医学动物实验操作技术
合集下载
相关主题
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
一、动物实验相关的准备 实验目的明确（课题设计）：研究、
申报新药资料
动物实验相配套设备、仪器、试剂 标准实验动物饲养设施
二、实验动物相关的准备
实验动物的质量合格证明
适量的饲料和垫料 （高脂等特殊饲料）
运输中的各种因素对实验动物的影响，并应 查看运输检疫证明 动物需要隔离观察（一般3～7d的适应观察）
在静脉给药时，先根据
小鼠的大小选Biblioteka Baidu合适的固
定器，打开鼠筒盖，把小
鼠放在里面，只露出尾巴；
或者用倒放的烧杯将鼠扣
住，只露出尾巴并压住。
2、大鼠的抓取与固定
抓取方法：4~5周龄以内的大鼠同小鼠；周龄 较大的大鼠其尾部皮肤容易被剥脱，所以用左 手从背部中央到胸部捏起来抓住。抓取时最好 带防护手套，但手套不宜过厚。 手固定法：同小鼠。
包括乙醚、氯仿、异氟烷 （Isoflurane ）。 （二）非挥发性麻醉剂 包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠(Pentobarbitol)、 硫喷妥钠、氨基甲酸乙脂、水合氯醛、氯胺胴 （Ketamine）、噻啦嗪（Xylazine）、速眠新、 乌拉坦。 （三）中药麻醉剂 包括洋金花、氢溴酸东莨菪碱等。
二、动物的麻醉方法
（五）笼子编号法：不在动物身体上作标记而把装 动物的笼子进行编号，也叫替代法。
第一节、实验动物的抓取与固定
第二节 实验动物的抓取和 固定
1、小鼠的抓取保定： 器材：小鼠饲养盒+面罩1套。
方法步骤： 1、用右手拇指和食指捏 住小鼠尾巴中部将小鼠提 起，放在饲养合的面罩上。 2、用左手拇指和食指迅速、 准确地捏住小鼠的两耳后、 颈背部的皮肤，将小鼠提起。
七、猪的抓取与固定
抓取方法：小猪常采用双手提起后
肢，两膝夹住猪背倒立固定；成猪 可采用站立固定。 固定方法：可将猪仰放在“V”字型 槽内固定，也可用木制三角固定架 和帆布吊兜固定（挖四个孔使其四 肢下伸）。如没有三脚架，也可以 用犬固定台。
第三节、实验动物的麻醉
一、常用的麻醉剂 （一）挥发性麻醉剂
第四节 给药方法
一、小鼠的给药方法： (一) 灌胃给药（经口给药） 原理： 将药液直接注入小鼠的胃内。 器材： 小鼠灌胃针1支、注射器1支、 小鼠饲养盒+面罩1套、生理盐水、 烧杯。
方法步骤： 1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量 的药液。 2、左手捉持小鼠，使小鼠头部向上。
3、右手将灌胃针头尖端从小鼠口角处进针
（一）全身麻醉
1.吸入麻醉：多采用乙醚做麻醉药。把带有乙醚 的棉球放入玻璃容器内，挥发后将动物放入容器 内4~6分钟，动物失去运动力后立即取出动物以 避免麻醉过深致死。此法多用于短期操作性实验， 乙醚麻醉的优点是苏醒快，但是对呼吸道刺激性 大，长时间容易窒息死亡。 2.注射麻醉：大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法 进行全身麻醉，犬、猫、兔等既可腹腔注射也可 静脉注射给药。注射时，先用麻醉药总量的2/3， 密切观察动物生命体征的变化，如已经达到所需 麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过 深抑制大脑呼吸中枢导致动物死亡
各种动物常用的全身麻醉剂的剂量及途径剂量(mg/kg体重) 动物 注射 戊巴比 巴比 苯巴比 硫喷 异戊巴 氯胺酮 氯醛糖 乌拉坦 途径 妥 钠 妥钠 妥 钠 妥钠 妥 钠 比妥钠 (20%~25%) (1%~3%) (1%~2%) (5%~10%) (10%) 小鼠 i.p 50~80 200 / 15~20 100 100~200 / / i.m / / / / / / / 1350 大鼠 i.p 40~50 200 / 40~100 100 100~200 550 / i.m / / / / / / / 1350 s.c / / 100~110 / / / / 800~1000 豚鼠 i.p 30~50 100 / / 100 / / / i.m / / / 20~50 / / / 1350 兔 i.p 25~40 / / / 80~120 / / / i.v 20~30 225~300 / 15~20 40~50 / 80~100 750~1000 犬 i.p 30 / / 20~50 80~100 10~40 / / i.v 30 225 50~100 15~20 40~50 / 60 750~1000 口服 / 350 / / / / 100 1500 注:i.p指腹腔注射,i.m指肌肉注射,s.c指皮下注射,i.v指静脉注射
方法2： 器材：兔保定架 步骤： 1、打开保定架的上盖，抓 取并将兔放进架 内，迅速关上保定架的上盖。 2 、右手抓住兔耳朵将头部 拉过保定架的卡 栓，将兔的脖子保定。
五、犬的抓取与固定
抓取方法：先给犬带上系有铁链条的脖套，对于 性情凶猛的犬，要用特制的钳式长柄犬夹夹住犬 颈部将犬按倒后，再系脖套和链条。 手固定法：首先绑住犬嘴，方法是饲养员或犬主 人从侧面靠近并轻轻抚摸其颈部皮毛，然后迅速 用布带绑住犬嘴，布带从下颌绕到上颌打一个结， 再绕到下颌打一个结，然后将布带绕到头后颈， 在颈后部再打一个结，最后打一个活结，对于未 经驯服的犬，可用长柄犬夹夹住犬颈部按倒后强 制绑嘴。 手术台固定法：麻醉后，松开布带，将犬仰卧在 手术台上，先固定四肢，再固定头部。
医学动物实验 操作技术
动物实验：动物实验是用实验动物作为人的替
身进行各种生命科学实验的过程。
动物实验操作技术：是实施动物实验的重要手 段，在不同的研究领域有其不同的目的和应用， 一些基本操作技术是共同的，基本的动物实验 技术需要训练 。
内容：动物实验的准备、动物实验基本操作技
术、动物实验后的管理技术以及应该注意的影
放进小鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，灌 胃针会顺着食管滑入小鼠的胃内。灌胃针插 入约3cm. 4、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射
3 、翻转左手掌，以左手
掌心和中指夹 小鼠背 部的皮肤，使小鼠整个呈
一条
直线。
4 、用左手无名指压住小
鼠背部的皮肤，小指压住
小鼠的尾巴根部。 5 、松开捏住小鼠尾巴的 右手拇指和食指。
手术固定法：用乙醚等麻醉药品麻醉后，用长 20~30cm的线绳分别系在四肢上，再把四肢的线 绳分别系在固定板四角的钉子上，并且在头部上颚 切齿的地方牵一根线绳达到完全固定。
方法步骤：
1、先用左手轻轻扣、 按住豚鼠背部。
2 、顺势抓紧其肩胛上方皮肤， 拇指和食指环箍其颈部。 3、用右手轻轻托住其臀部， 即可将豚鼠抓取保定。
四、家兔的抓取与固定
抓取方法：用一只手大把抓住颈背部皮肤提起 来，另一只手托住其臀部，让其重心落在托其 臀部的手上，运送时，还要抓住颈肩部皮肤抱 着兔子运送。 手固定法：在灌胃给药时，人坐在椅子上，用 一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住两后肢 放在两腿之间，大腿夹住兔子的下半身，用空 着的手抓住两前肢固定之，抓住颈背部的手同 时捏着两只耳朵，不让头部转动。
响动物实验效果的因素等
动物实 验结果
动物的反应 ：R＝(A+B+C)×D±E
式中：R—— 实验动物的总反应
A—— 实验动物种的共同反应 B—— 动物品种及品系特有的反应 C—— 动物个体反应（个体差异） D—— 环境的影响（包括实验处理） E—— 实验误差(实验操作相关)
By Chen Min-
第一节 动物实验前的准备
四、实验动物的编号与标记
1、染色法：用化学试剂或药品在实验动物体表的 不同部位进行涂染，并用不同颜色区别各组动物。 编号原则是先左后右，从前到后，从上到下。 有时用两种颜色一个代表十位、一个代表个位。 常用的染色剂有3%~5%的苦味酸（黄色）、2%的 硝酸银溶液（咖啡色）、0.5%的中性品红溶液（红 色）和煤焦油酒精溶液（黑色）。
2、耳缘剪孔法：是在动物的耳边缘剪出不同的缺口 或打成不同的小孔进行标记的方法。为防止孔、口愈 合，一般在打孔后用消毒的滑石粉涂抹在孔、口局部。 由打孔或剪切的位置和孔数代表编号，一般在耳内按 上、中、下打孔，分别代表1、2、3，在相应位置剪缺 口代表4、5、6，剪两个缺口代表7、8、9，无孔或缺 口为10。一般左耳代表个位数、右耳代表十位数。
手术固定法：同小鼠。 静脉给药或采血时同小鼠。
三、豚鼠的抓取与固定
抓取方法：抓取幼小豚鼠时，用手捧起来；成 熟的大豚鼠，用手大把抓起胸肋部即可。注意 不能粗野，更不能抓取腰腹部，这样容易造成 肝破裂而死亡。 手固定法：⑴将左手的食指和中指放在豚鼠颈 背部两侧，拇指和无名指放在肋部，分别用手 指夹住左右前肢抓起来。⑵反转左手，用右手 的拇指和食指夹住右后肢，用中指和无名指夹 住左后肢是豚鼠整体伸直成一条直线。⑶一个 人固定操作时，坐在椅子上，用右手拿着豚鼠 的后肢夹在两腿之间，用大腿代替右手夹住。 手术固定法：同大、小鼠。
（二）局部麻醉
1.表面麻醉:利用局部麻醉药的组织穿透作用，透过 粘膜，阻滞浅表的神经末梢，称为表面麻醉。常用 利多卡因，眼部用药点滴、鼻内用要涂敷、咽喉气 管用药喷雾、尿道灌注给药。 2.区域阻滞麻醉：在手术区内四周和底部注射麻醉 药阻断疼痛的向心传导，称为区域阻滞麻醉。常用 普鲁卡因。 3.神经干(丛)阻滞麻醉：在神经干(丛)的四周注射麻 醉药，阻滞其传导，使其所支配的区域疼痛感觉消 失，称为神经干(丛)阻滞麻醉。常用利多卡因。 4.局部浸润麻醉：沿手术切口逐层注射局部麻醉药， 阻滞组织中的神经末梢，称为局部浸润麻醉。常用 普鲁卡因。
三、麻醉注意事项
1.有些麻醉药，如乙醚挥发性很强，易燃，使用时应 远离火源，平时应妥善保存。 2.应特别注意各种麻醉药的剂量和给药途径，切莫因 药量过大而引起中毒或死亡。 3.注射时，一般要求缓慢注入，并随时观察动物肌肉 的紧张性、角膜反射、呼吸频率、疼痛反射等指标。 4.注意保温，采取实验桌内装灯、电褥、台灯照射等。 5.万一麻醉过量，根据不同情况采取措施，如施行人 工呼吸、给予苏醒剂或注射强心剂、咖啡因、肾上腺 素、可拉明等，也可以静脉注射5%温热的葡萄糖溶液。
3、烙印法：用烙印钳或刺针将号码刺在或烙印在动物 无体毛或明显部位，如耳、面、鼻部及四肢等，然后 用溶在酒精中的黑墨在针刺处涂抹。这种方法适用于 大中型实验动物，操作时要注意防止感染。
（四）号牌法：用特制的金属号牌固定在实验动物 的耳上或颈项部，挂牌时要注意避开血管。此法适 用于小动物,特别是转基因动物的培育和实验。
固定器固定法：耳静脉给药或采血时用盒式固 定法；从颈动脉采血或手术实验时用台式固定 法。 盒式固定法：把兔子放在盒子里，只露出头部， 用转扭拧固定器固定家兔。 台式固定法：将麻醉的兔子仰卧，用纱布条依 次将四肢捆绑固定于固定台的两侧，然后把头 部放在金属制的首伽和咀环上固定。
兔的抓取保定 方法1： 步骤： 1、用右手把兔 的两耳拿 在手心并抓住颈后 部皮肤， 把兔提起。
三、实验动物的分组
随机化原则 ：样本具有极好的代表性 ，非实验因素方面具 有极好的均衡性,提高实验资料的可比性与结论的说服力。 完全随机化的效果是否永远最好?不一定。关键取决于样本 含量的大小。若样本含量很大,完全随机化的效果比较理想; 若样本含量比较小,有时完全随机化的结果可能会出现某些偏 差。 例如： 24只小鼠,其中16只雌性,8只雄性,若采用完全随机化 方式均分成2组,则有可能一组中的12只小鼠全是雌性的,另一 组中有4只雌性、8只雄性小鼠 。“性别”这个重要的非实验 因素就严重地影响实验 。此时,宜采用“分层随机化” 。 随机化的方法有多种,可以查“随机数字表”、“随机排列表” 或查“用计算机产生的伪随机数字表”
六、猴的抓取与固定
抓取方法：从笼内抓取时，饲养人员应右手持 短柄网罩，左臂紧靠门侧，以防止笼门敞开时 猴逃出。右手将网罩塞入笼内，由上而下罩捕。 当猴被罩住后，应立即将网罩翻转取出笼外， 罩猴在地，由罩外抓住猴的颈部，清掀网罩， 再提取猴的手臂反背握住。 固定方法：1.徒手固定：将猴两前肢反背其背 后，操作者用一只手握着，用另一只手将猴两 后肢捉住即可固定。 2.固定架固定：使用“猴限制椅”或“猴固定 架”进行固定
申报新药资料
动物实验相配套设备、仪器、试剂 标准实验动物饲养设施
二、实验动物相关的准备
实验动物的质量合格证明
适量的饲料和垫料 （高脂等特殊饲料）
运输中的各种因素对实验动物的影响，并应 查看运输检疫证明 动物需要隔离观察（一般3～7d的适应观察）
在静脉给药时，先根据
小鼠的大小选Biblioteka Baidu合适的固
定器，打开鼠筒盖，把小
鼠放在里面，只露出尾巴；
或者用倒放的烧杯将鼠扣
住，只露出尾巴并压住。
2、大鼠的抓取与固定
抓取方法：4~5周龄以内的大鼠同小鼠；周龄 较大的大鼠其尾部皮肤容易被剥脱，所以用左 手从背部中央到胸部捏起来抓住。抓取时最好 带防护手套，但手套不宜过厚。 手固定法：同小鼠。
包括乙醚、氯仿、异氟烷 （Isoflurane ）。 （二）非挥发性麻醉剂 包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠(Pentobarbitol)、 硫喷妥钠、氨基甲酸乙脂、水合氯醛、氯胺胴 （Ketamine）、噻啦嗪（Xylazine）、速眠新、 乌拉坦。 （三）中药麻醉剂 包括洋金花、氢溴酸东莨菪碱等。
二、动物的麻醉方法
（五）笼子编号法：不在动物身体上作标记而把装 动物的笼子进行编号，也叫替代法。
第一节、实验动物的抓取与固定
第二节 实验动物的抓取和 固定
1、小鼠的抓取保定： 器材：小鼠饲养盒+面罩1套。
方法步骤： 1、用右手拇指和食指捏 住小鼠尾巴中部将小鼠提 起，放在饲养合的面罩上。 2、用左手拇指和食指迅速、 准确地捏住小鼠的两耳后、 颈背部的皮肤，将小鼠提起。
七、猪的抓取与固定
抓取方法：小猪常采用双手提起后
肢，两膝夹住猪背倒立固定；成猪 可采用站立固定。 固定方法：可将猪仰放在“V”字型 槽内固定，也可用木制三角固定架 和帆布吊兜固定（挖四个孔使其四 肢下伸）。如没有三脚架，也可以 用犬固定台。
第三节、实验动物的麻醉
一、常用的麻醉剂 （一）挥发性麻醉剂
第四节 给药方法
一、小鼠的给药方法： (一) 灌胃给药（经口给药） 原理： 将药液直接注入小鼠的胃内。 器材： 小鼠灌胃针1支、注射器1支、 小鼠饲养盒+面罩1套、生理盐水、 烧杯。
方法步骤： 1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量 的药液。 2、左手捉持小鼠，使小鼠头部向上。
3、右手将灌胃针头尖端从小鼠口角处进针
（一）全身麻醉
1.吸入麻醉：多采用乙醚做麻醉药。把带有乙醚 的棉球放入玻璃容器内，挥发后将动物放入容器 内4~6分钟，动物失去运动力后立即取出动物以 避免麻醉过深致死。此法多用于短期操作性实验， 乙醚麻醉的优点是苏醒快，但是对呼吸道刺激性 大，长时间容易窒息死亡。 2.注射麻醉：大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法 进行全身麻醉，犬、猫、兔等既可腹腔注射也可 静脉注射给药。注射时，先用麻醉药总量的2/3， 密切观察动物生命体征的变化，如已经达到所需 麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过 深抑制大脑呼吸中枢导致动物死亡
各种动物常用的全身麻醉剂的剂量及途径剂量(mg/kg体重) 动物 注射 戊巴比 巴比 苯巴比 硫喷 异戊巴 氯胺酮 氯醛糖 乌拉坦 途径 妥 钠 妥钠 妥 钠 妥钠 妥 钠 比妥钠 (20%~25%) (1%~3%) (1%~2%) (5%~10%) (10%) 小鼠 i.p 50~80 200 / 15~20 100 100~200 / / i.m / / / / / / / 1350 大鼠 i.p 40~50 200 / 40~100 100 100~200 550 / i.m / / / / / / / 1350 s.c / / 100~110 / / / / 800~1000 豚鼠 i.p 30~50 100 / / 100 / / / i.m / / / 20~50 / / / 1350 兔 i.p 25~40 / / / 80~120 / / / i.v 20~30 225~300 / 15~20 40~50 / 80~100 750~1000 犬 i.p 30 / / 20~50 80~100 10~40 / / i.v 30 225 50~100 15~20 40~50 / 60 750~1000 口服 / 350 / / / / 100 1500 注:i.p指腹腔注射,i.m指肌肉注射,s.c指皮下注射,i.v指静脉注射
方法2： 器材：兔保定架 步骤： 1、打开保定架的上盖，抓 取并将兔放进架 内，迅速关上保定架的上盖。 2 、右手抓住兔耳朵将头部 拉过保定架的卡 栓，将兔的脖子保定。
五、犬的抓取与固定
抓取方法：先给犬带上系有铁链条的脖套，对于 性情凶猛的犬，要用特制的钳式长柄犬夹夹住犬 颈部将犬按倒后，再系脖套和链条。 手固定法：首先绑住犬嘴，方法是饲养员或犬主 人从侧面靠近并轻轻抚摸其颈部皮毛，然后迅速 用布带绑住犬嘴，布带从下颌绕到上颌打一个结， 再绕到下颌打一个结，然后将布带绕到头后颈， 在颈后部再打一个结，最后打一个活结，对于未 经驯服的犬，可用长柄犬夹夹住犬颈部按倒后强 制绑嘴。 手术台固定法：麻醉后，松开布带，将犬仰卧在 手术台上，先固定四肢，再固定头部。
医学动物实验 操作技术
动物实验：动物实验是用实验动物作为人的替
身进行各种生命科学实验的过程。
动物实验操作技术：是实施动物实验的重要手 段，在不同的研究领域有其不同的目的和应用， 一些基本操作技术是共同的，基本的动物实验 技术需要训练 。
内容：动物实验的准备、动物实验基本操作技
术、动物实验后的管理技术以及应该注意的影
放进小鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，灌 胃针会顺着食管滑入小鼠的胃内。灌胃针插 入约3cm. 4、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射
3 、翻转左手掌，以左手
掌心和中指夹 小鼠背 部的皮肤，使小鼠整个呈
一条
直线。
4 、用左手无名指压住小
鼠背部的皮肤，小指压住
小鼠的尾巴根部。 5 、松开捏住小鼠尾巴的 右手拇指和食指。
手术固定法：用乙醚等麻醉药品麻醉后，用长 20~30cm的线绳分别系在四肢上，再把四肢的线 绳分别系在固定板四角的钉子上，并且在头部上颚 切齿的地方牵一根线绳达到完全固定。
方法步骤：
1、先用左手轻轻扣、 按住豚鼠背部。
2 、顺势抓紧其肩胛上方皮肤， 拇指和食指环箍其颈部。 3、用右手轻轻托住其臀部， 即可将豚鼠抓取保定。
四、家兔的抓取与固定
抓取方法：用一只手大把抓住颈背部皮肤提起 来，另一只手托住其臀部，让其重心落在托其 臀部的手上，运送时，还要抓住颈肩部皮肤抱 着兔子运送。 手固定法：在灌胃给药时，人坐在椅子上，用 一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住两后肢 放在两腿之间，大腿夹住兔子的下半身，用空 着的手抓住两前肢固定之，抓住颈背部的手同 时捏着两只耳朵，不让头部转动。
响动物实验效果的因素等
动物实 验结果
动物的反应 ：R＝(A+B+C)×D±E
式中：R—— 实验动物的总反应
A—— 实验动物种的共同反应 B—— 动物品种及品系特有的反应 C—— 动物个体反应（个体差异） D—— 环境的影响（包括实验处理） E—— 实验误差(实验操作相关)
By Chen Min-
第一节 动物实验前的准备
四、实验动物的编号与标记
1、染色法：用化学试剂或药品在实验动物体表的 不同部位进行涂染，并用不同颜色区别各组动物。 编号原则是先左后右，从前到后，从上到下。 有时用两种颜色一个代表十位、一个代表个位。 常用的染色剂有3%~5%的苦味酸（黄色）、2%的 硝酸银溶液（咖啡色）、0.5%的中性品红溶液（红 色）和煤焦油酒精溶液（黑色）。
2、耳缘剪孔法：是在动物的耳边缘剪出不同的缺口 或打成不同的小孔进行标记的方法。为防止孔、口愈 合，一般在打孔后用消毒的滑石粉涂抹在孔、口局部。 由打孔或剪切的位置和孔数代表编号，一般在耳内按 上、中、下打孔，分别代表1、2、3，在相应位置剪缺 口代表4、5、6，剪两个缺口代表7、8、9，无孔或缺 口为10。一般左耳代表个位数、右耳代表十位数。
手术固定法：同小鼠。 静脉给药或采血时同小鼠。
三、豚鼠的抓取与固定
抓取方法：抓取幼小豚鼠时，用手捧起来；成 熟的大豚鼠，用手大把抓起胸肋部即可。注意 不能粗野，更不能抓取腰腹部，这样容易造成 肝破裂而死亡。 手固定法：⑴将左手的食指和中指放在豚鼠颈 背部两侧，拇指和无名指放在肋部，分别用手 指夹住左右前肢抓起来。⑵反转左手，用右手 的拇指和食指夹住右后肢，用中指和无名指夹 住左后肢是豚鼠整体伸直成一条直线。⑶一个 人固定操作时，坐在椅子上，用右手拿着豚鼠 的后肢夹在两腿之间，用大腿代替右手夹住。 手术固定法：同大、小鼠。
（二）局部麻醉
1.表面麻醉:利用局部麻醉药的组织穿透作用，透过 粘膜，阻滞浅表的神经末梢，称为表面麻醉。常用 利多卡因，眼部用药点滴、鼻内用要涂敷、咽喉气 管用药喷雾、尿道灌注给药。 2.区域阻滞麻醉：在手术区内四周和底部注射麻醉 药阻断疼痛的向心传导，称为区域阻滞麻醉。常用 普鲁卡因。 3.神经干(丛)阻滞麻醉：在神经干(丛)的四周注射麻 醉药，阻滞其传导，使其所支配的区域疼痛感觉消 失，称为神经干(丛)阻滞麻醉。常用利多卡因。 4.局部浸润麻醉：沿手术切口逐层注射局部麻醉药， 阻滞组织中的神经末梢，称为局部浸润麻醉。常用 普鲁卡因。
三、麻醉注意事项
1.有些麻醉药，如乙醚挥发性很强，易燃，使用时应 远离火源，平时应妥善保存。 2.应特别注意各种麻醉药的剂量和给药途径，切莫因 药量过大而引起中毒或死亡。 3.注射时，一般要求缓慢注入，并随时观察动物肌肉 的紧张性、角膜反射、呼吸频率、疼痛反射等指标。 4.注意保温，采取实验桌内装灯、电褥、台灯照射等。 5.万一麻醉过量，根据不同情况采取措施，如施行人 工呼吸、给予苏醒剂或注射强心剂、咖啡因、肾上腺 素、可拉明等，也可以静脉注射5%温热的葡萄糖溶液。
3、烙印法：用烙印钳或刺针将号码刺在或烙印在动物 无体毛或明显部位，如耳、面、鼻部及四肢等，然后 用溶在酒精中的黑墨在针刺处涂抹。这种方法适用于 大中型实验动物，操作时要注意防止感染。
（四）号牌法：用特制的金属号牌固定在实验动物 的耳上或颈项部，挂牌时要注意避开血管。此法适 用于小动物,特别是转基因动物的培育和实验。
固定器固定法：耳静脉给药或采血时用盒式固 定法；从颈动脉采血或手术实验时用台式固定 法。 盒式固定法：把兔子放在盒子里，只露出头部， 用转扭拧固定器固定家兔。 台式固定法：将麻醉的兔子仰卧，用纱布条依 次将四肢捆绑固定于固定台的两侧，然后把头 部放在金属制的首伽和咀环上固定。
兔的抓取保定 方法1： 步骤： 1、用右手把兔 的两耳拿 在手心并抓住颈后 部皮肤， 把兔提起。
三、实验动物的分组
随机化原则 ：样本具有极好的代表性 ，非实验因素方面具 有极好的均衡性,提高实验资料的可比性与结论的说服力。 完全随机化的效果是否永远最好?不一定。关键取决于样本 含量的大小。若样本含量很大,完全随机化的效果比较理想; 若样本含量比较小,有时完全随机化的结果可能会出现某些偏 差。 例如： 24只小鼠,其中16只雌性,8只雄性,若采用完全随机化 方式均分成2组,则有可能一组中的12只小鼠全是雌性的,另一 组中有4只雌性、8只雄性小鼠 。“性别”这个重要的非实验 因素就严重地影响实验 。此时,宜采用“分层随机化” 。 随机化的方法有多种,可以查“随机数字表”、“随机排列表” 或查“用计算机产生的伪随机数字表”
六、猴的抓取与固定
抓取方法：从笼内抓取时，饲养人员应右手持 短柄网罩，左臂紧靠门侧，以防止笼门敞开时 猴逃出。右手将网罩塞入笼内，由上而下罩捕。 当猴被罩住后，应立即将网罩翻转取出笼外， 罩猴在地，由罩外抓住猴的颈部，清掀网罩， 再提取猴的手臂反背握住。 固定方法：1.徒手固定：将猴两前肢反背其背 后，操作者用一只手握着，用另一只手将猴两 后肢捉住即可固定。 2.固定架固定：使用“猴限制椅”或“猴固定 架”进行固定