人源性天然噬菌体展示库的构建
天然人源IgG Fab噬菌体抗体库的构建及多样性分析
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红霞等
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免疫学 技术 与 方法 ・
天然 人源 IG a g F b噬菌体 抗 体库 的构 建 及 多样性 分 析①
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详细叙述噬菌体展示技术的原理与操作流程
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人源性肺癌噬菌体展示抗体库的构建
6 07 0p片段 者 为重 组 克 隆 ;噬 茵体 展 示抗 体 库 大小 在 1 1 间 ;优 化 电转 化 条件 ,最 终得 到 库 容 为 1 0- 0b 0- 0 之 . 0c ,双 链重 组率 为 2×1。f u
4 % 的抗 体库 。结 论 异 亲和 力Байду номын сангаас的人 源性 单 克隆抗体 奠定 了基础 。 1
【 键 词】 噬 菌体 展 示 ;肺 癌 ;抗 体 关
中图分 类号 :R 3 . 742
文献 标识 码 :B
文章 编号 :1 7- 14 (O Z 9 02 - 3 6 1 69 2 L )1- 02 0
Bi c m xLung Ca e o he Se nc rPha ip a geD s l y Antbody Li r r nsr ton i b a y Co tuci
试 剂 盒提 取淋 巴细 胞 R A,以 OioD N l T为 引物 反转 录合 成 e N g D A,以半 套 式 P R扩增 轻链和 重 链 可 变 区抗 体 基 因 并重 组到 原核 表达 载 C
体 中,通 过噬 茵体 外壳 蛋 白形 成 融合 NA有 清 晰 的 2s 1s 5 s 条带 , 8、 8 和 . 的 8
人源Fab噬菌体抗体库的构建与抗精氨酸加压素抗体的筛选
噬菌体展示技术的原理和方法
噬菌体展示技术的原理和方法噬菌体展示技术是一种利用噬菌体表面展示特定肽段或蛋白的技术。
这项技术自20世纪80年代问世以来,已在许多领域显示出广阔的应用前景,包括药物研发、疫苗设计、蛋白质相互作用研究等。
本文将详细介绍噬菌体展示技术的原理和方法,并探讨其优缺点和发展趋势。
噬菌体展示技术利用的是噬菌体的特性,噬菌体是一种病毒,专门感染细菌等微生物。
它们由蛋白质外壳和内部遗传物质组成,其中蛋白质外壳又由多个蛋白亚基组成。
噬菌体展示技术利用噬菌体表面展示特定的肽段或蛋白,这些肽段或蛋白可以来自天然蛋白质,也可以是人工合成的。
展示在噬菌体表面的这些肽段或蛋白能够与特异性受体结合,从而实现表面展示的功能。
噬菌体展示技术的关键之一是选择合适的展示载体。
载体通常是一种丝状噬菌体,其基因组可以容纳较小的外源基因片段。
常用的载体包括M filamentous phage等。
这些载体具有一些共同的特性,如对外源蛋白质的容纳能力较强,能在体内和体外环境中稳定存在等。
在噬菌体展示技术中,需要筛选出能感染特定细菌的噬菌体。
这些噬菌体可以是自生的,也可以是通过基因工程改造得到的。
在筛选过程中,可以利用不同细菌的特性,如受体类型、细胞壁结构等,来选择合适的噬菌体。
还需要考虑噬菌体的毒性、繁殖能力等因素。
在噬菌体展示过程中,需要反复感染以积累足够数量的展示肽段或蛋白。
这个过程中,通常需要使用超滤或凝胶过滤等手段对噬菌体进行纯化,以确保得到的展示肽段或蛋白的纯度和浓度。
反复感染的过程不仅可以增加展示肽段或蛋白的数量,还能帮助排除展示过程中可能产生的突变。
克隆选择是噬菌体展示技术的另一个关键步骤。
这个过程中,通过将展示肽段或蛋白与特定配体结合,筛选出能够与配体结合的克隆。
这些克隆可以进一步扩增和纯化,从而获得高亲和力和高特异性的克隆。
噬菌体展示技术的优点在于其能够将蛋白质或多肽特异性与噬菌体的生物学特性相结合,从而实现表面展示的功能。
人源乳腺癌噬菌体抗体库的构建及初步筛选
MC _ 结合 活 性 癌 噬 菌 体抗 体 库 中 筛选 到 6 特 异 性 噬 菌体 抗 体 , 下一 步进 行 单 链 抗 体 的 株 为
乳 腺 癌放 射 性 核 素 显 影 及 治 疗 奠 定 了基 础 。
关 键词 : 腺 癌 ; 菌 体 抗 体 库 ; 乳 噬 筛选 ; 链 抗 体 单 中 图分 类 号 : 7 7 9 R 3 . 4 R 3 . ; 7 0 4 文献 标 识 码 : A 文 章 编 号 :6 18 4 (O O 0 —5 6O 1 7-3 8 2 1 ) 50 1一3
T ANG h — i , h o ln , S u b n LIS a —i PENG e e 1 Ji , t . a
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( . e a t n o c l y, is P o l s s i l f Ne in Ne i n S c u n 6 1 0 , ln ; 1D p r me t f On o g F rt ep e p t i a g, i a g, i a 4 0 0 C ̄ a o Ho a o j j h i 2 De a t n f Nu l r d c e C l g f B s d c e C o g ig Me i l n v ri C o g ig 4 0 1 , hn ) . p rme t c a o e Me ii , ol e a i Me ii , h n qn d c iest h n q n 0 0 6 C i a n e o c n a U y,
EL S Re u t A h g n io y o . I A. s l s p a e a t d f 4 2× 1 wa b a n d a d s x a tv l n s a an tb e s a c r e l MCF 7 we e g i e b 0 s o t i e n i ci e co e g i s r a tc n e el - r an d fo t e S f i r r . o cu in S x a t o y bn i g t r a tc n e e l r to g y we e ie t id fo h ma iep a ea — r m h c v l a y C n lso i n i d i d n o b e s a c rc l mo e s r n l r d n i e r m u n z h g n b b f t o y l r r . i wo k p o ie st e b ssf rr d o u l e i g n n h r p o r a tc n e . i d i a y Th s b b r r v d s u h a i o a in ci ma i g a d t e a y f r b e s a c r d
噬菌体展示技术
内容
1 2 3
• 噬菌体展示技术简介
• 噬菌体展示技术的过程 • 噬菌体展示技术的应用 • 噬菌体展示技术的展望
4
1
• 噬菌体展示技术简介
噬菌体展示技术是将多肽或蛋白质的编 码基因或目的基因片段克隆入噬菌体外 壳蛋白结构基因的适当位置,在阅读框 正确且不影响其他外壳蛋白正常功能的 情况下,使外源蛋白或多肽与外壳蛋白 融合表达,融合蛋白随子代噬菌体的重 新组装而展示在噬菌体表面。
不可否认,目前噬菌体展示技术尚存在某些不 足,需要改进,如外源性多肽的折叠、库容量 的限制、筛选过程中阳性克隆的丢失及假阳性 克隆的获得等。但随着该技术的不断发展,越 来越多的具有良好生物活性的化合物会被发现 并得以鉴定,为新药的开发不断注入新的活力。 可以预测,功能基因组学、蛋白组学和噬菌体 展示技术三者的融合会不断为药学生物技术创 造新的概念,提供新的策略。基于机器人技术的 高通量筛选系统及其他对策的发展,期待噬菌 体展示技术能在寄生虫病诊断、致病机制研究、 疫苗开发、药物研制领域中开创一片新天地。
coated microtitre wells
Wash to remove unbound phage particles.
Elute bound phage
2.3 Amplify eluted phage
感选
3
• 噬菌体展示技术的应用
3.1 3.2 3.3 3.4 噬菌体抗体库技术 测定抗体的抗原决定簇 筛选酶抑制剂 构建cDNA3.2 测定抗体的 抗原决定簇
3.3 一步确认 确认插入片段种类
4
• 噬菌体展示技术的展望
随着噬菌体展示技术的不断成熟和完善,它 在生物学领域和医学领域取得的成就日益突出 ,尤其是为新药的开发拓宽了道路。运用噬菌 体展示技术筛选功能性的多肽,由此作为多种 人体生长因子的活性模拟表位,或作为受体新 型配体,已经成为当今世界医药领域最热门的 课题之一。通过噬菌体展示技术体外筛选具有 治疗活性的人源的scFv ,则以其分子量小、穿 透力强、易于大量生产等特点展示了极好的应 用前景,从而进一步加快了生物药学的发展进 程。
噬菌体展示实验步骤及总结
噬菌体展示实验步骤及总结噬菌体展示技术(Phage Display)是一种利用噬菌体(phage)作为载体表达、展示外源蛋白质或肽段的技术。
该技术可以通过体外筛选方式寻找与特定生物分子相互作用的肽段或蛋白质,并在医学、农业、环境科学等多个领域应用广泛。
本文将介绍噬菌体展示实验的步骤及总结。
一、噬菌体展示实验步骤1.分离噬菌体基因组首先需要从所需噬菌体中提取其基因组DNA,进行适当的酶切、纯化、修饰和扩增等操作,以获得高质量的DNA样品。
2.插入外源DNA将需要展示的外源肽段或蛋白质基因克隆到噬菌体基因组中的特定区域(通常是其Capsid蛋白的的N末端),使其与噬菌体基因组融合。
插入操作可采用PCR扩增、克隆或基因合成等方法进行。
3.包装噬菌体将重组噬菌体基因组与一定的病毒包装反应液混合,经过一定的反应时间,使其封装成噬菌体颗粒。
包装操作可在细菌宿主中进行,也可采用体外装配法,将噬菌体基因组与其他组件(例如,在非细菌宿主中回收的Capsid蛋白)进行反应,实现噬菌体的包装。
4.筛选目标配体将噬菌体颗粒通过筛选池,如固体支持物、细胞表面或溶液相应用目标体分别进行生物学或化学实验等。
通过筛选,得到与目标体有特异性、较高亲合力的噬菌体颗粒。
随后将噬菌体提取、扩增等操作,得到一系列具体的孤儿噬菌体(orphan phage)或配体噬菌体。
5.注意事项在实验过程中需注意的一些问题:(1)噬菌体的主要结构是头部和尾部,根据实验需要可对其进行不同的修饰(例如添加标签、调整展示方向等),以增加其展示效率和特异性等。
(2)外源蛋白的表达量、保持稳定性通常受到噬菌体载体、连接方式、插入位置、转化水平等因素的影响,实验中需对其进行合理设计。
(3)噬菌体筛选应选择样品的适当浓度、筛选反应时间等,以保证准确、高效地获得目标配体。
二、噬菌体展示实验总结噬菌体展示技术是一种非常有前景的生物技术,逐渐成为体外筛选的重要手段之一。
人源性天然噬菌体展示文库的构建及鉴定
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[ bt c] Obet eT ee pnnim n e u a hg i l bayMe o sT eta R A o l p oy e sr e A s at r jci :odvl o- ui dhm n aed p ylrr. t d :h t N fy hct cn o p‘ v o m z sa i h ol m e fm
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大容量人天然噬菌体单链抗体库的构建
20 0 8年 5月第 5卷第 1 3期
・
论著 ・
大 容 量 人天 然 噬 菌体 单链 抗体 库 的构 建
孙 春 燕
( 东食 品药 品 职业 学 院 , 广 广东 广 州
50 2 ) 15 0
【 摘要 】目的 : 建 大容 量 和具 有 良好 多 样 性 的 人 天 然 噬菌 体 单 链 抗 体库 。方 法 : 人 外 周血 分 离 淋 巴细 胞 , 取 构 从 提
库 。结论 : 功地 构建 了一个 多样 性 良好 的人 源 天然 噬 菌体 抗体 库, 成 可用 于制 备具 有 应用 前 景 的人源 抗体 。
『 键 词 1 链 抗 体 ( F )噬 菌体 抗 体 库 ; 叠 延 伸 拼 接 关 单 s v; c 重 【 图 分 类 号 】R 9 - 3 中 32 3 【 献标 识 码】A 文 【 章 编 号】1 7 - 2 0 2 0 0 ( 一 1 - 3 文 6 3 7 1 ( 0 8) 5 a) 0 1 0
Co sr to fa l r e h n tuc i n o a g um a t a ha e snge ha n a tbo y l a y n na ur lp g i l-c i n i d i r br
S UN h n y n C u -a
( u n dn oda dD u o a o a C l g ,u n z o 5 0, hn ) G a go gF o n rgV c t n l o eeG a gh u 5 0 2 C ia i l 1
To a t RNA s e ta t d fo t e p r h r l o y h c t s o e n n i l wa x r c e r m h e i e a b o d l mp o y e ft o — mmu ie e t y d n  ̄,VH d VL g n s p l h nz d h a h o o l n a e e w r mp i e y RT—P eea l d b i f CR n r s e l d t o m c y o e p P a d we e a s mb e o f r s Fv b v da CR n l n d i t h g mi CAN a d co e n o p a e d p TAB5 E, n h n ta fr d i t .c l a d t e r so e n o E o iTG y ee to o a i n t o sr c u n n t r h g c n i o y l r r . — n m 1 l c r p r t o c n t ta h ma a u a p a e s Fv a tb d i a y Re b o u l b s ls VH e e f mi e d VL g n a iis w r u c sf l p i e A a g u n a t o y l r r o t n n u t: g n a l s a e e f l e e s c e su l a l d. l r e h ma n i d i a c n a i g 6x i n m e ym i f b b y i 1 c o e s c e t d at r r s u n h e o i a t p a e d o t e ta so e 0 l n s wa r a e f e c i g t e r c mb n n h g mi s f m h r n f r d E o i T c lsCo c u i n: e r m c l GI e l . n l so A
抗血小板人源噬菌体抗体库的构建和初步筛选
Xi , IAO dnxa g. IO ln e a. e n ni t o ’ nf s nMeiieB in 08 0 a Z I i— in Z I U t og,t 1B gI t ue f7r sui dc , e ig1 0 5 t a o n j
[ b r c ] Obe t e To c n tu t h ma mmu o lb l o iao i irr y u ig p a es ra e ds ly A sa t jc v i o sr c u n i n go ui c mb n t r l b a y b s h g u fc ipa n al n
【 摘要】 目的 运用噬菌体抗体库技术构建一个 经血小板 自身免疫 的抗 体组 合。 方法 从3例慢性特发性血小板
减少性 紫癜(T 患者 的外 周血 中分离淋巴细胞 , 取总RN 经逆转 录合成 e NA, I P) 提 A. D 通过半巢式 P R扩增抗体轻链 链基 C
因和重链F d段基 因, 依次克 隆到载体p o 3中构建 人源噬菌体F b抗体库 。 并 C mb a 结果 2 次 电转后得 到库容约为2 3 0 O . ×1 cu的人源噬菌体F b抗 体库 。 f a 用多聚甲醛固定的血小板 细胞作 为抗 原 , 过3 通 轮亲和选择 , L S E IA鉴定结 合活性较高者 , 选 取3 个经测序分析后显示抗体轻链和重链 F d段在核 苷酸和氨基酸水 平都符 合人 免疫 球蛋白基 因结构特 征。结论 成功构 建 了抗血小板人源噬菌 体抗体库 , 可用 于进一步筛选针对血 小板特 异性靶点如 G l /I 等 的人源抗 体 , Pl Ia b I 进行 以GP I/I I I b —
噬菌体抗体库技术
在抗体片段如ScFv和Fab的可变区基因序列的5‘端加入细菌的信号肽
序列,抗体片段即可分泌到(ZHOU)质腔,并在那里完成折叠,成为有功能
的蛋白质分子,
3有效筛选系统的建立
传统的筛选方法使用固相化的纯化抗原,依赖噬菌体颗粒对目的抗原的
亲和力差异来获得较高亲和力的抗体,而目前,可以在体外用完整的固化哺
3.2噬菌体抗体库载体的构建
首先提取细胞的总RNA,经过RTPCR扩增可变区基因
Standard template
酶切轻链PCR产物和表达载体
二者连接,转入感受态细胞中扩增
重链的PCR产物
酶切
成为轻链库
酶切
二者按照一定比例连接
转化入感受态细胞
加入噬菌体
收集噬菌体颗粒
噬菌体总抗体库
Apply to courseware production
简单的PEG沉淀方法就足以将噬菌体与其他所有污染的细胞蛋白分开,
Apply to courseware production
2.2噬菌体展示所使用的衣壳蛋白
Standard template
次要衣壳蛋白pIII
406aa组成,5个拷贝,位于噬菌体的尾部,
由三个功能区组成:
N1穿膜区:作用于E.coli细胞膜上的TolA
有Helperphage,噬菌粒就像质粒
一样进行扩增,
包装后的噬菌体含有两种不同
来源的成分:噬菌体质粒和
Helperphage,
使用野生型辅助噬菌体会导致
噬菌体污染,使得仅有很少部分
子代噬菌体带有抗体片段,
当有噬菌质粒时,由于噬菌质粒
含有野生型M13或者f1复制起
抗结核杆菌人源噬菌体单链抗体库的构建及筛选
抗结核杆菌人源噬菌体单链抗体库的构建及筛选何光志;田维毅;高英;王平;王文佳;王乾宇;黄高;安传伟【摘要】目的:构建人源噬菌体展示单链抗体(ScFv)库,筛选抗结核杆菌特异性、高亲和力的ScFv.方法:从结核患者的外周血淋巴细胞中,提取RNA并通过RT-PCR扩增出VH和VL基因,并采用SOE-PCR构建ScFv基因,将其克隆入噬粒载pC ANTA B5E中,转化于大肠杆菌TG1,通过辅助噬菌体M13K07援救构建噬菌体单链抗体库.结果:初级库库容量为3.5×106,在大肠杆菌TG1中重组后得到2.6 ×106的次级抗体库.结论:成功构建噬菌体展示ScFv库并获得人源抗结核杆菌特异性ScFv,为进一步研制抗抗结核杆菌的高特异性、高亲和力的基因工程抗体奠定了基础.%Aim: To construct a human phage-displayed single-chain Fv antibody (ScFv) library and screen specific ScFv against Mycobacterium Smegmatis. Methods: The total RNA was extracted from peripheral blood lymphocytes in patients with Mycobacterium Smegmatis, first strand cDNA synthesis was performed using a cDNA synthesis kit and an oligo ( dT) -18 primer. To human immunoglobulin H chain and L chain variable region of degenerate primers, cDNA first strand as a template, were amplified H chain and L chain variable region genes. SOE-PCR method to VH and VL fragments were assembled into ScFv fragments and then cloned into pCANTAB5E ScFv vector and transformed into competent TG 1 electric bacteria by helper phage rescue M13K07 get Mycobacterium Smegmatis single chain antibody phage display library. Results: A primary library of 3.5 X 106 and a second library of 2.6 x 106 were constructed. Conclusion: The results lay a solid foundation for preparation of human engineeringantibody to Mycobacterium Smegmatis reported herein with higher affinity.【期刊名称】《湖南师范大学自然科学学报》【年(卷),期】2011(034)005【总页数】5页(P70-74)【关键词】结核杆菌;人源噬菌体单链抗体;制备及筛选【作者】何光志;田维毅;高英;王平;王文佳;王乾宇;黄高;安传伟【作者单位】贵阳中医学院,中国贵阳550002;贵阳中医学院,中国贵阳550002;遵义医学院附属医院,中国遵义563003;贵阳中医学院,中国贵阳550002;贵阳中医学院,中国贵阳550002;贵阳中医学院,中国贵阳550002;遵义医学院附属医院,中国遵义563003;贵阳中医学院,中国贵阳550002【正文语种】中文【中图分类】R378.91+1结核分枝杆菌(Mycobacterium Smegmatis)是引起结核病的病原菌,也称结核杆菌.可侵犯全身各器官,但以肺结核为最多见.目前全球约有20亿肺结核带菌者,现症结核患者2 000万,每年有1 000万人新发病和300万人死亡.我国结核患者人数居世界第二位,全国1/3的人口曾受到结核菌的感染[1].噬菌体抗体库技术是抗体工程领域的最重要进展,各种小分子抗体相继产生,在疾病的诊断与防治、自身免疫性疾病与病毒性疾病的鉴别研究、肿瘤的影像分析和导向治疗或基因治疗等多个领域有着潜在的优势.该技术具有简单易行、生产成本低、筛选容量大等优点[2].本研究尝试利用噬菌体展示技术构建大容量天然人源性噬菌体抗体库,从中筛选出结核杆菌的人源性单链抗体(single chain Fv fragment,scFv),为进一步研制抗结核杆菌的特异性的基因工程抗体奠定了基础.100 mL外周血来自10例康复1月的结核患者(遵义医学院附属医院检验科提供),淋巴细胞分离液,购自上海华精生物高科技有限公司.总RNA抽提试剂盒(TRIzol.R.Total RNA Isolation.Reagent)、逆转录试剂盒(RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit),GIBCOBRL 公司产品;DNA Purification System,Promega,公司产品;100 bp DNA Ladder,SfiⅠ和NotⅠ限制性内切酶、Taq DNA聚合酶和T4 DNA连接酶,购自大连宝生物公司;噬菌粒载体pCANTAB-5E、辅助噬菌体M13K07、大肠杆菌E.coli TG1、HRP/抗M13单克隆抗体,Amersham公司产品;结核杆菌抗原(批号:984010),购自上海晶莹生物制品公司. 2.1 人源抗体VH和VL基因的PCR扩增以合成的cDNA为模板,VHf和VHr引物等物质的量混合扩增VH基因,Vκf/Vκr和Vλf/Vλr不同引物等物质的量混合液扩增VL基因.VL的PCR反应条件为:95℃预变性10 min;94℃ 60 s,66℃ 30 s,72℃30 s,共30个循环;最后72℃延伸10 min.VH的退火温度为65℃,其他反应条件同VL.PCR产物经20 g/L琼脂糖凝胶电泳鉴定,切胶回收目的基因片段.2.2 ScFv基因的构建通过重叠延伸拼接法将VH和VL基因拼接成ScFv基因.取纯化的VH和VL基因片段经94℃ 40 s,55℃ 1 min,72℃ 1.5 min,10个循环后,加含有酶切位点的引物VHf(SfiⅠ)和VLr(NotⅠ),94℃ 30 s,66℃45 s,72℃ 90 s,35个循环.PCR产物经10 g/L琼脂糖凝胶电泳鉴定并回收.2.3 噬菌体抗体库的构建将上述PCR产物ScFv纯化回收,用SfiⅠ和NotⅠ进行酶切,与经同样双酶切的表达载体pCANTAB5E用T4 DNA连接酶,电转化大肠杆菌TG1,铺SOBAG平板.用2×YTAG培养基洗脱菌落,稀释至A600=0.5,加入辅助噬菌体M13K07继续振摇1 h,离心后用2×YTAK培养基重悬后振摇过夜,次日离心收集上清,加入1/5体积的PEG/NaCl溶液,冰浴,离心,重悬沉淀即为噬菌体ScFv库,过滤后于4℃储存备用.2.4 抗体库的重组率测定、酶切鉴定和多样性分析取适量抗体库接种在20 mL 2×YT-ATK(含10 g/L Glucose,100 mg/L Amp及20 mg/L Tet)培养基中,37℃,振摇培养至A600=0.68,加入辅助噬菌体M13K07于37℃静置60 min;4℃,3 500×g离心15 min,沉淀重悬于20 mL2×YT-ATK(含100 mg/L Amp,20 mg/L Tet,70 mg/L Kan)中培养过夜;在4℃条件下,8 000×g离心15 min,上清用40 g/L PEG-8000和30 g/L NaCl沉淀,4℃,10 000×g离心30 min弃上清,离心管倒置除去PEG液;沉淀用适量的PBS 重悬,移入另一离心管,反复吹打混匀,10 000×g离心5 min,上清即为噬菌体抗体库,检测库容.用SB培养液将所制备的噬菌体抗体库进行10倍系列稀释,分别加入100 μL大肠杆菌TG1(A600=1),室温下感染20 min,涂SOBAG平板(含100 mg/L Amp),于37℃过夜培养,次日计数噬菌落形成个数,计算噬菌体抗体库的库容,4℃保存.从SOBAG平板上随机挑取15个单菌落,进行PCR扩增用琼脂糖凝胶电泳检测ScFv的重组情况;提取PCR鉴定为阳性单菌落的质粒,用SfiⅠ和NotⅠ进行双酶切,采用10 g/L琼脂糖凝胶电泳分析酶切图谱;随机挑取阳性克隆,采用PCR扩增ScFv基因片段,电泳回收后,用BstNⅠ酶切,10 g/L琼脂糖凝胶电泳分析酶切图谱.2.5 噬菌体抗体库的筛选用包被液稀释结核杆菌抗原1 μg/mL包被96孔ELISA板,100 μL/孔,含30g/L BSA的PBS封闭,PBS洗涤后,加入噬菌体抗体库100 μL,37℃温育2 h;吸去噬菌体抗体液,以PBST洗涤1次(第2轮洗涤5次,第3~5轮洗涤10次),PBST洗涤1次,加入100 μL洗脱液[含0.1 mol/L HCl(pH2)和1 g/L BSA],于室温静置10 min;将洗脱液稍加吹打后吸出,立即用6 μL 2 mol/L Tris中和,加入2 mL大肠杆菌E.coli TG1,37℃静置20 min,加入20 mL SB(含氨苄西林和四环素),37℃培养2 h;加入M13K07、卡那霉素.进行5次反复淘洗,收集沉淀.特异性噬菌体抗体得到高度富集.2.6 ScFv的特异性鉴定将第5轮筛选后洗脱的噬菌体感染大肠杆菌TG1,涂于SOBAG平板,过夜培养后,随机挑选细菌菌落接种于4 mL含Amp和四环素的SOBAG培养基中,37℃振荡培养过夜;取200 μL,加至4 mL含相同抗生素的SOBAG中,37℃振荡培养2 h后加入40 μL M13K07,培养2 h;再加入Kan至70 mg/L,30℃振荡培养12~16 h离心收集上清,即为单克隆噬菌体抗体,4℃保存.将待检噬菌体抗体与等量10 g/L BSA混合,室温孵育20 min,加至经抗结核抗原包被和BSA封闭的ELISA板中,于37℃温育2 h,用PBST洗板4次,PBS洗涤2次后,以HRP标记的M13噬菌体单克隆抗体进行结合反应,TMB显色.3.1 抗体重链和轻链可变区基因的PCR扩增以提取出的RNA为模板逆转录合成cDNA第一链后,再以cDNA为模板进行PCR反应分别扩增抗体基因重链和轻链可变区.产物经10 g/L琼脂糖凝胶电泳检测,分别在300~400 bp间出现条带,结果见图1.3.2 单链抗体可变区片段(ScFv)的组装和全长扩增采用SOE-PCR的方法将抗体轻、重链可变区基因组装成ScFv片段,经10 g/L琼脂糖凝胶电泳证实,组装后的ScFv基因在700~800 bp间出现条带 (图2).3.3 抗体库的库容、重组率测定及酶切鉴定构建的初级抗体库经(库容=涂板后生长出的噬菌斑数数目/涂板菌液量/涂板菌液稀释的倍数)计算,初级库容量为3.5×106.随机挑取20个菌落,经PCR鉴定表明,重组率为80%,故次级库的库容量为2.6×106;阳性质粒做双酶切鉴定,电泳示在700~800 bp间出现条带(图3).3.4 抗体库的多样性随机挑取的10个单克隆,经PCR扩增ScFv基因片段,电泳回收后,以BstNⅠ酶切,10 g/L琼脂糖凝胶电泳分析显示,抗体库中抗体分子的多样性良好,见图4.3.5 噬菌体抗体库的筛选将抗结核杆菌抗原噬菌体抗体库进行5轮“吸附-洗脱-扩增”的筛选.可以看到随着洗涤次数的增加,噬菌体抗体的收获率增加,经过5轮筛选增加约110倍,表明噬菌体抗体库得到富集(见表1).3.6 噬菌体ScFv特异性的初步鉴定从第5轮筛选得到的菌落中随机挑选20个克隆,制备噬菌体抗体,经ELISA检测,阳性克隆孔中液体显色,阴性孔中液体不变色.显色后,阴性对照孔450 nm时A值为0.076,15株ELISA的A值较高,呈现阳性反应,其450 nm时A值分布于0.256~0.532之间,阳性克隆检出率约为75%.对其中12号阳性克隆的可变区DNA序列和氨基酸进行分析,结果该克隆重链可变区与GenBank中登录的免疫球蛋白IgG重链可变区VH3有92%同源性,κ可变区与V-J4有92%同源性.表明12号阳性克隆为抗结核杆菌抗原噬菌体抗体.噬菌体抗体库技术是采用PCR的方法将B细胞全套可变区基因克隆出来,与噬菌体包膜蛋白融合表达,从而展示于噬菌体表面,即可建成噬菌体抗体库.ScFv的基本结构为VH-Linker-VL或VL-Linker-VH,由于ScFv抗体分子量只有全抗体的1/6,抗体只有可变区片段,不含恒定区,免疫原性较低,故易于穿过血管壁和组织屏障,没有Fc段,所以减少了与组织的非特异性结合,同时保留了与抗原结合的特异性和亲和性,具有结构简单,易于大规模生产,成本低等优点,因此在临床、科研、工业和新药设计等领域均具有诱人的应用前景[4-6].ScFv抗体在感染性疾病的诊断与防治、自身免疫性疾病与病毒性疾病的鉴别研究、肿瘤的影像分析和导向治疗或基因治疗、新型药物设计等多个领域发挥着越来越重要的作用[7-13].目前,在多种噬菌体抗体库的构建,并从其中筛选出多株具功能活性的小分子抗体,如抗HBV、HIV、RSV、TNF、erbBZ和gpl20等单链抗体或Fab抗体[14-17],有些已进入了临床I/II期试验.人源抗体的问世彻底解决了小分子抗体的人源化问题,极大地推动了人源抗体的研究及应用[18-20].抗体重链可变区(VH)和轻链可变区(VL)基因由相对保守的骨架区和能够根据不同抗原做出相应变化的抗体互补决定区(CDR)组成,虽然抗体分子可变区有着数量巨大的多样性,但其骨架区的序列和前导序列相对保守,所以抗体可变区PCR引物的设计应可能考虑亲本抗体可变区序列的完整性和真实性.库容量大小影响抗体库质量的最主要因素,而基因的多样性是决定库容量大小,其直接决定了接下来筛选高亲和力的单链抗体[21].因为淋巴细胞含目的抗体基因的mRNA是高丰度,有利于所建文库被筛选及克隆出高亲和力的抗体,所以选用淋巴细胞建库较好[3].本研究扩增设计可变区引物时引用路艳等的工作[3],通过提取患者康复后的外周淋巴细胞总RNA,经RT-PCR分别扩增出H链和L链可变区基因,将VH和VL片段随机拼接成ScFv片段克隆至pCANTAB5E载体,并转化至感受态TG1菌,经辅助噬菌体M13K07拯救,获得人源抗结核杆菌噬菌体展示单链抗体库,本研究为结核病的预防、诊断、治疗等研究奠定了基础.此研究为结核临床防治研究奠定了基础.【相关文献】[1]吴虢东,王玲.抗结核中药的研究进展[J].医学综述,2007,13(6):475-476.[2]李菁,林彤,宋帅,等.基因工程重组抗体技术的研究进展[J].生物技术通报,2009(10):40-44.[3]路艳,韩跃武,韩亚萍,等.抗白念珠菌人源性单链抗体库的构建及筛选[J].中国生物制品学杂志,2009,22(11):1063-1067.[4]HUSTON 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抗结核杆菌人源噬菌体单链抗体库的构建及筛选
第3 4卷 第 5期
抗 结建及 筛 选
何 光志 , 田维毅 高 英 王 平 王文佳 王乾 宇 黄 高 安传伟 , , , , , ,
( .贵阳 中医学院 , 1 中国 贵阳 5 00 ;.遵义 医学院附属医院 , 50 2 2 中国 遵义 5 3 0 ) 60 3
meh d t n rg nsweeasmbe t c vfa me t a d te ln dit C T 5 c vv co to VH a dVL f me t r se ld i oS F g ns n nco e op AN AB E S F e tr o a n r h n
结核分枝杆菌( yoati mg a s是引起结核病的病原菌, M c c r m S em t ) b eu i 也称结核杆菌. 可侵犯全身各器官 , 但 以肺结核为最多见. 目前全球约有 2 亿肺结核带菌者 , O 现症结核患者 200万 , 0 每年有 1 0 0万人新发病和 0 30万人死亡. 0 我国结核患者人数居世界第二位 , 全国 13的人 口曾受到结核菌的感染 . / ]
A s a t A m: ocnt c ah ma hg -i l e ige h i F nioy( c )l rr n cen bt c i T o s ut u np aeds a d s l c a va t d S r r py n - n b i a a dsre b y
关键词 结核杆菌 ; 源噬菌体单链抗体 ; 人 制备及筛选
中图分类号 R 7.1 3 8 9 1 文献标识码 A 文章编号 10 -5 7 2 1 )50 7 -5 0023 (0 1 0 -000
Co s r c in a d Sc e nn fHu n Sig e c a n An io y n tu t n r e ig o ma n l — h i t d o b Lb a y o t My o a t r m i r r fAn i c b c e i - u Sm e ma i g t s
简述噬菌体展示的基本原理和方法
噬菌体展示技术原理
噬菌体展示技术(phage display)是将外源编码多肽或蛋白质的基因通过基因工程技术插入到噬菌体外壳蛋白结构基因的适当位置,在阅读框能正确表达,使外源多肽或蛋白在噬菌体的衣壳蛋白上形成融合蛋白,随子代噬菌体的重新组装呈现在噬菌体表面,可以保持相对的空间结构和生物活性。
然后利用靶分子,采用合适的淘洗方法,洗去未特异性结合的噬菌体。
再用酸碱或者竞争的分子洗脱下结合的噬菌体,中和后的噬菌体感染大肠杆菌扩增,经过3-5轮的富集,逐步提高可以特异性识别靶分子的噬菌体比例,最终获得识别靶分子的多肽或者蛋白。
下图展示了噬菌体抗体库制备的简单过程:
噬菌体展示肽库的构建的方法:
目前主要有两种:一是有机合成法,二是基因合成法。
前者是直接用固相肽合成技术,合成含有各种可能序列的短肽。
基因工程方法是将编码
各种序列特定长度短肽7的目的基因克隆进表达载体,与噬菌体的外壳蛋白基因融合表达,使得一个噬菌体上含有一种序列的肽。
人源化Fab段噬菌体抗体库的构建及初步鉴定
[ 关键词] 噬菌体抗体库 ; 抗体 F b ; a 段 人 p i a y i e tfc to fa n i e Fa r g e t p a e l r r n t u to n rm r d n i a i n o a v b f a m n h g i a i b y
. eat etfE dc nl yte ee l o i l a . Dp r n nor o g nr s t T n m o i o h G a H pa o i f
Me osPr hr l dl poy s e Hc drm hah oo.h ev hi F am n adlh ca m m ng b t d :e pea b o m hct r c et o el y nrTeha ca df g et n gt hi oh a i uol — h i l o y ew eo ef t d y n r i n fu n m o
n i nwa sdt sa t hg i d bay Reut A p a ni d i ayo bh d8. 0 me esn Srcmbn t at e sue c ep aea t o yl rr . sl : h ea t o yl rr f a a 4X1 mb r adi’ eo iat ae g o n h n b i s g b b F 7 t n r
G N in L h n -i C A i u Z U T 一 O G Qa , I ag Y g, H NGJ— , H i C n W c
nMe i lU i ri Tatn 3 0 5 C ia dc nv s y, iri 0 0 2, hn a e t ]
l bt cj O jc v :ocnt c a u a a am n paed p y i a dp v e l o r u a n bd r a tn A s at r bet eT sut m n brg et hg i l b r a oi p t r f m natoyp pr o . i o r h F f sa lry n r d a a m oh f i e a i
噬菌体展示文库构建流程
噬菌体展示文库构建流程
噬菌体展示文库构建是一项重要的实验工作,旨在通过噬菌体展示技术展示目标蛋白,并从中筛选出具有特定功能的蛋白。
下面将介绍噬菌体展示文库构建的流程。
需要准备目标蛋白的DNA序列。
这一步是构建噬菌体表达文库的基础,目标蛋白的DNA序列应该经过验证,并且包含适当的启动子和标记序列。
接下来,将目标蛋白的DNA序列插入到噬菌体表达载体中。
噬菌体表达载体通常包含噬菌体的基因组序列和表达启动子,插入目标蛋白的DNA序列后,可以通过大肠杆菌等细菌进行扩增。
然后,将构建好的噬菌体表达载体转化到适当的宿主菌中。
通常选择大肠杆菌作为宿主菌,通过热激转化等方法将载体导入宿主菌内。
接着,利用宿主菌进行噬菌体表达。
在适当的诱导条件下,宿主菌会表达目标蛋白,并将其显示在噬菌体的表面。
随后,将表达目标蛋白的噬菌体进行筛选和分离。
可以通过特定的抗体或配体结合目标蛋白进行筛选,筛选出具有特定功能的噬菌体。
对筛选出的噬菌体进行测序和验证。
通过测序确认目标蛋白的DNA 序列是否正确插入到噬菌体表达载体中,同时通过功能性实验验证目标蛋白的活性和特异性。
总的来说,噬菌体展示文库构建流程包括目标蛋白的DNA序列准备、插入载体、转化宿主菌、表达目标蛋白、筛选分离和验证等步骤。
通过这一流程,可以高效地展示和筛选出具有特定功能的蛋白,为后续蛋白工程和药物研发提供重要的参考和支持。
噬菌体展示技术的原理及应用
二、噬菌体展示技术旳应用现状
抗体: 抗狂犬病毒旳单链抗体, 抗HIV-1囊膜糖蛋白旳单链抗体,此抗体可专一性杀死被HIV-1感染并体现有gp120旳淋巴细胞, 中和响尾蛇毒素旳单链抗, 等等。
疫苗: 展示在噬菌体表面旳HIV-1 旳gp120-V3 环 可象天然抗原一样引起明显旳免疫应答, 等等。
噬菌体抗体库旳构建
Antibody IgG structure
Antibody IgG structure
C
L
V
L
V
H
C
H
1
V
L
C
L
V
H
C
H
1
C
H
2
C
H
2
C
H
3
C
H
3
Antibody IgG structure
Hinge
(Fab’)2
Fab
Fc
MembraneExtension
Antibody IgG structure
选择措施: 淘选(Panning)而不是 筛选(Screening)
非展示系统 展示系统
Solid phase selection with immunotubes
B
B
B
B
B
B
Immunotubecoated withantigen
诊疗 被动免疫 抗体 蛋白质构造分析 药物导航 蛋白质纯化
Wash to remove unbound phage particles.
Elute bound phage
Amplify eluted phageRepeat selectionAnalyze a) ELISA b) Specificity c) Sequencing d) Affinity e) Activity
天然的人源性核糖体展示抗体库的构建与初步鉴定
T Vetr 体 ( — co载 日本 Ta aa公 司 ) RNA 抽 提 试 剂 kr ; 盒 ( 士 R c e公 司 ) 脂 多 糖 ( P , 国 Sg — 瑞 oh ; L S美 ima
Alr h集 团 公 司 ) di c 。 12 方 法 .
摘 要 : 目的 方法
从 健 康 自愿 者 的外 周 血 淋 巴 细 胞 提 取 mR NA, R - C 分 别 扩 增 抗 体 重 链 可 变 区 ( 经 TP R vH) 轻 链 可 变 区 和
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
( ) A, 而 连接 形成 S F NA。 将 其 连 接 T V co 转 化 E.oi M1 9 肠 埃 希 菌 , 蓝 白筛 选 , 取 9 VL DN 进 c vD - etr clJ 0 大 经 挑 个 阳性 克 隆 测 序 以 鉴 定 S F c v组 装 。通 过 体 外 转 录 和 翻 译 对 抗 体 文 库 进 行 初 步 鉴 定 。 D NA 分 别 约 为 3 0 6 0和 11 0b 。本 试 验 成 功构 建 S F 核 糖 体 展 示 模 板 。 5 、5 0 p cv 结论 结 果 vH、 L 和 S F v cv 成 功 构 建 天 然 的大 容 量 核
扩增 重链 VH 可变 区 引物 为 :
VH/ (E游 ) 5 T7 : ,GCAGCTAATAC GACTC ACT T— A
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人源性天然噬菌体展示文库的构建及鉴定年四季黄黎王栩邬于川袁青(四川省泸州医学院基础医学院,泸州646000)中国图书分类号R392. 11 文献标识码A 文章编号1000 484X( 2010) 06 0544 04[摘要] 目的:构建人源性天然噬菌体展示文库并对文库进行鉴定。
方法: 从未经主动免疫健康志愿者的外周血淋巴细胞中提取总RNA, 反转录合成cDNA, 用直接PCR 及半巢式PCR 扩增人抗体重链( VH)及轻链( V 和V ) 可变区基因。
采用改进的重叠延伸PCR 法将VH 基因和VL( V 和V) 基因连接成人单链抗体( scFv) 基因, 并将scFv 文库基因克隆到噬菌体载体pCANTAB5E中, 电转化E . coli TG1, 构建单链抗体文库。
结果: 采用直接PCR 和半巢式PCR 扩增得到42 条VH 基因片段, 16条V 基因片段, 18条V基因片段。
混合的VH 和VL 等摩尔比连接后, 产生的单链抗体文库基因大小为750 bp 左右; 转化后构建了文库容量为1. 35 108的单链抗体文库。
BstN !酶切分析文库中的单链抗体基因结果显示,酶切得到的scFv 指纹图谱均不相同。
结论:构建的抗体文库多样性好, 可用于多种人源性单链抗体的筛选。
[关键词] 单链抗体;噬菌体抗体文库; 重叠延伸PCRConstruction and identification of nonimmunized human phage display libraryNIAN Si Ji , HU ANG Li , WANG Xu , WU Y uChuan, YU AN Qing. School o f BasicMedical Sciences, Luzhou Medical College, Luzhou 646000, China[Abstract] Objective:To develop non immunized human phage display library.Methods:The total RNA of lymphocyte cells from peripheral blood of healthy voluntee was isolated and cDNA was synthesized, and the genes of heavy variable chain ( VH) and light variable chain( V and V ) were amplified by direct PCR and half nested PCR. By overlapping extension PCR, the genes of VH and VL( V and V) werelinked. The linked genes of single chain Fv fragment ( scFv) were ligated with the vector pCANTAB 5E and then cloned into TG1 for the scFvlibrary construction. Results:By direct PCR and half nested PCR, 42 VH fragments, 16 V and 18 Vfragmen ts were obtained. The size of linkedscFv library genes was 750 bp and the volume of constructed scFv library was 1. 35 108. The results of BstN ! analysis of scFv genes fromthe phage library showed that fingerprint map of the selected scFvs was different. Conclusion:The developed phage library is diversity and canbe used for selecting humanized scFv.[Key words] Sin gle chain Fv fragment; Phage antibod y library; Overlapping extension PCR目前单克隆抗体( mAb) 作为治疗性抗体发展迅速,主要用于免疫治疗肿瘤、免疫性疾病、器官移植、感染性疾病及心血管疾病等。
但单克隆抗体的临床应用仍然受到一定的限制, 主要障碍是诱导产生的人抗鼠抗体( HAHA) 反应、肿瘤渗入量低及半衰期短的问题[ 1]。
随着基因工程技术的发展, 各种形式的基因工程抗体被构建来改善它们的性能和效能,其中小分子单链抗体( single chain Fv fragment,scFv)可通过噬菌体展示的方法制备, 从而使完全人源化的抗体制备成为可能, 并且单链抗体分子量小,组织穿透力强[ 2]。
噬菌体抗体文库技术的出现是抗体工程领域的重大技术突破。
文库容量和多样性是衡量抗体文库质量的两个重要参数。
文库容量越大, 从中筛选得到抗体的可能性越大, 而且文库容量的大小与所获抗体的亲和力成正比。
在抗体文库的构建过程中,另外一个重要的指标为抗体文库的多样性,文库的多样性可通过设计能扩增所有抗体基因的PCR 引物加以实现。
本研究以未经免疫的健康人外周血为基因来源,以一套被证明能扩增出所有抗体基因的PCR 引物及自行设计的引物扩增获得全套抗体可变区基因,从而构建文库容量大、多样性相对良好的人源性天然噬菌体抗体库,为以后筛选针对各类病毒、毒素、肿瘤特异性抗原及自身免疫疾病相关抗原的特异性人源治疗性单克隆抗体奠定基础。
∀ 544 ∀中国免疫学杂志2010年第26卷1 材料与方法1. 1 实验试剂大肠杆菌TG1、辅助噬菌体M13K07及pCANTAB 5E 噬菌体载体均购自Gene 公司。
淋巴细胞分离液为天根生物技术有限公司产品。
MMLV 反转录酶和RNase inhibi tor 等反转录试剂及PCR 试剂购自Promega公司。
1. 2 引物设计人抗体可变区引物序列是根据文献[35]中的人抗体可变区引物序列重新设计而成(表1) ,重新设计的引物有利于简化抗体基因组装程序,提高组装效率,并且可增加抗体文库的多样性。
1. 3 实验方法1. 3. 1 人淋巴细胞cDNA 的合成抽取60 例未经主动免疫健康人的外周血, 用淋巴细胞分离液常规分离淋巴细胞, 按Trizol 说明书提取淋巴细胞总RNA,以oligo dT 为引物反转录合成第1 链cDNA。
1. 3. 2 VH 和VL 基因的扩增直接PCR 扩增VH 和VL 基因:以第1 链cDNA 为模板, 将VH 基因的上游引物和VH 基因的下游端引物两两配对, 共组成42对引物;将V和V基因的上游引物和下游引物两两配对,分别组成16 对引物和18 对引物, PCR 扩增VH、V和V。
PCR 反应条件为94 # 1 分钟, 55 # 1分钟, 72 # 1 分钟,共30个循环, PCR 产物经琼脂糖凝胶电泳鉴定后回收纯化。
半巢式PCR 扩增VH、V和V基因: 以第一链cDNA 为模板, 将扩增CH 基因的下游引物( CH1R、CH2R 和CH3R) 等摩尔比混合,作为1条下游引物使用,与VH 基因上游引物配对扩增,将扩增得到的PCR 产物纯化并混合作为模板,再以VH 的上游引物与下游引物两两配对, 共组成42 对引物扩增得到VH 基因片段; 同样, 用V 上游引物与半巢式PCR 下游引物CR 扩增cDNA, PCR产物纯化并混合后作为模板, 以V的上游引物与下游引物两两配对, 共组成16 对引物进行扩增得到V基因片段。
用V上游引物与半巢式PCR 下游引物CR 扩增cDNA, PCR 产物纯化并混合后作为模板,以V的上游引物与下游引物两两配对, 共组成18 对引物进行扩增得到V基因片段。
第1 轮半巢式PCR条件为: 94 # 1 分钟, 50 # 1 分钟, 72 # 1 分钟,共30 个循环。
第2 轮PCR 的条件为: 94 # 1 分钟, 55 # 1分钟, 72 # 1 分钟,共30 个循环。
PCR 产物经琼脂糖凝胶鉴定后回收纯化。
1. 3. 3 scFv 基因的拼接将所有回收的VH 基因片段混合即得到VH 基因文库;同样将回收的V基因片段混合得到V 基因文库;将回收的V基因片段混合得到V基因文库,将VH 基因库以VHscFvF 为上游引物,以linkerR为下游引物,进行PCR 扩增,获得VHlinker 基因片段; 将V 基因文库以上游引物linkerF 和下游引物VscFvR 为引物, 进行PCR 扩增,获得linkerV基因片段;将V基因文库以linkerF和V sc FvR 为引物, 分别进行PCR 扩增, 获得linkerV基因片段。
PCR 反应条件为94 # 1 分钟, 55 # 1 分钟, 72 # 1分钟, 共30 个循环。
PCR 产物均经琼脂糖凝胶电泳,切胶回收目的片段。
表1 构建天然人源scFv文库的引物Tab. 1 Oligonucleot ide primers for construction of non immu nized human scFv libraryVH f orward primers:5 ∃ACTGCGGCCCAGCCGGCCCAGGTGCAGCTGCAGGAGTCSG3 ∃5 ∃ACTGCGGCCCAGCCGGCCCAGGTACAGCTGCAGCAGTCA 3 ∃5 ∃ACTGCGGCCCAGCCGGCCCAGGTGCAGCTACAGCAGTGGG 3 ∃5 ∃ACTGCGGCCCAGCCGGCCCAGGTGCAGCTGKTGGAGWCY 3 ∃5 ∃ACTGCGGCCCAGCCGGCCCAGGTCCAGCTKGTRCAGTCTGG 3 ∃5 ∃ACTGCGGCCCAGCCGGCCCAGRTCACCTTGAAGGAGTCTG 3 ∃5 ∃ACTGCGGCCCAGCCGGCCCAGGTGCAGCTGGTGSARTCTGG3 ∃VH reverse primers:5 ∃ TCCGCCGAGACCGCCTCCACCTGAGGAGACRGTGACCAGGGTG 3 ∃5 ∃ TCCGCCGAGACCGCCTCCACCTGAGGAGACGGTGACCAGGGTT 3 ∃5 ∃ TCCGCCGAGACCGCCTCCACCTGAAGAGACGGTGACCATTGT 3 ∃5 ∃ TCCGCCGAGACCGCCTCCACCTGAGGAGACGGTGACCGTGGTCC3∃5 ∃ TCCGCCGAGACCGCCTCCACCGGTTGGGGCGGATGCACTCC3 ∃5 ∃ TCCGCCGAGACCGCCTCCACCSGATGGGCCCTTGGTGGARGC3 ∃Vforward primers:5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGGACATCCRGDTGACCCAGTC TCC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGGAAA TTGTRW TGACRCAGTCTCC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGGAT A TTGTGMTGACBCAGWC TCC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGGAAACGACAC TCACGCAGTCTC 3 ∃Vbackward primers:5 ∃GCGTCAGAGTGCGGCCGCACGTTTGATTTCCACCTTGGTCC3∃5 ∃GCGTCAGAGTGCGGCCGCACGTTTGATCTCCASCTTGGTCC3 ∃5 ∃GCGTCAGAGTGCGGCCGCACGTTTGATATCCACTTTGGTCC 3∃5 ∃GCGTCAGAGTGCGGCCGCACGTTTAATCTCCAGTCGTGTCC3 ∃Vforward primers:5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGCAGTCTGTSBTGACGCAGCCGCC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGTCCT ATGWGCTGACWCAGCCAC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGTCCT ATGAGCTGAYRCAGCYACC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGCAGCCTGTGCTGACTCARYC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGCAGDCTGTGGTGACYCAGGAGCC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGCAGCCWGKGCTGAC TC AGCC MCC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGTCCTCTGAGCTGASTCAGGASCC 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGCAGTCTGYYCTGAYTCAGCCT 3 ∃5 ∃GGTGGCTCAGGCGGTGGAGGCTCGAATT TT ATGC TGACTCAGCCCC 3 ∃Vbackward primers:5 ∃GCGTCAGAGTGCGGCCGCACCTAGGACGGTSASCTTGGTCC3 ∃5 ∃GCGTCAGAGTGCGGCCGCACCGAGGACGGTCAGCTGGGTGC3 ∃CH1R: 5 ∃ GGATCCTCTAGATTTACCCGGAGACAGG 3 ∃CH2R: 5 ∃ TCTATCCACGAGGGTCC3∃CH3R: 5 ∃ CTCTCTTGTCCACCTTGT3∃CR: 5 ∃ GGATCCTCTAGAACACTCTCCCCTGTTG 3 ∃CR: 5 ∃ CATTCATGAGACACACCT 3 ∃VHsc FvF: 5 ∃ATCGACGCTACTGCGGCCCAGCCGGCCCAGGT 3 ∃V sFvR:ACGGCTGCGTCAGAGTGCGGCCGCACGTTT3 ∃V sFvR:ACGGCTGCGTCAGAGTGCGGCCGCACC 3 ∃.L inke rF: 5 ∃TC AGGTG GAGGCGGT TC TGGC GGAGGT GGC TC AGGCGG TGGAGGC TCG3 ∃Li nkerR:5 ∃ CGAGCC TCCACC GCC TGAGCCACC TCC GC CAGAACC GC CTC CACC TGA5 ∃∀ 545 ∀年四季等人源性天然噬菌体展示文库的构建及鉴定第6 期混合linkerV和linker V得到linker VL 基因片段。