标本采集、运送标准操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程临床检验标本采集、运输和保存操作规程第一章体液标本的采集、运输和保存操作规程一、尿液标本的采集、运输和保存尿液标本的采集、运输和保存是临床检验中非常重要的一环。
尿液干化学测定的检查项目包括尿液比重、pH值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖和抗坏血酸等。
同时也需要检测尿液有形成份，如红细胞和白细胞形态等。
此外，还需要检测24小时尿总蛋白、尿肌酐和尿尿酸等。
二、脑脊液标本的采集、运输和保存脑脊液标本的采集、运输和保存也是非常重要的。
在采集脑脊液标本时，需要注意消毒和无菌操作。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
三、浆膜腔积液标本的采集、运输和保存浆膜腔积液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
四、分泌物标本的采集、运输分泌物标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温。
五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温。
六、标本的采集、运输和保存标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
七、前列腺液标本的采集、运输和保存前列腺液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
八、粪便采集、运输和保存粪便采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
第二章血液一般检验的标本采集、运输和保存操作规程一、未梢血标本采集未梢血标本采集需要注意消毒和无菌操作。
尿液标本采集和运送标准操作规程
尿液标本采集和运送标准操作规程(SOP)
一、采集时机
宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。
二、采集方法
(一)清洁中段尿
1、女性:采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴,用手指分开阴唇,弃其前段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。
2、男性:采样前用肥皂水或0.05%-0.1%的聚维酮碘(碘伏)溶液等消毒液清洗尿道口,擦干后上翻包皮,弃其前段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。
(二)导尿管尿
1、直接导尿法:使用0.05%-0.1%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒会阴局部,用
导尿管直接经尿道插入膀胱,先弃其前段尿液约15ml,再留取中段尿液10-20ml于
无菌容器内。
2、留置导尿管法:医院内尿路感染中,临床最常用此法。
采集前先夹住导尿管,采集时则松管弃其前段尿液,使用0.25%-0.5%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位,使用无菌注射器斜刺入导尿管(从采样口或靠近尿道的导尿管管壁)抽取10-20ml尿液于无菌容器内。
三、标本运送:
标本采集后及时送检并接种,室温下保存时间不应超过2 h(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存)。
如果不能及时运送或接种,应4℃冷藏,但保存时间也不应超过8h。
四、注意事项
1、不应从集尿袋中采集尿液。
2、尿液中不应加防腐剂或消毒剂。
3、若尿液培养前患者曾使用抗菌药物,应反复多次送检。
4、多次采集或24h尿不应用于尿液培养。
5、除非进行流行病学调查,不应对长期留置导尿管患者常规进行尿液培养。
6、培养结果应结合临床表现、菌落计数以及微生物种类等,进行综合判断。
血培养标本采集和运送标准操作规程
血培养标本采集和运送标准操作规程目的：1．检查血液中是否有细菌存在。
2．确定血液中存在的菌种，可作为用药治疗的依据。
3．做抗生素的敏感试验。
4．确定患儿病情的进展程度。
用物准备：1．血液培养瓶。
2．检验单。
3．治疗盘：10ml/2ml无菌空针筒、一次性无菌针头数枚、无菌棉签、络合碘、酒精棉球、无菌干棉球、止血带、清洁手套。
采血时机：1.尽可能在抗菌药物使用前；2.对已经使用抗菌药物的病人，最好在下次用药前采集；3.寒战和发热初起时采血可提高培养阳性率，心内膜炎(持续性菌血症)例外；4.怀疑血流感染时应尽早采血，不要强调体温超过39℃才抽血，而错过时机。
步骤：1.核对患儿信息与检验信息2.核对、评估患者（1）了解患儿病情（2）评估患者局部皮肤及血管情况3．洗手，戴口罩，建议戴手套4.备齐用物并携至患儿床单位5．核对患儿，并向患儿家属解释6．协助患儿采取舒适姿势，并露出适宜的采血部位（1）通常选肘部头静脉、贵要静脉、正中静脉（2）切忌在静滴抗生素的静脉处采血7.取出空针及针头备用8.用止血带在采血部位上方5cm(新生儿2～3 cm)左右处扎止血带，并请患儿握拳。
9.消毒（1）用75%酒精消毒皮肤（以采血点为中心，螺旋式用力由内到外直径达5cm以上）60秒。
（2）用碘酊消毒皮肤30秒。
（3）用75%酒精脱碘（以采血点为中心，螺旋式用力由内到外直径达5cm以上）60秒。
10.根据需要抽取血样，放松止血带，以棉球压住针孔，并取出注射器。
11．若怀疑针头污染，需更换新的无菌针头。
如果进行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头。
或严格按厂商推荐的方法采血12．培养瓶消毒程序：用75%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞60秒（若使用含碘消毒剂消毒，必须彻底脱碘）13.用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面残余液体，排尽针头空气，然后注入血液，轻轻颠倒混匀以防血液凝固14. 脱手套，再次核对，确认采血时间并立即送检（采血后应立即送检，不能超过2小时。
临床试验检验标本采集及运输标准操作规程
临床试验检验标本采集及运输标准操作规程全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：一、前言临床试验是评价药物安全性和有效性的重要手段，而标本采集及运输是临床试验的重要环节之一。
合理的标本采集和运输操作规程对于保证临床试验数据的准确性和可靠性至关重要。
为了规范标本采集及运输工作，提高临床试验的质量，特制定本标准操作规程。
二、术语定义1. 临床试验：指对人体进行的药物安全性和有效性评价的研究。
2. 标本：指用于生化检测、药物浓度测定等分析的生物组织或体液。
3. 采集者：指从受试者身上采集标本的人员。
4. 运输者：指将标本从采集点送至检验点的人员。
三、采集操作规程1. 采集前准备（1）采集者应接受相关培训，了解采集标本的目的、方法和注意事项。
（2）采集器具应事先消毒，并准备好采集所需的标本管、采血针等工具。
（3）标本采集应在合适的环境中进行，保证采集者和受试者的安全和舒适。
2. 采集过程（1）根据临床试验方案要求，确保采集正确的标本类型和数量。
（2）遵循标本采集的标准流程，依次进行手部消毒、标本采集、采集管标记等操作。
（3）采血时应注意选择适当的采血部位和针头，避免造成受试者不必要的疼痛和伤害。
3. 采集后处理（1）采集完毕后，采集者应及时将标本管密封并标记好受试者信息。
（2）遵守标本储存和运输的规定，确保标本的稳定性和完整性。
1. 运输前准备（1）运输者应对标本进行分类和包装，确保标本的准确性和完整性。
（2）运输前应检查标本信息是否完整，并与采样者信息进行核对。
2. 运输过程（1）运输标本应选择符合要求的运输工具和容器，避免标本泄漏和污染。
（2）在运输途中应避免标本受到振动和温度变化，保证标本的稳定性和质量。
（3）运输者应妥善保管标本，避免与其他物品混杂，并遵守相关安全规定。
3. 运输后处理（1）标本送达检验点后，应立即进行登记和接收，确保标本信息准确无误。
（2）对标本进行处理时应遵守相关规程，确保标本能够及时送检并得到准确分析。
标本采集及运送制度
标本采集及运送制度〔一〕、各种标本采集：1、血液标本的采集依据化验单，认真核对患者身份。
釆血尽可能在上午7—9 点间进展。
病人采血前应禁食12 小时，以保证各类物质检验结果的恒定。
静脉采血时，除卧床病人，采血时一般取坐位，成人多用肘前静脉，肥胖者可用腕背静脉，婴幼儿常用颈静脉，偶用前肉静脉。
采血者要戴口罩，帽子，手套。
做到一人一巾一针一管，防止交义污染。
用一次性采血针由静脉采血，穿刺成功后应马上松开止血带，使用止血带的时间不应超过一分钟。
正在静脉输液者应停顿输液三分钟，从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。
消毒时，用络合碘拭子以静脉穿刺点为中心向外环状擦拭，消毒范围的直径至少为lcm。
需要全血或血浆，应将血液注入含有适当抗凝剂的真空采血管内，马上轻轻充分混匀。
需要血清标本，则直接将血液注入真空采血管内，待其凝固后分别血清。
2、尿液标本的采集一般以早晨第一次尿液作试验，其结果较为恒定牢靠。
采集时应避开月经血、及其他分泌物混入，容器务必清洁，必要时加防腐剂。
中段尿、导管尿等特别尿样的釆集一般III 医护人员行相关操作留取标本。
尿液标本应准时送检并在采集后2 小时内完成检验。
3、粪便标本采集宜颖，不行混有尿液，一般取指头大小，并取有病理成份的局部〔如脓血、粘液〕送检，外观无特别的从外表、深处及粪端多处取材，放于不吸水一次性干净专用盒内，检查阿米巴时应马上送检，并留意保温。
4、脑脊液标本的采集脑脊液一般由腰椎穿刺术取得，格外必要时也可由小脑髓池或脑室穿刺，收集于三支无菌管内，马上送检。
避开放置过久形成凝块、细胞破坏、葡萄糖分解、细菌溶解或死亡。
5＞阴道分泌物标本的采集一般山妇科医师采集。
采集阴道分泌物标本前24 小时应避开性生活、盆浴。
应于各种治疗、检查前采集标本，避开阴道冲洗或上药，被检者在采样前2 小时不能排尿。
患者取膀胱截石位。
用阴道扩张器暴露宫颈，采样前，用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。
标本采集与送检原则标准操作程序
标本采集与送检原则标准操作程序
【目的】
正确采集和处理标本是实验室取得正确结果的前提，必须予以重视。
但对标本采集的方法和时间，标本的来源，实验室常不能加以控制，实验室人员有责任通过各种方式，指导医师和护士正确采集标本。
特制定以下原则，以便统一标准执行。
【该SOP变动程序】
本标准操作程序的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：专业主管、科主任。
【基本原则】
1.送检报告单应注明被检人的姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源
及检验目的、抗生素使用情况，使实验室正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
2.尽量在抗生素使用前采集标本。
3.在采集血液、脑脊液、穿刺液等标本时，应严格无菌操作，避免杂菌
污染。
4.标本采集后应立即送到实验室，床边接种可提高病原菌的检出率。
5.以拭子采集的标本如咽拭子、伤拭子或肛拭子等，最好采用运送培养
基送检，应采用吸水性好、不宜干燥的材料取样。
6.混有正常菌群的标本，如痰、尿、伤拭子、不可置肉汤培养基送检。
7.盛标本容器需经灭菌处理，但不得使用消毒剂。
血培养标本采集和运送标准操作规程
血培养标本采集和运送标准操作规程（SOP）一、采集血培养的重要指征：(一)发热（≥38℃）或低温（≤36℃）(二)寒战(三)白细胞增多（>10x109／L，特别有“核左移”，未成熟的白细胞增多）(四)粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1x109／L）(五)血小板减少(六)皮肤粘膜出血(七)昏迷(八)多器官衰竭二、采血时机(一)尽可能在抗菌药物使用前；(二)对已经使用抗菌药物的病人，最好在下次用药前采集；(三)寒战和发热初起时采血可提高培养阳性率，心内膜炎（持续性菌血症）例外；(四)怀疑血流感染时应尽早采血，不要强调体温超过38℃才抽血，而错过时机。
三、血培养标本采集次数（一）留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染：1.希望保留深静脉导管者至少2套（1套血培养定义：从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养，不论被接种在1个还是多个血培养瓶内）血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集，两个来源的采血时间必须接近（建议≤5分钟），并各自做好标记；2.决定拔除深静脉导管者从独立的2个外周静脉部位，无菌采集2套血培养，同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室（实验室采用Maki半定量平板滚动培养）（二）未留置深静脉导管或怀疑的BSl并非导管相关1.怀疑血流感染时，独立的外周静脉无菌采集2套血培养2.当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时，在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养，两个来源的采血时间必须接近（建议≤5分钟），各自做好标记；3.对不明原因的发热、亚急性心内膜炎，抽取3套血培养；心内膜炎患者起始采集的3套血培养24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养；（三）在采血2～5天内，无需重复做血培养，细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症除外。
四、皮肤消毒及采血步骤(一)皮肤消毒前，先检查血培养瓶有无损坏或超过保质期，用75％酒精消毒血培养瓶橡皮塞并干燥；(二)用2根安尔碘棉签，以穿刺点为圆心，以约5cm直径画圈进行皮肤消毒，作用时间至少30s。
病原微生物标本采集运送
病原微生物标本采集运送IMB standardization office【IMB 5AB- IMBK 08- IMB 2C】病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。
一、标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。
二、标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。
三、不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针征当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。
临床试验检验标本采集及运输标准操作规程
临床试验检验标本采集及运输标准操作规程1. 引言1.1 背景介绍临床试验检验标本采集及运输标准操作规程是保证临床试验结果准确性和可靠性的重要环节。
背景介绍部分将简要介绍临床试验检验标本的重要性和研究意义，为了引出后续的正文内容。
临床试验检验标本是指用于临床试验和研究的生物学样本，包括血液、尿液、组织等。
这些标本所提供的信息对于诊断疾病、评估疗效、研究疾病机制等方面都起着至关重要的作用。
保证标本的采集、运输和储存符合标准操作规程至关重要。
临床试验检验标本的质量直接影响到临床试验结果的准确性和可靠性，而不规范的标本采集和运输过程可能导致标本变性、受污染、造成误差等问题，从而影响到试验结果的有效性和科学性。
建立临床试验检验标本采集及运输标准操作规程是非常必要的，可以保证标本的质量和完整性，提高临床试验结果的可信度和科学性。
通过本文的介绍，我们将深入探讨临床试验检验标本采集及运输标准操作规程的各个环节，帮助相关工作人员更好地掌握操作规程，确保临床试验工作的顺利进行和结果的准确可靠。
1.2 研究意义临床试验检验标本采集及运输标准操作规程的研究意义在于确保临床试验结果的准确性和可靠性。
标本采集和运输是临床试验中不可或缺的环节，其规范操作对于保证试验数据的真实性具有非常重要的意义。
标本的采集和运输过程如果不规范，可能会导致标本的变质或者污染，从而影响试验结果的准确性。
临床试验的目的是为了评估药物的安全性和有效性，而如果标本采集和运输不符合规范操作，就会使得试验结果失去可靠性，影响药物的评价和疗效判断。
遵守标本采集和运输规程可以提高临床试验的效率和准确性。
通过制定标准操作规程和严格执行，可以减少误操作和人为因素的干扰，确保试验数据的精准性和可信度。
规范的标本采集和运输流程也能够提升试验人员的操作技能和意识，保障试验工作的顺利进行。
2. 正文2.1 临床试验检验标本的定义临床试验检验标本是指在临床研究中采集的生物样本，通常包括血液、尿液、组织等。
医院痰标本采集与运送标准操作规程
医院痰标本采集与运送标准操作规程一、采集目的一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。
二、一般原则1．采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。
2．宜采集清晨第二口痰液。
3．对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。
不建议24 h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
4．怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
三、采集方法（一）自然咳痰法与雾化导痰法1．用物准备：无菌容器（盒）、生理盐水（250 ml 或500 m1）、化验单。
2．核对患者床号、姓名等。
3．无痰或痰量极少者可用3％～5％氯化钠溶液5 ml 雾化吸入约5 min后留取痰液。
4．如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。
嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。
应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。
（二）支气管镜法鼻或口腔插人支气管镜。
常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。
（三）经人工气道吸引法1．用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器（试管）、化验单。
2．核对患者床号、姓名等。
3．将患者头部转向操作者一侧。
4．进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压（成人：40．0～53．3 kPa；小儿：<40．0 kPa）。
5．将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。
6．折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离（使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15 s，吸痰前后需吸入高浓度氧气1～2 min）。
病原微生物标本采集、运送
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确地标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本地选择，采集，运送，保存及处理地一般原则.一、标本采集地一般原则.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌地检出..无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群地污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊.采集地标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌地检出..适量地标本标本量过少可能导致假阴性结果..适当地采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌地采集方法是不同地，用于厌氧菌培养地标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻..盛放标本地容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖地容器内.二、标本地运送.标本采集后立即送检，若有延迟也应在小时内送到实验室，否则会影响病原菌地检出，一般性地细菌培养标本若需延迟送检时，应置于度冰箱保存，且不能超过小时..临床标本最佳运送时间取决于标本地量，少量液体（小于）或组织（小于）应在分钟内送到实验室，较多量地标本置于运送培养基中可放小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过小时.三、不同标本地采集，运送（一）血液标本采集，运送.血培养指针征当患者出现：发热（大于度）或低温（小于度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养..对怀疑菌血症、真菌血症地患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本.必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本.成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于.（少于病人总血容量地）.在采取血培养后地—天内，无需重复采取血培养.两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症..血标本采集地量是影响检出率地最重要地因素.检出率与采血量成比例增长，每增加地血液，病原菌地检出率就会相应增加.儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人.采用一对（需氧瓶厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶地组合可检出更多地葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌.采血量不能满足推荐地量时，应首先满足需氧瓶地需要.推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率.如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果地判读..血标本采集地注意事项在采血之前，血培养瓶地橡皮塞需使用酒精消毒并干燥.然后再进行穿刺部位地皮肤消毒.严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”地消毒步骤操作，并等待足够地消毒时间.严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后地血培养瓶应在小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻.(二)痰培养标本采集，运送.痰培养指征上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本培养.下呼吸道感染：凡是咳嗽，咳痰，痰呈脓性，粘稠或血性等都可采集痰标本..标本地采集采集前嘱咐病人先用清水漱口，摘去牙托，因唾液中口咽部定植菌地浓度可达，去除表面地菌群.教育病人深咳，收集从下呼吸道咳出地痰液.在抗生素应用前采集痰标本;标本采集后～内送往实验室进行处理，采集标本过程中要有专业地医务人员指导;无痰可用％～％雾吸约导痰；也可用物理疗法、体位引流、鼻导管抽吸等方法取痰..正常地痰标本低倍视野下鳞状上皮细胞小于个，白细胞大于个.如果低倍视野下鳞状上皮细胞大于个，白细胞小于个应不做或仅在特殊要求时做培养，如做培养，报告中注明“镜检结果表明标本口咽分泌物污染明显”.痰培养方法地局限性多数引起肺炎地病原菌不能培养出，如病毒，军团菌，衣原体等.影响因素很多：如黏液包裹、定植菌污染.建议痰培养同时做血培养和痰涂片镜检..注意事项常规地痰培养需在小时内送检，若怀疑嗜血杆菌，肺炎链球菌感染时必需随留随送;标本中不能混入唾液与鼻咽分泌物等.（三）尿培养标本采集，运送.尿培养指征尿路感染，肾结核，泌尿系结石，膀胱排空功能受损或前列腺增生等患者，出现尿频，尿急，尿痛等膀胱刺激症状，肉眼脓尿或血尿，尿常规检查有白细胞或亚硝酸盐阳性，，不明原因地发热，尿道口有脓性分泌物等症状，需采集尿培养标本送检..标本地采集清洁中段尿液，嘱咐患者用肥皂水清洗，弃去开始流出地尿液，以冲刷尿道口地细菌，取能代表膀胱部位病原菌地中段尿；导尿管尿液，留置导管尿液标本常通过专门地采样端口采集，不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液，采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿管但不能超过分钟；将注射器针头插入采样端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中.膀胱穿刺尿，无菌操作，用无菌注射器刺入膀胱抽取—尿液送检，主要用于厌氧菌地培养或留取标本困难地婴幼儿标本地采集，此法可避免尿液标本地污染..标本地采集量一般成人采集,婴幼儿不得少于.诊断症状明显地病人（如尿急、尿频、尿痛），一份标本就已足够，治疗小时后再采集第二份标本.对于症状不明显地病人，需采集份标本.怀疑肾结核时，应连续天采集晨尿..室温都有利于病原菌和污染菌生长繁殖，标本采集后立即送检和接种，室温下存放不能超过小时，（夏季保存时间应适当缩短或冷藏），度冷藏保存时间也不能超过小时，冷藏地尿液不能用于淋球菌地培养.．注意事项必须无菌操作，采用带盖防渗漏地无菌杯收集，多次收集或小时尿不能用作培养.集尿袋内地尿液不能用作培养.导尿管末端地尿液也不能用于培养，很难避免没有尿道菌群污染.在使用抗菌药物前留取标本，尿液中不能加任何防腐剂或消毒剂，抑制细菌地生长.（四）粪便标本采集，运送.送检指征当患者出现腹泻，大便每天大于或等于次，粪便地性状异常，可为稀便，水样便，粘液便，脓血便或血便，伴有恶心，呕吐，食欲不振，发热，腹痛及全身不适等，大便镜检白细胞大于等于个每高倍视野，抗菌药物治疗后地腹泻等..标本地采集方法，时间与量尽可能在发病早期（急性期）或应用抗菌药物治疗之前，采集新鲜地粪便，怀疑沙门菌感染时，应在发病周以后采集.自然排便法，排便后，挑取有脓血或粘液部位地大便，液状粪便取絮状物盛于无菌地容器内；直肠拭子采集法，用于排便困难地患者或婴幼儿.一般用拭子采集大于地标本送检，若标本为水样，采集大于地标本于无菌容器中送检.．标本地运送与保存标本采集后应尽快送检，室温条件下不能超过小时，如不能及时送检可加入磷酸盐甘油缓冲保存液中或专门地大便运送培养基中置度冰箱保存，但不能超过小时.高度怀疑霍乱弧菌感染地标本必须符合特殊标本地安全要求..注意事项最好在用药前，采集新鲜地标本盛装在无菌容器内，立即送检，提高阳性检测结果.厌氧菌地培养尽量避免与空气接触和正常地菌群污染.(五)脓液及创伤感染分泌物标本地采集及运送.送检指征凡是当患者有外伤感染，术后切口感染，导管感染，脐带残端感染，有脓液和分泌物时，应采集标本培养..标本地采集时间和方法在使用抗生素前或停用药—天以后，或使用下一次抗生素前采集，对脓肿性分泌物应先用生理盐水或地酒精冲洗溃疡表面渗出物，尽可能抽取脓液于无菌杯内送检.对于封闭性脓肿时，应无菌操作抽取脓液—于无菌试管内或血培养瓶内送检，怀疑厌氧菌感染时，应做床旁接种或注入厌氧瓶内（—）送检，最佳方法是采集组织送检..标本地运送标本采集后应于小时内送微生物实验室进行处理，若不能及时送检，需氧培养地标本除对环境敏感地淋病奈瑟菌，脑膜炎奈瑟菌和流感嗜血杆菌外，可保存在度冰箱中，但保存时间不能超过小时;厌氧培养时，需用厌氧瓶或厌氧袋在室温下保存，但不能超过小时..注意事项尽可能在用抗生素前采集，若患者也用药，应在检验单上注明抗菌药名，并在下次用药前采集；对于开放性地伤口，采集前应先除去表面污染菌，以防带入与感染无关地皮肤定值菌.干燥结痂地标本一般不做培养，除非有渗出物.采集标本时应无菌操作.（六）穿刺液标本地采集与运送穿刺液主要包括脑脊液，胸腹水，心包液，胆汁，关节液及鞘膜液，在正常标本中，上述液体是无菌地，在排除污染地情况下，一旦检出细菌均视为病原菌.在相关地部位有相应地临床症状时，应无菌操作采集相应地标本于无菌容器内送检，标本采集后应立即送往实验室处理.脑脊液采集后应在分钟内送到实验室，若不能，应室温保存，不得超过小时，不能冷冻或冷藏注意事项：标本地采集严格执行无菌操作，最好在用抗菌药物前采集.防止标本凝固，可事先在容器内加入抗凝剂，（脑脊液标本时不需加抗凝剂），也可直接加入血培养瓶内.。
专业知识 临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程一、标本采集1.1采集时间标本采集应遵循医嘱，根据检验目的和要求，在合适的时间进行采集。
一般而言，早晨空腹时采集某些标本（如血液、尿液等）较为适宜，以便获得更为准确的结果。
1.2采集方法根据检验要求，选择合适的容器和采集方法。
一般来说，血液标本宜采用静脉采血，使用消毒后的采血器进行采集。
尿液标本则需使用清洁、无污染的容器，并确保在采集过程中避免污染。
其他体液标本也应根据其特性及检验目的选择合适的容器和采集方法。
1.3采集量应根据检验要求和实验方法确定采集标本的量。
不同的检验项目需要不同的标本量，因此应确保采集足够的标本以供分析。
1.4采集部位根据检验目的和要求，选择合适的采集部位。
如血液标本可选择肘静脉、楼动脉等；尿液标本则需收集尿液；粪便标本应取自患者粪便的不同部位，以便全面评估病情。
1.5防止污染在采集过程中，应严格遵守无菌操作原则，防止外界污染影响标本的质量。
采集后的标本应立即送往实验室进行检测，以避免长时间放置引起的变化。
1.6其他注意事项采集前应告知患者相关注意事项，如饮食、休息等；对于特殊患者，如新生儿、重症患者等，应结合实际情况制定合适的采集方案。
此外，应注意保护患者隐私和个人信息的安全。
二、标本运输2.1运输方式标本运输应根据检验要求选择合适的运输方式。
一般而言，血液、尿液等常见标本可采用常规的物流方式进行运输，如快递、包裹等。
对于具有特殊要求或易失活的标本，如细胞培养物、微生物等，则需采用专门的运输设备或冷链运输方式，以确保标本在运输过程中的质量和安全。
3.2运输温度对于需要特殊温度保存的标本，如冷冻标本、细胞培养物等，应确保在运输过程中保持适宜的温度。
可采用保温箱、干冰等设备进行温度控制。
对于常温运输的标本，也要尽量减少暴露在高温或低温环境中的时间，以避免对标本产生不良影响。
4.3运输时间标本运输时间应尽可能短，以减少运输过程中可能出现的问题。
化验标本采集与运送规范
化验标本采集与运送规范
1.标本采集严格按照检验项目要求，包括容器、采集时间、采集量、采集部位、试管的选择、保存、送检方式等，避免采错、污染、丢失等情况发生。
2.采集标本严格实行查对制度，包括姓名、性别、年龄、住院号、病床号、标本类型、容器、标识、标本的量、检验目的等。
3.尿液、粪便、痰液等标本，在医护人员指导下，患者掌握正确的方法后方可自行留取。
4.在采集送检的过程中，抗凝标本应轻摇，防止标本溶血、稀释、凝固等影响检验结果。
5.各病区应有固定存放标本的区域和容器，保证采集的标本不丢失、损坏。
6.标本送检原则上由护工负责，不得擅自交患者或家属自行送检标本。
7.急诊检验标本要及时采集、核对、送检。
8.检验标本若出现严重意外，并且影响较大者，科内组织讨论，并作为不良事件上报。
标本采集运送标准操作规程PPT课件
（4）粒细胞减少（成熟时我多核白细胞小于1000×109/L）。 （5）血小板减少。 （6）皮肤黏膜出血。 （7）昏迷. （8）多器官衰竭 （9）血压降低 （10）呼吸加快 （11）降钙素原升高（PCT）
【标准操作程序】
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿（特别是2岁或以下的幼儿）一般出现于门诊，常伴有明显的发热（≥38.5℃）和白细胞增多（总数≥ 20,000×109/L）。老年菌血症患者，可能不发热或低体温，如伴有身体不适，肌痛或中风可能是感染心内膜炎的重要信号。
【标准操作程序】
5.3采集方法： 自然排便采集标本时，取有脓血，黏液，组织碎片部分的粪便1—3g（花生米大小）。水样粪便则取絮状物，一般取1—3ml，直接装入运送培养基中送检。 直肠拭子采集粪便标本：先以肥皂和水，将肛门周围洗净，然后用经无菌盐水湿润的棉式子插入肛门超越肛门括约肌约2～3cm，与直肠黏膜表面接触，轻轻旋转，必须将棉式子置于运送培养基中送检。 5.4 采集量： 成形粪便花生米大小1—3 g，水样便1—3 ml。 5.5容器： 粪便标本装于无菌加盖螺旋广口塑料杯；直肠肛拭置于Cary-Bair运送培养基。 5.6 标本容器标识 应包括病人姓名、病员号、标本种类、检验项目、采集时间。
【标准操作程序】
2.3 采集量 5～10ml。 2.4 容器 无菌、带螺旋盖、透明塑料容器。 2.5 标本容器标识 标识内容应包括病人姓名、病员号、标本种类。 2.6 标本运送 标本采集后立即盖紧防止泄漏或容器外部留有残留物。及时送检，室温保存下不得超过2小时，否则应置于 4℃冰箱保存，保存时间不得超过24h。 2.7 注 直接导尿可能导致尿道菌落进入膀胱，增加医源性感染的危险。 8生物安全防护参见《HS-JY-GL-XJ-302生物防护的安全程序》。
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程
成人用注射器无菌穿刺取血后，排出针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
3.注意事项
⑷细菌性心内膜炎：在24h内取血3次，每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养2次。
⑸采血量：以培养基与血液之比10：1为宜。以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。采血量过少会明显降低阳性率。成人每次每培养瓶采血8-10ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2ml。
四、运送要求
1.所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2h以内，如果不能及时送检，宜置于室温环境。血培养瓶送到检验科放入培养箱内，不应暂存于冰箱内。
2.送检标本应正确粘贴条形码，注明采样时间和送检时间。
3.安全防护：放标本的容器必需防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。
五、报告要求
1.紧急口头（电话）报告
血培养出现阳性报警时，立即进行革兰氏染色、镜检，并在最短的时间内将结果向临床主管医生进行紧急口头（电话）报告。口头报告包含以下内容，并记录在案。
⑴报告者全名或工号。
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程
制订者：院感办
审核者：
文件编号：YGB-SOP-70
修订日期：
审核日期：
执行日期：
一、血培养指征
患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
临床检验标本采集运输保存操作规程
临床检验标本采集运输保存操作规程一、概要临床检验标本的采集、运输、保存是临床工作中非常重要的环节，直接关系到检验结果的准确性和诊断的准确性。
因此，为了确保临床检验结果的准确性和诊断的准确性，特制定本操作规程，以规范临床检验标本的采集、运输、保存等工作。
二、采集1.标本采集前准备（1）检查标本采集物品是否齐全，并检查是否符合采样要求；（2）查看患者的相关信息，核对患者的身份信息，确认采集标本的准确性；（3）向患者解释采集标本的目的和方法，并获得患者的同意。
2.采集方法（1）洗手消毒，戴上一次性手套；（2）根据采集标本的不同种类，选择相应的采集器具，确保采集过程无菌；（3）按照标本采集要求，从患者身体的适当部位采集标本；（4）采集标本后，恢复住院患者原有的就医状态；三、运输1.运输要求（1）标本应在采集后尽快送达实验室；（2）标本运送途中，标本容器应放置在避光、干燥、通风良好的环境中；（3）标本运送途中应保持标本的稳定性，避免标本的破裂或泄漏；（4）标本运送过程中，应遵循相关法规，确保运输过程的安全性。
2.运送方法（1）标本应用密闭的容器运输，确保标本的稳定性；（3）运送途中请勿晃动标本，防止标本变质或破裂。
四、保存1.保存要求（1）标本应保存在适当的温度下，防止标本变质；（2）标本应放置在干燥、避光、通风良好的环境中，防止标本受潮或受光；（3）标本保存时间应符合实验室的规定，过期标本应予以丢弃。
2.保存方法（1）根据标本的种类，选择相应的保存方法，如鲜血标本应保存在冰箱中，尿液标本应保存在冰箱中等；五、安全问题1.采集安全（1）在采集标本之前，应了解患者的病情以及有无感染性风险；（2）采集过程中必须戴上一次性手套，并做好手卫生，防止交叉感染的发生；（3）采集过程中，要注意针具的安全使用，避免针具刺伤；（4）采集结束后，要将废弃的针头和一次性手套放入黄色或红色的医疗废物桶中。
2.运输安全（1）标本运送途中，应遵循相关法规，确保运输过程的安全性；（2）运送过程中，要注意标本容器的密闭性，避免标本的泄漏。
血培养标本采集与运送标准操作规程
血培养标本采集与运送标准操作规程一、引言血培养标本采集与运送是临床微生物学中非常重要的步骤，对于准确诊断和治疗疾病起着关键作用。
本文旨在规范血培养标本的采集与运送操作，以提高标本质量、减少污染及误诊率。
二、采集前准备1. 确认患者身份：核对患者的姓名、年龄、性别等个人信息，确保无误。
2. 选择合适的采集器械：根据采集需求，选择适当的采集器械，如无菌针头、无菌试管、培养瓶等。
三、采集操作1. 患者准备：告知患者采集过程，让其了解并配合操作。
保证患者处于舒适、稳定的状态。
2. 消毒程序：对采集部位进行消毒，常用消毒剂如酒精、碘酒，按照规程进行彻底消毒。
3. 采集血样：将无菌针头插入患者的静脉或血管，抽取适量血液，并根据需要分装入无菌试管或培养瓶中。
4. 混匀标本：轻微摇晃或轻拍血样容器，确保血液与培养液充分混合。
四、采集后处理1. 采集器械处理：丢弃使用过的针头、试管等器械，并进行相应的处理，如焚烧或贴有“感染性废物”标签的特殊垃圾袋中。
2. 患者鼓励：告知患者采集已完成，感谢其的配合并鼓励其继续配合后续治疗。
五、运送操作1. 标本标识：确保标本上有患者的姓名、住院号、采集日期和时间等必要信息，以免混淆或丢失。
2. 运送容器：选择合适的运输容器，如耐压、耐震动、密封好的容器，确保标本在运输过程中不泄漏或受到破坏。
3. 防护措施：运送标本时，保持容器稳定，避免与其他容器、物品摩擦和震动，防止标本破损或污染。
4. 运送温度：根据不同培养需求，将标本置于适当的温度条件下运送，如冷藏、冷冻或常温等。
确保温度在规定范围内，避免标本质量受损。
5. 运送时效：尽量缩短标本送达实验室的时间，以保持标本的活性和准确度。
在运送前与实验室联系，确认实验室接收时间和运送方式。
六、备注事项1. 采集者要佩戴符合要求的个人防护装备，包括手套、口罩、防护眼镜等，以确保采集过程中不发生交叉感染。
2. 采集器械和容器要严格按照规定进行消毒、清洁和灭菌，以杀灭或去除潜在污染的微生物。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
4 7
血培养 淋球菌培养
立即 30分钟
1小时 30分钟
阳性结果3天以上，阴性结果7天 2天
8
真菌培养
1小时
2小时
3天后
细菌室项目检验周期表
9 解脲、人型支原体培养及药敏、衣原体培 养 1小时 2小时 2天后
11
一般涂片革兰氏染色
1小时
2小时
5小时
当天下午
12
涂片找抗酸杆菌
1小时
2小时
5小时
当天下午
Байду номын сангаас
查询申请医师，补足标本信息。
仅有申请单而无标本或无菌容器内无标本
与原送检部门联系，退回申请单，要求重送标本
标本外漏及明显受污染（如开塞） 标本收集不符合采集要求 样本混入消毒液 或防腐剂
与原送检部门联系，退回申请单，建议重送标本。 退回申请单，及时通知临床，告知正确收集方法，要求重送标本 退回申请单，及时通知临床，建议重送标本。
13
新型隐球菌墨汁染色
1小时
1小时
5小时
当天下午
• 注： 1. 细菌室正常上班时间为周一至周六
全天、周日上午；其他时间（包括中午、 夜班、周日下午、）常规培养请送急诊化 验室。 • 2．各类血清学检测周一至周五做；支原体、 衣原体检查周一至周六上午做，其余时间 标本一律不接收。 • 3． 空气培养、物表监测周六、周日不做， 于周一至周五打电话给细菌室告之数量。
【标准操作程序】
• 3. 粪便样本
养：
• 5.1采集指征： • 当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培
粪便涂片镜检白细胞＞5/HP 体温＞38.5℃ 重症腹泻 血便或便中有脓液 未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人
• 5.2采集时间： • 尽可能在发病早期和使用抗菌药物之前采集。在不同的时间采集2—3
【标准操作程序】
• 1.4皮肤消毒程序： • 1.4.1推荐使用碘酊、次氯酸和洗必太或碘
伏。
• 碘酊、次氯酸和洗必太的消毒效果要优于碘伏。 • 消毒剂需要有足够的时间以保证消毒效果（碘酊作
用30s；碘伏作用1.5～2min）。 • 洗必泰的作用时间和碘酊一样，但是没有过敏反应， 因此不必擦去，但不能用于小于2个月的婴儿。
细菌室对微生物标本拒收的标准与 处理方法
拒收标准
申请单注明的标本种类与送检标本不符
处理方式
与原送检部门联系，退回申请单，要求审核并重送符合要求的标本。
申请单上填写项目不全或与标本的标签不符或容 器上未贴标签
与原送检部门联系，要求补充完整申请单或重贴标签或重送标本。
检验单上未注明样本来源和培养项目或仅注明身 体部位者（如胸、腿）
【标准操作程序】
• 1.10血培养瓶标识 • 标识内容应包括病人姓名、病员号、标本种类、
• • •
采集时间。注：病人标识不可覆盖在血液培养瓶 的条形码上。 1.11标本的运送 血培养标本应按要求尽快送往实验室，不能超过 2h。如无法及时送检，血标本需室温（20-25度） 保存，切勿冷藏。 1.12 生物安全防护参见《HS-JY-GL-XJ-302生 物防护的安全程序》。
•
【标准操作程序】
• 1.3特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建
•
议： 1.3.1急性心内膜炎：对于可能的心内膜炎患者， 必须在经验使用抗菌药物前30min之内抽取血培 养，起始采集3套血培养，如果在24h内仍报告为 阴性，则继续采集2套血培养，全部培养一共为5 套。 1.3.2亚急性心内膜炎：需在24h之内连续从不同 部位抽取3套血培养，间隔时间30-60min。如24h 内为阴性，则继续采集2套血培养，全部培养一共 为5套。
（2）寒战。 （3）白细胞增多（计数大于10,000×109/L，特别有 “核左移”未成熟的或带状的白细胞）。
【标准操作程序】
（4）粒细胞减少（成熟时我多核白细胞小于 1000×109/L）。 （5）血小板减少。 （6）皮肤黏膜出血。 （7）昏迷. （8）多器官衰竭 （9）血压降低 （10）呼吸加快 （11）降钙素原升高（PCT）
•
【标准操作程序】
• 1.3.3对于亚急性心内膜炎的评估，皮肤消毒尤为重要，因为其主要的
病原菌为皮肤定植菌如凝固酶阴性葡萄球菌。因此，血培养必须取自 外周静脉而非留置的静脉导管。取自导管的血培养会伴有很高的污染 风险从而导致错误的心内膜炎的结论。建议采用正确的皮肤消毒，从 不同的外周静脉部位分别采集血培养，不能从留置的导管采血。 • 1.3.4急性脓毒症：10min内从不同的部位采集2～3套血培养。 • 1.3.5可疑菌血症但血培养持续阴性，应改变血培养方法，如延长培养 时间或增加特殊培养基，以获得罕见的或苛养的微生物（真菌，结核 菌等）。 • 1.3.6不明原因发热，如隐性脓肿、伤寒热和波浪热，从不同体位先采 集2～3 套血标本，24～36h后估计体温升高之前（通常下午）再采 集2套以上
细菌室对微生物标本拒收的标准与 处理方法
送检延误，超过要求送检时限
标本量过少或已明显干燥
与送检部门联系，退回申请单，要求重送标本。
与原送检部门联系，退回申请单，要求重送标本。
申请项目不适合如血液培养同时要求涂片革兰染 色，肛门或直肠标本要求做革兰染色检查淋 球菌。
联系申请医师，建议删去请求革兰染色项目
【标准操作程序】
• 1.9静脉穿刺和培养瓶接种程序： • 穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可戴乳胶 • •
•
手套固定静脉，不可接触刺点。 骨髓标本采取对穿刺一侧准备同外科切口。 用注射器无菌穿刺取血或骨髓后，直接注入血培 养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺，应换针 头），或严格按厂商推荐的方法采血。 血标本接种到血培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血 液凝固，立即送检。
【标准操作程序】
• • • • • • • •
2.3 采集量 5～10ml。 2.4 容器 无菌、带螺旋盖、透明塑料容器。 2.5 标本容器标识 标识内容应包括病人姓名、病员号、标本种类。 2.6 标本运送 标本采集后立即盖紧防止泄漏或容器外部留有残留物。及时送检，室 温保存下不得超过2小时，否则应置于 4℃冰箱保存，保存时间不得 超过24h。 • 2.7 注 • 直接导尿可能导致尿道菌落进入膀胱，增加医源性感染的危险。 • 8生物安全防护参见《HS-JY-GL-XJ-302生物防护的安全程序》。
标本接收 至进行检 验时间
标本接收至出报告 时间
标本检验的周期（标本接收 至报告送达时间）
1
肥达氏反应、肺支抗体、结核抗体、梅毒 筛查 梅毒确诊试验
2小时
1小时
24小时
2天
2
2小时
1小时
24小时
3天
3
普通细菌培养+药敏（包括尿、痰、脑脊 液、分泌物、粪便、咽拭子等）
1小时
1小时
阴性3天、阳性结果3天以上
【标准操作程序】
• 1.5 静脉穿刺点皮肤消毒程序： • 1.5.1 70%酒精消毒皮肤（以采血点为中心，螺旋式
• •
用力有内到外直径5cm以上），作用60秒； 1.5.2 用碘伏消毒皮肤（以采血点为中心，螺旋式用 力有内到外直径5cm以上），作用1.5~2min；或用碘酊消 毒皮肤，作用30秒； 1.5.3 再用70%酒精脱碘（以采血点为中心，螺旋式 用力有内到外直径5cm以上）； 1.5.4 静脉穿刺采血。 注：血培养必须特别注意消毒，因许多微生物， 尤其葡萄球菌属通常存在皮肤表面或近表层处，易污染血 培养标本。
微生物检查的标本收集原则
• 6.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法 •
• •
与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收 集样本。 7.采样后立即送检，最好在2h内。如不能及时送 检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放 一般不能超过24h。 8.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。 9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检 验申请单上填写足够的有关临床资料。（要标明 病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、 采集时间等）
标本采集、运送的标准操作程序
• 【目的】 • 规范标本采集，保证实验室检测前标本质
量。 • 【范围】 • 微生物实验室所有标本。 • 【职责】 • 采集、运送微生物标本的临床各科室工作 人员。
【标准操作程序】
•
• • • • • •
1.血液、骨髓标本：
1.1采集指征： 对可疑血流感染患者未进行抗菌药物治疗前，应及时进 行血液培养. 可疑血流感染患者出现以下一项或几项体征时应及时采 集血培养： （1）发热（≥38℃）或低温（≤36℃）
一般只检查一次即可，可与临床医生进行协商。
各类标本储存的环境
储存环境 标本来源
4℃冰箱
痰、尿液、粪便、活检组织、气管冲洗物、导尿管、心包积液、脓和伤口分泌物等
室温（25℃）
脑脊液、泌尿生殖道、眼、耳、鼻、喉、血液培养、血管导管尖、体液 、厌氧菌培养标本
细菌室项目检验周期表
序号 检验项目 标本送 达时限
个标本可以提高致病菌的分离率。
来自肠道传染疫区的患者
【标准操作程序】
• 5.3采集方法： • 自然排便采集标本时，取有脓血，黏液，组织碎片部分的粪便1—3g
• • • • • • •
（花生米大小）。水样粪便则取絮状物，一般取1—3ml，直接装入运 送培养基中送检。 直肠拭子采集粪便标本：先以肥皂和水，将肛门周围洗净，然后用经 无菌盐水湿润的棉式子插入肛门超越肛门括约肌约2～3cm，与直肠 黏膜表面接触，轻轻旋转，必须将棉式子置于运送培养基中送检。 5.4 采集量： 成形粪便花生米大小1—3 g，水样便1—3 ml。 5.5容器： 粪便标本装于无菌加盖螺旋广口塑料杯；直肠肛拭置于Cary-Bair运送 培养基。 5.6 标本容器标识 应包括病人姓名、病员号、标本种类、检验项目、采集时间。