细胞因子的流式检测
细胞因子的检测法
细胞因子的检测法细胞因子是一类在细胞间相互作用并调节免疫和炎症等生物学过程的蛋白质分子。
它们在疾病的发生和发展中发挥着关键的作用。
为了研究这些生物分子，科学家们使用多种方法进行细胞因子的检测。
以下是一些常见的细胞因子检测方法：1. 酶联免疫吸附测定法（ELISA）：- ELISA是一种广泛用于检测蛋白质的方法。
对于细胞因子，ELISA通常分为直接和间接两种类型。
ELISA的基本原理是通过酶标记的抗体与待测细胞因子结合，然后用底物显色，并通过光密度测定来定量检测目标物质的含量。
2. 多参数流式细胞术：-这是一种同时测量多个生物标志物的方法。
通过将样品与多种荧光标记的抗体混合，然后在流式细胞仪中进行检测，可以在单个细胞水平上评估多个细胞因子的表达水平。
这是一种高通量的方法，适用于复杂的细胞混合物。
3. 生物传感器技术：-生物传感器是一种直接监测生物分子的技术。
对于细胞因子检测，可以使用基于电化学、光学或质谱学的生物传感器。
这些传感器通常具有高灵敏度和选择性，可以用于实时监测。
4. PCR技术：-聚合酶链反应（PCR）可以用于检测细胞因子的mRNA水平。
通过提取RNA并进行反转录，然后使用PCR扩增目标基因的cDNA，可以定量测量细胞因子的mRNA水平。
5. 蛋白质芯片：-蛋白质芯片是一种高通量的技术，可以同时检测多个蛋白质。
对于细胞因子的检测，可以使用蛋白质芯片，其中芯片上包含有多个针对不同细胞因子的抗体点阵。
6. 质谱法：-质谱法可以用于细胞因子的定量分析。
质谱法可以提供非常精准的分子质量信息，对于检测细胞因子的各种变体和修饰具有优势。
选择适当的方法取决于研究的具体需求、实验条件以及实验室的技术和设备水平。
在进行实验前，最好参考相关文献和专业手册，以确保所选方法的可靠性和适用性。
流式细胞术检测细胞内细胞因子的研究进展
流式细胞术检测细胞内细胞因子的研究进展【摘要】：细胞因子具有调节细胞生长、分化成熟、功能维持、调节免疫应答、参与炎症反应、创伤愈合和肿瘤消长等多种生物学功能。
因此，细胞因子的研究成果为临床上预防、诊断、治疗疾病提供了科学基础，特别是利用细胞因子治疗肿瘤、感染、造血功能障碍、自身免疫性疾病等，具有非常广阔的应用前景[1]。
随着细胞表面标记及胞内细胞因子标记流式细胞技术的出现，使对胞内细胞因子的研究推向了一个新的阶段。
流式细胞术也成为了检测单细胞水平细胞因子表达能力的重要检测方法。
本文针对流式细胞术在胞内细胞因子检测中的研究进展作一综述。
【关键词】：流式细胞术；细胞内；细胞因子；检测技术引言：细胞因子(cytokine，CK)是由多种组织细胞(主要为免疫细胞)所合成和分泌的小分子多肽或糖蛋白，能介导细胞之间的相互作用，并在抵抗外来病原及维持机体内环境平衡中起到重要作用。
细胞因子的检测方法一般分为生物学测定法、分子生物学测定法及免疫学测定法。
而目前用于检测单个细胞特定细胞因子表达的手段则包括：多参数流式细胞术，酶联免疫斑点法ELISPOT[2]、原位杂交、免疫细胞化学、限制性稀释分析（limiting dilution analysis，LDA）和单细胞PCR等生物分析技术。
相较于其它的检测方法，流式细胞术在细胞内细胞因子的检测上具有高效、简便、适应性广等优势。
一、流式细胞术的概述流式细胞术(flow cytometry，FCM)是一种能够对单个细胞或生物微颗粒的生物学性质进行定量分析和分选的检测手段，具有快速、高精度、高准确性、多参数和高通量等优点，是目前先进的细胞定量分析技术之一。
FCM能够快速分析单个细胞或粒子的多种特性，既可以定性，也可以定量，尤其适用于大量样品检测，已在临床检验工作中得到广泛应用。
流式细胞仪（fluorescenceactivated cell sorter，FACS）的检测分析已涉及到细胞生物学、免疫学、肿瘤学、遗传学、血液学、微生物学等学科。
细胞因子 化学发光法 流式细胞法
细胞因子化学发光法流式细胞法
细胞因子的免疫学测定方法包括ELISA法、流式细胞仪法和酶联免疫斑点试验法等。
以下是这三种方法的介绍：
- ELISA法：具有特异、简便、易于标准化等优点，可同时检测大量标本。
其缺点是敏感性偏低，不能判断细胞因子的生物学活性。
- 流式细胞仪法：主要用于细胞内细胞因子和细胞表面黏附分子的检测，能简单、快速地进行单个细胞水平的细胞因子或黏附因子的检测，精确判断不同细胞亚群的细胞因子和膜分子的表达情况。
- 酶联免疫斑点试验法：便于观察和计数分泌细胞因子的细胞，一个斑点代表一个细胞因子分泌细胞，斑点的颜色深浅程度与细胞分泌的细胞因子量相关。
在选择细胞因子测定方法时，需要根据实验目的和条件进行选择。
如果需要同时检测大量样本，ELISA法可能更为合适；如果需要精确判断不同细胞亚群的细胞因子和膜分子的表达情况，流式细胞仪法可能更为适合。
细胞内因子的流式检测(共10张PPT)
所需试剂
1、细胞表面染色用的荧光标记的单抗试剂 如CD3、CD4、CD8、CD25等
2、荧光标记的细胞因子抗体： 如IFN-g、TNF-a、IL-2、IL-4等
3、溶血素：裂解红细胞
4、激活剂：
如PMA、Ionomycin，可以刺激T细胞活化并分泌细胞因子
所需试剂
5、阻断剂
67、、胞固破内定膜固，剂剂定另的一目方MB％的面roen皂在避fee甙于n免lsd、通细iinn％过胞-A蛋表(B白面F的的A抗)交原联丢和失变。性一方面使细胞因子固定在细 刺阴固血②，使如如下一1如固阴刺黑如3③的使M选安 刺荧①纯简黑一② ，使一标、 、o激影定样激过用I果调般C定影激色不同背用择全激光F化便色般激过用般本Fn细溶cDNe细 部 的 在 活 期 适 用 影 使 的 部 细 代 能 型 景 适 合 ：细 素 I： 代 使 活期 适 使 处受g3n胞血-或g胞分目8对，当C响用、目分胞表在对染当适减 胞的无表用对 ，当用理s体、小表素iDn血（代的照制细分含C的代（的8照色细的少 （选需的含照 制细含：阻4T时面小：D清P表在：备胞做析1在表P是：。胞对样 P择组是1： 备胞4避N断4内因内％染时裂％%MMM。F的于激不表。于的未使表照本 ：织未激 不表免表、：-的AAA分色之解皂皂a，子是通活当面通是使用面：处 检培使活 当面使C面使、、、、一多析用内红甙甙D同过对或阻过同用与阻为理 测养用对 或阻用标用III以I一阻 将8ooo聚结，的检细、、L般型蛋照溶断蛋型破荧断保与 相，破照 溶断络、记nnn试-甲2超 荧 测 胞％ ％ooo利断般细合对白使剂试白对膜光试证生对可膜使剂试合C，、剂mmm使醛过光，NNDyyy照的用污剂的照剂标剂结物 低以剂用 污剂钙由I于阻高aa使L胞。2Pccc用标应8NN-iii5染交细染，交染的记，合源 表全的细 染，的于断小Bnnn4准等记将22尔、、、等S用膜含色联胞，减联色染抗减的性 达血染胞 ，减抗多F时的的溶的真cBBB确基结和表需少和结色体少真污 细分色表 需少凝数会HH受含1穿FFF液单空aaAAA果变面制非变果结相非是染 胞析结面 制非剂病导体检体nn抗采）））4孔kk；性表备特性；果同特和因，果表 备特，人致可ss%试血测介溶溶一达新异一；来异可子无；达 新异如的活以，的剂管液液方鲜性方源性靠如需鲜性CCCA细性导有水CDDD以多//面刺的面、的性分刺的I的效HHLD胞646的平-BB9使激背使相背，离激背9抗与损4减利聚室来 来BB时产转细剂景细同景至剂景原PE失少SS温评评B，于甲D胞重染胞标染少重染会，非生M运T放价价应因新色因记色应新色因A一C特N荧醛置激激细，选作a子实，子、，该实，P般异。活活MN光因P用固验保固相保设验保胞细用荧2BA与与为P定。证定同证置。证胞的标S光因E，否否它溶在结在剂结以结或因激染，，记们子H使细果细量果下果A子活色液a如如会P胞的胞和的对的阳的而的，n得C果果限k内准内亚准照准性标有在未未能细s刺制，确，型确：确细记不小溶达达钙力另性另的性性胞激胞；同鼠到到依液一一免会程可。细CC因赖方方疫减度以DD/性胞面面球66子少的H用99激B避避蛋期期5下纯表抗B%活免免白望望调化S。达过细细，体的的，的程胞胞用的水水所抗进，表表于平平以小细推入面面消，，培鼠荐胞抗 抗 除则则养的细用原原由激激时C因肝D胞丢丢于活活间1子素失失抗步步不6内钠/。。体聚3骤骤能2。，非出出太，集特了了长在与在异问问，人相性题题4可胞-结6，，以应小浆合某某用时的到内一一过为细试试量细质宜胞剂剂的，胞网表可可同否面能能种则而失失无C产活活关D生4
流式检测细胞因子实验步骤
流式检测细胞因子实验步骤嘿，咱今儿个就来讲讲流式检测细胞因子实验步骤哈！这可是个挺有意思的事儿呢。
首先呢，你得把要检测的细胞给准备好呀。
这就好比要做饭得先有食材一样，细胞就是咱这实验的“主角”呢。
得让它们乖乖地待在那儿，等着咱来摆弄。
然后呢，就是给细胞加上各种试剂啦。
这就像给菜加调料一样，得恰到好处，不然味道可就不对啦。
不同的试剂有不同的作用，可不能加错咯。
接着，就是让细胞和试剂好好地反应反应。
这时候可不能着急，得给它们足够的时间，就像炖肉得小火慢炖才能入味儿一样。
之后呢，把处理好的细胞放到流式细胞仪里去。
嘿，这流式细胞仪就像是个神奇的“眼睛”，能看出细胞的各种小秘密呢。
在这过程中，可得仔细操作呀，就像走钢丝一样，得小心翼翼的。
一个不小心，可能数据就不准确啦。
等仪器检测完了，就到了分析数据的时候啦。
这可需要你有一双“火眼金睛”，能从那些密密麻麻的数据里看出门道来。
你想想看，这细胞因子就像是细胞之间的“悄悄话”，咱通过这个实验就是要去偷听它们在说啥呢。
这多有趣呀！做这个实验，就像是搭积木一样，一步一步都得稳稳当当的。
要是有一步没弄好，那可能整个“大楼”就塌啦。
所以呀，做流式检测细胞因子实验可不能马虎，得认真对待每一个步骤。
只有这样，才能得到准确可靠的结果呢。
这可不是闹着玩的哟！咱得为科学负责，为自己的实验负责呀！你说是不是这个理儿呢？反正我觉得是这么回事儿！好啦，就说到这儿吧，希望你做实验的时候顺顺利利的哟！。
流式胞内细胞因子检测
流式胞内细胞因子检测流式胞内细胞因子检测是一种用于研究细胞因子在单个细胞水平上的表达和分泌的技术。
细胞因子是一类产生于免疫细胞和其他细胞类型中的小分子蛋白质，对于细胞的发育、增殖、分化和功能调节具有重要作用。
流式胞内细胞因子检测可以帮助科研人员了解细胞因子的表达模式、功能和调控机制，从而深入研究细胞免疫学、炎症反应、感染和免疫相关疾病等领域。
流式胞内细胞因子检测的原理是利用单克隆抗体与特定细胞因子结合，然后使用荧光标记的二抗检测这种结合。
首先，需要选取合适的抗体对细胞因子进行检测。
抗体通常选择单克隆抗体，因为其高度特异性和亲和性。
对于胞内细胞因子的检测，首先需要破坏细胞膜，使细胞内的细胞因子释放到胞外液中。
一般来说，可以通过细胞固定和渗透化处理来实现这一步骤。
接着，使用标记有荧光染料的二抗与细胞因子结合，产生荧光信号。
最后，使用流式细胞仪对细胞进行分析，并得到细胞因子的表达和分泌水平。
流式胞内细胞因子检测的优势之一是可以在单个细胞水平上进行分析。
通过研究单个细胞的细胞因子表达水平，可以得到更准确、具体的结果，避免了整体细胞群体的平均值的混淆。
此外，流式胞内细胞因子检测还可以同时分析多种不同细胞因子的表达和分泌水平，可以全面了解细胞因子的调控网络。
另外，流式胞内细胞因子检测还具有高灵敏度和高速度的特点，可以快速得到结果，并且对于微量样品的检测也有很好的表现。
流式胞内细胞因子检测在多个研究领域发挥了重要作用。
在免疫学领域，可以通过检测不同类型免疫细胞中细胞因子的表达水平，了解它们在免疫应答中的作用和调控机制。
在炎症反应研究中，可以检测炎症细胞中细胞因子的表达水平，从而了解炎症反应的机制，并寻找调控炎症的目标。
此外，流式胞内细胞因子检测还可以应用于感染和免疫相关疾病的研究，帮助科研人员了解疾病的发病机制和炎症信号通路。
然而，流式胞内细胞因子检测也存在一些局限性和挑战。
首先，流式胞内细胞因子检测需要选择合适的抗体对特定细胞因子进行检测。
细胞因子流式
细胞因子流式
细胞因子流式是一种检测细胞因子表达水平、类型、数量和功能的
高通量技术。
它是基于细胞分析仪原理的一种技术，可以将多种细胞
因子同时分析，从而获得更为全面和准确的信息。
细胞因子是一类介导细胞间信号传递的小分子蛋白质。
它们在机体免疫、炎症、发育和修复过程中发挥重要的生物学功能。
目前已知的细
胞因子有多种，包括促炎症因子、细胞生长因子、趋化因子等。
细胞因子流式技术主要通过使用荧光标记的单克隆抗体识别和检测不
同种类的细胞因子。
利用流式细胞仪的精细检测能力，可以实现同时
检测多种不同种类的细胞因子。
细胞因子流式技术的优点在于快速、高通量、准确、方便。
它可以用
于研究免疫细胞在病毒感染、恶性肿瘤、炎症和自身免疫性疾病等多
种疾病中的免疫调节机制。
同时，它还可以帮助研究人员快速发现新
的免疫调节标记并开发新的治疗方法。
除此之外，细胞因子流式技术还可应用于药物筛选、免疫细胞疗法、
临床诊断等多个领域。
它在新药开发、免疫治疗和疾病诊断中的应用
前景非常广阔。
总的来说，细胞因子流式技术在生命科学领域中具有重要的应用价值。
它的应用不仅可以促进我们对于细胞因子在生物学过程中的作用机制
的深入理解，而且可以在实际应用中为疾病的防治和药物开发做出重要的贡献。
流式细胞术检测胞内细胞因子的经验分析
流式细胞术检测胞内细胞因子的经验分析颜彩玲;张慧;周瑞祥【摘要】目的探讨流式细胞术检测胞内细胞因子的注意事项.方法制备小鼠脾脏淋巴细胞悬液.采用细胞表面抗原CD4、CD25及细胞核内因子FOXP3染色检测调节T细胞,胞内因子TNF-α的检测采用PMA/Iono-mycin,anti-CD3/CD28,PMA/Ionomycin与anti-CD3/CD28联合3种方案进行刺激,比较不同刺激条件下TNF-α胞内因子的表达情况,培养后各组细胞悬液采用固定破膜处理技术进行细胞表面抗原CD3、CD4及细胞内因子TNF-α染色.结果脾脏淋巴细胞悬液制备中研磨、裂解红细胞及染色过程中破膜等操作的不当,均导致前向/侧向(FSC/SSC)点图中目的细胞群模糊不清,从而影响后续分析.新鲜脾脏淋巴细胞得率、CD3+T淋巴细胞得率及TNF-α表达率与冻存的脾脏各类细胞比较,差别无统计学意义(P>0.05).胞内因子TNF-α检测结果显示,刺激组PMA/Ionomycin以及anti-CD3/CD28表达率显著高于未刺激组(P<0.05),PMA/Ionomycin与anti-CD3/CD28联合刺激组的表达率也显著高于未刺激组和独立刺激组(P<0.05).结论流式细胞术胞内细胞因子的检测有很多影响因素,包括脾脏细胞悬液制备中的研磨、裂解红细胞操作,染色处理过程中的破膜、固定,上机检测过程中补偿的调节、对照的设置等均影响实验结果,检测前应注意摸索选择适合待测胞内因子的测定条件.%Objective To investigate factors that may affect the detection of intracellular cytokines with flow cytometry . Methods Splenocytes from mice were disaggregated , and regulatory T cells (Treg) were detected by staining of CD4 ,CD25 ,and intranuclear transcription factor FOXP3 . Forthe detection of TNF-α,splenocytes were stimulated withPMA/Ionomycin ,anti-CD3/CD28 or PMA/Ionomy-cin plus anti-CD3/CD28 ,respectively . Following activation ,the cells were stained with anti-CD3 APC and anti-CD4 FITC ,then intracellularly stained to detect TNF-α after fixation and permeabilization . Controls were designed for both experiments . Results The improper operations in the grinding ,lysing erythrocytes ,fixing and perming the cells all leaded to indistinct target cells of interest in the FSC /SSC dot plots ,which affected the subsequent analysis . There were no significant differences in the percentages of lymphocytes ,CD3+ T lymphocytes ,and TNF-α p roducing cells between the fresh and frozen samples (P>0 .05) . Expression of TNF-αin cells stimulated by PMA/Ionomycin ,anti-CD3/CD28 ,or combined stimulation groups were significantly higher than controls (P<0 .05) . Conclusion Many factors may af-fect the detection of intracellular cytokines by flow cytometry ,including the spleen ,lysing erythrocytes in the preparation of splenocytes suspension ,fixing and perming the cells duringdyeing ,adjusting the com-pensation values ,designing controlled trials and so on . Therefore ,attentions should be paid to explore and select the suitable conditions for studying intracellular factors before testing .【期刊名称】《福建医科大学学报》【年(卷),期】2017(051)005【总页数】8页(P303-310)【关键词】流式细胞术;细胞因子类;小鼠【作者】颜彩玲;张慧;周瑞祥【作者单位】福建医科大学基础医学院 ,福州 350122;福建医科大学新药安全性评价中心,福州 350122;福建医科大学基础医学院 ,福州 350122【正文语种】中文【中图分类】R332;R341.1;R392.21;R977.6辅助性T淋巴细胞(T helper, Th)是人体内免疫系统的重要组成部分。
细胞因子12项流式
细胞因子12项流式细胞因子12项流式分析是一种常用的实验方法，用于研究细胞因子在免疫系统中的作用。
细胞因子是一类能够调节免疫反应的蛋白质分子，它们在细胞间传递信号，调控免疫细胞的活性和功能。
通过对细胞因子的流式分析，我们可以了解细胞因子的表达水平、分泌情况以及与其他细胞因子的相互作用。
在细胞因子12项流式分析中，我们通常会选择一些与免疫反应密切相关的细胞因子进行检测。
这些细胞因子包括肿瘤坏死因子(TNF)、干扰素(IFN)、白细胞介素(IL)等。
通过分析这些细胞因子的表达情况，我们可以了解机体在免疫应答中的状态和调控机制。
在进行细胞因子12项流式分析时，我们首先需要准备样本。
通常，我们会选择外周血单个核细胞(PBMC)作为样本来源。
接着，我们需要对样本进行处理，如离心、洗涤等，以获得单个核细胞的悬浮液。
然后，我们会使用特定的抗体标记细胞因子，并利用流式细胞仪进行检测。
流式细胞仪能够对单个细胞进行高通量的检测，通过激光的照射和荧光信号的捕获，可以得到细胞因子的表达水平信息。
细胞因子12项流式分析的结果可以提供重要的信息，帮助我们了解免疫系统的状态和功能。
例如，如果某个细胞因子的表达水平显著增加，可能表明机体正在经历免疫应答，如感染或炎症反应。
而如果某个细胞因子的表达水平降低，可能意味着机体的免疫功能受到抑制或紊乱。
通过对细胞因子的分析，我们可以更好地了解免疫系统的调控机制，为疾病的诊断和治疗提供依据。
细胞因子12项流式分析是一种重要的实验方法，用于研究细胞因子在免疫系统中的作用。
通过对细胞因子的检测和分析，我们可以了解免疫系统的状态和功能，为疾病的诊断和治疗提供依据。
这一技术的应用使我们能够更好地了解免疫系统，并为人类的健康提供保障。
流式胞内细胞因子检测
流式胞内细胞因子检测I.导言单细胞胞内细胞因子分析方法在持续不断改进中，分析技术包括ELISPOT，原位杂交(in situ hybridization)，免疫组织化学(immunohistochemistry)，有限稀释分析和单细胞PCR等。
相比较流式细胞术是一种强大的分析技术，可以同时分析单个细胞的多个参数，包括大小和粒度，以及由荧光抗体表征的表面和细胞内标记物的表达。
胞内细胞因子和趋化因子对应的荧光标记单克隆抗体应用已经非常成熟，也适用于混合细胞群内胞内染色和多色分析。
表面和胞内相结合的多色免疫荧光染色提供了一种高分辨率方法，用于鉴定表达特定细胞因子的细胞的性质和频率。
已经有非常多的应用案例如细胞因子表达受限制的（如，Th4与Th2样）或不受限制的（如，Th0）各种细胞类型的分析。
除了能够同时对单个细胞进行高特异性和高灵敏的多个参数同时测量外，该方法还能够快速收集大量细胞信息，进行统计学意义上的分析。
胞内细胞因子的染色取决于细胞因子特异性单克隆抗体的鉴定，及其与固定-透化过程的相容性。
已经报道了使用多聚甲醛固定和用去污剂皂苷对细胞膜透化的组合的最佳细胞内细胞因子染色。
多聚甲醛固定允许保持细胞形态和细胞内抗原性，同时还使细胞能够承受去污剂的透化作用。
皂苷的膜透化使细胞因子特异性单克隆抗体穿透内质网和高尔基体的细胞膜，胞质溶胶和膜。
细胞因子染色的关键参数包括：细胞类型和激活方案-活化后细胞收获的时间-细胞活化过程中包含蛋白质转运抑制剂-和抗细胞因子抗体的选择等。
II.一般方法A.刺激细胞已经报道了各种用于刺激细胞产生细胞因子的体外方法。
多克隆活化剂包括有：佛波酯和钙离子载体；植物血凝素;葡萄球菌肠毒素B；和针对TCR/CD3复合物亚基的单克隆抗体（有或没有针对共刺激受体如CD28的抗体）。
注意：据报道，单独使用PMA进行细胞活化会导致小鼠T细胞表面CD4表达的瞬时丧失；用PMA和钙离子载体一起活化细胞会引起CD4表达的更大和更持久的降低，以及小鼠胸腺细胞、小鼠和人外周T淋巴细胞中CD8表达的降低。
细胞因子12项流式
细胞因子12项流式全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：流式细胞术是一种用于检测和鉴定细胞表面和内部分子的方法，现已广泛用于生物学研究和临床诊断中。
细胞因子检测是流式细胞术中的重要应用之一，可以用来分析细胞因子在机体免疫调节、炎症反应等生理过程中的作用及变化。
细胞因子是一类具有调控和传递信息功能的蛋白质，可以通过刺激和调节免疫细胞的活性，对机体的免疫和炎症反应起着重要的调节作用。
在流式细胞术中，检测细胞因子可以帮助科研人员了解细胞因子在免疫调节、炎症反应等生理过程中的重要作用，为相关研究提供重要的数据支持。
在细胞因子检测的研究中，细胞因子12项流式检测是一种常用的方法。
这种方法通过检测细胞因子的表达量和活性水平，可以快速、准确地分析细胞因子在不同生理状态下的变化，为相关研究提供重要的数据支持。
细胞因子12项流式检测主要包括IL-1α、IL-1β、IL-2、IL-4、IL-6、IL-10、IFN-γ、TNF-α、GM-CSF、M-CSF、G-CSF和RANTES等12种细胞因子的检测，可以全面地了解细胞因子在免疫和炎症反应中的作用及变化。
细胞因子12项流式检测的原理是利用特异性荧光标记的单抗与细胞因子结合，通过流式细胞仪检测荧光信号的强度来确定细胞因子在样本中的表达量。
在细胞因子12项流式检测中，不仅可以检测单个细胞因子的表达量，还可以同时检测多种细胞因子的表达情况，从而全面了解细胞因子的作用和变化。
通过细胞因子12项流式检测，科研人员可以更加深入地研究细胞因子在免疫调节、炎症反应等生理过程中的作用机制，为相关疾病的预防和治疗提供重要的参考依据。
细胞因子12项流式检测在临床诊断中也具有重要的应用价值。
通过检测细胞因子的表达情况，可以及时识别疾病的发展和变化，为临床诊断和治疗提供重要的参考。
通过检测炎症因子的表达情况，可以及时评估炎症反应的程度和病情的进展，为炎症性疾病的诊断和治疗提供重要的参考。
细胞因子12项流式检测还可以用于评估免疫功能的变化，指导免疫治疗的选择和调整，为免疫相关疾病的诊断和治疗提供重要的参考依据。
细胞因子检测方法
细胞因子检测方法
细胞因子是一种介导细胞间相互作用的小分子信号物质，具有在机体免疫、炎性反应、生物钟同步、细胞分化、生殖发育等方面的重要功能。
因此，细胞因子的检测对于了解疾病发生、发展机制以及药物治疗的疗效等方面具有重要意义。
以下是几种常见的细胞因子检测方法：
1. 酶联免疫吸附试验(ELISA)：该方法利用特异性抗体与细胞因子结合，通过酶标记测定其浓度。
具有灵敏度高、特异性好、操作简便等优点，是目前最常用的检测方法。
2. 流式细胞术：该方法利用荧光标记的特异性单克隆抗体对细胞因子进行检测，可以同时检测多种细胞因子，但操作较复杂，需要较高的技术水平。
3. 放射免疫分析(RIA)：该方法利用放射性同位素标记的抗体与细胞因子结合并通过放射检测器测定放射性计数率来检测其浓度，具有高灵敏度和高特异性，但需要操作较为繁琐，使用范围较窄。
4. 生物传感器检测法：该方法利用细胞因子与生物传感器相互作用后产生电化学信号来进行检测，具有快速、灵敏度高、实时检测等优点，但需要设计和构建生物传感器。
5. 质谱法检测：该方法利用质谱仪检测分子的质量和分子类别，可以对多种细
胞因子同时进行检测，但需要较为昂贵的设备和较高的技术水平。
总之，选择适宜的细胞因子检测方法需要考虑实验室设备、技术水平、检测样本和需要检测的细胞因子等多个因素。
血液流式细胞术检测细胞因子方法
血液流式细胞术检测细胞因子方法
血液流式细胞术是一种用于分析和鉴定血液中不同类型细胞的高效技术。
在医学领域，它被广泛应用于研究和临床诊断中。
近年来，血液流式细胞术也被用于检测和分析细胞因子，这对于研究免疫反应、炎症和其他疾病过程具有重要意义。
细胞因子是一类分泌性蛋白质，它们在细胞间传递信号，调节免疫反应、细胞增殖和分化等生物学过程。
通过血液流式细胞术检测细胞因子，可以帮助科研人员和临床医生更好地理解细胞因子在疾病发生发展中的作用，为疾病的诊断和治疗提供重要信息。
血液流式细胞术检测细胞因子的方法主要包括以下几个步骤，首先，通过特定的抗体对血液样本中的细胞进行标记，这些抗体可以与目标细胞因子结合。
然后，利用流式细胞仪对标记的细胞进行检测和分析，流式细胞仪可以测量细胞的大小、形状、表面标记物和内部成分，从而确定细胞中细胞因子的含量和分布。
最后，利用专业的数据分析软件对流式细胞仪获取的数据进行处理和解读，得出细胞因子的定量和定性结果。
血液流式细胞术检测细胞因子方法具有高灵敏度、高通量和多
参数分析的优势，能够同时检测多种细胞因子，为疾病的研究和诊断提供全面的信息。
随着技术的不断发展和完善，血液流式细胞术检测细胞因子的应用范围将会更加广泛，为医学研究和临床诊断带来新的突破和进展。
细胞内细胞因子的流式检测讲解
刺激激活：检测不同的细胞因子根据情况选择不同的刺激剂组合和
刺激时间，以保证最佳的检测效果。比如，要检测 IFN-γ 则可选择 PMA 和Ionomycin 同时刺激；如果用 CD4 做表面标记，由于多数病人的
CD4抗原会因PMA的激活而有不同程度的下调，所以培养时间不能太长，
4-6小时为宜，否则CD4下调影响分析。
当或溶剂污染，需制备新鲜刺激剂重新实验。 ③同型对照 ：使用与荧光标记抗体相同来源、相同标记、相同剂量和亚型的
免疫球蛋白，用于消除由于抗体非特异性结合到细胞表减少非特异性的背景染色，保证结
果的准确性
① Fc 受体阻断 ： 使用试剂阻断 Fc 受体可以有效减少非特异荧光染色，在
小鼠可以用纯化的抗小鼠的CD16/32，在人可以用过量的同种无关纯化Ig 或血清。
② 表面结合的细胞因子的阻断 ：使用相同克隆的纯化的细胞因子抗体，
阻断细胞表面结合的细胞因子，阻断由于荧光抗体与表面细胞因子结合 引起的背景。
荧光素的选择： 检测相对低表达细胞因子如 IL-4时，应选用PE或APC
Monensin Brefeldin-A(BFA) 6、固定剂
固定的目的在于通过蛋白的交联和变性一方面使细胞因子固定在 细胞内，另一方面避免细胞表面抗原丢失。 一般使用含4%的多聚甲醛PBS溶液
7、破膜剂
将细胞膜穿孔，以利于荧光标记的细胞因子抗体进入细胞内，与 相应的细胞因子结合。 一般使用含1％皂甙、0.05％NaN2的Hanks溶液/HBBS
标记；单检测某一细胞因子时最好也选用PE或APC标记
细胞内IL-1β的细胞内染色结果
未使用阻断剂
使用阻断剂
阴影部分代表的是同型对照染色结果； 黑色代表的是未使用破膜剂的染色 结果； 灰色代表的是使用破膜剂的染色结 果。
检测细胞因子的方法
检测细胞因子的方法
检测细胞因子的方法有多种，以下是常用的几种方法：
1. 酶联免疫吸附测定法（ELISA）：ELISA方法根据酶标记抗体与目标细胞因子的特异性结合来检测细胞因子的浓度。
这种方法广泛应用于研究和临床实验室中。
2. 流式细胞术（Flow cytometry）：流式细胞术可以通过标记抗体与细胞因子结合来分析和计数特定细胞子群。
这种方法可以定量分析细胞因子的分布和表达水平。
3. 实时荧光定量PCR法（Real-time PCR）：通过实时荧光定量PCR方法可以检测目标细胞因子mRNA的表达水平。
这种方法可以快速、准确地分析细胞因子的转录水平。
4. 细胞因子芯片（Cytokine array）：细胞因子芯片是一种高通量方法，可以在同一实验中同时检测多个细胞因子。
这种方法可以用来研究细胞因子的分泌模式和相互作用。
5. 免疫组织化学染色法（Immunohistochemistry）：免疫组织化学染色法可以在组织切片中检测细胞因子的表达情况。
这种方法可以定位细胞因子在组织中的分布和定量分析其表达水平。
检测细胞因子的方法
检测细胞因子的方法
检测细胞因子的方法有很多种。
下面是一些常用的方法：
1. 酶联免疫吸附试验（ELISA）：ELISA是一种常用的检测细胞因子的方法。
它通过将特异性抗体固定在试验板上，然后将待测样品加入到板上，利用特异抗体与待测细胞因子结合，再加入特异性检测抗体和辣根过氧化物酶（HRP）标记的二抗，最后添加底物，测定光密度来确定细胞因子的浓度。
2. 流式细胞仪：流式细胞仪可以用来检测细胞因子在单个细胞水平上的表达情况。
它通过标记特定的细胞因子抗体或标记分子，在细胞水槽中运行待测细胞悬液，然后通过激光束照射细胞，测量细胞因子的荧光强度来确定其表达水平。
3. 实时荧光定量PCR（qPCR）：qPCR可以用来测定细胞因子的mRNA水平。
它通过与待测细胞因子的mRNA序列特异性杂交，然后使用荧光探针或染料来检测PCR扩增产物的累积量，进而确定细胞因子的mRNA水平。
4. 蛋白质芯片：蛋白质芯片是一种高通量检测细胞因子的方法。
通过将已知细胞因子的抗体固定在芯片上的不同点位上，然后将待测细胞因子加入到芯片上进行反应，最后使用荧光标记的二抗来检测反应产物，从而确定细胞因子的浓度。
5. 化学发光：化学发光法可以用于检测细胞因子的浓度。
它通过在反应体系中加入底物，在酶催化下发生发光反应，发光强度与细胞因子的浓度成正比。
需要根据实验要求和资源条件选择合适的方法进行细胞因子的检测。
十二项细胞因子检测（流式法）的临床意义与检验须知
十二项细胞因子检测（流式法）的临床意义与检验须知为提高我院疾病诊断技术水平，从即日起，检验科利用流式高通量检测技术开展十二项免疫功能相关细胞因子联合检测项目。
本项目将为感染、肿瘤、自身免疫病、妇产科和生殖医学科相关疾病等多种临床疾病的诊治提供重要依据，为前来医院就诊的临床患者提供更为优质全面的检验服务。
细胞因子是由免疫细胞（如单核、巨噬细胞、T细胞、B细胞、NK细胞等）及某些非免疫细胞（内皮细胞、表皮细胞、纤维母细胞等）经刺激而合成、分泌的一类具有广泛生物学活性的小分子蛋白质，参与机体免疫反应和炎症反应，包括白介素、干扰素、肿瘤坏死因子等。
不同患者在感染过程中反应不同，如感染流感后，机体免疫反应过强，促炎性细胞因子过度释放，引起严重免疫病理损伤称之为“细胞因子风暴”。
“细胞因子风暴”的目标是清除病毒，但也可能导致患者自身的机体损伤。
在流感发展成重症前，采取临床干预至关重要，因此需监测细胞因子，及早识别并监测过度炎症反应，能够为临床的诊疗提供有力帮助。
细胞因子监测范围主要包括感染、肿瘤、自身免疫性疾病、手足口病、胰腺炎或不明原因发热患者；抗生素、免疫调节剂、激素用药前、用药后；手术后；ICU患者等。
一、适用科室：肿瘤科、ICU、呼吸科、感染科、风湿免疫科、血液科、器官移植科、放化疗科、外科、皮肤科、肾内科、眼科、妇科等科室均可以开展，其结果可以为疾病的辅助诊断、指导用药、监测疗效及预后提供参考。
细胞因子12项包括：IL-1β、IL-2、IL-4、IL-5、IL-6、IL-8、IL-10、IL-12p70、IL-17、TNF-α、IFN-γ、IFN-α。
方法学：流式免疫荧光法二、收费标准：513元∕人（甲类医保）三、医嘱：医生工作站直接搜索“细胞因子12项”四、抽血要求及报告时限：1-2ml EDTA抗凝血浆（紫管）×1管，无需空腹，随时送检，当日或次日下午4点发出检验报告。
五、临床意义：细胞因子临床意义IL-1β可促进成纤维细胞增殖和胶原合成，参与纤维化；对胰岛β细胞有毒性，与Ⅰ型糖尿病有关；可刺激神经胶质细胞增生，形成瘢痕，与癫痫发病有关；有抗肿瘤作用，能协同IL-2、IFN-γ诱导CTL和NK细胞的杀伤活；与自身免疫病和抑制排斥有关。
细胞因子流式
细胞因子流式
细胞因子是一类由免疫细胞或其他细胞分泌的蛋白质或肽类物质，它们可以在体内通过自分泌或相互作用的方式来调节生物体免疫系统和炎症反应的功能。
流式细胞仪和细胞因子分析技术已经成为现代免疫学和癌症研究中必不可少的实验手段。
以下是细胞因子流式分析相关的参考内容：
1. 细胞因子流式分析技术
流式细胞仪在细胞因子分析中的应用越来越广泛。
通过标记各种细胞因子特异性荧光抗体，可以用流式细胞仪分析不同细胞中的细胞因子产生和释放情况。
2. 常见的细胞因子
常见的细胞因子包括：肿瘤坏死因子（TNF）、白介素（IL）
家族、干扰素（IFN）、肿瘤生长因子（TGF）、趋化因子、
生长因子等。
3. 细胞因子水平的变化
某些疾病和炎症状态会导致细胞因子的水平升高或降低。
例如，在许多癌症患者中，IL-6水平会升高，而在某些炎症疾病中，IL-10水平会降低。
4. 流式细胞仪在分析细胞因子水平的优点
流式细胞仪在细胞因子分析中的优势包括快速、精确、可靠、高通量、多参数同时检测等。
5. 细胞因子在癌症免疫治疗中的作用
很多癌症病人免疫系统受损，细胞因子在提高免疫功能和炎症反应方面起到了关键作用。
在免疫治疗中，细胞因子可以用来激活T细胞，增强肿瘤免疫杀伤力。
6. 细胞因子检测在预测疾病进程中的应用
细胞因子水平的变化可以作为一种预测疾病进程和治疗效果的监测手段。
通过定期检测不同时间点的细胞因子水平，可以有效评估疾病的进展和治疗效果。
流式检测细胞因子原理
流式检测细胞因子原理嘿，朋友们！今天咱来唠唠流式检测细胞因子原理这档子事儿。
你说细胞因子啊，那可真是细胞世界里的小精灵，它们在身体里跑来跑去，传递着各种重要的信号呢！那流式检测就像是个超级侦探，专门来捕捉这些小精灵的踪迹。
想象一下，细胞因子就像是一群调皮的小孩子，在细胞的大游乐场里玩耍。
而流式检测呢，就好比一个厉害的管理员，能准确地把每个孩子都分辨出来，还能知道它们在干啥。
流式检测的原理其实挺有意思的。
它就像是一场精准的筛选比赛。
首先呢，有特殊的抗体，就像一个个小标签，能准确地贴在特定的细胞因子上。
这些抗体带着荧光标记，一闪一闪的，可显眼啦！然后呢，把细胞混悬液放进流式细胞仪这个大机器里，就像把孩子们放进一个特别的通道。
细胞们一个一个地通过，那些被抗体标记的细胞因子就会发出独特的荧光信号。
这就好比孩子们身上的标签在闪闪发光。
这时候，流式细胞仪这个厉害的家伙就能把这些荧光信号都捕捉到，然后分析出来，告诉你都有哪些细胞因子，有多少量。
这可太神奇了，不是吗？就好像你一下子能知道游乐场里每个孩子的具体情况一样。
流式检测细胞因子的好处可多了去了。
它能快速地告诉我们身体里的免疫状态啊，炎症反应啊等等。
医生们就像是有了一双火眼金睛，能根据检测结果更准确地诊断疾病，制定治疗方案呢！这难道不厉害吗？而且啊，流式检测还很灵敏呢！哪怕只有一点点细胞因子，它也能揪出来。
这就像一个超级敏锐的小侦探，任何蛛丝马迹都逃不过它的法眼。
咱再想想，如果没有流式检测，那医生们得多头疼啊！就像在黑暗中摸索一样，不知道身体里到底发生了啥。
但有了它，一切都变得清晰明了啦！总之啊，流式检测细胞因子原理就像是一场奇妙的科学之旅。
它让我们能更深入地了解身体这个神秘的世界，为我们的健康保驾护航。
它可真是个了不起的技术，不是吗？大家一定要好好了解了解它呀！。
(完整word版)细胞因子的流式检测
细胞内细胞因子的流式细胞仪检测一、简介随着研究的进展，仅仅对细胞进行定量和活性的检测已不能满足需要。
在单细胞水平研究细胞因子的表达能力对研究细胞因子在疾病中的作用越来越显的重要无比。
目前检测单个细胞特定细胞因子的表达手段包括：ELIspot、原位杂交、免疫细胞化学、限制性稀释分析（limiting dilution analysis，LDA）和单细胞PCR，应用原位杂交技术和免疫组化方法观察细胞因子蛋白表达及mRNA表达可以识别Th1和Th2细胞，此方法可获得较强的细胞内信号，但此方法工作量大、主观性强，难以进行大样本检测，且人肉眼识别能力有很大的局限性，而ELISPOT及单细胞PCR技术，技术性强、劳动强度大，难以进行广泛推广。
随着多标记及胞内细胞因子标记流式细胞技术的出现，使对细胞内细胞因子的研究推向了一个新的阶段。
下面主要对胞内细胞因子流式细胞技术作以介绍。
TH1与TH2(IL－4，IL－5，IL－10)，但这些研究很难外推，因为T细胞克隆与体内T细胞功能相关性还未被揭示。
早期细胞因子表达与细胞功能相关性研究是基于特定克隆细胞的激活。
尽管研究应用T淋巴细胞克隆证明了不同细胞因子的合成，如TH1(IL－2，IFN－ )近来，Jung与Picker采用了monensin、PMA等药物预孵，用Brefeldin(BFA)、Monensin阻断了胞内高尔基体介导的转运的方法使得细胞因子聚集，蓄积，增强细胞因子信号可被流式细胞仪检测。
因为自然状态下，T淋巴细胞产生少量的细胞因子，通常要对T淋巴细胞体外活化进行研究。
在体外刺激过程中，T淋巴细胞产生的细胞因子已释放出来，胞内细胞因子信号较弱，难以进行检测。
这一方法可检测单个细胞内多个细胞因子，并可区分表达特定细胞因子的细胞亚群。
在细胞水平该方法证明了人与鼠的淋巴细胞都存在1型与2型分化，且这些分化在特定细胞因子增强时可被逆转。
且这些研究清楚地证明，只有激活的细胞亚群可以表达细胞因子，静止的正常淋巴细胞(T、B、NK)不能分泌细胞因子。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
细胞内细胞因子的流式细胞仪检测一、简介随着研究的进展，仅仅对细胞进行定量和活性的检测已不能满足需要。
在单细胞水平研究细胞因子的表达能力对研究细胞因子在疾病中的作用越来越显的重要无比。
目前检测单个细胞特定细胞因子的表达手段包括：ELIspot、原位杂交、免疫细胞化学、限制性稀释分析（limiting dilution analysis，LDA）和单细胞PCR，应用原位杂交技术和免疫组化方法观察细胞因子蛋白表达及mRNA表达可以识别Th1和Th2细胞，此方法可获得较强的细胞内信号，但此方法工作量大、主观性强，难以进行大样本检测，且人肉眼识别能力有很大的局限性，而ELISPOT及单细胞PCR技术，技术性强、劳动强度大，难以进行广泛推广。
随着多标记及胞内细胞因子标记流式细胞技术的出现，使对细胞内细胞因子的研究推向了一个新的阶段。
下面主要对胞内细胞因子流式细胞技术作以介绍。
TH1与TH2(IL－4，IL－5，IL－10)，但这些研究很难外推，因为T细胞克隆与体内T细胞功能相关性还未被揭示。
早期细胞因子表达与细胞功能相关性研究是基于特定克隆细胞的激活。
尽管研究应用T淋巴细胞克隆证明了不同细胞因子的合成，如TH1(IL－2，IFN－ )近来，Jung与Picker采用了monensin、PMA等药物预孵，用Brefeldin(BFA)、Monensin阻断了胞内高尔基体介导的转运的方法使得细胞因子聚集，蓄积，增强细胞因子信号可被流式细胞仪检测。
因为自然状态下，T淋巴细胞产生少量的细胞因子，通常要对T淋巴细胞体外活化进行研究。
在体外刺激过程中，T淋巴细胞产生的细胞因子已释放出来，胞内细胞因子信号较弱，难以进行检测。
这一方法可检测单个细胞内多个细胞因子，并可区分表达特定细胞因子的细胞亚群。
在细胞水平该方法证明了人与鼠的淋巴细胞都存在1型与2型分化，且这些分化在特定细胞因子增强时可被逆转。
且这些研究清楚地证明，只有激活的细胞亚群可以表达细胞因子，静止的正常淋巴细胞(T、B、NK)不能分泌细胞因子。
胞内流式分析法是用抗细胞因子抗体与细胞表面或胞内特定亚群标志组合，即可检测不同细胞亚群细胞因子的分泌，同时采用特殊的化学与抗体选择，确保静止与无细胞因子分泌细胞的最小荧光背景。
具有其它方法难以比拟的优点：Ø快速：流式定量检测细胞内细胞因子可在一天内完成，实验流程需6-8小时，实际操作时间为1-2小时，快速简便；Ø简便：无需组织培养，可以全血分析，无需分离PBMCs；Ø灵敏度高：高度灵敏的荧光标记与检测系统；Ø高效：可以在同一个细胞内同时检测两种或更多种细胞因子，也可根据细胞免疫表型区分分泌细胞因子的细胞的亚型，进行多参数相关分析；Ø安全：减少样本处理与生物源性污染Ø接近生物体的分析条件：全血检测保留细胞及生化微环境更准确反映了体内状况。
二、所需仪器1.流式上样管及细胞培养皿或板2.25%CO2，37℃孵箱3. 混匀振荡器4.离心机5.加样器、Tips6.流式细胞仪三、常用的标本类型和处理方法全血：使用肝素钠抗凝的真空采血管采血，不易采用肝素锂、EDTA和ACD抗凝剂，血样在8小时内分析，超过8小时会导致活性的损失，一般细胞因子阳性细胞会减少5%。
如不能在8小时之内检测，应将真空采血管水平室温放置。
自身血浆中外周血单个核细胞(PBMCs)：使用肝素钠抗凝的采血后，分离PBMCs，24小时内分析。
组织培养基中的外周血单个核细胞(PBMCs)：用Ficoll分离PBMCs，将细胞重悬于含10%热灭活胎牛血清(F BS)的RPMI－1640培养基中，调节细胞浓度为2×106细胞/ml。
细胞系与T细胞克隆：调节细胞浓度2×106细胞/mL于新鲜培养基中。
冰冻全血与PBMCs：使用1×红细胞裂解液处理活化的外周血或者PBMCs，用PBS漂洗，并用含1%的BSA及10%的DMSO的PBS重悬，－70℃冻存。
溶化后细胞置于染色管中，加上2～3mL的洗液，离心5分钟后，用破膜剂对细胞进行破膜和染色。
四、所需试剂1、细胞表面染色的荧光标记的单抗试剂依据实验需要选择特殊表面标志CD45圈定所有淋巴细胞CD3 圈定T淋巴细胞CD4 圈定T辅助淋巴细胞亚群CD8 圈定T抑制淋巴细胞亚群CD19/或CD20圈定B淋巴细胞CD56圈定NK淋巴细胞CD14圈定单核细胞2、荧光标记的细胞因子抗体：R&D提供FITC、PE和APC标记的细胞因子抗体3、溶血素：用外周全血检测时需使用溶血素（R&D目录号WL1000用于人或者WL2000用于小鼠；eBioscie nce目录号00-4333）溶解红细胞4、激活剂①Phorbol 12-Myristate 13 Acetate(PMA)（Alexis，目录号ALX-445-004-M001）A.DMSO中调节浓度0.1mg/mLB－20℃储存。
勿反复冻融.分装(20μl)C.每次实验用无菌无叠氮钠PBS 1：100稀释储存液D.PMA终浓度25ng/mL细胞悬液②Ionomycin（Alexis,目录号ALX-450-006-M001）A.于乙醇中配制成浓度0.5mg/mLB.－20℃储存C.每次实验用无菌无叠氮钠PBS 1：10稀释储存液D.细胞悬液.Ionomycin终浓度1g/mL③Staphylococcal enterotoxin B(SEB) (Sigma,Catalog No.S-4881)A.无菌无叠氮钠PBS调节浓度0.5mg/mLB.4℃储存C.细胞悬液.SEB终浓度10μg/mL④CD3：包被在培养板中，在蛋白转运抑制剂存在下活化未稀释的血液细胞⑤CD28：加速不同刺激剂（包括SEB、CD3等）的活化效应，浓度一般为10ug/ml5、阻断剂阻断高尔基体介导的转运作用，使得刺激细胞表达的细胞因子聚集在胞浆内① Brefeldin-A(BFA) （eBioscience，目录号00-4506）A. 于DMSO中调节浓度5mg/mLB).-20℃储存。
勿反复冻融.分装(20 μL)C. 每次实验用无菌无叠氮钠PBS 1：10稀释储存液D .细胞悬液.激活最后4－5小时BFA终浓度10μg/mL.注意：BFA过度孵育会导致细胞活力下降② Monensin （eBioscience，目录号00-4505）6、不含谷氨酰胺的RPMI-16407、固定剂：细胞在体外刺激后需要对细胞进行固定。
固定的目的在于通过蛋白的交联和变性一方面使细胞因子固定在细胞内，另一方面避免细胞表面抗原丢失。
含4%的多聚甲醛PBS溶液（eBioscience，目录号00-8222）8、破膜剂：含1％皂甙、0.05％叠氮化钠的Hanks溶液（HBBS）（eBioscience，目录号00-8333）将细胞膜穿孔，已利于荧光标记的细胞因子抗体进入细胞内，于相应的细胞因子结合9、其它试剂：无菌无叠氮钠PBS，乙醇，含1%多聚甲醛的PBS，4℃储存。
五、细胞培养和刺激的基本方法细胞活化的最终结果是产生细胞因子，根据检测指标和标本的不同，研究人员需要选择不同的刺激剂和刺激时间，以获得最佳的实验结果。
下表提供了检测一些常用细胞因子的推荐的活化方法。
表1、细胞内细胞因子流式检测推荐的阳性对照活化方法为防止细胞内细胞因子分泌到胞外，在培养的最后4-6个小时，需要使用蛋白转运抑制剂 (如3uM monens in，10mg/ml的BFA)方法1: 只使用转染细胞检测方法2: 人的PBMCs使用PMA (10 ng/ml) 和Ionomycin (1 uM) 刺激4-24 小时.方法3: 人的PBMC 使用LPS (0.5 - 1 ug/ml) 刺激24 小时.方法4: 人的PBMCs或者纯化的CD4＋细胞在包被人CD3抗体的培养板中，使用含有重组人的IL-2（10 ng/ ml，目录号202-IL-010）和IL-4（10 ng/ml，目录号204-IL-005）的培养基培养两天；细胞洗涤后在含有重组人IL-2和IL-4的培养基中继续培养2天；最后收获细胞，使用PMA (10 ng/ml) 和Ionomycin (1 uM)刺激6小时方法5: CD4+ T 细胞使用PHA (10 ng/ml) 刺激4 days方法6: T 细胞使用抗CD3 的单抗、抗CD28的单抗和重组人的IL-1b (Lorre, et al., 1994, Clin Immu no Immunopath 70:1)方法7: 使用PMA (50 ng/ml) 和Ionomycin (500 ng/ml)刺激(10 ng/ml) +γ (10 ng/ml，目录号285-IF-100) 刺激2 小时，然后使用IFNγ方法8: PBMCs细胞使用重组人IFN LPS (1 ug/ml) 刺激22小时或者使用相同的方法刺激THP-1 细胞.方法9: EL4 在包被抗小鼠CD3抗体(25 ug/ml) 的培养板中，使用抗CD28 抗体(2 ug/ml) + PMA (5 ng/ ml) + Ionomycin (500 ng/ml) 刺激6小时方法10: CD4＋T细胞在包被小鼠CD3(25 ug/ ml)抗体的培养板中，使用含有抗小鼠的CD28(2 ug/ml)的抗体，重组小鼠的IL-2（10 ng/ml，目录号402-ML-020）和IL-4（50 ng/ml，目录号404-ML-005）的培养基培养两天；然后在含有重组小鼠IL-2和IL-4的培养基中继续培养3天；最后收获细胞，使用PMA(5 ng /ml)、Ionomycin(500 ng/ml)和monensin刺激6小时。
方法11: 小鼠ip巨噬细胞使用Mouse ip 1 ug/ml LPS 刺激24小时方法12: 小鼠脾细胞使用PMA (5 ng/ml)和Ionomycin (500 ng/ml)刺激6小时六、流式检测细胞染色基本过程（以全血为例）1、收获细胞：肝素钠抗凝的静脉血，按1：1与培养基混匀，加刺激剂，同时加蛋白转运抑制剂（参照说明书），混匀后，37℃，5%二氧化碳培养4-6小时2、阻断Fc受体：用于消除非特异性的结合染色①在小鼠，可使用纯化的FcII/III受体的抗体（CD16/32），按照1ug/106细胞的用量，在染色缓冲液中4℃孵育15分钟，PBS清洗后，直接进行下一步染色。
②对于人和大鼠，可直接使用过量的与荧光抗体相同来源和亚型不相关的纯化Ig或者血清进行阻断3、细胞表面染色①加适当的细胞表面染色试剂20L于Falcon管中，加入100L激活后的全血 (细胞浓度维持在2×106/mL) 混匀，室温暗处孵育15分钟；②加入溶血素，室温暗处孵育10分钟。