临床微生物标本采集规范ppt

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微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件

微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
管理流程不严密
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程,以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备,确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程,加强监督和质量控制,确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间,影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等,可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备,可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集,将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位,如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭;或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理

《微生物标本采集》ppt课件

《微生物标本采集》ppt课件

采集量
成人一般采集5-10ml,儿童根据年龄和体重适 当减少。
尿液标本的采集
01
采集时间
一般选择清晨第一
次尿,即晨尿。
02
采集方法
清洁尿道口后,留 取中段尿于无菌容
器中。
04
注意事项
女性患者应避开月
03
经期;留取尿液前
避免大量饮水。
采集量
一般留取10-20ml 。
粪便标本的采集
采集时间
选择患者腹泻时或怀疑有肠道感染时 进行采集。
微生物标本的安全管理要求
01
严格遵守生物安全相关规定,确保微生物标本 的安全处理和管理。
02
对具有潜在危险的微生物标本进行分类和管理, 采取必要的防护措施。
03
建立微生物标本的登记和追踪制度,确保标本来源 和去向的可追溯性。
04
对废弃的微生物标本进行安全处理,防止对环境造 成污染。
防止微生物标本污染的措施与方法
05
微生物标本的质量控制与安 全管理
微生物标本的质量控制措施
建立完善的微生物标本采集、运输、 保存和处理的操作规程,确保标本 质量。
建立标本质量监测和反馈机制,对 不合格标本进行及时处理和改进。
对采集人员进行专业培训,提高其 操作技能和质量意识。
定期对采集器具、试剂和耗材进行 质量检查和评估,确保其符合相关 标准。
选择合适的容器
根据采集标本的类型和后 续检测需求,选择合适的 容器,如无菌试管、培养 皿等。
准备试剂
根据检测需求,准备相应 的试剂,如培养基、抗凝 剂、保存液等。
检查容器与试剂
在使用前检查容器和试剂 是否完好无损、无污染, 并在有效期内。
告知患者采集标本的注意事项

标本采集PPT课件

标本采集PPT课件
非越多越好,超过一定的采血量会稀释培养瓶内 的肉汤,影响检测结果。
温即可,温度过低会导致对温度敏感的细菌死亡。

血培养对无菌操作的要求比注射、采集生化、
凝血等其它标本要高,所以要最先采集血培养
标本
1、成人一份标本2个培养瓶(需氧+厌氧),每

血培养瓶(厌氧优先) 凝血试管(蓝色) 其 它有抗凝剂管(黑-绿-紫) 无添加剂管(红色,
处理程序
1、护士发现采集标本错误,立即停 止送检,重新采集标本,并做好解释。 2、发现标本有误或检验结果有质疑, 立即核查,通知医生,做好解释,重 新采集标本。 各类标本在采集、暂存与运送过程中 发生标本撒漏、标本容器破损等紧急 意外事件时,立即按医疗垃圾处理标 本,重新采集标本。
谢谢
苏朦朦 2017/11/26
22
2024/5/22
要看懂胸水的报告,首先要分清是漏出液还是渗出液
成功项胸目水展示
漏出液可见于:充血性心力衰竭、上腔静脉阻塞、缩窄性 心包炎、肝硬化、肾病综合征、急性肾小球肾炎、腹膜透 析、粘液性水肿、药物过敏和放射反应等。
渗出液又可分: 1.浆液性:①感染性疾病:结核性胸膜炎,肺炎、病毒、真菌和寄生 虫感染;②恶性肿瘤;③肺栓塞;④结缔组织疾病;⑤Meigs综合征 等。 2.脓胸:①结核性脓胸;②肺部感染引起脓胸;③外伤、食管穿孔、 气胸、胸腔穿刺或术后继发化脓性感染等。 3.血胸:①恶性肿瘤;②外伤;③血气胸;④胸主动脉瘤破裂;⑤肺 栓塞等。 4.乳糜胸:①外伤致胸导管破裂;②丝虫病;③肿瘤致胸导管阻塞等。
血培养,30分钟内完成3套血培养的采集,采集
后立即进行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报
告阴性,则继续采集2套血培养。
年度工血作液概述

临床微生物标本采集及运送PPT课件

临床微生物标本采集及运送PPT课件
已接种的培养基放co培养箱35培养1824h55培养基的选择痰标本血巧伤口分泌物脓汁血mac淋球菌gc真菌培养血念显大便血macss院感普通营养琼脂霍乱培养血macssvib或tcbs56已经检测完的标本盖回塞子每天的标本统一放入注明当天日期的袋子里血液标本48冰库保存对亍超过保存期微生物所有的标本由生物安全员或指定人员对其进行高压灭菌后放入医用垃圾桶中再由环卫部门定期上门接收统一处理
,避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前,以晨起进食前为宜,取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量,降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查,二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好,防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检,实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内,半小时送检是可接受的,如 果送检时间超过 1 小时,则会影响结果。
注:某些细菌具有自溶酶,放置时间过长易自溶死亡,因此, 标本应立即送检,并且保温(禁止放冰箱,因脑膜炎双球 菌遇冷死亡)
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的,而尿道口有正常菌群寄生,标本的采集 必须无菌操作。

临床微生物标本的采集与送检培训课件

临床微生物标本的采集与送检培训课件

临床微生物标本的采集与送检
41
采集方法
自然排便采集法 自然排便后,挑取其脓 血、粘液部分2-3g,液状粪便取絮状物23ml,盛于灭菌容器内或保存液中送检
直肠拭子方法 如不易获得粪便时,或排 泄困难的患者及婴儿,可用直肠拭子采取, 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后,插入 肛门内4-5cm(幼儿2-3cm)轻轻转动取出, 插入无菌试管内送检。
19
静脉血采集操作步骤及要点
携用物至床边,核对床号、姓名、解释 戴手套,选择静脉,常规系止血带、 消毒皮肤,嘱患者握拳 行静脉穿刺、取血、松止血带、 嘱患者松拳、按压针眼、迅速拔针 穿刺点按压2~3min
临床微生物标本的采集与送检
20
血液注入标本瓶内方法 血清标本:
取下针头,将血液顺试管 壁缓慢注入干燥试管(最常 用)内。
11
标本的运送原则
①所有的标本都必须立即送往实验室,最 好在2h内,保存时间不应超过24h.
②最佳的临床标本送检首先取决于所获取 标本的量.量少的标本应在采集后15-30min 内送检.
③对环境敏感的微生物如志贺菌、奈瑟氏 菌和流感嗜血杆菌(对低温敏感)应立即 处理,禁止冷藏脊髓液和生殖道、眼部、 内耳道标本。
临床微生物标本的采集与送检
24
血标本的微生物学检查
1.采血时间及次数:一般应在抗生素治疗前, 发热初期或高峰时抽血。
a. 伤寒患者应在发热1-2周内抽血 b. 化脓性脑膜炎、鼠疫或野兔热患者应在发热
1-2d内抽血 c. 急性败血症应在24小时内抽血3次或更多次,
并可在不同部位,如左、右手臂或颈部
临床微生物标本的采集与送检
44
痰及上呼吸道标本
采集时间: 痰:一般以晨痰为好;支气管扩张症患者,

临床微生物学检验标本课件

临床微生物学检验标本课件

2020/11/14
46
常见病原体
20
◈真菌血症
病原体:真菌 特点:
☆多数伴有细菌感染 ☆主要发生于菌群失调患者 ☆常可播散累及肝、肺、和心内膜等
2020/11/14
21
脑脊液
采集方法
◈ 腰椎穿刺术 ◈ 小脑延髓池穿刺术 ◈ 脑室穿刺术
2020/11/14
22
采集量:1~3ml 送检要求
☆置无菌管内立即送检,不超过1h。 ☆特殊培养保温送检或床旁接种。
物的培养基 ◈ 间歇性寒战或发热:寒战或发热高峰到来之前
0.5~1h、寒战或发热后1h采血
2020/11/14
10
特殊的全身性和局部感染患者采血培养建议
♦ 可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨 髓炎、关节炎或肺炎,应在不同部位采集2~3份血 标本。
♦ 不明原因发热,先采集2~3份血标本,24~36h后 估计体温升高之前再采集2份以上。
39
◈ 烧伤创面感染最常见G-杆菌感染(如铜绿假单胞 菌)
◈ 急性化脓性骨关节炎常由金黄色葡萄球菌、溶血 性链球菌、淋病奈瑟菌、肺炎链球菌感染导致
◈ 慢性化脓性骨关节炎、慢性骨髓炎常由结核分枝 杆菌感染引起
2020/11/14
40
痰液
标本采集
➢ 采集指征:有下列指征时,应采集痰标本
◈咳嗽、咳痰
乙型脑炎病毒
新型隐球菌
柯萨奇病毒A
白色假丝酵母菌
柯萨奇病毒B
钩端螺旋体
脊髓灰质炎病毒
新肠道病毒68~71
狂犬病毒
2020/11/14
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临床意义
➢ 正常人脑脊液无菌 ➢ 病原体通过血脑屏障进入中枢神经系统引起

微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件

微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件
4)咽用压舌板压舌;用无菌拭子在后咽部、扁桃体 和其它感染部位采集标本;怀疑白喉可用无菌拭
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时,室温;拭子:≤1小时,室温, 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群,故采集尿液时 更应注意无菌操作,常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养,最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难,可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶, 标本量≥1毫升,条件≤2小时,室温,1次/ 天。
3)肛拭子:小心将拭子插入肛门,大约在括约肌之 上2-3厘米;轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本;
要在拭子上明显看到粪便,才能检测腹泻病原体 。拭子采集,≤2小时,室温,1次/天。除了长期
卧床、无便(如中毒性痢疾)患者及频繁腹泻患
者,不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序:
用75%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞(不能用含碘消 毒剂),作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体.然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次; 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次,每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面;如不做活检,用力以拭子抹 取褥疮基底部;将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时,室温,1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等,实用抗感染治疗学 ,北京: 人民卫生出版社,2004,24 ~33.

ICU微生物标本采集演稿PPT课件

ICU微生物标本采集演稿PPT课件

采集方法不规范
采集过程中操作不规范,导致标本受到污染 或破坏。
送检不及时
标本采集后未能及时送检,导致标本变质或 失效。
问题产生的原因及解决方案
原因
医护人员对采集时机和方法不够 了解或重视。
解决方案
加强培训和教育,提高医护人员对 标本采集的重视和规范操作意识。
原因
采集过程中的操作不够规范和标准。
问题产生的原因及解决方案
在采集过程中,要避免 样本间的交叉污染,确
保样本的纯度。
记录相关信息
详细记录采集时间、采 集部位、患者情况等信 息,为后续分析提供依
据。
采集后的处理和保存
及时送检
采集后应尽快将样本送至实验 室进行检测,确保样本的新鲜
度和活性。
低温保存
如不能及时送检,应将样本保 存在低温环境中,防止微生物 死亡或污染。
送标本等步骤。
采集注意事项
采集过程中需遵循无菌操作原则, 避免交叉感染;采集的标本应具 有代表性,能够真实反映感染情 况;采集后应及时送检,避免标
本变质或污染。
微生物标本采集的注意事项
01
02
03
04
采集时间
采集时间应在抗生素使用前或 停用一段时间后进行,以避免 抗生素对检测结果的影响。
采集部位
采集部位应选择感染部位或病 变组织,避免在正常组织或非
THANKS FOR WATCHING
感谢您的观看
解决方案
制定详细的采集操作规程, 加强操作技能的培训和实 践。
原因
标识系统不够完善或标识 不规范。
解决方案
建立完善的标识系统,统 一标识格式和信息内容, 确保标识清晰、准确。
问题产生的原因及解决方案

微生物标本采集PPT

微生物标本采集PPT
四、标本运输 ① 标本采集后需尽快送到实验室; ② 不要冷藏标本。
四、标本采集—气道吸取标本
一、临床采样指征 有气管插管或气管切开等人工气道患者,无法自行咳
痰,可通过吸痰管从气道吸取标本。
二、标本采集 通过气管内插管将一次性无菌吸痰管推进呼吸道直至
遇到阻力后开始抽吸,留取标本在吸痰杯内。
四、标本采集—气道吸取标本
二、生物标本运送的基本原则
三、微生物实验室对标本的拒收标准
1. 标本采集至实验室接收过程间隔过长,或无标本采集时 间,或保存的温度不当。
2. 标本运送条件不正确:如厌氧培养标本却在有氧条件下 送检。
3. 容器不规范:如容器有裂缝或被打破导致标本泄露、容 器非无菌等。
4. 未贴标签或贴错标签:标本与检验目的不符合,如痰培 养送检尿标本;患者信息与标本不符,如女性患者送检 前列腺标本。
四、标本采集—血培养
二、标本采集: 1.菌血症: ① 采血时机:寒战开始时,发热高峰前30-60min内;使用抗菌药物治疗前
采集,如已用药,则在下一次用药之前采集最佳。 ② 采血部位:通常为肘静脉,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀
疑有导管相关的血流感染,应避免从留置静脉或动脉导管取血,因为导 管常伴有定植菌存在。 ③ 采血工具:真空血培养瓶,如培养瓶的储存温度为2-8℃,应先复温 30min左右,平衡至室温再采血。同一部位双瓶采集时不建议更换针头。 ④ 采血次数、血培养瓶选择:对于成人患者,应同时分别在两个部位采集 血标本;每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶。 ⑤ 采血量:影响阳性率的重要因素,过少明显降低阳性率,5-10ml/瓶。 ⑥ 皮肤、血培养瓶消毒:穿刺前皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥。 ⑦ 避免采血管内空气注入厌氧血培养瓶。

完整微生物标本的正确采集运送ppt课件

完整微生物标本的正确采集运送ppt课件

05 微生物标本采集的常见问 题及解决方案
采集方法不当导致的问题
采集量不足
采集的微生物标本量过 少,可能导致检测结果
不准确或无法检测。
采集部位不准确
采集的部位与感染病灶 不符,导致检测结果不
准确。
采集时机不当
在感染病灶未形成或已 消退时采集,可能导致
检测结果为阴性。
采集工具污染
采集工具未经过严格消毒 或污染,可能导致交叉感 染或检测结果不准确。
防止污染
在保存和运输过程中要防 止标本受到污染,确保其 无菌性。
03 微生物标本的运送
运送工具的选择
密封容器
冷藏设备
选择密封性好的容器,以防止微生物 泄漏和交叉污染。
如果需要冷藏,应使用适当的冷藏设 备,以确保微生物活性。
防漏容器
使用防漏容器,以避免在运送过程中 发生泄漏。
运送过程中的温度控制
完整微生物标本的正确采集运送 ppt课件
目录
• 引言 • 微生物标本采集的方法和步骤 • 微生物标本的运送 • 微生物标本的质量保证 • 微生物标本采集的常见问题及解决方案 • 结论
01 引言
Байду номын сангаас 目的和背景
微生物标本采集是诊断和治疗感染性 疾病的关键步骤,正确的采集和运送 方法对于确保实验室检测结果的准确 性和可靠性至关重要。
运送过程中出现的问题
运送时间过长
微生物标本在运送过程中停留时 间过长,可能导致微生物死亡或
繁殖,影响检测结果。
温度控制不当
微生物标本需要在一定的温度条件 下保存和运送,温度过高或过低都 可能影响检测结果。
保护措施不当
微生物标本在运送过程中未得到适 当的保护,可能导致标本受到污染 或损坏。

完整 微生物标本的正确采集运送ppt课件

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极易由表皮葡萄球菌造成污染
标本采集步骤
血培养标本的运送要求和拒收标准
采血量
• 成年人采血量为10~20ml, 婴幼儿为1~2ml,儿童3~5ml
血液标本与培养基之比1:5 -1:10为宜
成人血液中含有的菌量 <=10cfu/ml 儿童血液中含有的菌量 100~1000cfu/ml
• 需氧瓶和厌氧瓶
– 对常规血培养,建议采需氧和厌氧的一套血培养瓶 – 当采血量不能满足推荐的血量时,需氧培养优先
先注入哪个瓶?
影响阳性标本检测的因素
绝对需氧菌
苛养菌?
生长因子X,V 维生素B6,K3
1.细菌
兼性厌氧菌 微需氧菌 绝对厌氧菌
影响阳性标本检测的因素
高?
2. 血中细菌的浓度
低? - 成人:血中细菌1~30 CFU/ml - 儿童:血中细菌高于成人 (100~1000 CFU/ml或更高)
为何要多次采血?
• 血循环中的细菌有“暂时性”、“持 续性” • 一过性的菌血症,细菌仅在外周血中 持续数秒 • 共生菌、复数菌 • 提高检出率、减少漏检,判断病原
采血部位
• 多次采血时,应在不同部位进行 消 毒 剂 的 作 用 时 间 • 切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本
避免由插管或导管取标本
4. 标本的采集次数和采集量
采 血 量 与 检 出 率 的 关 系
每增加 1 毫升血 = 增加 3% 的敏感度 (由0.6%至4.7%)
每天1、2、或3次血培养对敏感度的影响
100% 95% 90% 85% 80% 75% 70% 1 2 3
96% 89%
99%
所以一般要求血培养一天做3次
血培养的阳性检出率低原因:

临床微生物标本采集和运送规范

临床微生物标本采集和运送规范
19
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室,1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点,应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物,枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记:不要只写“伤口〞标记标本,应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序:推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序:75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量:成人8-10ml,儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h,或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养;无菌体液(胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁)真菌培养;支原体培养;衣原体检查;血清学检查(包括ASO、RF、 肥达反应)
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意:从静脉取血;不要与血气和血沉标本一起采血; 不推荐血入瓶前换针头;不推荐静脉血直接入瓶;不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕,儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1%〕。血液和肉汤之比为1:5~1: 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜,并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
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国内微生物标本的采集目前存在的问 题
标本送检率低 从全国来看,抗感染治疗前,送 检相关标本可能只占应送标本的一半左右,与抗 菌药物应用率之高形成鲜明的反差。一些医师在 经验性治疗受挫后方送标本,此时已失去阳性培 养的机会。 标本有缺陷 正确收集各种临床标本,关注特 检标本采样与送检的方法和条件,是完成病原学 诊断的先决条件。
(四)注意事项

1. 由于自然排尿收集的标本很难避免会阴部及 下尿道细菌污染,所以需要定量接种、合理评 价才能判断培养的细菌是否与尿路感染有关。 尿标本菌落计数中革兰阴性杆菌数>105CFU/ml 或革兰阳性球菌数>104CFU/ml时有临床诊断意 义。 (不是绝对的,受多因素影响,综合判断)
所谓“双瓶双侧”,是指从一个部位采 血接种一套培养瓶,再从另一部位采血接种 另一套培养瓶。(通常是双臂) 所谓“双侧双瓶”,是指从一个部位采 血接种一个需氧瓶,再从另一部位采血接种 另一个厌氧瓶。 一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视 为单个血培养。

3.采集次数
要求:对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者 ,推荐同时采集2~3套(不同部位)血培养 标本(即双瓶双臂同时采集血培养标本) 。 婴幼儿患者,推荐同时采集2次(不同部位 )血培养标本。 说明:除特殊情况之外,在采取血培养后的2 至5天内,无需重复采取血培养。因为抗菌 治疗的2至5天内,血液中的细菌不会立即 消失。研究证明,血培养只做1套的检出率 为65%,做2套和3套的检出率分别为80% 和96%。单瓶的血培养检出率不高,而且 结果很难做出临床解释。
4.采血量 要求:
成年患者推荐的采血量为每套不少于 10ml, 每瓶不少于5ml。 婴幼儿患者推荐的采血量为每瓶不少于 2ml。
说明: 血标本采集的量是影响检出率的最重要的因 素。成人血培养采血量在2~30ml之间,病原 菌检出率与采血量成正比例增长。每增加1ml 的血液,病原菌的检出率增加3.2%。儿童患 者因为血液中病原菌浓度较高,血培养量无 需等同于成人。对血液病患者或者血容量相 对较低的患者建议使用儿童瓶来减少血液的 采集量增加病原菌的检出率。

由于婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕见, 婴幼儿血培养可以仅用需氧瓶,为提高检出 率、区分污染菌,应采用两只需氧瓶为一组 血培养。仍然采用双侧双瓶的采血方式。
6.血培养标本的运送
要求:(1)采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。 (2)血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。 说明:血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭,将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
7. 泌尿系统疾病手术前; 8. 有尿路感染症状者,前次培养结果阴性或抗 菌治疗48h后仍持续发热。 9. 抗生素停药后,感染症状再次出现。
(二)尿培养标本采集方法
1.清洁中段尿 留取清晨清洁中段尿标本,先 用肥皂水仔细清洗会阴部,再用清水冲洗尿 道口周围;将前段尿排去,留取中段尿10ml 左右于无菌容器内,立即加盖送检,2h内接 种。该方法简单、易行,是最常用的尿标本 收集方法,但是容易受到会阴部细菌污染。
临床微生物标本采集
(一)血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感 染的患者 1. 发热(≥38℃)或低温(≤36℃) 2. 寒战 3. 白细胞增多(>10×109/L,特别有“核左 移”未成熟的或杆状核白细胞增多) 4. 粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1×109/L)
5 . 血小板减少 6.皮肤粘膜出血 7.昏迷,休克 8.多器官衰竭 9. CRP升高 在评估可疑新生儿败血症时,除发热或低烧 外,很少培养出细菌,应该补充尿液和脑脊 液培养。 对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物 治疗之前,应及时采集血培养。
要求: 严格无菌操作,不允许在皮肤消毒后用手按 压静脉,除非带有无菌手套。 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头, 采用真空采血装置能降低污染率。 说明: 无论采用何种采血方法,血培养可接受的污 染率通常是≤3%。研究表明,经过专门培训 的熟练抽血者采集血培养的污染率为3%,而 未经培训的住院医生和护士污染率则达11%。 因此对临床护士就血培养标本采集进行专门 的、严格的培训是非常必要的。
二 、下呼吸道(痰培养)标本采集规范 标本采集方法
医师或护士直视下采集标本 病人先漱口,去除的痰

临床上约半数咳痰标本不合格!咳痰途径口 咽部不可避免地受到污染。 唾液中口咽部定植菌的浓度可达108 ~109/ml。 研究显示,国内常规痰标本中约半数存在唾 液严重污染现象。
如何提高细菌阳性检出率
标本采集时机 标本采集方法 标本的质与量 标本的运送与保存 镜检筛选合格标本 高质量、多种分离培养基 培养环境 临床医生对报告单的解读及抗生素合理使 用

微生物标本采集基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧 培养 5.混有正常菌群污染标本,不可置肉汤培养 6.标本容器须灭菌处理,但不得使用消毒剂 7.送检标本应注明来源和检验目的
(三)采集时间和标本运送
1.应选择在抗菌药物应用前或停用抗菌药物5天 后采集尿液。 2.通常采集清晨第1次尿液送检,确保尿液在膀 胱内停留4h以上,使细菌有足够时间繁殖。嘱 患者睡前少饮水以免尿液稀释。 3.怀疑沙门菌感染时应在发病2周左右采集尿液 培养。
4.对无症状的患者应连续采集3天晨尿送检。 5.怀疑结核分枝杆菌感染时,患者应停药1-2天 后采集晨尿或24h尿的沉渣部分10-15ml送检。 6. 标本采集后应立即送检、及时接种,室温下 保存时间不得超过2h(夏季保存时间应适当缩 短或冷藏保存),冷藏保存标本必须在6h内进 行接种,但冷藏保存的标本不能用于淋病奈瑟 菌培养。
4.小儿收集包 无自控能力的小儿可用收集包 收集尿液,这种装置由于很难避免会阴部菌群 污染产生假阳性,所以只有在检验结果为阴性 时才有意义。如果检验结果为阳性,应结合临 床进行分析,必要时可使用膀胱上穿刺或导尿 法留取标本进行复检。
5.留置导尿管收集尿液 用导尿管导取1015ml尿液置灭菌容器内送检。长期留置导尿管 者,应在更换新导尿管后留取尿标本。留置导 尿患者应消毒导尿管外部及尿管口,采取无菌 操作方法,用注射器通过导尿管吸取尿液。注 意防止混入消毒剂,不能从尿液收集袋中采集 尿液。

合格标本的判断标准:
外观:观察颜色、粘度、有无血丝或脓。若 标本为水状且很明显是唾液,则应拒收。为了 判定是否来自下呼吸道的痰,需检查是否为合 格的痰标本。白细胞>25个/低倍镜视野、鳞状 上皮细胞<10个/低倍镜视野为合格标本。采集 合格标本对细菌的诊断极为重要。
合格痰液标本
不合格痰液标本
为了提高病人血培养的阳性率,最好 的抽血时间是:

A.发热开始时 B.寒战开始时 C.发热最高峰时 D.寒战结束时 E.预计寒战发热前
2.采集部位
要求:从两侧上肢静脉采血,“双瓶双侧”采 血培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下 肢静脉采血做第三套血培养。 说明:不建议采集 (1)动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大; (2)静脉留置导管,因其常伴有高污染率。如 果必须从留置导管内采血,也应同时从外周静 脉采集另外一个血培养标本,以帮助阳性结果 的判读。
3.由于口腔和咽部存在大量的革兰阳性和革
兰阴性厌氧细菌,而且缺乏可靠的方法区
分它们究竟是致病菌还是定植菌,因此不
主张对咳痰标本进行厌氧菌培养。
4. 约有1/4-1/2肺部感染患者可能发生菌血
症,应同时做血培养。
三 、尿培养标本采集规范
(一)尿培养标本送检指征 1. 有典型的尿路感染症状; 2. 有肉眼脓尿或血尿; 3. 尿常规检查白细胞或亚硝酸盐阳性; 4. 有不明原因的发热,无其他局部症状; 5. 留置导尿管的患者出现发热; 6. 膀胱排空功能受损;
2.耻骨上膀胱穿刺 使用无菌注射器直接从 耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液,是评估 膀胱内细菌感染的“金标准”方法,主要用于 厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿尿标本的采 集。 3.直接导尿 按常规方法对会阴局部进行消 毒后,用导尿管直接经尿道插入膀胱,获取膀 胱尿液,可减少尿液标本污染,准确地反映膀 胱感染情况。但有可能下尿道细菌进入膀胱, 导致继发感染,一般不提倡使用。

2.小儿取痰法 用弯压舌板向后压舌,用棉
拭子深入咽部,小儿经压舌刺激咳嗽时, 可喷出肺部和气管分泌物,粘在棉拭子上 送检。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方, 以诱发咳痰。
3.支气管镜采集法
–-经支气管镜直接吸引 –-支气管肺泡灌洗 –-防污染样本毛刷
(三)注意事项
1. 痰标本不能及时送检者,可暂存4℃冰箱。
(一)采集指征

凡是发热、咳嗽和咳痰,痰呈脓性、粘稠或 血性,并伴有胸痛、气急,肺部闻及湿罗音, 外周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高, X线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液,甚 至出现感染性休克和呼吸衰竭等患者,应采 集痰液或下呼吸道标本。
对可疑烈性呼吸道传染病(如SARS、肺炭疽、 肺鼠疫等)患者采集检验标本时必须注意生 物安全防护。 对于细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连续 2-3天;不建议24h内多次采集,除非痰液外 观性状改变; 怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清晨痰 液送检

(二)采集方法
1、自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反复漱 口,用力咳出呼吸道深部的痰,痰液直接吐入 无菌容器中,尽快送检。否则有的细菌(如肺 炎链球菌、流感嗜血杆菌)在外界可能死亡。 不能及时送检的标本,室温保存≤2h。要求采 到肺深部的痰液,不要唾液。
在抗生素应用前采集痰标本; 标本采集后1-2h内必须立即进行实验室处理; 咳痰标本应用最早且广泛,但也是最受争议 的标本 ; 取标本前应摘去牙托,清洁口腔如刷牙和漱 口; 深咳,采集标本过程中要有专业的医务人员 指导;
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