临床微生物标本采集
临床微生物标本采集方法
一、采样前准备
1、当日术毕，按常规对手术间所有物表 及地面进行湿式清洁和擦拭。
2、检查净化空调系统运作是否正常，当 日完成手术间清洁后，调节空调系统处 于待机状态，次晨打开系统运行30min。 自净后采样。
二、采用平板沉降法 1、采样时间: 在净化空调开启30min进行采样，采样时洁净 手术室大门应保持关闭，以维持手术室正压 状态和洁净度。 2、采样护士准备： 在采样前应洗手（或手消毒）
采样时平板应从科室最靠内的房间放置， 依次向外布放，每个手术间也是从最靠 里的位置放置平板，最后放置最靠门的 采样点。采样点分布均匀，收取平板顺 序相反。
5、布点要求： 百级手术间，手术区（手术台两侧0.9m以内，两 端0.4m内）呈对角线，东南西北中5点，周边区 （距墙1m，每边2个）8点，共需13个培养皿；千 级手术间，手术区（手术台两侧0.6m以内，两端 0.4m以内）呈单角线3点，周边区（距1机，长边 2个，短边1个）6点，共需9个培养皿；万级手术 间:手术区（手术台4边，0.4m以内）呈对角线3点， 周边区（距离1m每边1个）4点，共需7个培养皿。 检测时可做一次空白对照和模拟操作。模拟操作 将一个对照皿打开后立即封盖，两个对照结果必 须为阴性，整个操作过程应符合无菌要求。
将用于革兰染色的标本置于无菌标本杯中
将用于培养的标本置于需氧运送培养基中， 密闭保存
分别标注患者及标本信息，30min内送检，否则置4℃冰 箱冷藏，24h内送检
四、使用中紫外线灯辐照度值测定法
方法：紫外线强度照射指示卡测定法
物品准备：标尺、紫外线强度照射指示卡
放好标尺，开启紫外线灯
开启紫外线灯5min后，将指示卡置于紫外线灯下垂直距离1m处， 有图案一面朝上
临床微生物标本采集方法
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则摘要：一、微生物标本采集的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.采集方法3.采集容器4.无菌操作三、微生物标本运送的基本原则1.及时送检2.保温和冷藏3.防止污染四、标本的处理和检验1.标本的处理2.标本的检验五、结论正文：临床微生物标本采集和运送基本原则是确保检验结果准确和可靠的关键。
微生物标本包括血液、尿液、呼吸道分泌物、粪便等，这些标本中含有大量的微生物，对于疾病的诊断和治疗具有重要的意义。
微生物标本采集的基本原则包括：1.采集时机：采集标本应在患者出现症状时进行，如发热、咳嗽、腹泻等，以避免抗生素的使用对检验结果的影响。
2.采集方法：采集标本应严格遵循无菌操作，避免污染。
不同类型的标本采集方法不同，如血液采集应使用无菌针头，尿液采集应使用无菌容器等。
3.采集容器：采集标本应使用专用的无菌容器，防止污染和渗漏。
4.无菌操作：采集标本时应严格执行无菌操作，避免微生物污染。
微生物标本运送的基本原则包括：1.及时送检：标本采集后应尽快送检，避免细菌繁殖和死亡。
2.保温和冷藏：对于需要冷藏的标本，应置于适当的温度环境中，以保持标本的活性。
3.防止污染：运送过程中应避免标本的污染，如避免与其他物品接触，使用专用的运送工具等。
标本的处理和检验包括标本的处理和标本的检验两个步骤。
标本处理包括标本的分类、分离、纯化等操作，以提高检验的准确性和可靠性。
标本的检验包括形态学观察、生化试验、分子生物学检测等方法，以确定微生物的种类和数量。
总之，临床微生物标本采集和运送基本原则是确保检验结果准确和可靠的关键。
临床微生物学检验的标本采集
临床微生物学检验的标本采集一、血液和骨髓细菌学检验标本的采集（一）适应症菌血症、败血症和感染性骨髓炎等感染菌的培养鉴定和药物敏感试验。
（二）病人准备1．凡怀疑菌血症和败血症的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用过抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，或在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。
2．应在病人发热期或寒颤时采集（三）标本采集1．血培养瓶领取：凭医嘱和检验申请单到检验科细菌室领取。
按照实际情况选择相应类型的血培养瓶：如灰色瓶盖为普通成人培养瓶；粉红色盖为儿童需氧菌培养瓶；紫色盖为厌氧菌培养瓶。
2．将患者信息录入相应的血培养瓶条码中，并在作好病人姓名、科别、床号等标识。
2．采集方法：严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液或骨髓后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀。
3．标本量：成人每次采血5~10ml，小儿采血3~5ml，骨髓2~3ml，采血量足够则阳性率高，反之阳性率减低。
（四）注意事项1．抽血、抽骨髓和接种时，须严格注意无菌操作，避免污染杂菌。
2．从抽血、抽骨髓到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固。
3．成人不明原因发热、怀疑血流细菌感染时宜在不同部位抽血2套，每套2瓶（需氧、厌氧各一瓶）。
4．怀疑伤寒、亚急性细菌性心内膜炎及布鲁氏菌病的病人等，一般一日抽血三次培养，必要时需追加次数。
（五）标本送检和保存1．标本采集后应及时送检，一般不超过1h送交细菌室。
2．送检过程中应注意防止培养瓶打破或其它潜在性污染可能。
二、痰液或下呼吸道分泌物细菌学检验标本的采集（一）适应症肺炎、肺气肿、支气管炎、鼻窦炎、肺结核等感染菌的培养鉴定、药物敏感试验和抗酸菌检查。
（二）病人准备1．尽量在未使用抗菌素前留取标本。
准备好无菌标本容器，贴上条码、标明标识。
2．住院病人应留取清晨起床第一口痰。
为减少正常菌群的污染，嘱患者早上起床后用清水或生理盐水漱口，不要刷牙，除去鼻咽分泌物。
（三）标本采集1．一般病人用力咳出气管深处或肺部痰液，留于无菌标本容器内。
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。
（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。
（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。
（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。
（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。
（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
临床微生物检验标本采集程序
临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则：1.1 严格的无菌操作，避免污染，避免来自寄生菌的污染，应当保证每份样本代表感染过程｡1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术，采集样本。
1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。
1.4 要收集足够量的样本，量少可能导致假阴性结果。
1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。
1.7 导尿留取样本时，不可从尿袋中采集样本。
引流液样本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。
1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌（煮沸、高热、或高压灭菌），但不得用消毒剂或酸类处理。
1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位，如伤寒沙门菌的阳性检出率，发病的第1～2 周采集血液，第3～4 周采集大便和尿液，阳性率较高。
1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。
1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检，应置室温保存（但不得超过24 小时）。
禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。
1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时，样本不能放4℃条件保存，应在30min内送检，并注意保温。
1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，应立即送检，因为这些细菌在自然环境中极易死亡。
1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检，应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水，以免导管干燥，病原微生物死亡。
1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检，如样本较小或不能在规定时间内送检，应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水，以免样本干燥，病原微生物死亡。
不可用纱布包裹组织样本。
2 常见临床微生物标本的采集方法。
2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目：血液及骨髓培养。
2.1.2 适应症病人出现以下临床表现：发热（38℃）或低温（36℃）、寒战、白细胞增多（白细胞数>10×109/L，特别有“核左移”时）、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。
临床微生物标本采集
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血培养采集的时间和频率
①采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，在24h内采集2～3套 血培养，每套包括1个需氧瓶+厌氧瓶。因为研究已证实，2～3 套血培养足以检测所有的菌血症和真菌血症。
②入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3天，每天采 集2套，可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。
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【标本采集注意事项】
1 采集时间：应在急性期采样，以提高检出 率，应在抗生素应用前或停药一周后采集标本， 如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采 集。
2 送检：应立即送检，室温条件下不能超过 2h。如不能立即送检，则保存于4℃冰箱待送 出。
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化脓和创伤标本的微生物检验
采集前先用复合碘消毒周围皮肤。 【标本采集注意事项】 1 采集时间：应在用药之前采取。
2 送检：应立即送检。
3标本运送过程中必须保证其安全，防止溢 出，避免细菌污染。
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血管导管的微生物检验
一、标本送检指征 病人携带中心静脉导管超过48h，出现以下情
8. 鼻咽拭子法：用无菌拭子经鼻轻轻插入 鼻咽部后部，慢慢旋转拭子5s，吸收分泌物， 然后取出。
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【标本采集注意事项】
1 采集时间： （1）以晨痰为好。多数病人清晨痰较多，易
于采集。且清晨痰含有的病理成分较多。会增 加培养的阳性率。 （2）最好在应用抗菌药物之前采集标本。 2 送检 采集后应立即送检，以防止某些细菌在外环 境中死亡，室温保存≤2h 。做真菌培养的标 本如不能及时送检，可放4℃保存，以免杂菌 生长。 标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，16
对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入 45℃10％NaCL水溶液，使痰液易于排出。对咳 痰少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使13
临床微生物标本采集和运送基本原则
临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节，对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。
本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。
一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：微生物标本的采集应在抗生素使用前，以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。
在感染初期或病情加重时采集标本，可提高病原体的检出率。
2.无菌操作：在微生物标本采集过程中，应严格执行无菌操作，避免正常菌群和其他杂菌的污染。
采集非无菌部位的标本时，应尽量减少污染。
3.采集量：微生物标本的采集量要充足，以便进行后续的培养和检测。
不同类型的标本有不同的采集量要求，一般要求采集足够量的标本。
4.标本保存：微生物标本在采集后应及时保存，室温下保存时间不得超过 2 小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），冷藏保存时间不得超过 8 小时。
5.标本运输：微生物标本在运输过程中应保持无菌状态，避免温度过高或过低，以及剧烈震动。
运输包装应具有良好的保护性能，防止标本破损或泄漏。
二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件：微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度，避免高温、低温和干燥。
不同类型的标本有不同的运送条件要求，一般要求在 2-8℃的条件下运送。
2.运送时间：微生物标本的运送时间应尽量缩短，以减少病原体的死亡或活性降低。
一般要求在采集后 24 小时内送检。
3.运送包装：微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能，防止标本在运输过程中破损或泄漏。
包装材料应无毒、无菌、防渗漏。
三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。
正确采集和运送微生物标本，可以提高病原体的检出率，为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。
临床微生物学检验标本的采集
答：不同类型的微生物对保存温度的要求不同。一般来说，细菌、真菌等可在4℃或-20℃冰箱中保存数天至数周；病毒等则需要 使用-80℃超低温冰箱进行长期保存。在选择保存温度时，应根据具体微生物类型和实验要求进行选择。
问题解答与经验分享
如何确保标本运输安全？
答：在运输前应仔细检查容器是否密封良好，并使用足够的吸收材料包裹容器以防意外泄漏。同时，在运 输过程中应确保标本处于适当的低温环境中，并标识清晰以便实验室准确接收和处理。
结果分析
考虑患者为败血症，革兰氏阴性杆菌为致病菌。结合患者临床表现和 实验室检查结果，制定相应的治疗方案。
案例二：尿路感染诊断思路探讨
1 2
病例介绍 患者女性，60岁，因尿频、尿急、尿痛就诊。查 体显示尿道口红肿，有脓性分泌物。
实验室检查 尿常规结果显示白细胞增多，细菌培养阳性。
3
诊断思路
根据患者临床表现和实验室检查结果，初步诊断 为尿路感染。进一步进行细菌鉴定和药敏试验， 以指导临床治疗。
保存时间 不同类型的微生物标本保存时间不同，应根据具体要求进 行保存。一般来说，细菌、真菌等可保存数天至数周，病 毒等则需要长期保存。
标本运输注意事项
保持低温
在运输过程中，应确保标本处于适当的低温环境中，以防止微生 物死亡或变异。
防止泄漏
运输前应检查容器是否密封良好，防止标本泄漏。同时，应使用 足够的吸收材料包裹容器，以防意外泄漏。
为临床诊断和治疗提供准确、可靠 的微生物学依据，指导合理用药。
微生物学检验目的
01
02
03
确定病原体种类
通过检验标本中的微生物， 明确病原体种类，为针对 性治疗提供依据。
评估病情严重程度
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
临床微生物检验标本采集规范要求★
24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感 染，可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最 佳的采集时间，如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检 验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本，应采取 适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况，避免干扰检验结果。
临床微生物标本采集和送检指南
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中，可能会遇到以下挑战和问题： 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本，避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切，确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染：在运送过程中，应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本，并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达：标本应在采集后尽快送至实验室进行检测，以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检，应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道，加强与实验室、医生之间的协作和信息共享，及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本，应严格遵守相关规定，确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段，如电子病历、远程诊断等，提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息：在运送过程中，应记录标本的相关信息，包括采集时间、送检 时间、接收人员等，以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难：如遇采血困难，可适当调整采血部位或改变采血方式，如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血，可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误：如遇标识错误，应立即纠正并重新标识标本。同时，对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结，以避免类似错误再次发生。
临床微生物学检验标本的采集
快速运输
03
在运输过程中应尽量缩短时间，选择适当的交通工具，保持容
器密封、避光、防震，以确保标本质量不受影响。
05
临床微生物学检验标本采集的常见问
题及解决方案
采集方法不当
总结词
采集方法不正确可能导致微生物污染或样本质量下降，影响检验结果的准确性。
详细描述
采集过程中应遵循无菌操作原则，正确使用采集工具，避免交叉感染。对于不同种类的标本，应采用不同的采集 方法和注意事项。
尿液标本
尿常规检查
检测尿液中的蛋白质、糖、酮体等成分，辅助诊断肾脏疾病和糖尿病等。
尿培养
用于检测尿液中的病原菌，如尿路感染等。
粪便标本
粪便常规检查
检测粪便中的红细胞、白细胞、寄生 虫等，辅助诊断消化道疾病。
粪便培养
用于检测粪便中的病原菌，如细菌性 痢疾等。
呼吸道标本
痰液检查
通过痰液中的细胞和病原菌，辅助诊断呼吸道感染。
THANKS
感谢观看
采集时机不当
总结词
采集时机不合适可能影响微生物的存活和繁殖，进而影响检验结果。
详细描述
应根据检验目的和要求选择合适的采集时机，如空腹采集血液、尿液等。同时，应注意采集过程中的 时间控制，避免长时间暴露在空气中。
采集容器选择不当
总结词
采集容器选择不当可能导致微生物死亡或繁殖受限，影响检验结果。
详细描述
量。
减少外界干扰
在采集过程中应尽量减少外界因 素的干扰，如避免过度挤压、避 免接触非采集部位等，以降低外
界微生物的混入。
采集后的保存和运
及时处理
01
采集后的标本应及时进行处理，避免长时间放置，以免影响微
临床微生物检验标本的采集、运送及接种要点
检查采集器具和试剂的有效期
在采集前，检查采集器具和试剂的生产日期和有 效期，确保采集过程中使用的物品符合质量要求。
无菌操作技术规范培训
01
02
03
培训采集人员
对采集人员进行无菌操作 技术规范的培训，确保他 们掌握正确的采集方法和 注意事项。
报告审核
由经验丰富的专业人员对报告进行审核，确 保报告的准确性和可靠性。
报告存档
对出具的报告进行存档管理，以备后续查询 和追溯。
07 注意事项与常见问题解答
采集过程中注意事项
严格无菌操作
采集标本时应避免污染，确保无菌操作，以免影响检验 结果。
采集适量标本
采集标本量应适中，过多或过少均可能影响检验结果。
定期监测
定期对保存条件进行监测和记录，确保标本保存环境稳定可靠。
超出保存期限处理
对于超出保存期限的标本，应按照相关规定进行处理，避免误用 或浪费。
05 标本接种操作要点
接种前培养基准备工作
选择合适培养基
根据待检微生物种类选择合适的培养基，确保能 够提供其生长所需的营养物质和环境条件。
培养基灭菌
对培养基进行高压蒸汽灭菌或干热灭菌，以消除 杂菌和污染。
将拭子插入鼻腔至鼻咽部，轻轻旋 转后取出。
03
02
咽拭子
用无菌拭子擦拭咽后壁及两侧扁桃 体，避免触及舌部。
采集容器
应使用无菌、有盖、干燥的容器， 痰标本也可使用无菌痰杯。
04
其他类型标本采集
脑脊液标本
由医生进行腰椎穿刺采集，过程中需严格无 菌操作。
穿刺液标本
临床微生物标本采集与运送
临床微生物标本采集与运送1.微生物标本采集原则是什么？答：微生物标本采集原则是：（1）.避免长居菌群污染。
（2）.在感染的急性期、使用抗生素前采集标本。
（3）.选择正确的采集部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
（4）.标本采集后应立即送检，常规培养应在2h内（厌氧培养应不超过30min）送达实验室。
2.在诊断导管相关血流感染时，如何正确采集血培养标本？答：诊断导管相关血流感染时，根据是否保留血管内导管采取不同采集方法：（1）.保留导尿：至少采集两套血培养，其中至少一套经外周静脉采集，另一套从导管内或输液港隔膜无菌方法采集。
两个位置采血间隔时间＜5min。
各自做好标记。
（2）.不保留导管：从独立的外周静脉采集两套血培养，并送导管尖端进行培养。
血标本应在采集后2h内送到实验室，若不能及时送检，应室温保存。
3.留置导尿管患者如何正确采集尿培养标本？答：留置导尿管患者采集标本前，应先夹住导尿管，采集时松开导尿管，并弃其前段尿液。
消毒导尿管采样部位，将注射器刺入导尿管，抽取尿液置于无菌容器中送检。
4.如何正确采集痰液标本？答：痰液标本的采集可采用自然咳痰法、支气管镜法、经人工气道抽吸等多种方法。
自然咳痰法采集时，病人应留取清晨第二口痰。
采集标本前应取下假牙，清洁口腔（不用牙膏），用力咳出气管深部的痰，直接吐入无菌容器内。
咳痰困难者可先予雾化。
5.如何正确采集手术切口感染标本？答：采集手术切口感染标本时，应先用无菌生理盐水擦拭感染局部两遍，去除切口表面渗出物和皮肤污染菌，再用含生理盐水的无菌拭子两个，采集病灶边缘或脓腔囊壁脓液或分泌物，分别进行微生物培养和涂片检查。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
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二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
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血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
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血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
2024版临床微生物标本采集规范
临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本，可以对病原体进行准确鉴定和分类，为医生提供准确的诊断依据。
通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。
根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。
通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。
无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。
根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。
采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。
采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。
血液标本通过静脉采血或末梢采血获得，用于检测血液中的病原体和抗体等。
尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得，用于检测泌尿系统感染等。
粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得，用于检测肠道感染和寄生虫病等。
呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得，用于检测呼吸道感染和肺部感染等。
生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得，用于检测生殖道感染和性传播疾病等。
其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等，用于检测相应部位的感染和病变情况。
微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集，同时在使用抗生素之前采集。
成人一般选择肘静脉，新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。
成人一般采集8-10ml，儿童采集3-5ml，婴儿采集1-2ml。
严格无菌操作，避免污染，同时防止溶血。
采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿，即晨尿。
临床微生物标本的正确采集与运送图文
临床微生物标本的正确采集与运送图文微生物学在临床上发挥着重要作用，正确的采样和运送过程对于准确诊断和治疗具有决定性影响。
本文将介绍临床微生物标本采集和运送的基本原则。
一、标本采集前的准备工作1.1 了解患者的情况在进行采样之前，了解患者病史、症状、用药情况等可以帮助选择合适的采样部位和方法。
例如，对于胸腔感染，应在患侧插入穿刺针进行胸腔穿刺；对于泌尿系感染，应在初尿流进行尿液采集。
1.2 选择合适的采样部位和方法选择合适的采样部位和方法可以提高标本的阳性率。
下面介绍一些常见的采样部位和方法：血液标本血液标本是诊断血液感染和细菌性心内膜炎的关键。
采血前需要消毒采血部位，并选择合适的采血管和采血顺序。
常见的采血部位有手腕、肘窝、背侧手腕、踝部，而采血顺序为无菌采血管先于常规采血管。
尿液标本尿液标本是诊断泌尿系感染的重要手段。
采样前需要让患者清洁外阴，并选择合适的采样时机。
中段尿和早晨起床第一次排尿的尿液最为理想。
呼吸道标本呼吸道标本可用于诊断呼吸道感染、肺炎等疾病。
采样前需要清洁口腔和鼻腔，并采用合适的方法进行采样。
常见的方法有喉拭子和气管切开。
胃肠标本胃肠标本可用于诊断肠道感染、胃溃疡等疾病。
采样前需要清洁口腔和肛门，并选择合适的采样方法。
常见的方法有粪便标本、肠内容物吸取和胃液抽取。
1.3 配置必要的采样器材采集标本需要用到一些专门的器材，例如无菌采血针、采尿器、拭子、鱼雷管等。
采集前需要进行消毒和验证，并确保器材无损坏和过期。
二、标本采集时的注意事项2.1 彻底消毒采样部位对于需要皮肤穿刺的采样部位，必须进行彻底的消毒，以避免细菌污染。
消毒前应先清洁采样部位，并使用适宜的消毒剂进行消毒。
2.2 采样过程中遵循无菌原则采样过程中必须遵循无菌原则，以防止其他有害细菌或病毒的污染。
进行采样操作前，应先进行手卫生并配备隔离装备。
2.3 避免污染和误差在采集标本的过程中，必须避免污染和误差。
应严格按照标本类型、采样方法和储存条件进行操作，防止错误或污染发生。
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检测灵敏度
• 1对血培养检测灵敏度：73.2% • 2对血培养检测灵敏度：93.9% • 3对血培养检测灵敏度：96.9%
培养瓶的消毒程序
• 去掉培养瓶口的塑料盖 • 75%酒精消毒血培养橡皮塞子60秒 • 自然待干
• 将标本注入培养瓶
• 颠倒混匀标本与肉汤，以避免血液凝集
血培养标本的运送
• 尽快送检，不得超过2h • 如无法及时送检，室温20-25 °保存，切勿冷藏
粪便细菌培养标本
• 采集容器：无菌容器
•
采样时机：
① 发病早期和使用抗生素前，不同时间采集2-3个标本 ② 沙门菌感染、肠热症在2周以后
③ 胃肠炎急性期，尽早采集新鲜粪便
采集方法： ① 自然排便采集法 ② 直肠拭子采集法
注意事项
• 采集后2h内送检
•
• • •
高度怀疑霍乱弧菌感染标本，运送必须符合特殊标本的安全要求
尿培养标本
• 采集容器：无菌尿杯
•
采集时机：
① 使用抗生素前，清晨第一次中段尿 ② 膀胱穿刺尿采集法 ③ 肾盂尿采集法 ④ 导尿采集法 ⑤ 集尿法：留取24h尿，取沉渣10-15ml送检
注意事项
• 进行细菌培养的尿标本不能添加防腐剂 • 长期留置导尿管的患者，常规尿液细菌培养没有临床意义 • 直接导尿可能导致尿道细菌进入膀胱，增加医源性感染的危险
注意事项
• 常规细菌培养标本在2h内送检 • 疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，标本采集后立即送检 • 痰标本一般不适用于厌氧菌感染
• 对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每日一次，连续2-3天。不建议
24h内多次采集
咽拭子、鼻咽拭子培养标本
• 采样时机：怀疑感染存在，应立即采集标本。最好在使用抗菌药物前
管中，避免标本泄露污染
谢谢！
③ 不能以带针头的注射器直接运送标本至实验室
④ 标本已渗漏，不能送至检验科
标本的选择和采集
2.有正常菌群出现的感染部位（皮肤、黏膜、呼吸道、消化道） ① 采集时应避免寄生菌的污染 ② 选择正确的解剖部位、合适的时间、适当的设备采集标本
③对于厌氧菌的培养标本，活检组织、穿刺针抽取物最佳，不能冷藏，及时送检
血培养标本采集时机
• 高热、寒战初期，为最佳时机 • 抗生素使用前 • 如已使用抗生素，应在下一次用药之前采集
采血量
• 血量与培养基之比为1 : 5 ～ 1 ：10 • 成人采血量8 ～ 10ml • 儿童3 ～5ml
• 婴幼儿1 ～2ml
采血次数
• 24h内成人采集2 ～3套（不同部位采集） • 疑为急性细菌性心内膜炎者：必须在使用抗生素前30min之内采集3 套，如24h培养为阴性，则继续采集2套
血培养采集的注意事项
• 静脉采血，不建议动脉采血 • 不宜从静脉导管或静脉留置装置取血 • 若必须从导管出取血，弃初段血，不用抗凝剂
• 血培养瓶常温保存，无需冷藏
• 条码信息清晰、正确
• 注意无菌操作
呼吸道标本采集
• 容器：无菌宽口杯 • 采集时机：使用抗生素前，清晨第一次痰液，送检 • 下呼吸道分泌物、支气管纤维镜刷片，也宜清晨空腹采集
• 不明原因的发热（ ≥ 38 ℃ ）或低温（ ≤36 ℃ ） • 寒战、休克、昏迷 • 白细胞增多 • 严重的局部感染（脑膜炎、心内膜炎、肺炎、 肾盂肾炎等） • 血小板减少 • 皮肤粘膜出血 • 心律异常加快 • 多器官功能衰竭 • 血压降低或升高 • 呼吸频率加快 • 降钙素预案升高或C反应蛋白升高临源自微生物标本采集临床微生物标本
• • 血标本 呼吸道标本（痰、肺泡灌洗液、咽拭子）
•
• • • •
尿标本
粪便标本 生殖道标本 脓液标本 穿刺液
•
•
骨髓标本
……
采集指导
1.标本管理的安全性提示 ① 所有标本采集和处理过程应在无菌操作、防止污染原则下认真进行， 医务人员做好个人防护
② 标本容器防渗漏、密封，条码清晰，专业人员在规定时间内安全运送
或停止用药后1-2天采集
• 采集方法：
① 咽拭子：用无菌拭子擦溃疡或创面分泌物，咽后壁或悬雍垂的后侧反
复涂抹数次 ② 鼻咽拭子：患者用无菌生理盐水漱口，用拭子深入鼻腔至少深1cm处， 旋转拭子，停留10-15秒，插入拭子培养基后立即送检
注意事项
• 鼻咽部拭子主要用于诊断脑膜炎奈瑟菌携带者或百日咳患者，不能用 来检测鼻窦感染的病原体 • 咽拭子培养不能用于会厌发炎的患者
④ 采集足够的标本量，以保证检测的阳性率
⑤ 每份标本的条码信息正确
标本运送
• 细菌学检验标本，采集后2h内检验 • 厌氧菌的标本，运送时间与标本量有关，标本量少15-30min内送检 • 疑似脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌等对低温敏感菌感染的标本，应立
即送检
血培养标本采集
可疑血流感染的患者出现以下一项或几项体征时应及时采集血培养：
• 亚急性心内膜炎：24h内从不同部位采集3套，间隔时间30-60min,
如24h培养为阴性，则继续采集2套
导管相关的血流感染
• 通过静脉穿刺采集2套血标本 • 无菌操作拔出导管，做导管尖端培养
静脉输液港
• 至少采集2套血培养 • 1套通过静脉穿刺采集 • 另1套必须通过导管插孔或静脉输液港隔膜进行无菌采集
一般不做粪便培养 除婴儿和有活动性腹泻症状的患者外，不推荐使用拭子做常规病原检测 有腹部痉挛的患者，在发病6h内采集到血便或水样便的效果最好
住院超过3天或入院诊断不是胃肠炎的患者，应考虑抗菌药物相关腹泻的检测，
•
疑似致病性大肠埃希氏菌、气单胞菌、弧菌、小肠结肠炎耶尔森菌等感人的
患者，需要培养时，须另外提出申请
穿刺液
• 采集容器：无菌试管 • 采集时机：怀疑感染存在，应立即采集标本。最好在使用抗菌药物前 或停止用药1-2天采集
转运、保存和注意事项
• 标本采集后，立即送检或1h内送检。如果做真菌培养，标本应在4 ℃ 下保存 • 尽量以标本的原始状态送检，勿用拭子送检
• 不能以带针头的注射器直接运送标本至实验室，应将标本移至无菌试