层，取下层酚层）, 涡旋；在3000 g 的转速下离心10 min, 4 °C拿两只新的EP管，各取200 µl 离心后的上清液；向两只EP管中各加入1 ml 0.1M NH4Ac（用甲醇溶解配制）；在-20°C下沉淀放置至少2 h过夜放置；在13000 rpm转速下离心5 min，4 °C；用0.1 M NH4Ac（用甲醇溶解配制）洗涤，用枪头将蛋白吹散，洗净杂质；在13000 rpm转速下离心5 min，4 °C；取上清后空甩EP管，去除多余的溶液；室温干燥蛋白, 用1% SDS（100ul左右）溶解蛋白。
2). 测定总蛋白浓度。
用BCA蛋白检测试剂盒测定提取物中的蛋白质含量(1)蛋白浓度测定1、考马斯亮蓝G250通过与蛋白质内的氨基和羧基基团间的静电结合作用以及范德华力，考马斯亮蓝与蛋白质形成强但非共价键连接的复合物。
蛋白-染料复合物的形成稳定染料携带的负电荷阴离子，从而产生在膜上或者胶上肉眼可见的蓝色①测定总蛋白浓度步骤：按照BCA试剂盒说明书进行操作1.配制标准曲线的标准样品--胎牛血清蛋白（BSA）浓度BSA原液浓度：5mg/ml②待测样品稀释用Nanophotometer（纳米光度计）初步测一下待测样品的浓度，计算好稀释的体积，使得终浓度在标准曲线区间内。
③加样准备测定标准样品和待测样品各准确吸取20μl溶液于酶标孔中，加入BCA工作液200μl。
western blot 全过程 详细步骤
一：提蛋白：1.PBS洗2遍，加RIPA 80-100ul（含10xcooktail）。
2.在冰上刮到离心管中，在冰上裂解20-30min。
3.4度离心，13000rpm、10-15min（准备新的离心管、配BCA 200ul/每孔(A:B=50：1)、96孔板加PBS(2个对照组20ul，实验组18ul)）。
4.取上清转移到新离心管中，记住转移的体积。
5.96孔板中每孔加2ul蛋白液。
6.每孔加200ulA/B混合液。
7.37度半小时。
8.测浓度以及标化用一起在libo文件夹找模板，最后得到每组需要加的RIPA以及loding buffer，还有标化后的浓度。
562波长0.046斜率（实验组值-对照组值）/斜率=浓度浓度最好在4-8ug/ul最好，跑胶时就可以只加10ul蛋白液（蛋白含量40-80ug）9.加好对应的RIPA以及loding buffer后，煮蛋白5-15min，-20度保存。
二：跑胶1. 1.0玻板，洗干净2.配制10%或者12%分离胶一块胶需要5ml3.灌分离胶，在分离胶上层灌无水乙醇4.配制5%浓缩胶2块胶需要4ml5.待分离胶干后，灌浓缩胶，插梳子6.待胶干后，将胶及玻板一起放入电泳槽，拔梳子，倒入1*running buffer（上腔灌满，下腔过电线丝）7.预电泳，100v，10-15min8.加样（蛋白样品及marker）10ul，marker 5ul9.60v 10-20min，之后100-110v三：转膜1.配transfer buffer ，用10*transfer buffer 稀释10倍，并加20%甲醇2.transfer buffer浸泡海绵、滤纸3.pvdf膜，甲醇泡1分钟，清水洗2次，泡在transfer buffer里20min4.胶取出，在transfer buffer里泡10min5.黑胶白膜（一层海绵，2层滤纸）6.转膜100v，1—1.5h（黑对黑，冰板，在冰里跑）四：封闭、一抗、二抗1．5%脱脂奶粉（pbst溶）1h 37度2.一抗4度12h3.pbst洗膜，3次，每次10min4.二抗（1:5000）1h 37度5. pbst洗膜，3次，每次10min6.显影剂A和B各300ulPBST：1000ml’PBS+1mltween5%脱脂奶粉：100mlPBST+5g脱脂奶粉10*running buffer：tris 30.3g 甘氨酸144.1g sds 10g 加水至1000ml10*transfer buffer：tris 30.3g 甘氨酸144.1g 加水至1000ml1* transfer buffer：100ml10*transfer buffer 200ml甲醇加水至1000ml。
Western Blot 操作步骤(优化后)
Western Blotting SOP一、SDS-PAGE1清洗玻璃板：一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗涤剂轻轻擦洗。
两面都擦洗过后用自来水冲，再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。
用前用酒精干燥。
2灌胶与上样：(1)、玻璃板对齐，放好胶条，然后垂直卡在架子上准备灌胶。
（操作时要使两玻璃对齐，以免漏胶。
）(2)、配分离胶：加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。
灌胶时，可用枪吸取胶沿玻璃注入，待胶面升到中间线偏高时即可。
然后胶上加一层水，液封后的胶凝的更快。
（灌胶时开始可快一些，胶面快到所需高度时要放慢速度。
操作时胶一定要沿玻璃板流下，这样胶中才不会有气泡。
加水液封时要很慢，否则胶会被冲变型。
）(3)、当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了（约30min）。
胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。
(4)、配5％的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。
将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。
灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。
插梳子时要使梳子保持水平。
由于胶凝固时体积会收缩减小，从而使加样孔的上样体积减小，所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。
待到浓缩胶凝固后，两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻轻将其拔出。
(5)、去掉胶条并用水冲洗一下加样孔和胶底部，以去除未聚合的丙烯酰胺，将其放入电泳槽中。
（小玻璃板面向内，大玻璃板面向外。
若只跑一块胶，那槽另一边要垫一块玻璃板。
）(6)、蛋白的溶液体积即为上样量。
取出上样样品至0.5ml离心管中，加入一份4×SDS和3份蛋白样品。
上样前要将样品于沸水中煮5min使蛋白变性。
（在缓冲液中加样。
）(7)、加足够的电泳液后开始准备上样。
（电泳液至少要漫过内测的小玻璃板。
）用微量进样器贴壁吸取样品，将样品吸出不要吸进气泡。
将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。
（加样太快可使样品冲出加样孔，若有气泡也可能使样品溢出。
加入下一个样品时要换枪头以免交叉污染。
WesternBlot操作步骤
WesternBlot操作步骤1.样品处理：-收集样品：从细胞培养物中收集细胞或从组织中收集组织样品。
-破碎细胞：使用合适的细胞破碎缓冲液将细胞破碎并释放蛋白质。
-甲醇沉淀：向破碎细胞中加入冷甲醇，以沉淀蛋白质，并将混合液冷冻在-20℃或-80℃下，使形成沉淀物。
-洗涤：使用冷丙酮洗涤蛋白质沉淀物，去除甲醇等杂质。
-干燥：在室温下或低真空下干燥蛋白质沉淀物，以去除水分。
2.SDS-：-制备凝胶：根据待分离蛋白的大小范围选择合适的凝胶浓度，如8%-12%聚丙烯酰胺凝胶。
- 制备样品：将样品加入样品缓冲液，如Laemmli缓冲液，并将其煮沸，以使蛋白质样品被变性和解聚。
-样品加载：将样品以适当的体积加载到凝胶孔中。
-电泳：将凝胶浸泡在预冷的电泳缓冲液中，并进行电泳（通常为100-200V），直到样品达到所需的分离程度。
-目视观察：在电泳结束后，可以通过染色或蛋白质染色来可视化分离的蛋白质带。
3.电转印：-制备膜和垫纸：将两张蛋白质转移膜和一片垫纸切割成与分离凝胶相同大小的形状。
-准备电转印池：将电转印池中的电转印缓冲液注满，并将蛋白质转移膜、垫纸和凝胶按顺序放入电转印池中，保持它们之间的紧密接触。
-转印：应用恒定的电流（通常为300mA）进行电转印，以将蛋白质从凝胶转移到膜上，通常需要1-2小时。
-验证电转印的效果：将凝胶和膜进行一致性染色或蛋白质染色，以判断蛋白质是否转移到膜上，是否均匀。
4.膜上抗体反应：-阻断：将膜放在牛血清蛋白（如5%脱脂奶粉）或胶原蛋白（如2%BSA）的阻断缓冲液中，以阻止非特异性的抗体结合。
-一次抗体：加入适当稀释的一次抗体，针对待检测蛋白的抗体。
将膜和一次抗体一起在冰箱中孵育，使二者结合。
-洗涤：用洗涤缓冲液洗涤膜，以去除非特异性结合的抗体。
-二次抗体：添加适当稀释的二次抗体，该抗体与一次抗体结合，并标记有辅助酶或荧光标记物。
-洗涤：用洗涤缓冲液洗涤膜，以去除未结合的二次抗体。
Western_blot操作流程08.24
Western-Blot操作流程（一）蛋白样品制备1、倒掉培养液，向培养皿中加入裂解液，通常6孔板150-200ul/孔，12孔板50-60ul/孔，冰上放置，摇床20min2、用勺子刮下细胞，并吸出液体至1.5ml离心管中（注意冰上操作）3、于4℃下12000rpm离心5min。
4、将离心后的上清分装转移倒1.5ml的离心管中放于-80℃保存。
（二）蛋白含量的测定1. 取1.2ml蛋白标准配制液加入到一管蛋白标准(30mg BSA)中，充分溶解后配制成25mg/ml的蛋白标准溶液。
配制后可立即使用，也可以-20℃长期保存。
2. 取适量25mg/ml蛋白标准，稀释至终浓度为0.5mg/ml。
例如取20μl 25mg/ml蛋白标准，加入980μl稀释液即可配制成0.5mg/ml蛋白标准。
蛋白样品在什么溶液中，标准品也宜用什么溶液稀释。
但是为了简便起见，也可以用0.9%NaCl或PBS稀释标准品。
稀释后的0.5mg/ml蛋白标准也可以-20℃长期保存。
3. 根据样品数量，按50体积BCA试剂A加1体积BCA试剂B(50:1)配制适量BCA工作液，充分混匀。
例如5mlBCA试剂A加100μlBCA试剂B，混匀，配制成5.1ml BCA工作液。
BCA工作液室温24小时内稳定。
4. 将标准品按0, 1, 2, 4, 8, 12, 16, 20μl加到96孔板的标准品孔中，加标准品稀释液补足到20μl。
5. 加适当体积样品到96孔板的样品孔中，加标准品稀释液到20μl。
6. 各孔加入200μl BCA工作液,37℃放置20-30分钟。
注:也可以室温放置2小时，或60℃放置30分钟。
BCA法测定蛋白浓度时，颜色会随着时间的延长不断加深。
并且显色反应会因温度升高而加快。
如果浓度较低，适合在较高温度孵育，或适当延长孵育时间。
7. 测定A562，540-595nm之间的波长也可接受。
根据标准曲线计算出样品的蛋白浓度（三） SDS－PAGE电泳1、清洗玻璃板，玻璃板对齐后放入夹中卡紧。
WesternBlot操作流程
Western Blot操作流程一、蛋白提取准备：1×PBS、吸管、冰盒、细胞裂解液、PMSF（蛋白酶抑制剂）、1.5ml和0.5mlEP管、双蒸水、滤纸、超声仪（用之前、之后及处理不同样本之间均需用双蒸水冲洗，将水用滤纸吸干）、加样枪（200ul和1000ul），Tip头、细胞刮子（使用前、后及不同样本之间，均需用双蒸水冲洗，用滤纸吸干）、封口膜、计时器步骤（所有操作均在冰上进行）1、4℃ 1×PBS洗涤细胞三次后，用力将其内水甩干，将培养瓶倒置于滤纸上，控干约10min。
2、加100ul细胞裂解液，尽可能铺满器皿。
（用加样枪均匀成Z字形走行加样、第一瓶完后即开始计时30min）3、冰上裂解30min(准备细胞刮子；准备EP管，并将其做好标记；准备离心机设置为4℃12000rpm 12min等其降温)4、将细胞刮入1.5ml EP管中（将产物刮至瓶底，用1000ul枪吸出），用手上离心机瞬时离心数秒。
5、用超声波破碎细胞、剪切DNA（超声时间<5S,超声间隔约6S，剪切DNA至溶液不粘稠为止，超声次数约为6~8次；将探头接触到EP管底部，但不要用力，不容易出气泡）6、用封口膜封口7、沸水浴5~10min一般8min（沸水浴时，用1000W火锅即可，不要盖锅盖）8、4℃ 12000rpm 离心 12min,取上清也，根据自己的蛋白用量分装，-20℃或-70℃冻存备用。
二、蛋白浓度测定准备：96孔板、75%酒精棉球、双蒸水（DW）、0.5mlEP管、37℃水浴箱、酶标仪（波长调至570nm）、加样枪、Tip头步骤：1、用酒精棉将96孔板所需孔擦干净，放入37℃温箱，待酒精挥发干净2、空白管加入25ulDW、样品管加入22.5ulDW+2.5ul待测蛋白3、将分析液按A:B=50:1的比例混合，涡旋混匀，瞬时离心4、在各EP管中加入200ul分析液，涡旋混匀，瞬时离心5、37℃水浴30min，使分析液与蛋白样品充分反应6、取100ul各样品加入96孔板中，用酶标仪测蛋白浓度7、所读数值为OD值，按试剂盒所测出的标准曲线计算样品的蛋白浓度（Cpro）8、计算如下项目：OD测、Cpro、Vpro、Mpro、V上样缓冲液（终用法为1×）、V总三、Western blot相关试剂的配制1、1×PBS 1000ml 2000mlNaCl 8.0g 16.0gKCl 0.2g 0.4gNa2HPO4.12H20 3.58g 7.16gKH2PO40.2g 0.4gdddH2O 1000ml 2000ml2、0.5mol/L EDTA(PH=8.0)DdH2O 800ml NaOH约EDTA-Na.2H2O 186.1g 20g 调节PH至8.0，定容至1000ml或称取EDTA 9.3g,加ddH2O 50ml,边搅拌边加NaOH固体（约1g）调PH值至8.03、细胞裂解液0.5mol/L EDTA(PH=8.0) 40ul10% SDS 4ml1mol/L Tris.HCl(PH=6.8) 1ml 混匀定容至20mlddH2O 14.96ml蛋白酶抑制剂（用之前加） 10ul4、30%丙烯酰胺（保存最好不超过两个月）丙烯酰胺（Arcylamide） 29g(神经毒性) 加热至补水至 N,N’-亚甲双丙烯酰胺（bis- Arcylamide） 1g 37℃溶解 100ml 于棕色瓶中保存于室温5、1.5mol/L Tris (PH=8.8) 100mlTris-base 18.15gddH2O 80ml 定容至 100ml浓HCl 约 3ml6、1mol/L Tris(PH=6.8) 100mlTris-base 12.1gddH2O 80ml 定容至 100ml浓HCl 约7~8ml7、10%SDS(w/v) 100ml定容至100ml,室温保存，长期保存或温度很低时若出现沉淀，水浴溶解后可再使用8、10%过硫酸铵（APS）现用现配APS 0.1 g 溶解混匀后4℃保存，ddH2O 1.0ml 保质期为2W左右9、分离胶配方：（不同浓度适用于不同分子量的蛋白），具体各浓度胶的分离范围和配方详见《分子克隆》。
蛋白质印迹(Western blotting)实验操作步骤
蛋白质印迹/Western blotting实验操作步骤一、总蛋白的提取单层贴壁细胞总蛋白的提取：1)吸除培养液2)每皿细胞加4℃预冷的 PBS。
平放轻轻摇动 1min 洗涤细胞，然后弃去洗液。
重复上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。
将PBS弃净后把培养瓶置于冰上。
（PBS会降低细胞裂解液的效价和总蛋白的浓度）3)加裂解液于冰上裂解 30 min，为使细胞充分裂解，培养瓶要经常来回摇动（可放置在4℃摇床裂解）。
4)裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快），然后用枪将细胞碎片和裂解液移至 1.5mL 离心管中。
（整个操作尽量在冰上进行）5)在EP管中将细胞震碎（10s/次，3次）6)于4℃下 12000rpm 离心 20-30 min。
（离心机提前预冷至4℃）7)将离心后的上清分装转移倒 1.5mL 的离心管中放于－20℃保存。
二、BCA法测蛋白浓度1)将BCA protein assay每孔 A液200μL,B液4μL混合，96孔板每孔加入22.5μLdd水，2.5μL蛋白提取液，200μLA+B混合液2)在烘箱中37℃，90r，孵育30min3)使用酶标仪测出吸光度后，使用公式y=0.9154x-0.118计算出蛋白浓度（浓度需要×10）4)将蛋白配成等浓度等体积（使用配置好的裂解液配），按照4：1加入5X loading buffer然后煮5min（100℃），放入-20℃保存三、SDS-PAGE电泳板子1.5mm，梳子1.5mm1）清洗玻璃板：一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。
两面都擦洗过后用自来水冲洗2）验漏：玻璃板对齐后放入夹中卡紧，然后垂直卡在架子上，加满水验漏3）灌胶：验漏结束后用纸吸干水分，按方法配制下层胶（4mL+4mL+80μLAP),灌胶时，可用 1mL 枪吸取胶沿玻璃放出，待胶面升到绿带中间线高度时即可。
然后胶上加1 mL水，液封后的胶凝的更快。
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W e s t e r n b l o t基本操作步骤
一、细胞蛋白的提取
弃去培养基，加入预冷的PBS洗一遍，加入的RIPA裂解液（含1mM PMSF(100×)，每10ml加蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂各一片，六孔板每孔150-250μl，60mm×15mm 培养皿300-400μl，），于冰上裂解约5分钟，裂解总液12000rpm离心10 min。
取上清，用BCA法测定蛋白浓度。
用于western blot的蛋白样品取一定量加4×loading buffer，10×reducing，再用裂解液补齐到所需上样体积。
离心，使蛋白沉底。
将EP管于沸水中煮5min，变性，之后再离心后准备上样。
二、BCA法测蛋白浓度操作步骤
将蛋白标准配制溶液溶解蛋白标准（BSA），配制成5mg/ml的蛋白标准溶液，10μl 分装，-20℃冷冻保存。
完全溶解蛋白标准品，取10μl用PBS稀释至100μl，使终浓度为0.5mg/ml。
据样品数量，按50体积BCA试剂A加1体积BCA试剂B(50:1)配制适量BCA工作液，充分混匀。
BCA工作液室温24小时内稳定。
将标准品按0, 1, 2, 4, 8, 12, 16, 20μl加到96孔板的标准品孔中，加稀释标准品的溶液补足到20μl。
加适当体积样品到96孔板的样品孔中（可以通过预实验摸索稀释倍数），加PBS 到20μl。
各孔加入100μl BCA工作液，37℃放置30分钟。
测定580nm条件下吸光度。
根据标准曲线计算出蛋白浓度。
三、Western blot基本操作步骤
1、溶液配制：
①Runnig Buffer(1×)：SDS Runnig Buffer（20×）50mL，加MiliQ水至1L；
②Transfer Buffer(1×): Transfer Buffer(10×)100mL,甲醇200mL（20%，v/v），加MiliQ水至1L；
③TBST缓冲液
1M Tris·HCl（pH7.6）：60.5g Tris-base，加入约30ml浓盐酸，调PH至7.6，加MiliQ 水至500ml。
TBS缓冲液（10×）：1M Tris·HCl 100ml+80g NaCl加MiliQ水1L
TBST缓冲液（1×）：TBS缓冲液（10×）100ml+0.5ml Tween-20（0.05%，v/v），加MiliQ水至1L。
④封闭液：5% BSA（5g/100ml，称取1g BSA至20ml TBST，充分混匀溶解）
2、样品准备与加样
①用4×SDS loading buffer, 10×reducing与蛋白质样品混合，并将此EP 管放在水浴锅中沸水煮5min，使蛋白质变性。
②将预制胶固定到电泳装置中，并在装置中加满Runnig Buffer(1×)，内槽加入0.5mL 抗氧化剂，小心拔下梳子；
③向上样孔中加入一定体积的蛋白样品（总蛋白量20μg以上）。
向marker孔中加入2.5μl marker（按照实验要求设定marker量），向空白孔中加入一定体积的加样缓冲液(loading buffer)。
注意采用相同（或相近）的上样体积，以保证蛋白的各带宽度相同。
防止体积较大的上样孔中的蛋白质将向相邻的泳道扩散。
3、电泳
将电泳装置与电源连接。
调节电压为100-200V，电泳50min，直至溴酚兰接近分离胶的底部，然后关闭电源并撤去连接的导线。
拆除电泳装置：先倒掉电泳缓冲液，连同槽一起将凝胶夹层取出，小心的撬起凝胶外层塑料板，使凝胶暴露出来，切去浓缩胶以及无蛋白样品的凝胶部分（将胶留在短的一面塑料板上）。
4、转膜（湿转）
①将转膜液（1× Transfer Buffer）放于大饭盒内，泡4片海绵，剪4片滤纸、1片PVDF 膜，PVDF膜于甲醇中活化30s，取出置于转膜液中；
②按照2层海绵+2层滤纸+胶+膜+2层滤纸+5层海绵（填满）的顺序组装转膜装置，注意组装此装置时一定要保证滤纸、膜、凝胶精确对齐并不留气泡；
③将组装好的装置放入电转槽，合上盖子，电转槽置于冰浴，接通电源，调节电压为15V，时间为16~18h（或恒流300mA, 3h）。
显示红灯亮后，按下Start后，开始转膜。
转膜方向为蛋白从负极（黑色）转向正极（红色）。
5、免疫印迹反应及化学发光检测
转膜完毕后，根据目的蛋白分子量将膜剪成不同的条带，用封闭液（5% BSA）室温封闭2h。
弃封闭液，加入用新的封闭液稀释的一抗（可回收），室温2h或4℃过夜。
用TBST清洗 3 次，10min/次。
二抗（可回收）室温孵育1小时，室温1xTBST 洗涤3次，每次约10 min。
此步开始避光操作：将膜浸入化学发光底物工作液（A液：B液=1:1，终体积0.5-1ml 即可）中，显色2分钟，放入BIO-RAD凝胶成像系统中显影。
内参分子量：β-actin：42 kDa
GAPDH：36 kDa
Tubulin: 51kDa。