冰冻切片实步骤
冰冻切片实验方案和HE染色
2-3人一组，分为7组（上课时需携带实验步骤）冰冻切片操作方法及步骤：1取材：(昆明小鼠各个组织或器官)取材时不能太大太厚，厚者冰冻费时，大者难以切完整，最好为24×24×2mm。
2包埋：取出组织支承器，放平摆好组织，周边滴上包埋剂，速放于冷冻台上，冰冻。
小组织的应先取一支承器，滴上包埋剂让其冷冻，形成一个小台后，再放上细小组织，滴上包埋剂。
注意：大组织进行包埋时，只要使组织固定在支承器上即可，切勿浪费包埋剂。
3修平：将冷冻好的组织块，夹紧于切片机直承器上，启动粗进退键，转动旋钮，将组织修平。
注意：修平过程中，正确使用切片机，不要一次性大量切割组织块，以防损毁切片刀。
4切片：调好切片的厚度，根据不同的组织而定，原则上是细胞密集的薄切，纤维多细胞稀的可稍为厚切，一般在5～10um间。
5调防卷板：制作冰冻切片，关键在于防卷板的调节上，这就要求操作者要细心，准确地将其调较好，调校至适当的位置。
切片时，切出的切片能在第一时间顺利地通过刀防卷板间的通道，平整地躺在持刀器的铁板上。
这时便可掀起防卷板，取一载玻片，将其附贴上即可。
6切片工作完成后，将冷冻机内的所有废物清理干净，切勿乱扔。
冰冻切片时的注意事项：1 防卷板及切片刀和持刀架上的板块应保持干净，需经常用毛笔挑除切片残余和用柔软的纸张擦。
有时需要每切完一张切片后就用纸擦一次。
因为这个地方是切片通过和附贴的地方，如果有残余的包埋剂粘于刀或板上，将会破坏甚至撕裂切片，便切片不能完整切出。
2 多例多块组织同时需做冰冻且片时，可各自放于不同的支承器上，于冷冻台上冻起来，然后依据不同的编号，依序切片，这样做既不费时也不会乱。
3 放置组织冰冻前，应视组织的形状及走势来放置，如果胡乱放置，就不能收到很好的效果。
4 组织块不须经各种固定液固定，尤其是含水的固定液，在未达到固定前，更不能使用。
临床快速冰冻切片，不须要预先固定，一是为了争取时间，二是固定了的组织，反而增加了切片的难度。
实验八 冰冻切片法
一 、实验目的• 学习冰冻切 Nhomakorabea法 • 了解组织染色原理
二、实验原理
• 用包埋剂包埋并冷冻固化组织； • 用碱性染料如苏木精、碱性品红等，使细 胞核着色； • 用酸性染料如伊红、酸性品红等，使细胞 中的嗜酸性成分着色，如蛋白质。
三 、实验用品
• 1、器材： • 切片机、染色缸、玻片、显微镜、试剂瓶、剪刀、镊子、 烘箱或酒精灯。 • 2、试剂 • 苏木色精、伊红、二甲苯、中性树胶、酒精、氨水、盐酸。 • 3、材料 • 各类你感兴趣的新鲜或固定标本。
四、实验步骤
• • • • • 1、取材：将材料切成5-8mm³的小块。 2、包埋：包埋剂包埋。 3、冷冻：放入冷冻切片机标本冷冻台。 4、切片：厚度7-8µm。 5、烘片、固定：烘箱烘片20-30min，甲醛 固定液固定；或直接酒精灯烘片。 • 6、染色与观察：（见下页）。
染色与观察
• 1%苏木色精（5min）——水洗——0.5%盐 酸分色（数秒）——水洗——0.4%氨水蓝 化——水洗（ 5min ）——70%酒精—— 80%酒精——1%伊红（95%酒精溶解）— —95%酒精——95%酒精——100%酒精— —100%酒精——酒精/二甲苯——二甲苯— —二甲苯——中性树胶封片。 • 未注明时间的一律处理2-3min。
五、作业
• 简述冰冻切片过程，绘制你所观察到的细 胞形态。 • 提交一张你认为制作较好的玻片。
冰冻切片步骤很全面
冰冻切片步骤很全面冰冻切片是一种常用的实验技术，在生物学、医学研究、组织学观察等领域有着广泛应用。
以下是一份详细的冰冻切片步骤，旨在提供全面的指导。
注意，不同的实验目的可能会有一些差异，因此请根据实际需求调整步骤。
1.準备1.1获取你所需的样本。
这个样本可以是活体动物的组织，也可以是固定处理后的组织。
1.2准备冷冻介质。
通常使用的冷冻介质包括液氮、干冰和冷冻套。
液氮是一种非常冷的液体，可以迅速冻结样本。
干冰是固态二氧化碳，可以提供较低的温度。
冷冻套是一种装置，可以通过循环冷却剂来维持全套工具的较低温度。
1.3准备工具和设备。
这些工具和设备通常包括切片机、切片模具、刀片、显微镜片和刷子。
1.4调整工作环境。
确保实验室温度适宜、空气流通，并消毒工作台和其他工具。
2.样本取样和固定2.1根据实验目的，选择合适的样本区域。
例如，在动物研究中，你可能需要选择大脑的特定区域。
2.2切下样本。
使用手术器械，例如手术剪刀和手术刀，在样本区域周围切下足够大小的组织块。
2.3快速固定样本。
使用适当的固定液将样本固定。
常用的固定液包括10%缓冲福尔马林和4%聚乙二醇。
将样本完全浸没在固定液中，确保完全固定，避免其损伤。
3.冷冻3.1冷冻样本。
将固定的样本迅速置于冷冻介质中。
如果使用液氮，直接将样本放入液氮中。
如果使用干冰，将样本放入常温下事先准备好的干冰盒中，并立即放入冷冻套中。
3.2冷冻条件。
根据样本的性质和实验要求，选择适当的冷冻条件。
通常情况下，液氮的温度低于-150°C，而干冰的温度大约为-78°C。
3.3冷冻时间。
样本的冷冻时间取决于其大小和固定液的穿透性。
通常情况下，较小的样本需要较短的冷冻时间，而较大的组织块需要较长的冷冻时间。
一般而言，冷冻时间为几个小时到几天。
4.切片4.1为切片做准备。
在切片之前，将切片模具放在切片机上，并冷却至所需的温度。
同时，将刀片插入切片机。
4.2取出样本。
脂肪组织冰冻切片步骤
脂肪组织冰冻切片步骤
脂肪组织冰冻切片的步骤如下：
1. 取材：在合适的环境下获取脂肪组织，一般大小为1.5×1.5×0.5cm，注意应尽量剔除脂肪组织、钙化、骨质等影响切片质量的成分。
2. 速冻：使用液氮或干冰-丙酮（乙醇）法将组织速冻。
液氮法是将组织块平放于软塑瓶盖或特制小盒内，然后将其放入盛有液氮的小杯内，注意小盒底部接触液氮时即开始气化沸腾，此时小盒保持原位切勿浸入液氮中，10~20s组织即迅速冰结成块。
干冰-丙酮（乙醇）法是将150~200ml丙酮（乙醇）装入小保温杯内，逐渐加入干冰，直至饱和呈黏稠状，再加干冰不再冒泡时，温度可达-70℃，然后使用异戊烧进行速冻。
3. 切片：将速冻后的组织块固定在切片机上，调整切片的厚度为4~6μm，然后进行切片。
4. 贴片：将切好的组织切片立即放入冰冻固定液中固定10~20秒，然后取出贴片。
5. 染色：使用苏木精染液进行染色，室温下染色1分钟，如果室温较低，则需要适当延长染色时间。
6. 水洗：染色后进行水洗，洗去多余的染液。
7. 封片：将切片晾干后，使用合适的封片剂进行封片。
注意，在整个过程中，都需要保持组织的冷冻状态，以防止组织内的冰晶形成和细胞结构的破坏。
同时，切片和染色的过程中，也需
要注意避免切片过厚或过薄，以及染色过深或过浅，以保证切片的质量。
以上信息仅供参考，具体操作可能会因实际情况和设备的不同而有所差异。
冰冻切片步骤很全面
冰冻切片步骤很全面1.标本采集：标本采集是制备冰冻切片的第一步，要确保标本的新鲜度和完整性。
采集时需注意使用无菌器械，避免受到外界污染。
对于细胞切片，可采用细胞培养技术培养的细胞；对于组织切片，采集适量的组织，尽量保持其原有结构。
2.固定：在采集后，为了防止细胞或组织的结构和形态发生变化，需要进行固定处理。
常用的固定方法有：a.4%的硫酸镁：使用4%的硫酸镁固定剂，固定15-30分钟。
b.4%的甲醛：使用4%的甲醛固定剂，固定15-30分钟。
c.10%的缓冲福尔莫林：使用10%的缓冲福尔莫林固定剂，固定4-24小时。
3.包埋：包埋是将固定的细胞或组织进行预处理，以便后续的冷冻切片。
常用的包埋方法有：a.脱水：使用不同浓度的乙醇进行脱水处理，通常有70%、80%、95%和100%四个浓度。
b.渗透剂：使用溶解在脱水剂中的渗透剂，如氯仿、苯酚、醋酸酯等，以提供组织切片的硬度和稳定性。
c.包埋剂：将脱水后的组织切片放入包埋剂中，如石蜡、冻脂等；对于细胞切片，可直接在载玻片上进行包埋。
4.冰冻：冰冻是制备冰冻切片必不可少的步骤，它能够保持细胞或组织的原有形态和结构。
常用的冰冻方法有：a.冷冻板法：将包埋好的标本放置在预冷冻的金属冷冻板上，然后放入液氮中进行快速冷冻。
b.冷冻微才法：将包埋好的标本进行逐步冷冻，在每一步冷冻前都将标本表面的水分吹干。
c.冷冻机法：使用专用的冷冻机进行冷冻，通常温度在-20至-30°C。
5.切片：切片是冰冻切片的核心步骤，需要使用显微切片机或冰冻切片机进行操作。
切片前需将冷冻的标本块取出，等待恢复到适宜切片的温度（一般为-20至-30°C）。
然后，使用坚硬的切片刀或切片刀片切取薄片，通常厚度为5-20微米。
切片时需注意保持刀片的锋利度和角度，以保证切片的质量。
总结：冰冻切片是一种常用的生物学实验和临床诊断技术，它通过对细胞和组织进行固定、包埋、冰冻和切片等步骤，帮助研究人员观察和分析样本的结构。
冰冻切片免疫荧光实验步骤
冰冻切片免疫荧光实验步骤1. 前言嘿，朋友们！今天我们来聊聊一个科学实验的酷炫玩法——冰冻切片免疫荧光实验。
你可能会想，这听起来有点高深，其实没那么复杂，咱们用轻松的方式来搞定它！这个实验就像是给细胞穿上五光十色的衣服，让它们在显微镜下闪闪发光。
是不是听起来有点像魔法？不过，魔法背后可是需要一系列精细的步骤哦，接下来就让我们一起踏上这趟科学之旅吧！2. 材料准备2.1 器材首先，咱们得准备好一些“武器”。
你需要的工具有：冷冻切片机、显微镜、抗体、荧光染料、冰块、以及小瓶子。
别担心，这些东西在实验室里一般都能找到。
好比去超市购物，准备齐全才能大干一场嘛！2.2 样本收集然后，咱们得搞定样本。
可以用小动物的组织，比如小鼠的肝脏或脑组织，当然也可以是细胞培养。
像选菜一样，找个健康的样本，才能做出美味的实验结果。
记得小心翼翼哦，样本可是你实验的“主角”！3. 冰冻切片3.1 制作切片接下来就是最重要的环节了！将收集到的样本放进冷冻机，设置好温度，通常是在20°C到80°C之间，具体要看你使用的试剂。
等样本冰冻得像冰棍一样，取出来，用冷冻切片机将它切成薄薄的片，厚度大约在510微米之间。
要知道，切片越薄，观察的时候越清晰，就像看电影的时候画面越高清，效果自然越棒！3.2 贴片固定切好的薄片就像鲜花一样，需要“小心翼翼”地处理。
将切片放到载玻片上，记得用一些固定液，比如丙酮或者甲醇，给它们来个“定妆”！这样能让你的切片在后续步骤中更加稳固。
让我们给这些切片点个赞，做得不错哦！4. 免疫染色4.1 抗体孵育好了，接下来的步骤就像给细胞化妆一样。
把固定好的切片放进抗体溶液里，让它们充分“泡澡”。
通常来说，先用一抗（即特异性抗体）孵育，时间可以在1小时到过夜之间，视情况而定。
这个时候，你可以想象细胞们正开心地吸收着抗体，准备好接下来的“盛宴”！4.2 荧光染料待一抗充分结合后，咱们再来一剂“荧光染料”！同样把切片浸泡在二抗（荧光标记抗体）里，接着再静置一会儿。
肺冰冻切片制作流程
肺冰冻切片制作流程
肺冰冻切片的制作流程主要包括以下几个步骤：
1、取材与准备：首先需要取出组织样本，并切割组织块使其符合冰冻切片用包埋模型。
这一步骤是为了确保切片的准确性和完整性。
2、骤冷：通常采用骤冷、速冻的方法进行，冷冻速度为1~10°C/s，以减少冰晶形成。
具体方法有干冰-丙酮（乙醇）法或液氮法。
3、冷冻保护：加入冷冻保护液，如甲醇或乙醇等，以防止组织解冻时发生变化。
4、包埋：使用低温包埋剂（OCT）包埋冰冻组织。
如果组织块小，可以适量加OCT包埋剂浸没组织。
5、切片：将组织放置于恒冷箱中进行切片。
在制成冻块后，置入恒冷箱切片机冰冻切片。
6、固定：样品托上涂一层OCT包埋胶，将速冻组织置于其上，在4℃冰箱预冷5-10分钟让OCT胶浸透组织。
7、保存：若需要保存，应快速以铝箔或塑料薄膜封包，立即置入-80℃冰箱贮存备用。
此外，肺组织的最佳切片温度约-20℃，在此温度区间可以制作较满意的切片。
然而，肺组织冰冻切片的质量一般不如常规石蜡切片，且冰冻准确率大多低于90%。
因此，在制作过程中需要特别注意操作的准确性和技巧。
冰冻切片的步骤要求和作用
冰冻切片的步骤要求和作用环境要求：冰冻切片是一种常用的实验技术，在生物学研究、组织学以及免疫组织化学等领域中广泛应用。
它的作用是在保持组织的形态和结构的同时，为后续的研究提供高质量的样品。
下面是冰冻切片的步骤要求和作用的详细介绍。
步骤要求：1.样本选择：选择适合冰冻切片的样本，例如组织的大小适中且不易破裂的组织。
2.固定样本：使用适当的固定剂对样本进行固定，以保持组织的形态和结构。
3.处理样本：用缓冲液对样本进行洗涤处理，去除细胞液和外源性污染物。
4.冻结样本：将样本在低温条件下冻结，最常用的方法是使用液氮或酒精浴。
5.切片样本：使用切片机将冻结的样本切成薄片，通常为10-50微米的厚度。
6.挂片或贴片：将切片移至载玻片或切片笼中，并在玻片上做相应的标记。
作用：1.保持组织形态和结构：冰冻切片可以保持组织的天然形态和结构，避免固定和染色等过程对组织产生的变性和变形。
2.提供高质量的样品：因冰冻切片的快速切割过程，可以获得高质量、无伤害的组织样品，适合各种形态和形状的组织切片。
3.便于固定和染色：冰冻切片可以便于进一步固定和染色处理，以进行组织学、免疫组织化学等研究。
4.保存组织信息：冰冻切片可以有效保存组织的蛋白质、核酸和其他生物大分子的信息，保留了研究的全面性和综合性。
5.实时观察组织结构：冰冻切片可以随时进行观察和实时分析，不需要特殊的染色处理，有利于实验结果的快速获取。
总结：冰冻切片是一种常用且重要的实验技术，在生物学研究中发挥着重要的作用。
它的步骤要求和作用都与保持组织形态和结构、提供高质量样品、便于进一步处理和观察等方面密切相关。
通过冰冻切片技术，我们可以更好地理解和研究生物体内部的结构和功能，为生物学研究的进展提供有力支持。
冰冻切片实验步骤
冰冻切片实验步骤
嘿，咱今儿就来讲讲这冰冻切片实验步骤！
你可别小瞧这冰冻切片，就像是厨师要做出一道美味佳肴，每一步都得精心料理。
首先呢，得准备好新鲜的样本，这就好比是做菜得有好食材呀！把样本修整好，可不能随随便便就扔那儿了。
然后就是冷冻啦！把样本放到那专门的冷冻设备里，让它快速地冻起来，这就像是给样本穿上了一层“冰铠甲”。
接下来，切片环节可就来咯！要小心翼翼地操作，不能切得厚了薄了的，那得跟艺术品一样精致才行。
想象一下，要是切得乱七八糟，那后面还怎么观察呀！
切好片之后呢，还得给它贴上标签，可不能搞混了呀，这就像给每个小宝贝起个名字一样。
再之后，就是染色啦！给这些切片染上漂亮的颜色，让它们能更好地展示出自己的特点。
这就跟给人化妆似的，得恰到好处，才能凸显出美来。
染完色，可不能忘了清洗呀，把多余的染料洗掉，让切片干干净净的。
最后就是观察啦！在显微镜下，仔细地瞅瞅这些切片，看看能发现
啥秘密。
这就像是在寻宝一样，充满了惊喜和期待呢！
做冰冻切片实验呀，就跟走一条小路似的，每一步都得稳稳当当的，要是哪一步出了岔子，那可就前功尽弃啦！所以呀，得打起十二分的
精神来。
总之呢，冰冻切片实验可不简单，但只要咱认真对待，一步一个脚
印地去做，肯定能收获满满的成果呀！加油吧！。
冰冻切片的步骤要求和作用
冰冻切片的步骤要求和作用冰冻切片是一种常用于生物学研究的技术，用于制备组织切片以供光学显微镜观察。
冰冻切片的步骤要求和作用如下：一、步骤要求：1.标本固定：首先，需要选择适合的标本进行固定。
常见的标本包括动植物组织、器官、细胞等。
固定常采用的方法有乙醛定型法、福尔马林定型法等，目的是保持组织的形态和结构。
2.干燥：将固定好的标本进行干燥处理，常用的方法有空气干燥、醋酸解脂等。
干燥的目的是使细胞固定在组织中，减小切片过程中的移位和变形。
3.冰冻：将固定好且干燥的标本进行冰冻处理，通常使用低温冷冻机或液氮进行冰冻。
冰冻的目的是使细胞和组织速冻，保持其原有的结构和形态。
4.切片：使用显微切片机或冰冻微浪切片机将冰冻标本切割成薄片。
切片的要求是薄且均匀，通常在10-50微米之间。
5.捕获：用切片夹将切片移入载玻片上，并注入缓冲液或显微镜密封液，以保持切片的湿润和结构稳定。
6.染色：根据需要可以对切片进行染色，常用的染色方法有苏木精-伊红染色、姜黄染色等，目的是突出组织结构和细胞器。
二、作用：1.结构观察：冰冻切片制备的组织切片可以提供高分辨率、立体感强的结构信息，可以观察细胞和组织的形态、结构和排列方式。
2.免疫组化：冰冻切片可以被用于免疫组织化学染色和免疫荧光染色等技术。
这些技术可以用来检测特定的蛋白质和其他分子在组织中的分布和表达程度。
3.分子定位：通过使用特定的探针或荧光标记物，冰冻切片可以用于分子定位实验，可实现对特定分子在组织中的定位和可视化。
4.病理学研究：冰冻切片可以提供病理学诊断的信息。
医学领域常用冰冻切片技术进行快速病理诊断，如冷冻切片法可以在手术中实时检测并确定肿瘤的范围和边界。
5.遗传学研究：冰冻切片被广泛用于研究组织和细胞的遗传变异、突变和表达差异等。
如原位杂交和原位PCR技术可以用于检测特定基因在组织中的分布和表达。
6.药物筛选：冰冻切片可以用于药物的筛选和效果评估。
通过给予切片不同的药物处理，可以观察药物在组织中的作用和效果。
冰冻切片实验步骤
冰冻切片实验步骤1.准备实验所需材料和设备：包括有机溶剂（如乙醇、氯仿、甲醇等）、30%的蔗糖溶液、液氮、切片刀、显微镜玻片、显微镜载玻片、切片盒等。
2.收集和处理样品：可以选择动植物的组织或细胞作为实验样品。
收集样品后，可以用生理盐水或缓冲液进行清洗和去除杂质。
如果是动物组织，可以选择将其冷冻在液氮中，以保持其完整性。
3.组织固定：将收集到的样品转移到含有组织固定剂的试管中。
常见的组织固定剂包括缓冲液、乙醛或霍乱毒素。
根据所需的实验目的和需要，可以选择适当的组织固定剂。
4.组织固定处理：组织固定的时间因组织类型和目的有所不同，一般在数小时至数天之间。
在固定过程中可以加入一些缓冲液，以维持组织的pH值和渗透压。
5.甘油渗透：将固定的组织置于甘油溶液中。
甘油的作用是提高组织的柔软度和切片的质量。
一般可选择10%左右的甘油溶液。
6.冰冻：将处理好的组织置于液氮中，直到其完全冰冻。
冰冻的温度通常为－20℃。
在冰冻过程中，可以使用冷冻托盘和冷冻盒等设备加快组织的冻结速度。
7.切片：使用预先冷却的切片刀，将冰冻的组织切成所需的薄片。
切片的厚度一般为10-100微米。
为了保证切片的质量，可以在切片过程中使用切片保护剂，如30%蔗糖溶液。
8.华里士染色：将切好的组织切片转移到显微镜载玻片上，使用华里士染色液进行染色。
华里士染色是一种常用的组织染色方法，可以染色细胞核和细胞浆。
9.覆盖玻片：将染色后的切片盖在显微镜玻片上，并使用透明胶片或封口剂固定切片。
10.显微观察：将制备好的切片置于显微镜下，观察和记录感兴趣的细胞或组织结构。
可以使用不同放大倍数的镜头进行观察和分析。
11.结果分析：对观察到的细胞或组织结构进行分析和解释。
可以使用图像处理软件进行图像的分析和处理。
12.结论和讨论：根据实验结果，得出相应的结论并进行讨论。
可以与已有的研究结果进行对比，验证实验的准确性和可靠性。
组织冰冻切片步骤
组织冰冻切片步骤冰冻切片是一种常见的实验技术，用于获取生物样品的细胞或组织的薄片，以便进行进一步的研究和分析。
下面将介绍组织冰冻切片的步骤。
1. 材料准备首先，准备好所需的材料，包括冷冻剂（如液氮或干冰）、组织样品、切片刀、切片刀床、切片刀片、切片缓冲液（如磷酸盐缓冲液）和载玻片。
2. 固定组织样品将待切割的组织样品用适当的方法进行固定，比如使用福尔马林或其他适合的固定剂。
固定的目的是保持组织的形态结构和细胞的染色质形态。
3. 冷冻组织样品将固定后的组织样品置于冷冻剂中，使其迅速冷冻。
常见的冷冻剂包括液氮和干冰，其温度低于零下80摄氏度。
冷冻过程应尽量迅速，以避免组织样品的结构和细胞的形态发生变化。
4. 制备切片刀床和刀片在切片刀床上放置适当大小的切片刀片，确保刀片干净锋利。
切片刀片的角度和刀片的锋利度会影响切片的质量，因此需要定期检查和更换刀片。
5. 切割组织样品将冷冻的组织样品取出，迅速放置在切片刀床上，并用切片刀沿着组织的纵向或横向切割，制备薄片。
切割时要保持手的稳定和力度的均匀，以获得均匀且薄的切片。
6. 收集切片使用切片刀片或刷子将切割好的组织切片收集到切片缓冲液中。
切片缓冲液可以保持组织切片的湿润和形态结构。
7. 制备载玻片在载玻片上涂抹一层适当的胶水或明胶溶液，将收集好的组织切片均匀地放置在载玻片上。
确保组织切片的平整和分布均匀。
8. 干燥和固定切片将载玻片放置在室温下或烘箱中，使其干燥。
干燥后，可以使用染色剂或其他化学试剂对切片进行染色或固定，以便后续的显微镜观察和分析。
9. 显微镜观察和分析将制备好的组织切片放置在显微镜下，观察和分析组织的形态结构、细胞的类型和分布等信息。
可以使用不同的显微镜技术，如光学显微镜、荧光显微镜或电子显微镜，以获得更详细和精确的数据。
10. 结果记录和分析根据显微镜观察和分析的结果，记录和分析组织切片的特征和变化。
可以使用统计学方法对数据进行处理和分析，以得出科学结论和研究结果。
冰冻切片技术
冰冻切片技术1：实验原理：利用物理降温的方法将新鲜组织标本冷冻产生一定的硬度进行切片，与石蜡切片相比，冷冻切片不需要脱水处理。
因此制片速度快，是术中进行快速病理争端的良好方法。
2：实验步骤：①取材：从新鲜的小鼠中剖取肝、肺、心、胰腺、肾等组织器官至载玻片上②冷冻前将恒温冷冻切片机的速冻住头温度和箱内温度调至-20--15℃，将组织器官移到涂了一层耦合剂的组织支承器冻面上，用镊子压平，再挤上一层耦合剂覆盖标本。
放至冰冻机中降温处理③标本冷冻后将组织支承器固定在切片机的机头上，调整机头的位置使其正好位于切片刀的后方。
④以粗修的方式粗修到暴露标本的最大平面，用毛笔清除机头、组织支承器及刀片上的组织碎屑。
⑤确认切片的厚度，一般为4到5vm不等，根据组织的不同可适当调整切片的厚薄。
⑥放下放卷板使其位置恰好与刀片的刀刃完全平行并略突出刀刃⑦以转动大轮推进的方式进行切片，良好的切片将在放卷板的下方形成一张完整平坦无褶的薄片，若切片略有弯曲，可用毛笔轻轻展平。
⑧打开放卷板，将标记好的载玻片平稳的轻压组织，使其平整的吸附到载玻片上。
⑨将切好的标本薄片迅速放入95％的乙醇固定液中进行3min的固定，再经过1min的流水冲洗，进入染色程序⑩按照：苏木素（1min）→流水冲洗（3min）→伊红染液（30s）→流水冲洗（1s）→85％乙醇→95%乙醇（10s）→无水乙醇①（30s）→无水乙醇②（1min）→二甲苯①（1min）→二甲苯②（1min）①将染色完成的标本使用树胶与盖玻片进行封片操作②将标本放到显微镜下，观察拍照记录10×、40×的镜下观3：实验结果：在镜下可观察到小鼠的肝细胞，细胞核被染成蓝色，胞质及细胞间隙被染成淡红色，同时可见大多数细胞中脂肪将细胞核挤到细胞一侧。
4：结果分析及讨论：①切片前先预调好厚度，提前准备好要使用的工具。
②切片时，观察窗不可打开过大，预防温度升高影响切片③在每一次切片之后都应该要注意清理碎屑，以防污染④严格把握染色时间，避免因染色时间太短或太长而影响实验观察5：思考题：①什么时候做冰冻切片：1：在手术:进行中，突然发现病人的病变原及诊断，判断病变是否为肿瘤2：判断肿瘤的良恶性2：了解淋巴结是否有转移的肿瘤细胞，或者转移的程度，以利于确定是否需要彻底扫除淋巴结或者其他的治疗措施。
冰冻切片的步骤要求和作用
冰冻切片的步骤要求和作用冰冻切片是一种常见的组织切割技术，它使用低温冷冻样品，然后使用切片机将样品切成非常薄的切片。
冰冻切片技术是生物学研究和医学诊断中不可或缺的重要工具。
它可用于观察许多样品的内部结构，如细胞、组织和器官等，进一步了解它们的功能和形态。
下面将详细介绍冰冻切片的步骤要求及其作用：1.样品固定：在进行冰冻切片前，样品需要进行固定以保持其形态、结构和细胞凝胶状态。
常见的固定方法包括乙醛固定和冷凝固定。
选择适当的固定方法取决于待测样品的特性和研究目的。
2.固定样品冷冻：在进行冰冻切片前，固定的样品需要在低温下冷冻。
冷冻操作的关键是控制冷冻速度和温度，以防止样品在冷冻过程中发生损伤。
常见的冷冻方法包括液氮冷冻和冷冻板冷冻。
液氮冷冻可以实现更快的冷冻速度，而冷冻板冷冻则可以更好地控制冷冻温度和速度。
3.制备切片：冷冻后的样品需要进行切片。
切片机通常用于切割样品。
在切片机工作之前，需要将切片刀冷却到适当的温度，以防止冻结的样品在切割过程中解冻。
然后，将冷冻样品放在切片机上，并调整合适的切片参数，包括切片厚度和速度等。
4.收集切片：完成切割后，收集切片并放置在适当的载玻片或载片上。
注意不要损坏或弄丢切片，同时避免切片之间的交叉污染。
将切片放置在载片上后，可以进行染色、免疫染色或其他实验处理。
5.形态学检查：切片制备完成后，可以使用显微镜对切片进行形态学检查。
通过观察切片，研究者可以进一步了解样品的内部结构，如细胞、组织或器官的形态、形状、大小、有丝分裂状态、细胞排列、器官的血供和微观解剖结构等。
6.免疫组化处理：冰冻切片的一个重要应用是免疫组化染色。
可以使用适当的抗体来标记感兴趣的分子，从而确定其在样品中的存在和定位。
这种技术可以帮助研究者确定一些蛋白质的表达情况、定位和数量，并进一步揭示其在生物学过程中的功能。
7.其他实验处理：除了免疫组化处理外，冰冻切片还可以在其它实验中应用。
例如，可以在切片上进行蛋白质或核酸的杂交实验，研究蛋白质表达的变化或基因表达的调控。
冰冻切片制备步骤
冰冻切片制备步骤嘿，咱今儿个就来唠唠冰冻切片制备这档子事儿！你想啊，这就好比要做出一道绝世美味，得一步步精心准备呢！首先，咱得把要切的样本准备好呀，就像厨师得挑好食材一样，这可不能马虎。
得把样本整得干干净净、利利索索的，不然咋能切出漂亮的片子呢。
然后呢，就是给样本找个合适的“安乐窝”，也就是把它放在冷冻托上。
这就跟人睡觉要找个舒服的床似的，得让样本在这上面舒舒服服地待着。
接着，就是给它来点“速冻魔法”，让它迅速地被冻起来，变得硬邦邦的。
接下来可就是关键的一步啦，切片！这就像是在雕刻一件艺术品，得小心翼翼、仔仔细细的。
拿着切片刀，轻轻地、慢慢地切下去，要切出那薄如蝉翼的片子来。
你说这是不是得有点技术含量？要是切厚了，那可就不完美啦！切完了片子，还得给它找个合适的地方“安家”，也就是把它贴在玻片上。
这可得贴得稳稳当当的，不能让它掉下来呀。
就好像给宝贝找个安稳的家一样重要呢。
再然后呢，就是给片子进行染色啦。
这就像是给它穿上一件漂亮的“衣服”，让它变得更加显眼、更加好看。
不同的染色方法能让片子呈现出不同的效果，就跟人穿不同风格的衣服一样。
最后一步啦，那就是观察啦！就像欣赏一件艺术品一样，得好好地看看咱这精心制作出来的冰冻切片。
看看它是不是清晰可见，是不是能让咱看出个所以然来。
哎呀，你说这冰冻切片制备是不是挺有意思的呀？虽然步骤不少，但是每一步都很重要呢！要是有一步没做好，那可就前功尽弃啦。
就像盖房子一样，少了一块砖都不行呢！所以啊，咱可得认真对待每一个步骤，不能有丝毫的马虎。
这样才能做出漂亮的冰冻切片，才能让咱的研究啊、实验啊更加顺利呢！你说是不是这个理儿？。
冰冻切片制备 实验步骤
冰冻切片制备实验步骤冰冻切片制备是一种常用的实验技术，用于制备生物样品的切片，以便进行显微镜观察和分析。
下面将按照实验步骤的顺序进行详细介绍。
1. 样品的准备选择合适的样品进行制备。
样品可以是细胞、组织或生物体的一部分。
根据实验的需要，样品可以是新鲜的或者固定的。
2. 样品的固定如果选择的样品是新鲜的，需要先进行固定以保持其形态和结构。
常用的固定剂有福尔马林、戊二醛等。
将样品放入固定剂中，根据样品的大小和种类，固定的时间可以从几分钟到几小时不等。
3. 样品的冰冻将固定后的样品进行冷冻以减少切片时的变形。
可以使用液氮或冰冻机将样品迅速冷冻至零下20摄氏度以下。
冷冻的时间要尽量短，避免冰晶的形成对样品造成损伤。
4. 切片仪的准备将切片仪调整到适当的工作状态。
切片仪的刀片需要保持锋利，切片盒需要清洁干净。
5. 样品的切片将冷冻的样品取出，迅速放入切片盒中。
使用切片仪将样品切片，切割的速度和厚度根据需要进行调整。
切片时要保持手稳定，避免切出的切片变形或损坏。
6. 切片的收集将切下的样品片收集到盛有PBS（磷酸盐缓冲液）的培养皿中。
这样可以避免切片的干燥和变形。
7. 样品的染色根据实验需要，可以对切片进行染色以便于观察。
常用的染色方法有荧光染色、组织学染色等。
染色后的切片需要进行洗涤以去除多余的染料。
8. 切片的保存将染色后的切片放入玻片盒中，用透明胶带密封。
存放在适当的温度和湿度条件下，避免切片的变形和腐败。
通过以上步骤，我们可以得到冰冻切片制备的样品，以供显微镜观察和分析。
冰冻切片制备技术可以用于各种生物学研究，如细胞生物学、组织学和病理学等领域。
它可以帮助我们观察样品的细节结构，了解其功能和病理变化，为科学研究和临床诊断提供重要的依据。
冰冻切片制备的主要步骤
冰冻切片制备的主要步骤冰冻切片制备是一种常用的生物学和医学实验技术，用于在冷冻状态下快速切割组织样本，并进行随后的病理学诊断或研究。
以下是冰冻切片制备的主要步骤：一、准备样本在进行冰冻切片制备之前，需要准备好待检测的组织样本。
这些样本可以来自各种来源，如手术切除、活检、尸检等。
样本应该尽快放入适当的冷冻介质中，如OCT包埋剂，以保持其冷冻状态。
二、冷冻将准备好的样本放入冷冻切片机中，通常是一个恒温的金属块。
这个金属块被冷却到低于-20℃的低温，确保样本快速冷冻。
在这个过程中，需要特别注意不要让冷冻过度或不足，因为这会影响切片的品质。
三、切片使用冷冻切片机将冷冻好的样本切成薄片。
切片的厚度通常在5-10微米之间，以确保切片能够清楚地显示组织的结构和特征。
这个过程需要熟练的技术员操作，以保证切片的完整性和均匀性。
四、固定刚切好的切片非常容易受到热和湿气的影响，因此需要迅速固定。
通常使用甲醇或乙醇作为固定剂，将切片固定在载玻片上。
这一步可以防止切片在接下来的步骤中滑落或移动。
五、染色固定好的切片需要进行染色以更好地显示其结构和特征。
最常用的染色方法是hematoxylin and eosin (H&E)染色。
这一步可以在染色机中完成，也可以手工操作。
染色完成后，切片会被冲洗干净并彻底干燥。
六、观察和诊断最后一步是将制备好的切片放在显微镜下观察，并进行病理学诊断。
此时，病理学家可以根据切片的特征对疾病进行分类和分级，或者对手术切缘进行评估。
以上就是冰冻切片制备的主要步骤。
需要注意的是，每个步骤都需要严格的操作规程和技术要求，以保证制备出的切片能够准确地反映组织的结构和特征。
冰冻切片实验步骤
冰冻切片实验步骤冰冻切片是一种常用的实验技术，用于研究生物样品的结构和功能。
在冰冻切片实验中，样品必须被快速冻结并制成非常薄的切片，以保持样品的原始结构和形态。
以下是一个冰冻切片实验的一般步骤，供参考。
1.准备工作：-准备所需的实验材料和设备，包括动物或细胞样品、细胞培养基、PBS缓冲液、冷冻剂（如液氮或干冰）、冷冻切片机、切片刀片、切片贴片和载玻片等。
-充分冷却冷冻切片机，并确保切片刀片处于锋利和清洁状态。
-确保实验环境卫生干净，并且操作台面上没有其他杂物和细菌。
2.过度冷冻：-在离心管或培养皿中收集样品，如组织块或细胞团。
-将样品迅速置于冷冻剂中，以快速冷冻样品。
在制备过程中，样品冷冻的速度非常重要，可以使用冰浴或液氮使样品迅速冷冻。
3.制备冷冻样品：-将冷冻固态样品放入冷冻切片机的样品夹内，确保样品与夹具接触良好。
-调整切片刀片的角度和位置，以确保薄片的切割。
-使用冷冻切片机制备冷冻样品，比如用于大脑切片的考尔密斯键切片机。
4.切片过程：-打开冷冻切片机的刀片和样品夹，以容纳载玻片。
-将切片刀片横跨切片机的切片口，并确保刀刃与样品夹接触。
-使用微调装置，轻轻地将切片刀片向下移动，以制备样品切片。
可以根据需要调整切片的厚度。
5.取样和处理：-将切制好的样品轻轻地使用毛刷或细针取下，并将其浸泡在PBS缓冲液或其他处理液中进行进一步处理。
-根据实验需求，可以进行染色、免疫标记和显微镜检查等处理。
6.制备切片贴片和载玻片：-取出切片贴片并将其浸泡在PBS缓冲液中，让其变湿。
-使用镊子或其他工具将处理好的样品放在切片贴片上，然后轻轻地将切片贴片放在载玻片上。
确保样品均匀分布在切片贴片上，并避免形成气泡。
7.干燥和封装：-将切片贴片从PBS缓冲液中取出，用纸巾或吸水纸轻轻地吸去多余的液体。
-将载玻片置于干燥盒中，确保切片在常温下彻底干燥。
-使用合适的密封胶将载玻片封装，以防止切片的氧化和损坏。
总结：冰冻切片实验是一种常用的技术，用于研究生物样品的结构和功能。
冰冻切片实验步骤
全部实验步骤1 取新鲜组织于4%多聚甲醛固定24小时2 30%蔗糖脱水48小时以上3 -250C包埋（冰冻切片机内）4冰冻切片冰冻切片步骤1.冰冻切片4um左右，室温25°C复温30min，浸入4°C预冷的丙酮固定10min，2.PBS（PH为7.2-7.4）在9cm皿内摇床冲洗3次，每次5min（第一次冲洗时间短些，约1min后更换）3.用30%过氧化氢一份，纯甲醇50份（需要现配，避光条件封闭，可以用纸盒盖住皿）30min。
4.PBS（PH为7.2-7.4，酸性）在9cm皿内摇床冲洗3次，每次5min（第一次冲洗时间短些，约1min后更换），甩去PBS，擦干切片周围的水分，用免疫组化笔或蜡笔在组织周围画一适当大小的圈，距离组织不宜太近，与切片组织保持5mm左右距离，太近会导致边缘效应。
5.5%BSA，室温孵育20min，期间注意观察，以免BSA干燥而导致背景太高，请注意在皿内玻片两侧放置浸湿的卫生纸或棉球。
6.甩去血清，PBS洗1min，擦干周边水分，圈内可不擦，但尽量要甩干，以免导致抗体浓度不均。
7.配置一抗工作液用5%BSA（抗体浓度为1:100），悬空加入一抗工作液50-100ul，枪头不要触及组织，以免损伤组织结构，滴加一抗后在水平桌面画圈方式振荡，混匀一抗，否则抗体可能附着不匀。
8.放入湿盒内，置于4°C冰箱过夜（最长不可超过48h），注意盖盖，放入后观察玻片是否处于水平位（否则抗体可能流失，导致玻片组织干掉，出现背景高和假阳性），孵育期间观察抗体是否干，若干了赶快用PBS清洗浸泡。
9.第二天上午取出玻片，置常温复温30min，后PBS冲洗1+5+5+5min，10.滴加1:100生物素标记的二抗（注意选择核对一抗来源，抗体加入稀释后在EP管内弹匀，掌上离心机离心）室温孵育30min-1h，后PBS冲洗1+5+5+5min。
11.滴加1:100比例稀释的辣根过氧化物酶标记的链酶卵白素PBS稀释液（SABC）室温1h，后PBS冲洗1+5+5+5min，甩干，以免显色不均。
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全部实验步骤1 取新鲜组织于4%多聚甲醛固定24小时2 30%蔗糖脱水48小时以上3 -250C包埋（冰冻切片机内）4冰冻切片冰冻切片步骤冰冻切片免疫组化染色步骤：冰冻切片4~8μm，室温放置30分钟后，入4℃丙酮固定10分钟，PBS洗，5分钟×3次。
用3%过氧化氢孵育5~10分钟，以消除内源性过氧化物酶的活性。
PBS冲洗，5分钟×2次。
下接石蜡切片免疫组化染色操作步骤。
(见我发的前面的帖子)你确定你是冰冻切片吗？？？冰冻切片不能用热修复啊！！！以下是我的步骤：1 冰冻切片室温放置30分钟后，入4℃丙酮固定10分钟，PBS洗，5分钟×3。
用3％过氧化氢孵育5~10分钟，PBS洗，5分钟×2。
2 5~10％正常山羊血清（PBS稀释）封闭，室温孵育10分钟。
倾去血清，勿洗，滴加适当比例稀释的一抗或一抗工作液，37℃孵育1~2小时或4℃过夜。
3 PBS冲洗，5分钟×3次。
4 滴加滴加第二代生物素标记二抗工作液，37℃或室温孵育30分钟。
PBS冲洗，5分钟×3次。
5 滴加辣根酶标记链霉卵白素工作液，37℃或室温孵育10~30分钟。
6 PBS冲洗，5分钟×3次。
7 显色剂显色（DAB）。
8 自来水充分冲洗，复染，封片。
冰冻切片免疫组化染色用的灭活内源性过氧化物酶，最好是用3%H2O2/甲醇溶液，室温20分钟。
此配方不易产生脱片。
配制方法是在9ml甲醇中加30%H2O2 1ml，混匀后使用，每次新鲜配制。
冰冻切片免疫组化染色步骤冰冻切片4~8mm，室温放置30分钟后，入4℃丙酮固定10分钟，PBS洗，5分钟×3。
用3％过氧化氢孵育5~10分钟，消除内源性过氧化物酶的活性。
PBS洗，5分钟×2。
下接免疫组化染色操作步骤。
免疫组化染色步骤：（SP试剂盒为例)1 冰冻切片4~8um，室温放置30分钟后，入4℃丙酮固定10分钟，PBS洗，5分钟×3。
用3％过氧化氢孵育5~10分钟，消除内源性过氧化物酶的活性。
PBS洗，5分钟×2。
2 5~10％正常山羊血清（PBS稀释）封闭，室温孵育10分钟。
倾去血清，勿洗，滴加适当比例稀释的一抗或一抗工作液，37℃孵育1~2小时或4℃过夜。
3 PBS冲洗，5分钟×3次。
4 滴加适当比例稀释的生物素标记二抗（1%BSA-PBS稀释），37℃孵育10~30分钟；或滴加第二代生物素标记二抗工作液，37℃或室温孵育10~30分钟。
PBS冲洗，5分钟×3次。
5 滴加适当比例稀释的辣根酶标记链霉卵白素（PBS稀释），37℃孵育10~30分钟；或第二代辣根酶标记链霉卵白素工作液，37℃或室温孵育10~30分钟。
6 PBS冲洗，5分钟×3次。
7 显色剂显色（DAB或AEC）。
8 自来水充分冲洗，复染，封片。
1.冰冻切片4um左右，室温25°C复温30min，浸入4°C预冷的丙酮固定10min，2.PBS（PH为7.2-7.4）在9cm皿内摇床冲洗3次，每次5min（第一次冲洗时间短些，约1min后更换）3.用3%过氧化氢一份，纯甲醇50份（需要现配，避光条件封闭，可以用纸盒盖住皿）30min。
4.PBS（PH为7.2-7.4，酸性）在9cm皿内摇床冲洗3次，每次5min（第一次冲洗时间短些，约1min后更换），甩去PBS，擦干切片周围的水分，用免疫组化笔或蜡笔在组织周围画一适当大小的圈，距离组织不宜太近，与切片组织保持5mm左右距离，太近会导致边缘效应。
5.5%BSA，室温孵育20min，期间注意观察，以免BSA干燥而导致背景太高，请注意在皿内玻片两侧放置浸湿的卫生纸或棉球。
6.甩去血清，PBS洗1min，擦干周边水分，圈内可不擦，但尽量要甩干，以免导致抗体浓度不均。
7.配置一抗工作液用5%BSA（抗体浓度为1:100），悬空加入一抗工作液50-100ul，枪头不要触及组织，以免损伤组织结构，滴加一抗后在水平桌面画圈方式振荡，混匀一抗，否则抗体可能附着不匀。
8.放入湿盒内，置于4°C冰箱过夜（最长不可超过48h），注意盖盖，放入后观察玻片是否处于水平位（否则抗体可能流失，导致玻片组织干掉，出现背景高和假阳性），孵育期间观察抗体是否干，若干了赶快用PBS清洗浸泡。
9.第二天上午取出玻片，置常温复温30min，后PBS冲洗1+5+5+5min，10.滴加1:100生物素标记的二抗（注意选择核对一抗来源，抗体加入稀释后在EP管内弹匀，掌上离心机离心）室温孵育30min-1h，后PBS冲洗1+5+5+5min。
11.滴加1:100比例稀释的辣根过氧化物酶标记的链酶卵白素PBS稀释液（SABC）室温1h，后PBS冲洗1+5+5+5min，甩干，以免显色不均。
12.DAB显色，显色时放置在白色纸上，观察显色程度以终止DAB反应，最好把玻片置于显微镜上找到可能的阳性显色区域滴加DAB，观察到阳性区和阴性区差异后终止，此时最好有计时，以便于今后重复试验控制显色时间（一般显色时间2s-10min，显色时间过长背景高，且可靠性低）13.终止DAB显色可将玻片置于染色缸内，用自来水流水稀释终止5min，后在显微镜下观察是否有DAB颗粒附着。
14.甩干水分，苏木素复染（如为加汞的苏木素，显色时间为6-10s，可不用酒精分化，直接用PBS返蓝，如为非加汞苏木素，需在盐酸酒精分化），苏木素终止亦可用自来水冲洗终止反应。
15.水洗后梯度酒精脱水二甲苯透明（75%-85%-95%-100%-100%-二甲苯1-二甲苯2）个3min，滴加中性树胶封片，中性树胶浓度以不拉丝为宜16.封片后干燥1h(或者在通风橱吹风的情况下15min)，用棉球沾湿二甲苯擦去溢出的树胶。
观察照相。
针对脱片问题，我做了如下处理。
但仍存在脱片现象，麻烦您给我提一些相关的建议。
自来水冲洗玻片，晾干后，多聚赖氨酸的涂胶以下两种方法我都试过1.单涂胶：往一张玻片上加0.01%的多聚赖氨酸80ul，用另一张玻片推片，然后叠加其上，停留5分钟，中间推动玻片数次，使液体涂抹均匀，分开两张玻片，滤纸吸干玻片下缘，置玻片架上600C烤干1h备用。
2.双涂胶：往一张玻片上加0.01%多聚赖氨酸80ul,单涂胶600C烤干,同样方法重复涂胶1次"600C烤干,备用。
我用过的尼氏染色的方法，效果不错。
1．溶液配制：(1) 溶液A：焦油固紫0.2g, 纯水500ml(2) 溶液B：0.1M冰醋酸冰醋酸3ml，纯水500ml(3) 溶液C：0.1M无水醋酸钠无水醋酸钠4.1g，纯水500ml(4) 溶液D：PH3.5~4.5醋酸缓冲液B液94ml＋C液6ml(5) 工作液：A液10ml＋D液90ml 过滤后使用，避光保存注：焦油固紫遇光分解，整个过程应避光操作，可以用黑色塑料袋罩着。
2．具体步骤：⑴如果为石蜡切片，先进行脱蜡处理，然后从步骤⑵开始；如果为冰冻切片，从步骤⑵开始。
⑵将凉干的切片放入纯水中3～5min。
⑶切片放入焦油固紫染色液中1～1.5h。
⑷切片放入纯水中洗去浮色。
⑸切片放入70％－80％－95％的酒精分色，各几秒钟，时间自己掌握，以不见掉色为好。
⑹切片放入特殊分色液中褪背底（1：1：1的无水乙醇，氯仿，乙醚）。
⑺切片放入100％乙醇，5min×3次；二甲苯5min×3次，透明封固。
整个过程要保证切片不能干掉。
3、结果尼氏小体：深蓝紫色；核、核仁：浅紫色；背底：洁白无色。
我个人觉得特殊分色液挺重要的Highman甲醇刚果红染色法（类淀粉染色）1、试剂配制：甲醇刚果红染液: 刚果红0.5 g 甲醇80 ml 甘油20 ml碱性乙醇分化液: 氢氧化钾0.2 g 80%乙醇100 ml2、染色步骤:（1）切片脱蜡至水（2）甲醇刚果红染液染10～20分钟（3）用碱性乙醇分化液分化数秒（4）水洗（5）苏木素复染2分钟（6）水洗（7）脱水,透明,封固3、结果：淀粉样物呈桔红色。
4、类淀粉染色的应用：确定淀粉样变性及玻璃样变性的胶原组织，后者在刚果红法染色后呈淡桔色，冰冻切片脱脂问题：0.5盐酸乙醇分化液配置直接免疫荧光法测抗原基本原理将荧光素标记在相应的抗体上，直接与相应抗原反应。
其优点是方法简便、特异性高，非特异性荧光染色少。
缺点是敏感性偏低；而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。
此法常用于细菌、病毒等微生物的快速检查和肾炎活检、皮肤活检的免疫病理检查。
试剂与仪器λ磷酸盐缓冲盐水（PBS）：0.01mol/L，pH7.4λ荧光标记的抗体溶液：以0.01mol/L，pH7.4的PBS进行稀释λ缓冲甘油：分析纯无荧光的甘油9份+ pH9.2 0.2M碳酸盐缓冲液1份配制λ搪瓷桶三只（内有0.01mol/L，pH7.4的PBS 1500ml）λ有盖搪瓷盒一只（内铺一层浸湿的纱布垫）λ荧光显微镜λ玻片架λ滤纸λ 37℃温箱等。
实验步骤1. 滴加0.01mol/L，pH7.4的PBS于待检标本片上，10min后弃去，使标本保持一定湿度。
2. 滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液，使其完全覆盖标本，置于有盖搪瓷盒内，保温一定时间（参考：30min）。
3. 取出玻片，置玻片架上，先用0.01mol/L，pH7.4的PBS冲洗后，再按顺序过0.01mol/L，pH7.4的PBS 三缸浸泡，每缸3-5 min，不时振荡。
4. 取出玻片，用滤纸吸去多余水分，但不使标本干燥，加一滴缓冲甘油，以盖玻片覆盖。
5. 立即用荧光显微镜观察。
观察标本的特异性荧光强度，一般可用“+”表示：（-）无荧光；（±）极弱的可疑荧光；（+）荧光较弱，但清楚可见；（++）荧光明亮；（+++ --++++）荧光闪亮。
待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上，而各种对照显示为（±）或（-），即可判定为阳性。
注意事项1. 对荧光标记的抗体的稀释，要保证抗体的蛋白有一定的浓度，一般稀释度不应超过1：20，抗体浓度过低，会导致产生的荧光过弱，影响结果的观察。
2. 染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化，染色时间可以从10 min到数小时，一般30min已足够。
染色温度多采用室温（25℃左右），高于37℃可加强染色效果，但对不耐热的抗原（如流行性乙型脑炎病毒）可采用0-2℃的低温，延长染色时间。
低温染色过夜较37℃30 min效果好的多。
3. 为了保证荧光染色的正确性，首次试验时需设置下述对照，以排除某些非特异性荧光染色的干扰。
（1）标本自发荧光对照：标本加1-2滴0.01mol/L，pH7.4的PBS。
（2）特异性对照（抑制试验）：标本加未标记的特异性抗体，再加荧光标记的特异性抗体。