实验4 pH值对唾液淀粉酶活性的
实验四酶的特性实验
说明:本实验由四个小实验组成,其中第一个实验(酶的专一性)必做,其他三个小实验选做(至少做一个)写实验报告时,可以只写需要做的实验内容!实验四酶的特性实验一、实验目的酶是生物催化剂,生物体内化学反应基本上都是在酶的催化下进行的。
通过本实验了解酶催化的特异性、温度对酶活力的影响、PH对酶活力的影响、激活剂和抑制剂对酶活力的影响,对于进一步掌握代谢反应及其调控机理具有十分重要的意义。
二、实验内容本实验由酶的专一性实验、温度对酶活力的影响、PH对酶活力的影响、激活剂和抑制剂对酶活力的影响4个小实验组成。
(一)酶的专一性1、实验原理本实验以唾液淀粉酶对淀粉和蔗糖的作用为例,来说明酶的专一性。
淀粉和蔗糖无还原性,唾液淀粉酶水解淀粉生成有还原性二糖的麦芽糖,但不能催化蔗糖的水解。
用班氏试剂检查糖的还原性。
班氏试剂为碱性硫酸铜,能氧化具还原性的糖,生成砖红色沉淀氧化亚铜。
2、材料、仪器与试剂(1)材料:新鲜配制的唾液及其稀释液(2)仪器:恒温水浴;沸水浴;试管及试管架;(3)试剂:2%蔗糖溶液;溶于0.3% NaCl的0.5%淀粉溶液;班氏试剂。
3、实验操作(1)稀释唾液的制备①唾液的获取用一次性杯取一定量的饮用水,漱口以清洁口腔,然后在嘴中含10-20ml饮用水,轻漱2min左右时间,即可获得唾液的原液,内含唾液淀粉酶。
②不同稀释度唾液的制备(用大试管)本实验需制备1:1、1:5、1:20、1:50、1:200等五个不同浓度的稀释唾液。
举例说明:1:5指的是稀释了5倍的唾液,制备方法为1份原液+4份蒸馏水。
1:20指的是稀释了20倍的唾液,制备方法为1份1:5的稀释液+3分蒸馏水。
(2)唾液淀粉酶最佳稀释度的确定(严格按表1添加顺序做实验,用小试管做实验)表1 唾液淀粉酶稀释度的确定(2)淀粉酶的专一性表2 淀粉酶专一性实验(二)温度对酶活力的影响1、实验原理酶的催化作用受温度的影响。
在最适温度下,酶的反应速度最高。
酶学实验实验报告唾液
一、实验目的1. 了解唾液淀粉酶的生物学特性及其在消化过程中的作用。
2. 掌握酶活性测定的基本原理和方法。
3. 通过实验观察和分析唾液淀粉酶活性受温度、pH值等因素的影响。
二、实验原理唾液淀粉酶是一种消化酶,主要存在于唾液中,负责将食物中的淀粉分解为麦芽糖,为后续消化提供能量。
酶活性是指酶催化反应的能力,受多种因素的影响,如温度、pH值、底物浓度等。
本实验通过测定不同条件下唾液淀粉酶对淀粉的分解速率,观察酶活性变化。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:- 新鲜唾液- 淀粉溶液- 碘液- pH试纸- 温度计- 烧杯- 试管- 移液器2. 实验仪器:- 恒温水浴箱- 酶标仪- 移液器四、实验步骤1. 唾液淀粉酶活性测定:(1)取两只试管,分别加入2mL淀粉溶液。
(2)用移液器取1mL唾液,加入第一只试管中,混匀。
(3)将第一只试管放入37℃恒温水浴箱中,观察淀粉分解情况。
(4)每隔5分钟,用移液器取1mL反应液,加入碘液中,观察颜色变化。
(5)记录淀粉分解所需时间。
2. 温度对唾液淀粉酶活性的影响:(1)设置不同温度(如25℃、37℃、50℃、65℃)的水浴箱。
(2)重复步骤1,观察不同温度下淀粉分解所需时间。
3. pH值对唾液淀粉酶活性的影响:(1)用pH试纸测定唾液的pH值。
(2)调整唾液的pH值至不同水平(如4、5、6、7、8、9)。
(3)重复步骤1,观察不同pH值下淀粉分解所需时间。
五、实验结果与分析1. 唾液淀粉酶活性测定:在37℃恒温水浴箱中,淀粉分解所需时间为10分钟。
2. 温度对唾液淀粉酶活性的影响:随着温度升高,淀粉分解所需时间逐渐缩短,说明唾液淀粉酶活性随温度升高而增强。
在50℃时,淀粉分解所需时间最短,说明50℃为唾液淀粉酶的最适温度。
3. pH值对唾液淀粉酶活性的影响:随着pH值升高,淀粉分解所需时间逐渐缩短,说明唾液淀粉酶活性随pH值升高而增强。
在pH值为7时,淀粉分解所需时间最短,说明pH值为7为唾液淀粉酶的最适pH值。
ph对酶活性的影响实验颜色变化
ph对酶活性的影响实验颜色变化实验目的1.观察不同底物、温度、pH、激活剂与抑制剂对淀粉酶活性的影响。
2.观察淀粉在水解过程中遇碘后溶液颜色的变化。
原理淀粉在唾液淀粉酶的作用下被逐步水解成不同大小分子的糊精、麦芽糖、葡萄糖,水解的中间产物遇碘呈现不同的颜色:淀粉溶液遇到碘呈蓝色,糊精遇到碘按照分子大小分别呈紫色、暗褐色或红色,麦芽糖、葡萄糖遇到碘不变色,呈碘液的淡黄色。
根据水解液和碘反应的颜色,可以判断淀粉酶水解淀粉是否已完全,因此可以通过这个方法定性观察不同底物、温度、pH及激活剂与抑制剂对唾液淀粉酶活性的影响。
实验材料与器材新鲜唾液稀释液、2%蔗糖溶液、本尼迪克特(Benedict)试剂、0.5%淀粉、0.5%淀粉溶液(含0.3%Na Cl)、1%氯化钠溶液、0.1%硫酸铜溶液、碘液、0.2 mo l/L磷酸氢二钠溶液、0.1 mo l/L柠檬酸溶液实验者唾液;电磁炉,恒温水浴锅,冰盒,试管,试管架、锥形瓶,滴管,pH 试纸、移液器等。
本实验的操作流程1.取3支试管,各加2mL含0.3%氯化钠的0.5%淀粉溶液。
2.另取3支试管,各加1mL淀粉酶液。
3.将此6支试管分为3组,每组中盛淀粉溶液与淀粉酶液的试管各1支。
4.三组试管分别置入0℃、37℃与100℃的水浴中。
5.等5min后,将各组中的淀粉溶液倒入淀粉酶液中,继续维持原温度条件5min后,0℃、37℃水浴管立即滴加2滴碘液,100℃的水浴管冷却后滴加2滴碘液,观察溶液颜色的变化。
结果:因为唾液淀粉酶最适p h为6.8,所以最后滴加碘液后三个分别为:蓝色,不变色,蓝色。
因为第二个中,在最适p h环境下,淀粉被酶分解为了葡萄糖,遇碘液不变色。
温度,pH对酶活性的影响
实验题目:温度、pH对酶活性的影响一、实验目的通过检验不同的温度、pH下唾液淀粉酶的活性,了解温度、pH对酶活性的影响。
二、实验原理唾液淀粉酶可将淀粉((C6H10O5)n)逐步水解成各种不同大小分子的糊精(中间产物)和麦芽糖。
由于在不同的温度和pH下唾液淀粉酶的活性高低不同,淀粉被水解的程度不同,因此可由酶反应混合物遇碘而呈现的颜色来判断酶的活性。
三、实验器材与试剂器材:试管、试管架、移液器、锥形瓶(50、100ml)、量筒、恒温水浴锅、玻璃漏斗、滤纸试剂:0.3%氯化钠的0.2%淀粉溶液、碘化钾-碘溶液、稀释100倍的新鲜唾液、0.2M 磷酸氢二钠溶液、0.1M 柠檬酸溶液四、实验步骤实验(一)温度对酶的活性影响表一温度对酶的活性影响实验步骤试管1 试管2 试管3步骤1 各加2ml的0.2%淀粉溶液步骤2 37℃恒温水浴锅保温5min 冰水冷却5min步骤3 各加入稀释100倍的新鲜唾液1ml步骤4 摇匀,放置20min各加碘化钾-碘溶液2滴,混匀,显色,比较各试管溶液的颜色。
判断淀粉步骤5被唾液淀粉酶水解的程度,并说明唾液淀粉酶活性的影响。
实验(二)pH对酶的活性影响(1)取干净的50毫升锥形瓶3个编号,按下表中的比例,用移液枪添加0.2M磷酸氢二钠溶液和0.1M柠檬酸溶液,制备pH为5.0、6.8、8.0三种缓冲溶液。
(8人为一组)pH=5.0, 5.15ml0.2M磷酸氢二钠溶液和4.85ml0.1M柠檬酸溶液pH=6.8, 7.72ml 0.2M磷酸氢二钠溶液和2.28ml0.1M柠檬酸溶液pH=8.0, 9,72ml0.2M磷酸氢二钠溶液和0.28ml0.1M柠檬酸溶液表二pH对酶的活性影响实验步骤试管1 试管2 试管3步骤1 各加入1.5ml不同pH缓冲液步骤2 各加入0.2%淀粉溶液1ml,摇匀步骤3 依次加入稀释100倍的唾液2ml,摇匀放入37℃恒温水浴中保温2分钟,然后将各试管迅速取出,并立即加入碘化步骤4钾-碘溶液2滴,摇匀,比较三管溶液的颜色。
唾液淀粉酶实验报告
唾液淀粉酶实验报告唾液淀粉酶实验报告引言:唾液淀粉酶是一种消化酶,能够将淀粉分解成较小的分子,为消化系统提供能量。
本实验旨在探究唾液淀粉酶的活性及其受到的影响因素。
实验材料与方法:实验材料:1. 淀粉溶液2. 唾液样本3. 碘液4. 试管5. 恒温水浴6. 酒精灯7. 显微镜8. 盖玻片实验方法:1. 取一定量的淀粉溶液倒入试管中。
2. 加入一滴碘液,观察试管中溶液颜色的变化,记录下颜色。
3. 将一定量的唾液样本加入另一个试管中。
4. 将两个试管放入恒温水浴中,保持温度恒定。
5. 同时开始计时,每隔一分钟,分别取出两个试管中的溶液滴在盖玻片上。
6. 用显微镜观察滴在盖玻片上的溶液,记录下观察结果。
7. 重复以上步骤,分别在不同温度和不同pH值条件下进行实验。
实验结果及讨论:在初始状态下,淀粉溶液的颜色为深蓝色,加入碘液后,颜色变为紫黑色。
这是因为碘液与淀粉反应生成了淀粉碘复合物,导致颜色变化。
在观察唾液淀粉酶活性的实验中,我们发现随着时间的推移,滴在盖玻片上的溶液逐渐变浅,最终变为无色。
这说明唾液淀粉酶能够将淀粉分解成较小的分子,从而使溶液中的淀粉含量减少。
在不同温度下的实验中,我们发现唾液淀粉酶的活性受到温度的影响。
当温度较低时,唾液淀粉酶的活性较低,反应速率较慢;而当温度较高时,唾液淀粉酶的活性较高,反应速率较快。
这是因为温度能够影响酶的构象和分子振动,从而影响酶的活性。
在不同pH值条件下的实验中,我们发现唾液淀粉酶的活性也受到pH值的影响。
在中性条件下,唾液淀粉酶的活性最高;而在酸性或碱性条件下,唾液淀粉酶的活性较低。
这是因为酶的活性受到pH值的影响,过高或过低的pH值会破坏酶的构象,从而降低酶的活性。
结论:通过本实验,我们得出了以下结论:1. 唾液淀粉酶能够将淀粉分解成较小的分子。
2. 唾液淀粉酶的活性受到温度的影响,温度越高,活性越高。
3. 唾液淀粉酶的活性受到pH值的影响,中性条件下活性最高。
【引用】关于温度和pH对酶活性影响的探究实验
【引用】关于温度和pH对酶活性影响的探究实验探究温度对酶活性影响实验步骤:1、取6支洁净的试管,编上1、1′、2、2′、3、3′号,向1、2、3号试管分别注入1mL新鲜的唾液淀粉酶,向1′、2′、3′号试管加入1mL可溶性淀粉溶液;2、将1和1′号试管放置在100度左右的热水、2和2′号试管放置于37度左右的的温水、3和3′号试管放置于冰块中,维持各自温度5分钟;3、分别将同温度下的淀粉溶液注入淀粉酶溶液中(既是1′号试管注入到1号试管中)摇匀后,维持各自的温度5分钟;4、在3支试管中各滴入1滴碘液,摇匀;5、观察并记录颜色变化。
预期实验现象:1号试管加碘后出现蓝色(原因:高温破坏酶的活性,淀粉酶无法分解淀粉);2号试管加碘后不出现蓝色(原因:37℃为唾液淀粉酶最适合温度,此时酶的活性最高,淀粉被水解);3号试管加碘后出现蓝色(原因:低温抑制酶的活性,淀粉水解受阻)实验结论:酶活性的发挥需要最适宜的温度,温度过高或过低都影响酶的活性。
唾液淀粉酶的最适温度为37℃。
探究pH对酶活性影响(1)实验步骤:1、取3支洁净的试管,编上1、2、3号,向1、2、3号试管分别注入 1mL新鲜的肝脏研磨液;2、分别向三只试管分别加入2mL的蒸馏水、质量分数5%的盐酸和质量分数5%的氢氧化钠,摇匀后静置5min;3、分别向三只试管加入1mL的过氧化氢溶液,观察并记录实现现象;4、2-3min后,将3支带火星卫生香分别伸进试管液面上方,观察观察并记录实现现象预期实验现象:1号试管试管产生大量气泡,卫生香复燃,2、3号产生气泡少或无气泡产生,卫生香不复燃。
实验结论:酶活性的发挥需要最适宜的pH,温度过高或过低都影响酶的活性。
过氧化氢酶在中性的活性最。
探究pH对酶活性影响(2)实验步骤:1、取5支洁净的试管,编上1、2、3、4、5号,向1、2、3、4、5号试管分别注入 1mL新鲜的肝脏研磨液;2、用盐酸或氢氧化钠溶液调整出不同pH,分别为6.0、6.5、7.0、7.5、8;3、取2ml配置好的不同pH溶液分别加入5支试管中(既是1号试管加入2mlpH6.0的溶液,依次类推),摇匀后静置5min;4、分别向试管中加入1mL的过氧化氢溶液,观察现象并记录。
pH对酶活性的影响 - 实验四温度、pH对酶活性的影响
(1)酶作为生物催化剂具有哪些特性?
(2)进行酶的实验必须注意控制哪些条件?为什么?
酶对温度的稳定性与其存在形式有关。实践证明大多数酶在干燥的固体状态下比较稳定,能在室温下保存数月以至一年。溶液中的酶,一般不如固体的酶稳定,而且容易被微生物污染,通常很难长期保存而不丧失其活性,在高温的情况下,更不稳定。
【操作方法】
脲酶能催化尿素水解生成氨和二氧化碳,氨可与奈斯勒试剂作用生成橙红色化合物。由颜色深浅,可断定反应进行的程度。
向第9干燥的试管中加入稀释200倍的唾液2ml,摇匀后放入37℃恒温水浴中保温.每隔1min由第9号试管中取出一滴混合液,置于白瓷板上,加1滴碘化钾-碘溶液,检验淀粉的水解程度,待结果呈检黄色时,取出试管,记录保温时间。注意,掌握第9号试管的水解程度是本实验成败的关键之一。
以1min的间隔,依次向第1至第8号试管中加入稀释200倍的唾液2ml,摇匀,并以1min的间隔依次将8号支试管放入37℃恒温水浴中保温。然后,按照第9号试管的保温时间,依次将各管迅速取出,并立即加入碘化钾-碘溶液2滴,充分摇匀。观察各管呈现的颜色,判断在不同pH值下淀粉被水解的程度,可以看出pH对唾液淀粉酶活性的影响,并确定其最适pH。
奈斯勒试剂是含有大量汞盐的强碱性溶液,所以,它是具有腐蚀性的剧毒试剂。实验时必须严格遵守操作规程,谨防中毒。此外,作酶学实验时所用的玻璃仪器等一切器皿必须洁净,以除去能抑制酶活性的杂性。因此,用奈斯勒试剂作完实验后,将它所沾污的试管等一切器皿充分洗涤干净。
二、器材
(1)试管和试管架
(2)吸量管(1、2ml)
应当指出酶的最适pH受底物性质和缓冲溶液性质的影响。例如,唾液淀粉酶的最适pH约为6.8,但在磷酸缓冲液中,其最适pH为6.4-6.6,在醋酸缓冲液中则为5.6。
pH对酶活性的影响 - 实验四温度、pH对酶活性的影响
以1min的间隔,依次向第1至第8号试管中加入稀释200倍的唾液2ml,摇匀,并以1min的间隔依次将8号支试管放入37℃恒温水浴中保温。然后,按照第9号试管的保温时间,依次将各管迅速取出,并立即加入碘化钾-碘溶液2滴,充分摇匀。观察各管呈现的颜色,判断在不同pH值下淀粉被水解的程度,可以看出pH对唾液淀粉酶活性的影响,并确定其最适pH。
(3)烧杯(500、100ml)
(4)锥形瓶(100ml)
(5)玻璃漏斗
(6)水浴锅
(7)铁三脚架
(8)煤气灯
(9)恒温水浴
(10)滤纸
【思考题】
1.什么是酶的最适温度?有体实践意义?
2.奈斯勒试剂的成分是什么?为什么可用它来检查脲酶的活性?使用中应注意什么?
3.酶在干燥的状态下与水溶液中,它的活性受温度的影响是否相同?这个性质对酶的保存有体意义?
4.酶反应的最适温度是酶的特征物理常数吗?它与哪些因素有关?
ⅡpH对酶活性的影响
【目的和要求】
1.了解pH对酶活性的影响。
2极为显著。通常各种酶只有在一定的pH范围内才表现它的活性。一种酶表现其活性最高时的pH值,称为该酶的最适pH。低于或高于最适pH时,酶的活性降低。不同酶的最适pH值不同,例如,胃蛋白酶的最适pH为1.5-2.5,胰蛋白酶的最适pH为8等。
【试剂和器材】
一、试剂
(1)0.3%氯化钠的0.5%淀粉溶液[新鲜配制、需加热至无浊状]
唾液淀粉酶实验报告
一、实验目的1. 了解唾液淀粉酶的生物学功能和作用机制。
2. 探究不同环境因素(如温度、pH值)对唾液淀粉酶活性的影响。
3. 掌握酶活性测定的基本方法和操作技能。
二、实验原理唾液淀粉酶是一种消化酶,主要存在于唾液中,其主要功能是催化淀粉分解为葡萄糖。
本实验通过观察淀粉在唾液淀粉酶作用下的水解情况,了解唾液淀粉酶的活性及影响因素。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:淀粉溶液、唾液、碘液、蒸馏水、试管、移液器、恒温水浴锅、温度计、pH计等。
2. 实验仪器:电子天平、显微镜、离心机、酶标仪等。
四、实验步骤1. 制备淀粉溶液:称取一定量的淀粉,用蒸馏水溶解,配制成一定浓度的淀粉溶液。
2. 唾液稀释:取一定量的唾液,用蒸馏水稀释至一定倍数。
3. 设置实验组:1. 温度实验组:分别将淀粉溶液和唾液稀释液置于不同温度(如0℃、25℃、37℃、50℃、75℃)的水浴锅中,观察淀粉水解情况。
2. pH值实验组:分别用不同pH值的缓冲液(如pH3.0、5.0、7.0、9.0、11.0)替换蒸馏水,与淀粉溶液和唾液稀释液混合,观察淀粉水解情况。
4. 观察淀粉水解情况:1. 将淀粉溶液和唾液稀释液分别加入试管中,加入一定量的碘液,观察溶液颜色变化。
2. 对比不同实验组溶液颜色变化,分析唾液淀粉酶活性及影响因素。
5. 数据处理:记录实验数据,分析实验结果,得出结论。
五、实验结果与分析1. 温度对唾液淀粉酶活性的影响:实验结果显示,唾液淀粉酶活性在37℃时最高,随着温度升高或降低,酶活性逐渐降低。
2. pH值对唾液淀粉酶活性的影响:实验结果显示,唾液淀粉酶活性在pH 7.0时最高,随着pH值升高或降低,酶活性逐渐降低。
3. 淀粉水解情况:实验结果显示,随着唾液淀粉酶作用时间的延长,淀粉水解程度逐渐加深,溶液颜色由蓝色逐渐变为无色。
六、结论1. 唾液淀粉酶具有高度的专一性,主要催化淀粉分解为葡萄糖。
2. 温度和pH值是影响唾液淀粉酶活性的重要因素,适宜的温度和pH值有利于提高酶活性。
实验四-4、pH对淀粉酶活性的影响
实验四-4 pH对淀粉酶活性的影 实验四 对淀粉酶活性的影 响
一、实验目的
了解pH对酶活性的影响及最适pH的定义。
二、原理
酶的催化活性与环境pH有密切关系,通常各 种酶只在一定pH范围内才具有活性,酶活性最 高时的pH,称为酶的最适pH,高于或低于此pH 时酶的活性都逐渐降低。不同酶的最适pH不同。 酶的最适pH不是一个特征性的物理常数,对于 一个酶,其最适pH因缓冲液和底物的性质不同 而有差异。
六、思考题
1. pH值导致酶活性丧失的分子机理是什么? 2. pH值改变导致的活性丧失, pH值恢复后活性 也能恢复吗?
3 -
3 -
3
2 2
2 2
2 2
充分摇匀,置37 ℃水浴保温2 min,到达保温时间后,每隔1min依次取出 立即加碘化钾-碘溶液/滴 记录观察结果
2 2 2
五、注意事项
1. 本实验中的保温时间是2min,但实际是 随不同的唾液淀粉酶的活性而变化的,所以在 实验前先找出准确的保温时间是本实验的关键; 2. 加入酶液后务必充分摇匀,保证酶与全 部淀粉溶液接触,反应才能得到理想的颜色梯 度变化结果。
0.2mol/L磷酸氢 二钠(mL) 5.15 7.72 9.72
0.1mol/L柠 檬酸 4.85 2.28 0.28
缓冲液pH 5.0 6.8 8.0
探究pH值对酶活性的影响实验的认识
探究pH值对酶活性的影响实验的认识(2012年大纲卷高考试题)某同学为了探究pH对人唾液淀粉酶活性的影响,设计了如下实验步骤:①在A、B、C、D、E 5支试管中分别加入pH5.0、6.0、7.0、8.0、9.0的适宜浓度缓冲液5ml,再分别加入质量分数为1%的淀粉液1ml。
②各试管中分别加入适当浓度的唾液稀释液1ml,摇匀。
③将5支试管放入70℃恒温水浴中,保温时间相同且合适。
④取出各试管,分别加入斐林试剂2ml,摇匀。
⑤观察各试管溶液的颜色,通过颜色深浅判断唾液淀粉酶作用的最适pH。
上述实验步骤中有2处错误,请更正并说明更正的理由(不考虑试剂的浓度和加入量、pH梯度以及实验重复次数),以便实验能得到正确的预期结果。
(1)。
(2)。
【答案】(1)③中70℃应该为37℃。
因为人唾液淀粉酶作用的最适温度为37℃(2)在观察各试管中溶液的颜色之前应将各试管放在沸水浴中一段时间。
因为在高温条件下斐林试剂(或本尼迪特试剂)与还原糖反应显色。
分析:很多资料认为这个试题有一个严重错误,就是不能用人唾液淀粉酶探究pH对活性的影响,应该用过氧化氢酶。
其实本人认为是可以用淀粉酶,但必须是唾液淀粉酶,不能用α-淀粉酶。
检测的试剂也有要求,就是用斐林试剂(或本尼迪特试剂),不能用碘液。
探究pH值对酶活性的影响实验,浙科版和苏教版都是用过氧化氢酶探究pH对酶活性的影响,人教版在课本第84页用括号注明:建议用淀粉酶探究温度对酶活性的影响,用过氧化氢酶探究pH对酶活性的影响。
错误方案1:以唾液淀粉酶为实验材料,选择pH值为2的5%HCl、pH值为7的蒸馏水、pH值为14的5%NaOH作为实验的pH研究范围,用碘液检验淀粉是否存在,证明酶的活性。
以期望得出唾液淀粉酶的“最适pH”和唾液淀粉酶的活性随pH的变化而变化的规律。
分析:此实验用碘液检验淀粉是否存在,证明酶的活性是不可以的。
因为在碱性条件下,碘分子可与NaOH发生反应,生成NaI和NaIO,I2 + 2NaOH=NaI + NaIO +H2O。
探究ph对淀粉酶活性的影响
01
通过本次实验,为后续探究其他因素对淀粉酶活性的影响提供 基础数据。
02
为进一步研究淀粉酶在不同条件下的活性表现提供参考。
为相关领域的研究人员提供有关pH值对淀粉酶活性影响的实验
03
依据。
02
实验原理
淀粉酶的活性与ph的关系
淀粉酶是一种生物催化剂,用于水解 淀粉为可溶性糖。
不同的ph值对淀粉酶的活性有显著影 响。
结果分析
酸性环境可能抑制淀粉酶的活性,这可能与酸性环境中的氢离子浓度有关 ,高浓度的氢离子可能抑制酶的活性。
中性环境可能促进淀粉酶的活性,这可能与中性环境中离子浓度适宜,有 利于酶的活性发挥有关。
碱性环境可能对淀粉酶产生一定的抑制作用,这可能与碱性环境中的氢氧 根离子浓度有关,高浓度的氢氧根离子可能抑制酶的活性。
THANKS
感谢观看
确定pH值变化是否会对淀粉酶活性产生显著影响 。
了解不同ph值对淀粉酶活性的影响
01
研究在不同pH值(如:pH 4.0、5.0、6.0、7.0、 8.0等)下,淀粉酶的活性变化情况。
02
分析在不同pH值下,淀粉酶活性变化的趋势和规律 。
03
比较不同pH值对淀粉酶活性的影响程度。
为后续实验奠定基础
数据处理与图表展示
数据处理
将不同pH值下的淀粉酶活性进行统计,并绘制柱状图或折线图进行展示。
图表展示
通过柱状图或折线图展示不同pH值下淀粉酶活性的变化趋势,便于观察和分析。
05
结论与讨论
结论概述
实验表明,在pH值为中性至弱碱性 的范围内,淀粉酶的活性较高,且最 适pH为7.0。在酸性条件下,淀粉酶 的活性受到抑制,而在碱性条件下, 其活性同样降低。
唾液淀粉酶活性的观察实验报告范文
唾液淀粉酶活性的观察实验报告范文唾液淀粉酶活性观察模型报告2021第一部分:唾液淀粉酶活性观察实验报告唾液淀粉酶活性观察实验报告一、实验目的1.了解环境因素对酶活性的影响和酶的高效性;2.掌握酶定性分析的方法和注意事项。
二、基本原则1.酶是一种生物催化剂,具有极高的催化效率,其催化效率比一般催化剂高106~1013。
过氧化氢酶可以催化H2O2在生物体内分解为H2O 和O2,也可以加速H2O2在铁粉中的分解。
化学作用,但其效率比酶低得多。
2.酶的活性受温度的影响。
在一定的温度范围内,酶的活性会随着温度的升高而增加。
当温度达到最大值时,是酶的最佳温度。
由于温度过高,酶开始失活,导致酶的效率降低,最终完全失活。
3.酶的活性受酸碱度的影响。
酶只在一定的PH值范围内有活性,高于或低于最适PH值都会降低酶的活性。
4.酶的活性往往受某些物质的影响。
有些物质可以提高酶的活性,称为激活剂,有些物质可以降低酶的活性,称为抵抗性。
5.碘溶液显示淀粉水解度的不同颜色变化;淀粉淀粉酶紫糊精淀粉酶深棕色糊精淀粉酶红糊精淀粉酶麦芽糖加碘后:蓝紫红深棕色红棕黄第三,试剂和设备第2部分:唾液淀粉酶活性的测定唾液淀粉酶活性影响的研究讨论了不同条件下唾液淀粉酶活性的差异。
实验结果表明,它影响唾液淀粉酶活性的影响因素很多,需要在合适的条件下发挥最佳的催化作用;淀粉酶有高特异性,其活性受温度、pH值、活化剂和抑制剂、酶浓度和作用时间等影响。
各种因素的影响;每个人产生的唾液淀粉酶的数量和活性是不同的。
关键词:淀粉酶;活动;温度;抑制剂;活化剂;单一2影响唾液淀粉酶活性的因素(一)实验的目的观察淀粉溶液在水解过程中遇碘后的颜色变化。
观察温度、酸碱度、活化剂和抑制剂对唾液淀粉酶活性的影响。
(2)实验原理人唾液中的淀粉酶是-淀粉酶,在唾液腺细胞中合成。
在唾液淀粉酶的作用下,淀粉水解,经过一系列称为糊精的中间产物,最终产生麦芽糖和葡萄糖。
变更过程如下:淀粉紫糊精红糊精麦芽糖和葡萄糖淀粉、紫糊精、红糊精接触碘分别为蓝色、紫色、红色,麦芽糖、葡萄糖接触碘不变色。
唾液淀粉酶活性的观察实验报告范文_实验报告
唾液淀粉酶活性的观察实验报告范文_实验报
告
篇一:唾液淀粉酶活性观看试验报告
2 唾液淀粉酶活性观看试验报告
一、试验目的
1.了解环境因素对酶活性的影响及酶的高效性;
2.把握酶定性分析的方法和留意事项。
二、基本原理
1.酶是生物催化剂,具有极高的催化效率,其催化效率比一般催化剂高106~1013.在生物体内过氧化氢酶能催化H2O2分解成H2O和O2,铁粉地H2O2分解也有催
化作用,但其效率远低于酶。
2.酶的活性受温度的影响。
在肯定的温度范围内,温度上升,酶的活性也会增大。
当到了最大值后,此时温度为酶的最适温度,由于温度过高,酶开头失活,导致酶的效率降低,最终完全失活。
3.酶的活性受PH值的影响。
酶在肯定范围的PH值下才有活性,高于或低于最适PH,都会使酶的活性降低。
4.酶活性常受到某些物质的影响。
有些物质能使酶的活性增加,称为激活剂,有些物质能使酶的活性降低,称为抵制剂。
5.碘液指示淀粉水解程度的不同色改变:
淀粉淀粉酶紫色糊精淀粉酶暗褐糊精淀粉酶红色糊精淀粉酶麦芽糖+少量葡萄糖加碘后:蓝色紫红色暗褐色红棕色黄色
三、试剂与器材
篇二:唾液淀粉酶活性的测定
影响唾液淀粉酶活性的讨论。
唾液淀粉酶活性观察实验报告
唾液淀粉酶活性观察实验报告一、实验目的观察唾液淀粉酶对淀粉的消化作用,探究温度、pH 值和酶浓度等因素对唾液淀粉酶活性的影响。
二、实验原理唾液淀粉酶可以将淀粉水解为麦芽糖和葡萄糖等小分子物质。
淀粉遇碘会变蓝色,而麦芽糖和葡萄糖遇碘不变色。
通过检测反应前后溶液中是否还存在淀粉,以及淀粉的剩余量,可以判断唾液淀粉酶的活性。
三、实验材料和仪器1、材料新鲜唾液质量分数为 1%的淀粉溶液碘液质量分数为 5%的盐酸溶液质量分数为 5%的氢氧化钠溶液蒸馏水2、仪器恒温水浴锅试管滴管量筒玻璃棒四、实验步骤1、唾液的收集漱口后,将舌尖抵住上颚或下颚齿龈,约 1 2 分钟后,将口腔中的唾液收集到小烧杯中备用。
2、温度对唾液淀粉酶活性的影响(1)取 3 支洁净的试管,分别编号为 1、2、3,向每支试管中加入2 mL 质量分数为 1%的淀粉溶液。
(2)将 1 号试管放入 0℃的恒温水浴锅中,2 号试管放入 37℃的恒温水浴锅中,3 号试管放入 100℃的恒温水浴锅中,保温 5 分钟。
(3)同时,向 1、2、3 号试管中分别加入 1 mL 新鲜唾液,摇匀后,继续在各自温度下保温 5 分钟。
(4)取出 3 支试管,分别滴加 2 滴碘液,观察并记录溶液的颜色变化。
3、 pH 值对唾液淀粉酶活性的影响(1)取 3 支洁净的试管,分别编号为 4、5、6,向每支试管中加入2 mL 质量分数为 1%的淀粉溶液。
(2)向 4 号试管中加入 1 mL 质量分数为 5%的盐酸溶液,向 5 号试管中加入 1 mL 蒸馏水,向 6 号试管中加入 1 mL 质量分数为 5%的氢氧化钠溶液,摇匀。
(3)同时,向 4、5、6 号试管中分别加入 1 mL 新鲜唾液,摇匀后,将 3 支试管放入 37℃的恒温水浴锅中保温 5 分钟。
(4)取出 3 支试管,分别滴加 2 滴碘液,观察并记录溶液的颜色变化。
4、酶浓度对唾液淀粉酶活性的影响(1)取 3 支洁净的试管,分别编号为 7、8、9,向每支试管中加入2 mL 质量分数为 1%的淀粉溶液。
实验4 pH值对唾液淀粉酶活性的
实验器材:
【器材】: 10mm×100mm试管、试管架、恒温水浴箱、沸水浴、记号笔、一 次性杯子 【试剂】: 1.3,5-二硝基水杨酸试剂(又称DNS试剂): 甲液:溶解 6.9g结晶酚于15.2ml10%氢氧化钠中,并稀释至69 ml, 在此溶液中加入6.9g亚硫酸氢钠; 乙液:称取 255g酒石酸钾钠,加到300 ml10%氢氧化钠中,再加 入880 ml1% 3,5-二硝基水杨酸溶液。 将甲液与乙液相混合即得黄色试剂,贮于棕色试剂瓶中,在室温 下放置 7-10天以后使用。 2.0.1%葡萄糖标准液:准确称取100mg分析纯的葡萄糖(预先在 105℃干燥至恒重),用少量蒸馏水溶解后定容至100 ml,冰箱保 存备用。
pH对酶促反应的影响。
实验5 温度对酶促反应的影响
实验目的: 1. 通过实验观察温度对酶促反应的影响。 2. 提高分析问题和动手能力。 实验原理:同实验4。
根据颜色反应,可以了解淀粉被水解的程度。 在不同温度,唾液淀粉酶活性不同,淀粉水 解程度也不一样。进而了解温度对酶促反应 的影响。
实验器材: 【器材】: 10mm×100mm试管、试管架、恒温水浴箱、沸 水浴、记号笔、一次性杯子 【试剂】: 1.1%淀粉溶液:同实验4 2.稀释唾液:同实验3 3.碘溶液 取碘化钾4g溶于少量蒸馏水中,再取 碘2g,完全溶解后加蒸馏水至300ml,贮于棕色 瓶中。
实验步骤
取三支试管按下表操作:
加入物(ml)
1
2
3
1%淀粉溶液
PH5.7缓冲液 PH6.8缓冲液 PH8.0缓冲液
3
1 0 0
3
0 1 0
3
0 0 1
摇匀后37℃恒将上面各管摇匀后放入37℃恒温水浴中保
为验证PH对唾液淀粉酶活性的影响
一段时间后
细菌发生转化,性状的转化可以遗传。
单击画面继续
只 有 DNA 加 入 D 是 N A 遗 , R 传 型 转 物 化 为 质 S 型 。 。
多糖
DNA
蛋白质
DNA 酶
单击画面继续
DNA的化学结构(1)
基本单位-脱氧核苷酸
磷酸 脱氧 核糖
碱基 G A C T
DNA的化学结构(2)
脱氧核糖核苷酸的种类
( 2 )分别以不同生物的 DNA 为模板合成的各个新 DNA之间存在差异,这些差异是什么? (3)在一个新合成的DNA中,(A+T)(C+G)的比值, 是否与它的模板DNA任一单链的相同?
绿色植物通过呼吸作用合成的ATP通常比同化作用中消 耗的ATP多或少,动物呼吸作用合成的ATP通常比同化作 用消耗的ATP多或少?以上分别为: A、少、少 C、多、多 B、少、多 D、多、少
A.肌肉组织缺氧
C.机体进行有氧呼吸
B.机体消耗ATP过多
D.机体进行无氧呼吸
某体细胞中有染色体24个,该细胞在进行有丝分裂时某 DNA分子发生了基因突变,此细胞进入细胞分裂中期时有 染色体数: A、24个 B、47个 C、48个 D、49个
甲乙两生物的体细胞中,DNA分子数、碱基的总量与种类 均分别相同,与之相关的下列说法中,正确的是; A、甲、乙的遗传信息完全相同
瓶中O2的变化 白瓶 黑瓶 1m +3 -1 2m +2 -1 3m 0 -1 4m -1 -1 水底 -3 -3 ⑴、该池塘一昼夜生产氧 8 g.(m2)-1,消耗氧量 7 g.(m2)-1。 表明这个生态系统平衡状态良好,因为整个群落光合速率 大于呼吸速率 , 从而使水体保持一定的 溶解氧 浓度。
唾液淀粉酶活性观察实验报告
2 唾液淀粉酶活性观察实验报告一、实验目的1.了解环境因素对酶活性的影响及酶的高效性;2.掌握酶定性分析的方法和注意事项。
二、基本原理1.酶是生物催化剂,具有极高的催化效率,其催化效率比一般催化剂高106~1013.在生物体内过氧化氢酶能催化H2O2分解成H2O和O2,铁粉地H2O2分解也有催化作用,但其效率远低于酶。
2.酶的活性受温度的影响。
在一定的温度范围内,温度升高,酶的活性也会增大。
当到了最大值后,此时温度为酶的最适温度,由于温度过高,酶开始失活,导致酶的效率降低,最后完全失活。
3.酶的活性受PH值的影响。
酶在一定范围的PH值下才有活性,高于或低于最适PH,都会使酶的活性降低。
4.酶活性常受到某些物质的影响。
有些物质能使酶的活性增加,称为激活剂,有些物质能使酶的活性降低,称为抵制剂。
5.碘液指示淀粉水解程度的不同色变化:淀粉淀粉酶紫色糊精淀粉酶暗褐糊精淀粉酶红色糊精淀粉酶麦芽糖+少量葡萄糖加碘后:蓝色紫红色暗褐色红棕色黄色三、试剂与器材0.5%淀粉溶液,碘液,PH=3.8,6.8,8.0缓冲液,1%CuSO4溶液,0.9%NaCl 溶液,2%H2O2溶液,铁粉,生马铃薯糜,熟马铃薯糜,玻璃匀浆器,比色板,恒温水浴箱,三用水箱,制冰机。
四、操作步骤1.唾液淀粉酶的制备每人取一个干净的小烧杯,先用自来水漱口,将口腔内的食物残渣清除,干净。
然后取蒸馏水约20ml含入口中,做咀嚼动作了3~4min,以分泌较多的唾液。
将口腔中的蒸馏水吐入干净的小烧杯中,此即为稀释的唾液淀粉酶液。
2.酶的高效性及环境因素对酶活性的影响①PH值对酶活力的影响:取3支试管,编号:编号 1 2 3PH=3.8的缓冲溶液3 --PH=6.8的缓冲溶液- 3 -PH=8.0的缓冲溶液-- 30.5%淀粉溶液 1 1 1唾液淀粉酶液 1 1 1将上述各管溶液混合后在37度水浴中保温5min检查淀粉水解程度每隔1min,从2号试管中取出溶液置于白瓷板上,用碘液检查淀粉水解程度,待溶液不再变色时,从水浴中取出所有试管向各管均加入碘液1~2滴,摇匀观察,记录并解释现象②温度对酶的影响:取3支试管,编号:编号 1 2 3 唾液淀粉酶液0.5 0.5 0.5 PH=6.8的缓冲溶液1 1 1 0.5%淀粉溶液ml 1 1 1反应温度(度,10min)0 37 100取出试管,并将在沸水浴中处理的试管用冷水冷却,然后向各管中滚圆碘液1~3滴。
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实验5 温度对酶促反应的影响
实验目的: 1. 通过实验观察温度对酶促反应的影响。 2. 提高分析问题和动手能力。 实验原理:同实验4。
根据颜色反应,可以了解淀粉被水解的程度。 在不同温度,唾液淀粉酶活性不同,淀粉水 解程度也不一样。进而了解温度对酶促反应 的影响。
实验器材: 【器材】: 10mm×100mm试管、试管架、恒温水浴箱、沸 水浴、记号笔、一次性杯子 【试剂】: 1.1%淀粉溶液:同实验4 2.稀释唾液:同实验3 3.碘溶液 取碘化钾4g溶于少量蒸馏水中,再取 碘2g,完全溶解后加蒸馏水至300ml,贮于棕色 瓶中。
3,5-二硝Βιβλιοθήκη 水杨酸/mlλ=550nm的吸光值(A)
水浴加热5min,迅速取出冷却,在向每管加入21ml的蒸馏水于550nm处测 吸光度;
实验内容与方法:
取三支试管按下表操作:
表
加入物ml 1% 淀粉溶液 PH6.8缓冲液
温度对酶促反应的影响
1
3 1 2 3
3 1
3 1
摇匀后分别于37、沸水、冰浴5分钟
稀唾液 1
1 1
摇匀后分别于37、沸水、冰浴10分钟
取出后,分别向各管加入稀碘液1滴,观察3管中颜色的区别,说明温度对酶促反应的影响。
实验6 唾液淀粉酶的活性测定
实验目的: 1. 学习酶活力,酶活力单位,比活力的测定, 加深对概念的理解; 2. 学会用3,5-二硝基水杨酸测定还原糖的含量
实验原理:
• 在最适条件下,每分钟催化单位量的底物转化为产物所 需的酶量定义为一个活力单位。 • 酶的比活力:用每mg蛋白质酶活力单位数表示,表示 酶的纯度。每隔一段时间测定一次水解的横渡一浓度为 纵坐标,时间为横坐标作图,在图上找出开始部分线形 好的部分求出斜率。进而求出酶的活力与比活力。 • 3,5----二硝基水杨酸与还原糖共热后被还原成棕红色 的氨基化合物,在一定范围内,还原糖的量和反应液的 颜色强度呈现比例关系,利用比色法可测知样品的含糖 量。该方法是半微量测糖法,操作简便,快速,杂质干 扰较小。
实验4 pH值对唾液淀粉酶活性的影响
实验目的:
• 1. 通过实验观察pH对酶促反应的影响。 • 2. 提高分析问题和动手能力。
实验原理
• 淀粉在淀粉酶催化下水解,其最终产物是麦芽糖和 葡萄糖。在水解反应过程中淀粉的分子量逐渐变小, 形成若干分子量不等的过渡性产物,称为糊精。向 反应系统中加入碘液可检查淀粉的水解程度,淀粉 遇碘呈蓝色,麦芽糖对碘不显色。糊精中分子量较 大者呈蓝紫色,随糊精的继续水解,对碘呈橙红色。 • 根据颜色反应,可以了解淀粉被水解的程度。在不 同酸碱度下,唾液淀粉酶活性不同,淀粉水解程度 也不一样。进而了解pH对酶促反应的影响。
实验器材:
【器材】: 10mm×100mm试管、试管架、恒温水浴箱、记号笔、一次性杯子 【试剂】: 1.1%淀粉溶液:配制方法:取可溶性淀粉1克,加5毫升蒸馏水,调成糊状,再加蒸馏水约80 毫升,加热,使其溶解,最后用蒸馏水稀释至100毫升,冰箱保存。 2.稀释唾液:同实验3 3.缓冲溶液: 4.碘溶液 取碘化钾2g溶于少量蒸馏水中,再取碘1.27g,完全溶解后加蒸馏水至200ml,贮于 棕色瓶中。使用前用水稀释5倍。
实验器材:
【器材】: 10mm×100mm试管、试管架、恒温水浴箱、沸水浴、记号笔、一 次性杯子 【试剂】: 1.3,5-二硝基水杨酸试剂(又称DNS试剂): 甲液:溶解 6.9g结晶酚于15.2ml10%氢氧化钠中,并稀释至69 ml, 在此溶液中加入6.9g亚硫酸氢钠; 乙液:称取 255g酒石酸钾钠,加到300 ml10%氢氧化钠中,再加 入880 ml1% 3,5-二硝基水杨酸溶液。 将甲液与乙液相混合即得黄色试剂,贮于棕色试剂瓶中,在室温 下放置 7-10天以后使用。 2.0.1%葡萄糖标准液:准确称取100mg分析纯的葡萄糖(预先在 105℃干燥至恒重),用少量蒸馏水溶解后定容至100 ml,冰箱保 存备用。
实验步骤
取三支试管按下表操作:
加入物(ml)
1
2
3
1%淀粉溶液
PH5.7缓冲液 PH6.8缓冲液 PH8.0缓冲液
3
1 0 0
3
0 1 0
3
0 0 1
摇匀后37℃恒温水浴中保温5分钟
稀唾液 2 2 2
• 将上面各管摇匀后放入37℃恒温水浴中保
温。放置10分钟后取出,分别向各管加入
稀碘液1滴,观察3管中颜色的区别,说明
实验内容与方法:
• 1、葡萄糖标准曲线的制定 • 取8支试管编号,按下表操作:
0 试剂处理 试管编号 葡萄糖标准液/ml — 1 0.2 2 0.4 3 0.6 4 0.8 5 1.0 6 1.2 7 1.4
蒸馏水/ml
2.0 2
1.8 2
1.6 2
1.4 2
1.2 2
1.0 2
0.8 2
0.6 2