原代神经细胞培养方法精编版

合集下载

原代神经元培养

原代神经元培养

神经细胞原代培养从动物(大鼠或小鼠等)的胚胎或新生动物的脑组织取下某一局部区域,分离细胞,培养在培养容器后不再移植,常称为原代神经细胞培养。

一、培养前准备1. 器械和器皿器械:外科剪、镊子、虹膜剪等、小剪刀、细镊子和虹膜小刀等各种金属器械如解剖器械,使用后及时刷洗干净,用酒精棉球擦拭后晾干,或经60℃烘干,以防生锈。

由于湿热消毒对手术器械容易可用70-80%酒精浸泡1小时以上消毒。

器皿:1)玻璃瓶及相应的胶塞或胶木螺旋盖,2)用于分装血清、多聚赖氨酸、解剖液、各种盐溶液和培养液等。

3)培养瓶、盖玻片4)培养用的盖玻片必须不含铅、不发霉,可用0.2N盐酸浸泡10分钟,用蒸馏水洗2次,每次10分钟,然后移入丙酮或乙醇浸泡10分钟,再用双蒸水洗2次,每次10分钟,烘干待消毒。

凡组织学用过的旧盖玻片一般不用。

5)移液管、吸管、烧杯、离心管和培养皿。

6)塑料培养皿(35mm)、塑料培养板(6、24、96孔)。

辅助工具:放置试管、吸管和玻璃瓶等的架子。

2. 培养基和培养用液的配制1) 培养基质:有多聚赖氨酸、牛皮胶原和鼠尾胶原。

本室目前常用分子量为7-140000多聚赖氨酸(Poly-L-lysine,浓度为0.1mg/ml。

2) 平衡盐溶液:主要以无机盐和葡萄糖配制而成。

各种平衡盐溶液主要的不同点在于NaCl的浓度、离子浓度及缓冲系统的不同,可根据实际需要选用适当的平衡盐溶液。

3) 培养液:目前已有现成的干粉出售,按说明书进行配制即可。

神经细胞培养需高糖,培养液应含有或加葡萄糖至6g/L。

目前培养海马神经元可选用B27无血清培养液。

4) 血清:有胎牛血清、小牛血清和马血清等。

分装成小瓶,4℃保存备用(分装前需56℃灭活30分钟)。

5) 胰蛋白酶溶液:用于分离细胞。

先用少量灭菌三蒸水将胰蛋白酶粉末溶成糊状,然后补水至2.5%浓度,振荡摇匀,4℃过夜,待完全溶解后用滤器过滤灭菌,并分装成1-2ml冻存。

用前以D-Hanks平衡盐水或其他无钙镁离子溶液溶解稀释至0.25%或0.125%。

神经元原代培养

神经元原代培养

神经元原代培养Document serial number【KKGB-LBS98YT-BS8CB-BSUT-BST108】神经元原代培养一、准备1. 试剂1)胎牛血清灭活:血清室温自然融解,摇匀。

选用与血清瓶同规格的对照瓶一个,并加入与血清等体积的水。

对照瓶内插入1~2支温度计(保证测试温度的准确性)。

将血清瓶与对照瓶同时放入恒温水浴箱,待温度计所示温度上升至56℃时,定时30分钟。

灭活后分装,10ml/瓶,一瓶放在培养箱做无菌实验,其余-20~-70℃保存。

2)D-Hank’s液(g/L):NaCl: 8, KCl: 0.4, KH2PO4: 0.06, Na2HPO42H2O:0.06, NaHCO3: 0.35; 酚红: 0.02,超纯水溶解,调节PH至7.2,高压灭菌(购自南方医院临床试验中心)。

3)多聚赖氨酸:避光,用超纯水配制好后过滤,200μl或400μl/tube分装, -20度储存。

母液浓度为5mg/ml,工作液浓度为0.1mg/ml(购自Sigma,P2636,100mg)。

配置方法:20ml超纯水溶解,分装为1ml/管。

用时加入49ml超纯水稀释为0.1mg/ml的工作液。

4)50mM谷氨酸:超纯水溶解,滤过除菌,分装50μl/tube,-20℃保存。

使用时需将终浓度调整为25μM(购自Sigma,G8415,100g,分子量:147.13)。

配制方法:电子天平称量谷氨酸1.4713g,即0.01mol=10mmol,溶于200ml超纯水中,配制为50mM的谷氨酸母液。

例:500ml的Neurobasal Medium中加入Glutamate母液(50mM)250μl,此时终浓度约为25μM。

5)胰蛋白酶:0.25%(购自Hyclone,SH30042.01,100ml)。

6)阿糖胞苷(AraC)母液: 10mM,(阿糖胞苷,1:1000稀释用)(购自Sigma,C1768,100mg,分子量:243.22);配制方法:100mg/243.22≈0.41mM,加入41ml超纯水溶解,配制成10mM的AraC母液。

ScienCell 原代细胞培养方法

ScienCell 原代细胞培养方法

ScienCell原代细胞培养方法2018.06.01原代细胞在复苏和传代前一定要包被培养瓶,以促进细胞贴壁。

以人脐静脉内皮细胞(sciencell,货号#8000)为例:1.培养瓶包被包被液纤维粘连蛋白(sciencell,货号#8248)以1-2ug/cm2的浓度包被培养瓶。

可将1mg/ml的纤维粘连蛋白不含钙镁离子的磷酸盐缓冲液(sciencell,货号#0303)稀释100倍,T-75培养瓶中加入10ml左右,37度孵箱1小时或4度冰箱过夜,并用灭菌双蒸水洗涤培养瓶2遍(此步骤非常重要,必须清洗2遍),包被好的培养瓶不要放置超过24小时。

2.配制培养基以ECM培养基为例把胎牛血清(sciencell,货号#0025)、生长因子(sciencell,货号#1052)和双抗(sciencell,货号#0503)加入培养液中,混匀后的完全培养基于4度保存,应尽快使用。

可分装以延长效期。

3.细胞复苏在培养瓶中加入配制好的ECM培养基10ml(推荐复苏至T75培养瓶,如T25瓶子加5ml)从液氮中取出冻存原代细胞,37度水浴冻融,冻融过程中可以轻轻转动细胞,加快冻融速度(注意原代细胞复苏时一定不要离心),将融化的细胞放入已加入培养基的培养瓶中,再用1ml培养基洗涤细胞冻存管,保证原代细胞都被加入培养瓶中,然后静置于孵箱,12-16小时后更换培养基以除去DMSO。

4.原代细胞传代细胞生长至70-80%左右可以传代,传代比例1:2或1:3为佳。

首先弃去培养基,PBS或D-Hank’s液洗涤培养瓶2遍,加入适量0.25%Trypsin-EDTA,37度孵育,轻拍培养瓶侧面,显微镜下观察原代细胞消化情况。

细胞消化好后,加入适量的胰酶中和液以中和胰酶,然后将原代细胞和培养基转移至离心管中,1000rpm离心5分钟。

然后弃去上清液,以1-2ml培养基重新悬浮原代细胞,加入包被好的已加入培养基的培养瓶中。

根据原代细胞生长情况,大概每2天更换培养基。

神经元原代培养方法

神经元原代培养方法

神经元原代培养方法
从孕17-18天的雌鼠的胎儿分离神经元细胞。

孕雌鼠麻醉然后解剖,胎
儿收集到HBSS-1中然后快速断头。

剥离脑膜和白质后,大脑皮质收集
入 HBSS-2 液中机械磨碎。

皮质碎片移到有0.025%胰酶的HBSS-2液中3 7°C消化15分钟。

胰酶消化后,细胞用含有10%胎牛血清的HBSS-2液冲
洗两次,用神经基础培养液重悬细胞(培养液添加了0.5mM左旋-谷氨
酰胺,25μM左旋-谷氨酸,2%B27和0.12mg/mL庆大霉素)。

以1×105c
ell/cm2接种到事先用多聚赖氨酸包被的培养皿上,放到37°C,5%CO2
湿温培养箱里进行培养。

每3天用吸管换液,一次换0.5mL。

体外培养8
天细胞就能用于实验。

选用17-18天的胎鼠能够提高神经元培养的效率,因为与乳鼠相比胚胎
组织的细胞连接还很少。

因此,用乳鼠会使神经元的分离更加困难,
会造成细胞连接不可逆的损伤,细胞之间的共同的轴突和树突更容易
发生损伤。

另外,用出生后1天内的大鼠皮质培养容易有胶质细胞污染,而用胎鼠则可以避免这种情况。

如果用的是乳鼠,一般是在培养36个
小时后加入阿糖胞苷,抑制胶质细胞生长。

另外,如果把分化的影响看成是考虑的重要因素,可以用培养4天的、
8天的、18天的细胞。

其中一个例子可以是观察毒性物质对小孩和成年
的不同效应。

世界上最完善最详细的神经元原代培养完全黄金版

世界上最完善最详细的神经元原代培养完全黄金版

世界上最完善最详细的神经元原代培养完全黄金版精华序言:国内外关于原代培养有很多文献;不幸的是;没有一篇是详细的;没有一篇解答过why.为了让大家少走弯路;根据我杀过3000只老鼠的经验;我把我这几年摸索的经验和大家分享;请求多投几票得几个叮当..相信你follow我的这篇文章一定会做的很好..我的标题说的很像吹牛;但是我是严肃认真的说的;I earn it.note:这篇文章全是我个人的经验;99..9%原创;经过无数失败的到的最完美的原代神经元培养法;除了最后那一副图是来自下面第2行那篇文献;所以我才说是99.9%原创..1.材料选择..一定要严格按照国际上;NCBI数据库;其他文献的材料一致..胎鼠就要胎鼠;新生鼠就要新生鼠;不能混淆..因为新生鼠有一些受体;在培养的工作中失去功能;会不能再生;比如NMDA受体..和文献不同会导致错误结论;甚至困惑..很多人写信问我新生鼠的培养问题;我回答用新生鼠的实验很少;八成是你自己搞错了实验对象;请确认国际上的相关研究文献所用老鼠;再来问我下面的问题..2;培养基选择neurbasal/neurobasal-a;invitrogen Co.ltd..我强烈不建议用血清培养..原因是:首先;血清刺激胶质细胞和杂细胞分裂;最后非常影响神经元产量;其次;为了抑制胶质生长;往往要加入阿糖孢苷..严重的毒性会影响许多灵敏实验;再次;最重要的;血清培养的细胞状态很不均一;从正常到凋亡都有;严重影响试验准确;而无血清专用培养基所有的正常细胞都处于一样的状态;要么都好;要么都差;高度一致..Invitrogen/GIBCO 无血清培养基neurobasalneurbasal-A被认为是最标准;最好的培养基..需要的添加剂为B27和谷氨酰胺..培养出的细胞状态均一;胶质细胞几乎不分裂..其中;neurobasal是胎鼠培养基;而-A为新生鼠培养基..不过根据笔者实验;没什么太大区别;都能很轻松培养成功;但是;切忌中途换培养基;要从一而终..很多实验室是不加抗生素的;也有的实验室加..由于很多初学者操作不熟练;不注意;很多人会污染;所以我还是建议加双抗..注意由于无血清培养基添加剂不是血清;而是人工合成的B27也有用N2的;但是推荐B27;只差10美金;血清有复杂的解毒作用而B27没有;双抗对细胞的干扰;无血清培养基要大的多..所以;如果你在neurobasal里添加抗生素;记得用量只要标准量的一半..另一个添加成分谷氨酰胺溶液不稳定;所以每次用时候要现配现加..大概是0.5-2mmol/l大部分人用0.5mmol/l.虽然笔者试过;没加这个也正常生长;但是几乎所有文献都添加;we just simply follow.3.解剖过程一定要全程在冰上预冷..这就意味着;从你处死母鼠后;胎鼠的大脑的温度要最快的降低到0度..另外;在解剖过程中;胎鼠直到皮层或海马被剪碎的过程;有时候可能需要2小时;如果样品多..一定要注意多准备冰袋子..确保你的任何过程都在冰浴的培养液中进行消化步骤除外..这样可以大大提高存活率..在解剖大脑时候;有人用hank's;在其中解剖..根据我的经验;即使是0度;神经元还是在进行着很大程度代谢..所以;hanks的无糖环境很不利..我个人建议;用DMEM-高糖或DMEM-F12+马血清来浸泡解剖过程中的大脑;来供给大脑的代谢;血清可以抑制神经凋亡..这其中还有一个问题;就是DMEM培养液会在空气中变碱性..国外有的实验室用L-15培养液来浸泡解剖过程中的脑;因为L-15不会再空气中变碱性..没有L-15的国内几乎没有;可以全程用DMEM-HG或者DMEM-F12+血清浸泡解剖过程中的脑..注意注意:一切操作都在冰浴的液体中;所以要多准备冰袋..中途冰袋没了的是猪头4.关于培养皿的问题..一般来说;6孔板是最佳选择..神经元让人苦恼的问题是;神经元发育的情况和密度相关..大于6孔板比如6CM DISH会使得中间很难和周围的细胞密度一样;造成板中间和边缘成熟度不一样;而这会给实验带来很大干扰..而太小的话96孔或128孔细胞会倾向于向中间集中也会照成发育不均匀..所以笔者经验是6孔板是最佳选择..神经原代培养一定是要包被;用POLY-LYS或者胶原..关于POLY-LYS包被;我们是包被30分钟;吸干晾过夜;然后洗两次;或者只洗一次但是要30分钟接着晾干..由于neurobasal培养法相当成熟;所以没必要用难固定的胶原..5.处死母鼠并把胎鼠解剖时候;一定要注意母鼠状态;是否有死胎;胎儿胎盘是不是正常;有多少胎;母鼠是多少天的一般是E16-E18这些信息也要严格记录..处死孕鼠后;要立即取出子宫放入冰冷培养液中..注意孕鼠处死后要短暂的浸泡酒精消毒;防止污染..一般来说;冰袋笔者选择一面蓝一面白的..蓝的朝上;可以很清晰看到海马结构..而去除血管膜的时候;白的那面朝上;这样可以很清楚看到血管膜..从处死老鼠到大脑被剥离出这段是人就会做;我就不多说了..不过有一点要注意;不管你是用皮层还是海马;不要取一个分离一个;而是要快速把所有胎鼠大脑都迅速取出放到冰预冷的培养液中..我建议胎鼠取出来的时候胎鼠就放在冰冷的缓冲液中..就是说;处死后要迅速把大脑的温度降到0.6:最影响原代培养的成败因素之一:这小段请大家一定注意看..无论皮层还是海马;上面都是有一层血管膜..注意:一定要尽可能的去掉所有的血管和血管膜..可以用解剖显微镜..胎鼠很好剥离;而新生鼠则比较难..这里千万不能粗心大意血管膜没剥离干净的后果是:1 吹打时候很难吹打下来神经元;被迫多次吹打;造成神经元大量死亡;2 血管膜一部分细胞会混入原代培养中;这些细胞往往会分裂;导致你的培养成果根本不能用..可以说;剥离的不好不干净;实验就是失败的;不可能得到高质量的神经元..注意的事情二:如果是要的是皮层的神经元原代培养;而皮层的细胞很多;切忌不要放太多皮层消化吹打过多的细胞反而会导致神经元大量死亡..另外;请仔细注意文献中要的是皮层哪一部位..没有详细要求的话一般是取顶端..从大脑到单个海马的剥离我不细说了..我现在以海马神经元为例..在所有海马都成功剥离后;请仔细的去除血管膜;原因上面说过..最后;请再仔细检查一下是不是都去掉了..确认后;海马片段被移入一个小烧杯里;加少量培养液;用剪刀剪成0.5-1立方毫米的小块;放置冰上准备消化;7:实验成败的关键之二:消化..一般来说;我看很多人都用0.125%的胰酶消化..实话说;胰酶消化非常的难以掌握速度;而且消化效果真的是--很烂稍微不注意;就会消化过头;细胞都消化光了..而胰酶消化的快;还会出现细胞快速破裂释放出DNA;和其他蛋白缠结成絮状包裹在组织块外面;使得块里面的不到应有的消化..所以我个人不推荐胰酶..想做一个完美成功的消化;我强烈推荐木瓜酶+DNA酶..木瓜酶是消化过后;存活率最高的酶见附图..笔者是配成2mg/ml的木瓜酶..另外要用的是DNA 酶..DNA酶的作用是;消化掉破裂细胞的DNA;避免了释放的DNA和蛋白缠结在组织块表面而阻碍进一步消化..DNA酶由于各个公司的活性不一样;很难有标准浓度;需要摸条件;不过不是很严格;只要能防止DNA缠结就好..木瓜酶的特点是不会消化过头;非常温和..缺点是一定要现配请直接用无血清的培养液配来保证神经元的营养代谢;而且一定要现用现配..消化的技巧:消化时候;很多人有不良习惯;喜欢用个50ml试管装着所有东西..结果是组织都沉底;下面消化不足;上面消化的没细胞..笔者的技巧是;用一个6或10CM 培养皿来消化..这样消化液在培养皿里形成浅而广阔的一层;均匀分布着组织块;从而彻底解决了上述问题..消化酶是2mg/ml木瓜蛋白酶+适量DNA酶..木瓜蛋白酶很便宜请放心..消化过程是20-30分钟..由于木瓜蛋白酶温和;因此不会消化过头;使得你的实验消化的很稳定..消化时候请在37度温箱里;每5分钟稍微摇动一下..注意:1木瓜酶不要用巯基化合物激活;激活后消化好很多但是成活率坏很多;2尽量用不含血清的培养液来配置木瓜酶而不是用hanks;使得神经元保持营养;3木瓜酶一定要现用现配..再次重申:除了消化过程中要37度;其余任何时刻都是要浸泡在0度冰浴的液体中..消化过后可以用1ml血清终止反应我是用马血清;便宜;但是切忌不要用国产血清;污染几率很大..把消化用的培养皿放在冰上冷却;然后垫高一面使得液体集中在另外一面便于吹打..整个体系静止2-3分钟;然后仔细的去掉上层的液体;保留消化过的组织块8.实验成败最关键最关键的:吹打..笔者经验是;没有必要用巴斯德管..对于胎鼠和10天之内的新生鼠;一般的1ml蓝枪头就可以达到满意的效果..在一边被垫高的皿里面;加入1-1.5ml新鲜培养基和少量DNA酶;吹打10次..吹打时候要注意;切忌过快;要缓慢吹打..吸入时候要很缓慢;吹出的时候可以略快;但是也要缓慢..轻柔吹打是细胞成活关键要用进口枪头;国产的有时候会过细..我们采用的是最合理的分步吹打法..每个10次吹打过后;静止2分钟..这时候游离的单细胞在上面;而团块会沉到下面去..上面的那层就是你要的单个悬浮细胞;把它们挪到指定容器里一样要冷在冰上..下面沉淀下去的细胞团块不要丢弃;再加1-1.5ml新鲜培养液;重复刚才的步骤;轻柔吹打;再静止2分钟;转移上层的单细胞到刚才指定容器里;一共这样分步吹打3次..3次之后如果还有团块在下面;请果断丢弃..造成这个的原因就是刚才的血管膜没剥好..这个分步吹打的过程保证了每一个单细胞都避免了过度吹打;而分布吹打又保证了尽可能多的收获单细胞..重申一下;为了保证最大程度收获活细胞;每次吹打之前;可以加入少量DNA酶..这招可以更容易收获大量高质量细胞;尤其是实验材料不足时候..消化和吹打非常忌讳操作的细胞过多;这样反而会使大量细胞死亡..实验者如果是用的皮层这种原材料充足的话;切忌不要放入过多皮层..9可选可不选;但是我建议全选神经元进一步纯化.. 一般来说;收获的细胞悬液已经是很纯的神经细胞了..但是;由于实验者等个人或者客观原因;血管膜可能不会被完全剥离;杂细胞可能也被吹入了细胞悬液;操作者手法不熟练;造成死细胞过多;影响种板等等原因;还是会影响到培养的神经元的质量..为了克服这些;笔者查了一些文献;经过反复测试采用了nycoprep低转速密度-梯度离心..现在这个梯度溶液已经被公司升级为optiprep.稀释时候;NycoPrep 1.077 推荐稀释成 60%;就用刚才悬浮细胞的培养液来配置..注意:1.077被广泛应用于血液中分离血细胞;如果你拿到的nycoprepoptiprep不是1.077;那么请换算一下稀释度值得注意的是;皮层和海马可能需要的稀释度稍微有不同..一般来说;一个10ml梯度离心管中;2-4ml稀释过的梯度液体就够用;取决于你收获的细胞量多少..把你收获的细胞悬液小心的加到稀释好的梯度剂的上面一层;经过1500转不是15000请注意5-8分钟;神经元被高度压缩到梯度面和上面的培养液分界面那一层..而最下面的梯度剂下的沉淀则是细胞团块;血细胞;杂细胞;以及部分小胶质细胞..而最上层最浮头;则是细胞碎片..这样;你就得到了最大限度去除了杂细胞;和细胞碎片;并去掉了一定的胶质细胞的最干净最纯粹的神经元..如果实验者技术精湛;也可以不用这步;但是用这步会效果更好..注意:母液稀释到60%只是参考;具体实验室不同可能略微有差别;要摸条件而不是死记硬背..另外皮层和海马浓度也稍微有差别..有些文献曾经报道;在梯度一定的情况下;一些特定梯度可以分开神经元和少突和其他胶质细胞;但是笔者从来没成功过..10.种板..这一步没有那么非常重要;但是如果没认真弄;浓度的不均一也会使得整个实验失败..记住的是;神经元原代培养是细节决定成败;任何一个环节没处理好;整个实验都会失败..种板密度过低是非常有害的..首先;神经元互相接触的几率小;难以存活和成熟..其次;胶质细胞会大量分裂;导致神经元变得更少;从而得到失败的实验..密度过高也是很有害的..由于营养争抢;密度过高有可能导致局部细胞营养枯竭死亡..另外;高密度会导致细胞聚团;结果也是细胞不正常形态或者死亡;导致错误或失败的实验结果..笔者的经验是6孔板每一个孔要有7×100000 个正好如果是台酚蓝染色只记录活细胞;那么酌情减少密度..注意;注意由于神经元的成熟速度和接种密度有很大关系;所以细胞计数一定要非常严肃认真一定要所有格子都看如果发现计数板细胞不均匀;宁愿重新计数由于接触抑制现象;适当密度的神经元可以抑制胶质细胞生长;从而达到理想的实验由于neurbasal培养液相当昂贵;所以种板时候是不用它的;而第一次换液才用..一般种板时候我们用的是DMEM-HG或者DMEM-F12 +10%马血清..注意一定要进口的..国产杂质很多会导致莫名其妙的细胞死亡..马血清会抑制神经元凋亡并且抑制胶质细胞生长FBS也可以;但是太贵种板注意事项一:种板时候的溶液推荐使用含有谷氨酸的培养液..神经元的NMDA等谷氨酸毒受体一般3天后才会出现..所以种板时候有谷氨酸不会导致细胞毒性反应..而这时候的谷氨酸反而是有利条件;可以促使神经元贴壁;从而提高存活率..注意事项二严格注意种板后都是要摇晃板摇匀细胞;切记千万不能圈圈摇晃圈圈摇晃会导致神经元都集中到培养板的孔中间;导致浓度不均;生长不均匀;会直接导致实验失败..正确的摇法是左右平行翻转角度;然后前后平行翻转角度;千万不要让里面液体画圈注意事项三严格注意种板后过过一定时间要换成正常标准培养神经元的neurobasal+b27+谷氨酰胺的无血清培养液..很多paper是1小时就换液;理由是胶质细胞贴壁差;会除去..但是笔者的经验来看;这是极端错误的1小时换液;神经元还没有完全贴壁;这时候换液会吹下很多神经元;流到孔另外一侧再贴壁;直接照成一个孔内细胞分布不均匀;从而成熟的不均匀..严格来说这种事情直接实验失败..笔者的经验是种板4-6小时换液;但是千万不能超过12小时..原因是:超过12小时;混在细胞悬液中的大量细胞碎片也会牢牢贴壁;而细胞碎片直接影响神经元存活和正常代谢;另外12小时后;胶质细胞会开始分裂;这时候就很难抑制了..笔者推荐是4小时;但是别超过8小时..注意事项四:4小时后换液时;请轻轻摇晃板几下再换..原因:细胞碎片贴壁很慢而且不牢固;这时候的摇晃可以最大程度去掉细胞碎片..然后;注意:细胞请再用没有加血清的;种板时候用的培养液清洗一次;也是要轻微摇晃;来进一步去除细胞碎片;从而得到良好的细胞生长环境..有条件也可以洗两次;但是笔者觉得一次足够..洗了之后吸干液体;换成neurbasal+B27+谷氨酰胺的神经元专用无血清培养基..对于原代培养;是细节决定成败;一个地方不够好会满盘皆输;所以请严肃对待..德国队的fans于凌晨×××××××××ugly分界线××××××××××××下面是对版面一些犯错误的研究方法中最严重的错误之一的提醒;请大家注意;我把回帖编辑到这里了..enjoy.刚回答了一系列形形色色的问题;我把这个问题挑明了说..如果您不相信 neurobasal最好的而还是坚持用DMEM之类的培养液;麻烦检查一下你们的DMEM或者MEM或者DMEM-F12的invitrogen产品序列号;到网站上检查下相应的组成公式..很多这种培养液都是含有谷氨酸;而且是mmol级的..成熟的神经元10um的谷氨酸即可照成细胞凋亡;而谷氨酸受体4-6天就开始表达;如果胎鼠神经元经历了mmol浓度的培养液中的谷氨酸还不被毒死;那就是怪事了..新生鼠不受这个限制;新生鼠原代培养没有有功能的 NMDA受体;×××××××××××ugly 分界线××××××××最雷到我的;是板上有人用材料非常混乱;一会用胎鼠;一会用新生鼠;一会成年鼠的你们这叫对自己不负责任 we do all cases seriously 而不是凭借肉眼观察和猜测..做原代培养的;首先就是收集大量背景文献;看看你的相关要求的国际公认的做法是用哪种..胎鼠和新生鼠虽然形状一样;但是神经元的功能一点都不一样;表达受体都不一样.. 大部分实验都是用胎鼠;而新生鼠往往用来培养测一些LTD之类的not quite sure;文献太少;所以有人问我新生鼠的问题;我都是说你先看下背景文献是不是你搞错了..而成年鼠是另外的培养方法;要求更小心仔细和特别的处理..硬套胎鼠的原代培养必然导致失败..另外;在一些药物保护实验中;不要以为NGF就一定对神经有很大作用;笔者的经验是;想要细胞存活;FGF2是最佳选择但是;FGF2会导致细胞变化很大;所以还是别用在原代培养中;不过成年鼠培养一定要用FGF2..对于一些雷到我的;我只能再次说;请收集足够的背景文章在去选择合适材料;please do it carefully and seriously祝大家都能培养出健康漂亮的神经元;欢迎大家来问问题如果是美女的话;给个电话我会很开心声明;除了最后一幅图是来自别的文献;前面所有的经验都是我的原创;从无数失败总结出的我认为最完美的神经原代培养..最后提醒大家注意:nycoprepoptiprep可能有很多浓度;但是NycoPrep 1.077 以前是最常用的;笔者默认的就是用这个溶液配置的密度梯度..如果您买到的不是这个密度;请换算一下..笔者当时只有NycoPrep 1.077在中国能买到;现在可能会有更多浓度供选择;请大家注意换算..。

小鼠背根神经节神经细胞的原代培养新方法

小鼠背根神经节神经细胞的原代培养新方法

小鼠背根神经节神经细胞的原代培养新方法小鼠背根神经节神经细胞原代培养是神经学研究、药物筛选及细胞病理学研究中必不可少的一环。

本文将介绍一种新的小鼠背根神经节神经细胞原代培养方法的步骤及注意事项。

步骤1: 动物处理。

用取出小鼠的背根神经节放入无菌的PBS缓冲液中搅拌7-8分钟,使神经节中的细胞离体,并通过多次离心来去除PBS缓冲液。

步骤2: 细胞悬浮。

将含有神经细胞的细胞悬液用1mL冰冷的PBS缓冲液洗涤2次。

再用1mL冰冷的70%酒精进行紧密覆盖,静置5分钟。

再用PBS缓冲液洗涤5次,最后用DMEM/F-12添加10%胎牛血清(FBS)调整至适当浓度。

步骤3: 细胞培养。

将细胞悬液转移到含有0.1%聚赖氨酸的DMEM/F-12培养基中,距离表面1cm左右,进行孵育24-48小时。

孵育室应控制在37℃的恒温条件下,同时CO2含量应设定在5%。

步骤4: 原代细胞出现。

24-48小时后,可见到原代神经细胞在培养皿中生长,而其他非神经细胞则无法生长。

这是因为神经元比其他细胞易受到聚赖氨酸的作用,从而对组织细胞进行筛选。

步骤5: 细胞传代。

当原代细胞数量足够时,可进行细胞传代。

将同等的DMEM/F-12培养基中加入0.5%胰酶,将原代细胞取下进行培养。

注意事项:1.处理过程中必须保持无菌,防止微生物污染。

2.神经节处理过程中的时间要注意,过久会导致细胞死亡,过短则分离不完整。

3.使用的培养基及化学试剂要质量优良。

4.培养条件要严格控制,CO2含量及温度要保持恒定。

本文介绍的方法较为简单易行,对于初学者或初学者也容易了解。

但细胞培养中实验操作需要非常谨慎,为保证实验的准确性和有效性,一定要保证实验过程中的无菌、温度、CO2含量和实验技术的高效性。

原代细胞培养步骤

原代细胞培养步骤

原代培养(primary culture),准备工作:A玻璃用品清洁,灭局步骤:1,洗涤剂正常洗刷干净2,放入托盘中,200度烤1-2h(烘干)3,泡酸(过夜),吸管捆好,做好记录4,捞酸,冲洗干净(注意安全)5,放入托盘中,200度烤1-2h(烘干)6,包瓶,吸管用棉花塞好,报纸包好,烧杯和配液的瓶子,瓶口内层用硫酸纸,外层用牛皮纸,包好,用线系好7,放入托盘中,200度烤2h(灭菌)8,收集放好B塑料,瓶盖,胶塞清洁处理步骤1,用洗涤剂正常刷洗干净2,晾干,放入酸中,过夜(胶塞除外)3,次日捞出,冲洗干净,过三水(蒸馏水,三蒸水,去离子水)4,放入饭盒中,高压锅,烘干箱,烘干C器械盒(3把剪刀,2把镊子,2个烧杯,2个滤网,2个培养皿)1,洗涤剂冲洗干净2,过三水3,放入饭盒中压,烘干乳鼠心肌原代培养过程:A准备工作:1,剪封口膜(3-4个长的;鼠的只数x2+2的短封口膜)2,器械:平镊,弯镊,剪刀(3把),筛网3,离心管,吸管,平皿1对,50ml烧杯1个,冰袋4,DMEM,DMEM+10%FBS 胰酶(不含EDTA—除去细胞互相粘着所依赖的Ca2+,再经机械轻度振荡,使之成为单细胞。

)B步骤(一)准备1,将所需的离心管放在试管架上(PS:大概一只心脏一只离心管;多准备3个--2个消化细胞用,一个放混匀用的吸管用)2,点燃酒精灯,依次将吸管打开,加上胶头,并标明吸何种液体,以免操作中混淆(PS:2个吸管--胰酶和混匀用;一个移液管--移取培养液用)3,打开试剂,将其盖,放在远离操作的空间尽量往里4,打开器械,按顺序依次摆放(2把剪刀;一把弯镊)5,用酒精擦试冰袋,打开平皿,并将平皿过火,将平皿放在冰袋上,在每个平皿里加入DMEM(无血清)(二)取乳鼠心脏1,戴无菌手套,将小鼠浸入酒精中消毒,捏抓小鼠背部皮肤,用1st剪刀剪掉头部,然后剪开皮肤,在用2nd剪刀,剪开胸骨(靠左侧点)用镊子夹取心脏,放入DMEM平皿中,注意镊子不要碰到别处。

原代神经细胞培养

原代神经细胞培养

原代神经细胞培养新生鼠神经元细胞的培养准备工作:1、解剖器械一套(实验室有专门用于细胞间取材用的成套器械),需提前一天灭菌,过夜烤干。

2、试剂、溶液:Neuralbasal培养基(2mM glutamine);D-PBS缓冲液;0.25%trypsin/0.02%EDTA消化液;0.05%poly-lysin。

3、包被玻片:干烤灭菌12 x 12mm2玻片,12孔板。

包被过程:0.05%poly-lysin滴于置培养板中的盖玻片上(注意勿溢出玻片),37℃放置12hr后纯水洗3遍,晾干。

4、操作中所用枪头均用剪刀剪去枪头尖,然后在酒精灯上迅速过一下抛光。

取材:1、从-200C取出三个冰袋,预冷若干皿D-PBS,一大皿用于冷却剥出的脑子,另外的35mm的皿用于冷却分离出的脑组织,如:海马,皮层,下丘脑等,分离几个部位就预冷几小皿D-PBS,小皿盖子上做好标记,第三个冰袋上放一皿盖,上面放灭过菌的滤纸,用于剥离脑子的操作。

2、取1-3天鼠,75%酒精浸泡片刻后,用大剪子断头处死。

3、弯头眼科剪剪开颅骨,取出完整脑至盛有预冷D-PBS的培养皿中,在体式镜下分离相应部位的组织,分别放在相应的皿中。

4、将组织块用弯头眼科剪剪碎,每小块约2mm3左右,用枪移入5mlEP中,稍为沉淀1分钟,吸弃上清,加入0.25%trypsin/0.02%EDTA,37℃消化10-15分钟左右,期间每3分钟颠倒几下。

注:每四个海马用胰酶1ml,每个皮层用胰酶2ml。

5、消化完毕,每毫升胰酶加入100ul血清以终止胰酶,颠倒混匀;1000rpm,4分钟,离心沉淀。

6、吸弃上清,注意不要将组织吸出。

7、加入37℃预热的1-2ml DMEM/10%FBS,用枪头吹打20下左右,此时液体浑浊,组织块明显变小。

8、放置沉淀3分钟左右,可见组织块沉底,吸取上清,其中包含所要的细胞。

9、计数,将细胞密度调整至2-4 x 10 5 /ml后接种于预先用poly-lysine包被过的盖玻片或皿上,100ul每玻片(12 x 12mm玻片)。

神经胶质细胞的原代培养

神经胶质细胞的原代培养

星形胶质细胞和小胶质细胞的原代培养
1、取新生24h内的C57BL/6J乳鼠,在超净工作台中用75%乙醇浸泡3~5min消毒,断头,无菌条件下用眼科剪小心剪开头骨,取两侧大脑,体视镜下剥除脑膜,取出大脑皮质置于盛有HBSS液的无菌培养皿内。

2、用预冷的HBSS液漂洗2次,剪碎大脑皮质制成糜状,以0.25%的胰酶液,1:4与不完全培养基混合,37℃消化15min,并用含有10%胎牛血清的DMEM/F12-K完全培养基终止消化,轻轻吹打。

3、800g离心5min,弃上清。

4、用DMEM/F12完全培养基制成单细胞悬液,以70目滤网过滤,吸取细胞悬液接种至预先已包被多聚赖氨酸的细胞培养瓶内,置37℃、5%CO2培养箱中培养。

0.5h后将培养基移至已包被多聚赖氨酸的细胞培养瓶内继续培养。

5、24h后轻柔换液。

以后每隔2~3d换一次培养液,且每次换液前用HBSS 液剧烈振荡洗涤2次,并在倒置显微镜下观察细胞生长情况。

6、7至8天后,当星形胶质细胞汇合并且覆盖的小胶质细胞暴露在星形胶质细胞层上或已经与星形胶质细胞层分离时,在轨道摇床上以180rpm摇动T25烧瓶120分钟以分离收集小胶质细胞。

加入新鲜的细胞培养基,并在240rpm下16小时继续摇动烧瓶以除去少突胶质细胞前体细胞(OPC)。

7、胰酶消化后的细胞移至培养皿中传代,培养2d后可用免疫荧光的方法进行细胞鉴定。

神经元原代培养方法

神经元原代培养方法

一、器材二氧化碳培养箱(Forma Series Ⅱ Water Jacketed CO2 Incubator) Thermo公司;SW-CJ- 2F 型超净工作台苏州安泰空气技术有限公司;80- 2B 型离心沉淀机盐城市科学仪器厂;LS-B50L 立式压力蒸汽灭菌器江阴滨江医疗设备厂;AB104 - N 电子天平上海电子仪器厂倒置显微镜 OLYMPUS-IX71二、试剂Neurobasal®-A Medium (1×)无血清培养基 500ml 美国Gibco公司;B-27 Supplement(50×) 10ml 美国Gibco公司DMEM(Dulbecco’s Modified Eagle Medium) Invitrogen公司胰酶(Trypsin 1:250) 5g Solarbio公司;多聚赖氨酸( Poly-L-Lysine,MW 150000- 300000) 25mg Solarbio公司;无支原体胎牛血清四季青浙江天杭生物科技有限公司;马血清(特级)北京元亨生物技术有限公司;注射用硫酸链霉素 100万单位/瓶华北制药股份有限公司注射用青霉素钠 80万单位/瓶华北制药股份有限公司三、方法1.试剂的配制(1)神经元专用培养液将500ml Neurobasal®-A Medium (1×)无血清培养基和10ml B-27 Supplement(50×)混合后,加青霉素和链霉素(终浓度为100单位/ml)使其混匀,4℃储存备用。

(2)D-Hank,s缓冲液称取NaCl8.0g KCl0.4g Na2HPO4·12H2O0.09g KH2PO40.06g 葡萄糖1g,加双蒸水定容至1000ml,调PH于7.2-7.4,抽滤后4℃储存备用。

(3)0.25%胰酶称取0.25g胰酶溶于100ml D-Hank,s缓冲液中,抽滤后4℃储存备用。

原代海马神经元细胞培养

原代海马神经元细胞培养

原代海马神经元细胞培养-CAL-FENGHAI.-(YICAI)-Company One1原代海马神经元细胞培养溶液的配制:(1) 4%多聚甲醛溶液:4g多聚甲醛溶于100ml pH=7.4的0.01mol/l PBS中,混匀过滤,室温保存。

(2)磷酸盐缓冲液(PBS)(0.01mol l-1):KH2PO4,0.1g;Na2HPO412H2O,1.7g;KCl,0.1g;NaCl,4.0g,双蒸水加至500ml,pH=7.2~7.4。

用0.2m滤膜过滤,4℃保存。

(3) 1%蛋白酶的配制:用磷酸缓冲液(pH=7.2~7.4)配制成浓度为1%的胰蛋白酶母液冻存。

使用时,用解剖液稀释至0.25%。

(4) 培养皿涂被多聚赖氨酸:配制0.01%的多聚赖氨酸,分装冻存。

将上述多聚赖氨酸放入培养皿中涂两遍,自然晾干后备用。

(5) 解剖液:葡萄糖,3.0g;蔗糖,7.5g;NaCl,8.0g;KCl,0.4g;Na2HP047H20,0.18g;KH2PO4,0.03g;HEPES,2.14g;加双蒸水1000ml,调pH=7.0~7.4,过滤,4℃保存。

(6) 种植液:DMEM 79%,胎牛血清,10%;马血清,10%;谷氨酰胺培养液1%。

(7) 饲养液:Neurobasal培养基,97%;谷氨酰胺培养液,1%;B-27,2%。

(8) 阿糖胞苷:用双蒸水配制成浓度为l mg ml-1的母液储存。

用0.2m 滤膜过滤,-20℃储存。

使用时,取6l母液加入2ml培养液中,终浓度为3g ml-1。

(根据实验情况调整浓度)大鼠原代海马神经元细胞的培养(1) 新生SD大鼠(<12h),75%酒精浸泡消毒后断头,剥离出全脑并将其放入盛有解剖液的培养皿中。

(2) 在解剖液中解剖大脑,分离出海马,移入另一盛有解剖液的培养皿中。

在分离出全部的海马后,去除血管等组织,然后用剪刀将海马分成数小块,放入盛有0.25%胰蛋白酶的培养皿中,将培养皿放入9%CO2、37℃消化20min。

神经元原代培养

神经元原代培养

神经元原代培养一、准备1. 试剂1)胎牛血清灭活:血清室温自然融解,摇匀。

选用与血清瓶同规格的对照瓶一个,并加入与血清等体积的水。

对照瓶内插入1~2支温度计(保证测试温度的准确性)。

将血清瓶与对照瓶同时放入恒温水浴箱,待温度计所示温度上升至56℃时,定时30分钟。

灭活后分装,10ml/瓶,一瓶放在培养箱做无菌实验,其余-20~-70℃保存。

2)D-Hank’s液(g/L):NaCl: 8, KCl: 0.4, KH2PO4: 0.06, Na2HPO42H2O: 0.06, NaHCO3: 0.35; 酚红:0.02,超纯水溶解,调节PH至7.2,高压灭菌(购自南方医院临床试验中心)。

3)多聚赖氨酸:避光,用超纯水配制好后过滤,200µl或400µl/tube分装, -20度储存。

母液浓度为5mg/ml,工作液浓度为0.1mg/ml(购自Sigma,P2636,100mg)。

配置方法:20ml超纯水溶解,分装为1ml/管。

用时加入49ml超纯水稀释为0.1mg/ml的工作液。

4)50mM谷氨酸:超纯水溶解,滤过除菌,分装50µl/tube,-20℃保存。

使用时需将终浓度调整为25µM(购自Sigma,G8415,100g,分子量:147.13)。

配制方法:电子天平称量谷氨酸1.4713g,即0.01mol=10mmol,溶于200ml超纯水中,配制为50mM的谷氨酸母液。

例:500ml的Neurobasal Medium中加入Glutamate母液(50mM)250μl,此时终浓度约为25μM。

5)胰蛋白酶:0.25%(购自Hyclone,SH30042.01,100ml)。

6)阿糖胞苷(AraC)母液:10mM,(阿糖胞苷,1:1000稀释用)(购自Sigma,C1768,100mg,分子量:243.22);配制方法:100mg/243.22≈0.41mM,加入41ml超纯水溶解,配制成10mM的AraC母液。

原代神经元细胞培养技巧

原代神经元细胞培养技巧

原代神经元细胞培养技巧
以下是 9 条关于原代神经元细胞培养技巧:
1. 哎呀呀,培养原代神经元细胞,那选对材料可太重要啦!就好比你要做一道美味佳肴,那食材得新鲜优质对吧?比如你得挑健康的胚胎组织,可别随便拿些不靠谱的材料来凑数呀!
2. 嘿,解离细胞这一步可得小心谨慎哦!这就像拆一件精密的玩具,不能太粗鲁,不然全给弄坏啦!要温柔地进行操作呢。

3. 哇塞,接种细胞时可得仔细着点儿!就像给小宝贝们找个舒服的家,密度要合适,位置要恰当,不能马马虎虎哟!
4. 知道吗,培养基那可是细胞的营养大餐呀!怎能随随便便选呢?一定要找最适合它们的,不然它们怎么茁壮成长呢?就像给孩子选奶粉一样重要呐!
5. 天呐,培养环境那简直就是细胞的小天地!温度、湿度、气体都得严格把控,这可不是闹着玩的呢,你说是不是?
6. 哇哦,换液的时候可得注意啦!你想呀,如果给它们换了不好的液体,那不就像给人喝了不健康的水一样嘛,能行么?
7. 诶,观察细胞可不能马虎呀!那可是随时了解它们状态的关键呀,这就好比你时刻关注着自己宝贝的一举一动,有没有问题一下子就知道啦!
8. 哎呀,防止污染那可是重中之重啊!稍微不注意让细菌病毒钻了空子,那不就全完啦?这可不比家里打扫卫生,得超级认真呀!
9. 总之呢,培养原代神经元细胞真的需要特别细心和耐心!每一个环节都不能掉以轻心,都要像对待艺术品一样精心呵护,这样才能培养出健康优秀的细胞呀!。

原代细胞的培养

原代细胞的培养

原代细胞的培养原代细胞的培养不知道遭到多少研究生及博士生吐槽,其真实情况是,一边在超净工作台上哭,一边手上还在不停地提取原代细胞。

相比较细胞系细胞而言,原代细胞的培养周期长、成本高、摸索困难。

从大鼠的筛选分笼到母鼠受精怀孕,从孕育周期的看护到胎鼠的出生降临,从胎鼠脑组织的提取到神经细胞的培养,到最后的药物对原代细胞的作用机制研究。

这种复杂和辛苦的原代培养过程,其实也是最能反应药物在实验小白鼠上作用机制和效果最真实的反应。

1、大鼠的筛选和分笼首先是一个大笼子里放6只大鼠(5雌性,1雄性),每隔两天喂水和繁殖饲料,一星期给大鼠换一次垫料(给大鼠换垫料是体力活)。

舒适的空间和环境能让大鼠更好地繁殖,产下更多的胎鼠用于科学研究。

2、原代细胞的提取及培养原代细胞的提取一般是将胎鼠先用纯净水冲洗干净,在放进超净工作台处理。

先将胎鼠放入75%酒精消毒1min,再用手术剪刀将胎鼠的脑组织提取出来,放入遇冷的D-Hank's液中。

用手术剪刀将皮层的脑组织剪碎,加入等体积的0.25%胰酶进行消化,置于二氧化碳培养箱37℃培养。

(1)新生大鼠原代海马组织中神经干细胞的培养取新生24h内新生大鼠,75%乙醇浸泡消毒5min,用剪刀将头颅取下,剥离颅骨,暴露皮质下海马组织,于冰上快速取出组织放在遇冷的DMEM/F12或者PBS缓冲液中清洗,吸出置于15mLEP中,加入ACCUTASE1.5-2.0mL置于培养箱中,37℃、5%CO2混匀消化10min,取出混匀吹打组织块,1000r.5min-1离心,加入培养基重悬细胞过200目细胞筛(70μm),置于37℃、5%CO2培养箱中悬浮培养。

通过Nestin染色鉴定星形胶质细胞以确保纯度。

(2)大脑皮层原代星形胶质细胞培养细胞制备和培养从1 日龄新生Sprague-Dawley 大鼠的大脑皮层制备原代星形胶质细胞。

简而言之,分离大脑皮质并用0.25% 胰蛋白酶在37°C下消化15 分钟,然后通过70 μm 细胞过滤器过滤。

世界上最完善最详细的神经元原代培养完全黄金版讲解

世界上最完善最详细的神经元原代培养完全黄金版讲解

世界上最完善最详细的神经元原代培养完全黄金版[精华]序言:国内外关于原代培养有很多文献,不幸的是,没有一篇是详细的,没有一篇解答过why. 为了让大家少走弯路,根据我杀过3000只老鼠的经验,我把我这几年摸索的经验和大家分享,请求多投几票得几个叮当。

相信你follow我的这篇文章一定会做的很好。

我的标题说的很像吹牛,但是我是严肃认真的说的,I earn it.note:这篇文章全是我个人的经验,99。

9%原创,经过无数失败的到的最完美的原代神经元培养法,除了最后那一副图是来自下面第2行那篇文献,所以我才说是99.9%原创。

(注:附录的图是常用的消化酶对实验的存活率影响,来自下面链接里的文献)另外,成年鼠的原代培养我没有摸索过,推荐一篇文献在我以前的帖子(无需叮当)(/bbs/post/view?bid=156&id=17651341&sty=3)本篇专门讨论胎鼠和新生鼠神经元的原代培养。

1.材料选择。

一定要严格按照国际上,NCBI数据库,其他文献的材料一致。

胎鼠就要胎鼠,新生鼠就要新生鼠,不能混淆。

因为新生鼠有一些受体,在培养的工作中失去功能,会不能再生,比如NMDA受体。

和文献不同会导致错误结论,甚至困惑。

很多人写信问我新生鼠的培养问题,我回答用新生鼠的实验很少,八成是你自己搞错了实验对象,请确认国际上的相关研究文献所用老鼠,再来问我下面的问题。

2,培养基选择(neurbasal/neurobasal-a,invitrogen Co.ltd)。

我强烈不建议用血清培养。

原因是:首先,血清刺激胶质细胞和杂细胞分裂,最后非常影响神经元产量;其次,为了抑制胶质生长,往往要加入阿糖孢苷。

严重的毒性会影响许多灵敏实验;再次,最重要的,血清培养的细胞状态很不均一,从正常到凋亡都有,严重影响试验准确,而无血清专用培养基所有的正常细胞都处于一样的状态,要么都好,要么都差,高度一致。

Invitrogen/GIBCO 无血清培养基neurobasal(neurbasal-A)被认为是最标准,最好的培养基。

原代神经细胞培养

原代神经细胞培养

原代神经细胞培养新生鼠神经元细胞的培养准备工作:1、解剖器械一套(实验室有专门用于细胞间取材用的成套器械),需提前一天灭菌,过夜烤干。

2、试剂、溶液:Neuralbasal培养基(2mM glutamine);D-PBS缓冲液;0.25%trypsin/0.02%EDTA消化液;0.05%poly-lysin。

3、包被玻片:干烤灭菌12 x 12mm2玻片,12孔板。

包被过程:0.05%poly-lysin滴于置培养板中的盖玻片上(注意勿溢出玻片),37℃放置12hr后纯水洗3遍,晾干。

4、操作中所用枪头均用剪刀剪去枪头尖,然后在酒精灯上迅速过一下抛光。

取材:1、从-200C取出三个冰袋,预冷若干皿D-PBS,一大皿用于冷却剥出的脑子,另外的35mm的皿用于冷却分离出的脑组织,如:海马,皮层,下丘脑等,分离几个部位就预冷几小皿D-PBS,小皿盖子上做好标记,第三个冰袋上放一皿盖,上面放灭过菌的滤纸,用于剥离脑子的操作。

2、取1-3天鼠,75%酒精浸泡片刻后,用大剪子断头处死。

3、弯头眼科剪剪开颅骨,取出完整脑至盛有预冷D-PBS的培养皿中,在体式镜下分离相应部位的组织,分别放在相应的皿中。

4、将组织块用弯头眼科剪剪碎,每小块约2mm3左右,用枪移入5mlEP中,稍为沉淀1分钟,吸弃上清,加入0.25%trypsin/0.02%EDTA,37℃消化10-15分钟左右,期间每3分钟颠倒几下。

注:每四个海马用胰酶1ml,每个皮层用胰酶2ml。

5、消化完毕,每毫升胰酶加入100ul血清以终止胰酶,颠倒混匀;1000rpm,4分钟,离心沉淀。

6、吸弃上清,注意不要将组织吸出。

7、加入37℃预热的1-2ml DMEM/10%FBS,用枪头吹打20下左右,此时液体浑浊,组织块明显变小。

8、放置沉淀3分钟左右,可见组织块沉底,吸取上清,其中包含所要的细胞。

9、计数,将细胞密度调整至2-4 x 10 5 /ml后接种于预先用poly-lysine包被过的盖玻片或皿上,100ul每玻片(12 x 12mm玻片)。

原代小知识——小鼠原代海马神经元细胞的分离培养方法

原代小知识——小鼠原代海马神经元细胞的分离培养方法

原代⼩知识——⼩⿏原代海马神经元细胞的分离培养⽅法原代⼩知识——⼩⿏原代海马神经元细胞的分离培养⽅法海马体主要负责记忆和学习,⽇常⽣活中的短期记忆都储存在海马体中。

神经元是构成神经系统结构和功能的基本单位。

神经元具有长突起,由细胞体和细胞突起构成。

⼩⿏海马神经元细胞的组织来源于实验⼩⿏的正常脑组织,因为海马神经元细胞类似于⼲细胞属于⾼分度分化的细胞特性,具有不能传代,不能增殖等特点,所有收到细胞后尽快使⽤。

为了更好的服务于⼴⼤科研⼯作者,百欧博伟技术⼈员特提供了海马神经元细胞分离培养⽅法,技术因⼈⽽异仅供参考:1.试验所需仪器设备及试剂(1)仪器⽣物安全柜CO2细胞培养箱荧光倒置显微镜⾼速冷冻离⼼机电热恒温⿎风⼲燥箱(2)试剂耗材T25细胞培养瓶⾎球计数板细胞培养孔板红细胞裂解液神经元完全培养基0.25%胰蛋⽩酶(含0.02TA)多聚甲醛(PFA)DAPITriton X-100⼭⽺⾎清NSEGoat anti-Rabbit lgG(H+L)Cross-Adsorbed Secondary antibody,Alexa Fluor 594Fluoromount-G荧光封⽚剂2.分离培养⽅法1) 取1-10 d的新⽣⼩⿏。

⽤75%的⼄醇浸泡,2) 在冰浴的PBS中分离海马,PBS洗涤3次,剪碎,3) ⽤0.25% Trypsin + 0.1% 型胶原酶37⽔浴振荡消化30min,4) ⽤FBS终⽌消化,轻轻吹打,5) 过100 µm 滤⽹,6) 收集滤液,300 g离⼼5 min,7) ⽤完全培养基重悬沉淀,铺瓶。

3.免疫荧光3.1.实验步骤(1)细胞爬⽚取3⽚玻璃⽚于24孔板中,每孔加⼊培养基1mL,加⼊细胞0.02million个/孔。

置培养箱2h或过夜。

(2)固定细胞爬⽚后,吸出培养基,⽤PBS洗1遍,加⼊4% PFA于4固定30min。

⽤PBS洗3×5min/次。

也可最后⼀次不吸出PBS,放4过夜。

神经元原代培养 丁香园

神经元原代培养  丁香园

(丁香园protocol 2008)一、常规的试剂配制:1、培养基:选用高糖型DMEM/F12 (1:1)培养基干粉(含15 mmol Hepes),每升培养液中加入碳酸氢钠1.8 g,调节pH值7.0,0.22 μm的微孔滤膜过滤除菌后,加入谷氨酰胺、无菌的青霉素和链霉素液,使其终浓度分别为0.5 mmol/L 、100 U/ml和100 μg /ml,分装后置于4℃保存,临用前加入2%的B27。

神经细胞代谢旺盛,选用高糖型培养基;谷胱甘肽可保持培养基还原状态,营养成分稳定;B27是公认的刺激神经元生长的营养因子,不过价格挺贵;PH值很关键,Hepes是优秀的缓冲系统,pH值调好后能保持很长时间;2、多聚赖氨酸溶液的配制:称取1.5 mg L-多聚赖氨酸溶于100 ml PBS,0.22 μm的微孔滤膜过滤除菌,密封后置于4 ℃保存,可长期使用;3、磷酸盐缓冲液(PBS)的配制:称取8.0 g NaCl、0.2 g KCl、2.85 g Na2HPO4•12H2O 和0.2 g KH2PO4充分溶于900 ml dd H2O,调节pH值为7.2,补dd H2O至1000 ml并分装,高压灭菌(121~126 ℃),4 ℃备用;4、D-Hanks液的配制:称取KCl 0.4 g,KH2PO4 0.06 g,NaCl 8.0 g,NaHCO3 0.35 g,Na2HPO4•12H2O 0.08 g,溶于dd H2O中,调节PH值为7.2,定容至1000 ml,高压蒸汽灭菌(121~126 ℃),4℃备用;5、0.25%胰蛋白酶的配制:称取0.25 g胰蛋白酶粉末,少许D-Hanks溶液调成糊状,用D-Hanks定容至100 ml,混匀,冰箱内放置过夜,滤纸过滤后,0.22 m微孔滤膜过滤,分装,-20 ℃保存。

二、试验操作过程:1、包被:培养前晚上将培养瓶(板)用多聚赖氨酸包被10 min,吸除,无菌操作台上15min 自然晾干,置于培养箱中备用;2、取脑:选取新生24 h的SD大鼠数只,雌雄不限,75%酒精全身消毒,断头处死,无菌条件下分层剪开头皮、颅骨,用弯镊拉开脑区视野,小心取出全脑,D-hanks液洗数次;(预先准备至少4把眼科剪刀,分别用于断头、剪头皮和剪颅骨及第3步的剪组织这4个操作)3、分离:以脑中线为起点,小心拨开大脑颞叶皮层,暴露出新月状海马回,小心夹出海马组织,置于冰浴的D-hanks液中,仔细剔除微血管,用充分剪碎组织;4、消化:加入同体积0.125%的胰蛋白酶,瓶口用锡箔纸盖上,37 ℃培养箱内消化20 min 左右,期间轻摇数次;过滤:加入数滴胎牛血清终止消化,用尖头吸管轻轻吹打细胞数分钟,至液体成米糊状即停止吹打,动作要轻柔,用150目网筛过滤,收集细胞悬液;5、接种:以1100 rpm离心5 min,倾去上清,用DMEM/F12培养液重悬细胞,轻轻吹打,台盼蓝染色快速计数,根据计数结果,调整细胞终浓度为1 00000个/ml,加入终浓度为10%胎牛血清后接种于培养瓶(板)中,置于37 ℃、含5% CO2培养箱中培养;12小时内禁止晃动6、换液:接种后24 h将培养液全量换成无血清DMEM/F12培养液,第48 h时加入终浓度为10 μmol/L的阿糖胞苷,以抑制非神经元细胞的过度生长,随后每3 d半量换液。

原代神经元培养

原代神经元培养

神经细胞原代培养从动物(大鼠或小鼠等)的胚胎或新生动物的脑组织取下某一局部区域,分离细胞,培养在培养容器后不再移植,常称为原代神经细胞培养。

一、培养前准备1. 器械和器皿器械:外科剪、镊子、虹膜剪等、小剪刀、细镊子和虹膜小刀等各种金属器械如解剖器械,使用后与时刷洗干净,用酒精棉球擦拭后晾干,或经60℃烘干,以防生锈。

由于湿热消毒对手术器械容易可用70-80%酒精浸泡1小时以上消毒。

器皿:1)玻璃瓶与相应的胶塞或胶木螺旋盖,用于分装血清、多聚赖氨酸、解剖液、各种盐溶液和培养液等。

2)培养瓶、盖玻片培养用的盖玻片必须不含铅、不发霉,可用0.2N盐酸浸泡10分钟,用蒸馏水洗2次,每次10分钟,然后移入丙酮或乙醇浸泡10分钟,再用双蒸水洗2次,每次10分钟,烘干待消毒。

凡组织学用过的旧盖玻片一般不用。

3)移液管、吸管、烧杯、离心管和培养皿。

4)塑料培养皿(35mm)、塑料培养板(6、24、96孔)。

辅助工具:放置试管、吸管和玻璃瓶等的架子。

2. 培养基和培养用液的配制1) 培养基质:有多聚赖氨酸、牛皮胶原和鼠尾胶原。

本室目前常用分子量为7-140000多聚赖氨酸(Poly-L-lysine,浓度为0.1mg/ml。

2) 平衡盐溶液:主要以无机盐和葡萄糖配制而成。

各种平衡盐溶液主要的不同点在于NaCl的浓度、离子浓度与缓冲系统的不同,可根据实际需要选用适当的平衡盐溶液。

3) 培养液:目前已有现成的干粉出售,按说明书进行配制即可。

神经细胞培养需高糖,培养液应含有或加葡萄糖至6g/L。

目前培养海马神经元可选用B27无血清培养液。

4) 血清:有胎牛血清、小牛血清和马血清等。

分装成小瓶,4℃保存备用(分装前需56℃灭活30分钟)。

5) 胰蛋白酶溶液:用于分离细胞。

先用少量灭菌三蒸水将胰蛋白酶粉末溶成糊状,然后补水至2.5%浓度,振荡摇匀,4℃过夜,待完全溶解后用滤器过滤灭菌,并分装成1-2ml冻存。

用前以D-Hanks平衡盐水或其他无钙镁离子溶液溶解稀释至0.25%或0.125%。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

原代神经细胞培养方法精编版MQS system office room 【MQS16H-TTMS2A-MQSS8Q8-MQSH16898】神经细胞培养体外神经细胞的培养已成为神经生物学研究中十分有用的技术手段。

神经细胞培养的主要优点是:(1)分散培养的神经细胞在体外生长成熟后,能保持结构和功能上的某些特点, 而且长期培养能形成髓鞘和建立突触联系,这就提供了体内生长过程在体外重现的机会。

(2)能在较长时间内直接观察活细胞的生长、分化、形态和功能变化,便于使用各种不同的技术方法如相差显微镜、荧光显微镜、电子显微镜、激光共聚焦显微镜、同位素标记、原位杂交、免疫组化和电生理等手段进行研究。

(3)易于施行物理(如缺血、缺氧)、化学和生物因子(如神经营养因子)等实验条件, 观察条件变更对神经细胞的直接或间接作用。

(4)便于从细胞和分子水平探讨某些神经疾病的发病机制,药物或各种因素对胚胎或新生动物神经细胞在生长、发育和分化等各方面的影响。

我们实验室从80年代始开展了神经细胞的体外培养工作,取得了一些经验,现将培养细胞分类及方法简要介绍如下:一. 鸡胚背根神经节组织块培养主要用于神经生长因子(NGF)等神经营养因子的生物活性测定。

在差倒置显微镜下观察以神经突起的生长长度和密度为指标半定量评估NGF的活性。

1.材料和方法(1)选正常受精的鸡蛋,置于37℃生化培养箱内孵化,每日翻动鸡蛋一次。

(2)取孵化8-12 d 的鸡蛋, 用70% 酒精消毒蛋壳,从气室端敲开蛋壳,用消毒镊剥除气室部蛋壳。

(3)用弯镊钩住鸡胚颈部,无菌条件下取出鸡胚置小平皿内,除去头部后,腹侧向上置灭菌毛玻璃片上,用眼科弯镊子打开胸腹腔,除去内脏器官。

(4)在解剖显微镜下,小心除去腹膜,暴露脊柱及其两侧,在椎间孔旁可见到沿脊柱两侧排列的背根节(图1),用一对5号微解剖镊小心取出。

(5)置背根节于解剖溶液内,用微解剖镊去除附带组织,接种于涂有鼠尾胶的玻璃或塑料培养瓶中,在DMEM无血清培养液中培养。

2.结果鸡胚背根神经节在含神经生长因子(NGF, ,20ng/ml)的无血清培养液中培养24 h,神经节长出密集的神经突起。

而未加NGF的神经节培养24 h, 未见神经突起生长。

二.新生大鼠、新生小鼠及鸡胚背根神经节分散细胞培养背根神经节(DRG)细胞起源于神经嵴,NGF研究先驱Levi-Montalcini 的实验表明,外原性NGF能刺激DRG细胞生长发育并形成广泛的神经网络。

在体外,分离培养的神经节在NGF存在的情况下,神经突起的生长在一天之内可长达数毫米,因此,利用培养的DRG细胞,进行轴突生长发育的研究,是最为经典而常用的方法之一。

1.材料和方法取新生一天的大鼠(wistar种)和小鼠(昆明种)。

用眼科剪在无菌条件下除去背部皮肤, 然后剪取一段脊髓,背侧朝上置于灭菌毛玻璃片上,在解剖显微镜下沿椎管两侧水平剪除腹侧一半椎骨,暴露脊髓和神经节,用解剖镊分离出神经节。

鸡胚背根神经节的取材方法同前。

剥除神经节被膜, 用%胰蛋白酶消化(37℃ 30min)分散后用种植(Plating)培养液稀释成×105个细胞/ml 密度的细胞悬液,接种于涂有鼠尾胶的35mm塑料培养皿中,每皿2ml细胞悬培养箱中培养。

24h后倾去培养皿内种植培养液置。

置标本于36℃、10%CO2液,改用饲养(Feeding)培养液培养。

接种第3d, 在培养皿中分别加入细胞分裂抑制剂5-氟-2'-脱氧尿苷15μg/ml和尿苷35μg/ml以抑制非神经细胞的增殖, 作用48 h后更换新鲜饲养培养液,以后每周换液两次, 每次更换一半新鲜饲养培养液。

2.培养液成份L);10%胎种植培养液: 80%Eagle's DMEM(含葡萄糖600mg/100ml、NaHCO3牛血清; 10%马血清;NGF 20ng/ml; 谷氨酰胺100μg/ml。

脱氧核糖核酸酶 I 40μg/ml。

饲养培养液: 95%Eagle's DMEM(含葡萄糖600mg/100ml、NaHCOL,);5 %3马血清; NGF 20ng/ml;神经营养素 1ml/100ml;谷氨酰胺100μg/ml。

3.新生大鼠背根节神经元的生长分化和形态特征新生大鼠背根节神经元接种后4h,大部分细胞可贴壁, 呈圆形或椭圆形,直径8-14μm, 胞体周围呈现一圈光晕。

神经元的细胞核位于中央或偏于胞体一侧,核仁明显,亦可见双核神经元。

接种后24h, 大部分贴壁细胞开始长出突起。

其中多数为具有多个突起的多极神经元,少数为双极和假单极神经元, 突起细长,并可观察到突起末端的生长锥。

除单个散布的神经元外,还常见到几个或多个神经元聚集在一起, 它们向四周发出树枝状的神经突起。

培养2-3d后神经元的突起逐渐增多并延长, 形成稀疏的神经网络。

随着培养时间的延长, 神经元突起的主干和分枝明显延长并增粗,神经突起网络变得更加稠密, 神经元胞体逐渐增大。

大鼠背根节神经元可维持培养2个月。

4.新生小鼠背根节神经元的生长分化和形态特征新生小鼠背根节神经元的形态结构和生长分化基本上与新生大鼠相似,但小鼠背根节神经元的胞体较大鼠稍小。

神经元亦随着培养时间的延长而逐渐增大。

小鼠背根节神经元亦可维持培养2个月。

5.鸡胚背根节神经元的生长分化和形态特征鸡胚背根节神经元的生长分化基本上亦与新生大鼠和小鼠相似。

但鸡胚背根节神经元以假单极为多见。

与大鼠或小鼠背根节培养神经元相比,神经突起分枝较少。

神经元胞体稍小,神经元亦随着培养时间的延长而逐渐增大。

鸡胚背根节神经元亦可维持培养2个月。

三. 新生小鼠颈上交感神经元分散细胞培养交感神经系统在维持机体的正常功能和对环境的适应性反应中起着十分重要的作用。

交感神经细胞培养特别有助于神经细胞发育和可塑性研究,利用体外培养系统可进行交感神经细胞的发生、死亡、形态和生化发育、递质表形的获得,以及靶组织与传入纤维的突触形成的研究。

此外,通过体外培养系统可获得关于神经营养因子、激素,细胞因子等调节交感神经元发育的信息,了解传入纤维的输入以及与靶组织的联系的机制。

1.材料和方法实验用出生当天的昆明种小鼠,在无菌条件下腹部朝上固定于塑料泡沫板上,用微解剖镊在解剖显微镜下找到气管两侧的颈总动脉,并以此为标志,在颈总动脉分为颈内外动脉交叉处找到上颈交感节, 取出上颈交感节, 置于含1 % 胶元酶(Collagenase)和1 % 消化酶(Dispase)的2ml混合消化液中消化(37℃, 1 h)分散后,用种植(Plating)培养液稀释成×105个细胞/ml密度的的细胞悬液;接种于涂有小牛皮胶或以小鼠脑皮层胶质细胞为背景的35mm 塑料培养皿中,每皿2ml细胞悬液置。

置标本于36℃、10%CO培养箱中培2养。

24h后倾去培养皿内种植培养液,改用饲养(Feeding)培养液培养。

接种第3d, 在培养皿中分别加入细胞分裂抑制剂5-氟-2'-脱氧尿苷15μg/ml和尿苷35μg/ml, 作用48 h后更换新鲜饲养培养液,以后每周换液两次, 每次更换一半新鲜饲养培养液。

2.培养液成份种植培养液: 80%Eagle's DMEM(含葡萄糖600mg/100ml、NaHCOL);10%胎牛3血清;10%马血清;NGF 20ng/ml; 谷氨酰胺100μg/ml。

脱氧核糖核酸酶 I 40μg/ml。

饲养培养液: 95%Eagle's DMEM(含葡萄糖600mg/100ml、NaHCOL,);5%马血3清; NGF20 ng/ml;神经营养素 1ml/100ml;谷氨酰胺100μg/ml。

3.新生小鼠交感节神经元的生长分化和形态特征新生小鼠交感节神经元在含 NGF 的培养液中种植后4h, 细胞即开始贴附在胶元薄膜或在皮层胶质细胞层上生长, 交感神经元的胞体一般为圆形, 有时亦可见椭圆或梭形,体积较大, 直径约8-14μm左右,胞体周围呈现一圈光晕,神经元的细胞核大多偏于胞体一侧,核仁明显,亦可见双核神经元。

接种后24h, 大部分贴壁神经元开始长出突起。

培养2-3天后,神经元突起逐渐增多并延长, 形成稀疏的网络。

随着培养时间的延长, 神经突起网络变得更加稠密。

神经细胞的主干和分枝明显延长并增粗, 神经元的胞体逐渐增大。

小鼠交感神经元可维持培养1-2个月。

四. 胚胎小鼠、大鼠、鸡胚脊髓腹角运动神经元培养,中枢神经系统包括脑和脊髓,脊髓是中枢的初级部分,其功能有二,一是传导感觉和运动冲动,二是完成躯体运动的基本反射。

脊髓突然被横断并与高级中级失去联系后产生脊休克。

因此,利用体外培养的脊髓腹角运动神经元进行脊髓损伤和修复的研究日益受到重视。

1.材料和方法用12-14d 胚龄的小鼠、12-14d 胚龄的大鼠、孵化10 d 的鸡胚,在无菌条件下取出胎鼠或鸡胚脊髓,剥除脊膜后,将整个脊髓腹侧面朝上置于平皿中,用微解剖镊和双面刀片沿脊髓中央管纵切两半,再将脊髓两侧的腹侧部分切下,将组织块切碎,用% 胰蛋白酶消化(37℃ 30min)分散后,用种植培养液(同第二节)稀释成5×105个细胞/ml密度的细胞悬液,接种于涂有小牛皮的培养箱中培养,24h后胶的35mm塑料培养皿中,每皿2ml,置36℃、10%CO2倾去培养皿内种植培养液, 改用饲养培养液(同第二节)进行培养。

以后每周换液两次,每次更换50%的新鲜饲养培养液。

2.胚胎小鼠、大鼠、鸡胚脊髓腹角运动神经元的生长分化和形态特征胚鼠和鸡胚脊髓腹侧神经元培养12h后,大部分神经元可贴壁,贴壁神经元呈圆形,直径5-8μm,其中少数神经元开始伸出1-2个突起。

培养24h后, 神经元突起逐渐增多并延长,形成稀疏的网络,培养的脊髓神经元以双极和多极为多见, 神经元呈圆形或椭圆形及多边形不等,胞核清楚,多数具1-2个核仁。

随着培养时间延长, 神经元突起进一步增多、增粗并延长,形成稀疏的神经网络, 神经元胞体逐渐增大。

多极胞体大的神经元逐渐增多,经胆碱乙酰转移酶(ChAT)免疫组织化学染色和乙酰胆碱酯酶(AChE)组化染色呈阳性反应。

此后,只要定期换液并适当抑制非神经细胞的过度增殖,胚眙大鼠、胚盼小鼠和鸡胚脊髓腹侧运动神经元在体外可维持培养2个月。

五. 新生大鼠海马神经元分散培养海马属大脑边缘系统,与情绪、学习及记忆有关,它具有明显的长突触传递的长时间程长时程增强(LTP)和长时程抑制(LDT)的能力。

LTP和LDP 具有协动性、特异性、长时性的特点,目前已被认为是学习和记忆的基础。

而且海马组织常常是引起癫痫发作的病变部位,并且海马细胞对缺血、缺氧特别敏感。

这些特征反映了海马神经元的内在性。

例如,对缺氧的可塑性和易感性均与NMDA(N-methyi-D-aspartate,N-甲基-D-天冬氨酸)受体的独特性质相关。

相关文档
最新文档