质粒DNA的提取与酶切鉴定

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质粒复性,而细菌染色体DNA不能正确复性
6、12000 g离心6 min,将上清移入另一干净的Ep管中; 7、加2倍上清体积(约1mL)的无水乙醇, 振荡混匀,室温放 置2min. 8、12000g离心10min,弃上清液,再用70%的乙醇洗涤 一次, 12000g离心1min,离心管倒置于吸水纸上扣干, 然后在中空浓缩系统上干燥质粒; 9、加入40L含50 g/mL RNase A的灭菌蒸馏水或TE 缓 冲液溶解提取物,室温放置直到质粒完全溶解(约8min), 存于-20℃或直接用于酶切。
4、加入200L新配制的溶液II, 盖紧管口,快速颠倒离心管, 以混匀 内容物,冰上放置3-5min;
溶液II中的NaOH与SDS可裂解细胞,使DNA变性以及SDS使蛋白变 性并形成交联的网状结构
5、加入150l溶液III, 加盖后颠倒6-7次混匀,冰上放置2~3min; 溶液III为低pH的醋酸钾缓冲液,中和NaOH,以便使部分变性的闭环
试剂: LB培养基 氨苄青霉素贮存液:浓度50-100mg/mL; 溶液I: 50mmol/L葡萄糖,10mmol/L EDTA (pH8.0),
25mmol/L Tris-HCl (pH8.0); 溶液II: 0.2mol/L NaOH, 1%SDS (现配现用); 溶液III: 乙酸钾溶液(3M, pH=4.8)( 60mL的5mol/L KAc, 11.5ml
2、限制性内切酶:又称为内切酶或限制酶,是一类能识别双链 DNA分子特异性核酸序列的DNA水解酶,是体外剪切基因片段 的重要工具,主要存在于原核生物中。根据限制酶的识别切割特 性, 催化条件及是否具有修饰酶活性可分为Ⅰ、Ⅱ、III型三大类, Ⅰ类和III类限制性内切酶,在同一蛋白分子中兼有甲基化作用及 依赖ATP的限制性内切酶活性。Ⅰ类限制性内切酶结合于特定识 别位点,但却随机地切割回转到被结合处的DNA。Ⅲ类限制性内 切酶在识别位点上切割,然后从底物上解离下来。故Ⅰ类和Ⅲ限 制酶在基因工程中基本不用,II类酶在分子克隆中使用广泛。
在20 L 反应液中反应1h,使1 g DNA完全消化所需的酶量.
2、轻轻混匀, 4000g离心10秒 ,置于37℃水浴中酶解2-3h。
3、酶解完成后,电泳检测酶切结果。
六、 实验结果报告
1、质粒浓度的计算(紫外分光光度计法) 紫外分光光度法测定核酸含量 双链DNA含量=OD260nm×样品稀释倍数×50ug/ml=ug/m1 样品
实验四 质粒DNA的提取与酶切鉴定
一. 实验目的和要求
1、了解质粒DNA的特性,掌握碱裂解法从大肠杆菌细胞中分离、 提取质粒DNA的方法; 2、掌握限制性内切酶的特性、酶解和琼脂糖凝胶电泳的操作方法;
通过本实验了解限制性内切酶在分子生物学研究中的意义与作用。
二.实验原理
1、碱裂解法小量制备质粒DNA:碱裂解法是基于线性大分子染 色体DNA与小分子环形质粒DNA的变性复性的差异达到分离目 的的,在pH12.0~12.6的碱性环境中,线型染色体DNA和环型 质粒DNA氢键会发生断裂,双链解开而变性,但质粒DNA由于 其闭合环型结构,氢键仅发生部分断裂,而且其互补链不完全分 离 ; 当 将 pH 值 调 节 到 中 性 并 在 高 盐 浓 度 下 , 已 分 开 的 染 色 体 DNA互补链不能复性而交联形成不溶的网状结构,通过离心,大 部分染色体DNA、不稳定的大分子RNA和蛋白质-SDS复合物等 一起沉淀下来而被除去,而部分变性的闭合环状的质粒DNA在中 性条件下很快复性,恢复到原来的构型,呈可溶性状态保存与溶 液中,离心后上清中便含有所需要的质粒DNA。
四、碱裂解法小量制备质粒DNA
1、挑取转化筛选的带有目的质粒的大肠杆菌接种到液体培养基 中,37℃震荡培养12~16小时;
2、将1.5mL菌液加入Ep离心管中,12000 g离心30 Sec,弃上清液, 在吸水纸上扣干; 离心时间不能太长,以免影响下一步的菌体悬浮
3、加入100L预冷的溶液I ,于涡旋振荡器上振荡悬浮细菌细胞, 尽量使细胞分散; 溶液I中的葡萄糖的作用是增大让一让的粘度,减少提取过程 中的机械剪切力,防止染色体DNA 的断裂;EDTA的作用是与 二价离子(Ca2+)结合,降低DNase对DNA的降解
2、质粒提取与酶切鉴定电泳结果,贴上打印实验照片并标明 照片上各DNA条带的含义。
七、思考题
1、根据DNA限制酶的识别切割特性,催化条件及是否具有修饰 酶活性可分为几种类型?其中II类限制性内切酶有何特性?
2、在用碱裂解法小量制备质粒过程中I液、II液与III液的作用是什 么?
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其基本特点如下:
(1)、专一性地识别并切割特定的核苷酸序列,如EcoR I识别与
切割序列为
5`····GAATTC····3`
3`····CTTAAG····5`
(2)、识别的核苷酸数目大多数为4~6个,少数识别8~13个;
(3)、识别序列大多数为二重对称(回文序列),大多数酶产生
的是具有凸出的粘性末端:
冰醋酸,28.5mL H2O); RNase A: 10mg/ml; TE缓冲液: 10mmol/L,Tris-HCl, 1mmol/L,EDTA,pH8.0;
5×TBE缓冲液:0.45mol/L Tris-硼酸,0.01 mol/L EDTA, pH 8.0; 10×Loading buffer:1% SDS, 0.05%溴酚兰,50%的甘油; 无水乙醇;70%乙醇; 标准分子量片段; 核酸内切酶 EcoR I (TaKaRa); EcoR I酶解缓冲液(10× buffer H); 琼脂糖; 溴化乙啶(EB)染色液(10mg/ml)。
质粒图谱:
五、 提取质粒的酶切鉴定与琼脂糖凝胶电泳
1、在1.5mL Ep管中依次加入下列溶液于1.5ml离心管中
提取质粒DNA
4.0 L
10× buffer H
1.0 l
EcoR I
1.0 l (2.0 U)
dd H2O
4.0 L
10 L
1U: 1单位酶通常定义为,在建议缓冲液及温度下,
(4)、有不同来源的限制性内切酶可以识别相同的序列,甚至切割 的位点也相同,称为同裂酶或异源同工酶,如Hpa II与Msp I;有 的识别位点不同,但对DNA切割后可产生相同的粘性末端,称为同 尾酶,如BamH I与Bgl II。
三.实验材料与设备:
超净工作台、电热恒温水浴、分光光度计、恒温培养箱、恒温振荡 器、移液器、微型离心管等、台式冷冻高速离心机、旋涡震荡器、 电泳仪、电泳槽、紫外透射仪,凝胶成像仪、冰箱、制冰机等; 1.5mL 与0.5mL Eppendorf 管、Tip头 、烧杯、量筒
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