生物样品制备

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生物样本制备和分析技术

生物样本制备和分析技术

生物样本制备和分析技术生物样本制备技术主要包括样品采集、样品处理和样品保存等过程。

样品采集是关键的第一步,它涉及到从生物体中获取需要研究的样本。

不同的研究目的和样本类型需要采用不同的采集方法。

例如,在分子生物学研究中,可以通过组织切片、细胞悬液或血液采集样本。

在临床诊断中,可以采集血液、尿液、组织活检等样本。

样品处理过程包括样品分离、纯化和浓缩等步骤,旨在提高目标物质的纯度和浓度。

对于细胞和组织样本,可以使用细胞培养、离心、离子交换层析、凝胶过滤等方法进行处理。

对于血液样本,可以通过沉淀、离心、过滤等方法去除杂质,获得血浆或血清。

此外,还可以使用酶解、裂解、超声波处理等方法来破坏细胞结构、释放目标分子。

样品保存是确保样品质量和可靠性的关键步骤。

不同的样品类型需要采用不同的保存方法。

例如,对于细胞和组织样本,可以冻存在液氮中,以保持其活性和稳定性。

对于血液样本,可以使用抗凝剂来阻止血液凝固,并在低温下保存。

此外,还可以使用化学物质如甘露醇、甘油等来保护样品免受冻融和其他不良条件的影响。

在样品制备完成后,接下来就是样品分析技术的应用。

生物样本的分析技术主要包括分子生物学、生物化学、免疫学、生物信息学等多个领域的方法。

其中,分子生物学技术是最常用的方法之一,它包括核酸提取、PCR扩增、基因测序、基因表达分析等。

生物化学技术用于对蛋白质、酶、代谢产物等进行定量和定性分析。

免疫学技术用于检测和鉴定抗体、抗原、细胞因子等分子的存在和表达水平。

而生物信息学技术则用于对生物样品中的大量数据进行分析和解释。

总结起来,生物样本制备和分析技术在生命科学研究中起着关键作用。

它们的应用可以帮助我们了解生物体的结构和功能,揭示疾病的发生机制,发现新的药物和治疗方法。

随着科学技术的不断发展,这些技术也将不断更新和完善,为生物研究和医学领域提供更好的支持。

体内药物分析第三章生物样品与样品制备

体内药物分析第三章生物样品与样品制备
数据记录与审核
建立完善的数据记录与审核制度,确保实验数据的真实性和可追溯性。
效果评价指标设定和持续改进方向
效果评价指标
根据实验目的和要求,设定合理的效果评价指标,如方法回收率、精密度、准确度等,对实验结果进 行客观评价。
持续改进方向
针对实验过程中出现的问题和不足,制定改进措施并持续改进,如优化实验条件、改进操作方法、提 高设备性能等,不断提高体内药物分析的质量和效率。同时,关注新技术、新方法的发展和应用,不 断完善和更新质量保证和质量控制体系。
质量控制样品的使用
使用质量控制样品进行方法验证和日常质量监控,确保实验结果的准 确性和可靠性。
质量控制方法选择及实施过程监控
方法学验证
在建立新的体内药物分析方法时,应进行充分的方法学验证,包括专属性、线性、精密度、准确 度、稳定性等方面的考察,确保方法的可行性和准确性。
过程监控
在实验过程中,采用定期抽查、盲样测试等方式对实验过程进行监控,确保实验操作的规范性和 结果的可靠性。
04 生物样品保存、运输和接 收标准操作流程
保存条件及时限设定原则
保存条件
生物样品应在规定的低温条件下保存,以确保样品的稳定性和防止降解。通常,血浆、血清和尿液等样品应在20°C或更低温度下保存,而一些特殊样品可能需要在-70°C或更低温度下保存。
时限设定
生物样品的保存时限应根据其稳定性和分析物的性质来确定。一般来说,长期保存的样品应在采集后尽快处理并 冻存,以避免分析物的降解或转化。同时,应定期对保存样品进行质量评估,以确保其完整性和可用性。
新型生物样品的保 存与运输
对于细胞和基因等新型生物样 品,同样需要在低温条件下保 存和运输。此外,还应避免反 复冻融和长时间存放,以确保 样品的稳定性和可靠性。

生物样品的采集制备和预处理

生物样品的采集制备和预处理

生物样品的采集制备和预处理生物样品的采集制备和预处理一、生物样品采集1、植物样品的采集(1)采集的植物样品要具有代表性、典型性、适时性。

(2)布点方法常采纳梅花形五点取样法或交叉间隔取样法。

(3)采样方法①采样前应预先准备好采样工具。

②依据实际情况确定样品采样量。

③选择优势莳植物在采样区内按梅花形五点或交叉间隔取样方式采集5-10处的植株混合构成一个代表样品。

④将采好的样品装入布口袋或聚乙烯塑料袋中,贴好标签,并填写采样登记表。

2、动物样品的采集(1)尿的采集定性检测尿液成分时应采集晨尿。

定量检测尿液成分时一般采集24h总排尿量。

(2)血液的采集一般用注射器抽取10mL血样冷藏备用。

常用于分析血液中所含金属毒物及非金属毒物。

(3)毛发和指甲的采集采集和保存较为便利,重要用于汞、砷等含量的测定。

(4)组织和脏器采集二、生物样品的制备对于液体状态的动物样品常无需制备,对动物组织和脏器重要是采纳捣碎的方法制成浆状鲜样备用,而对植物样常依据不怜悯况,利用不同方式进行样品制备。

植物样品的制备(一)平均样的获得四分法、切成块的1/4-1/8混合(二)分析试样的制备1、鲜样2、风干样:60-70摄氏度低温真空干燥箱中烘干(匀浆、小片)3、水分含量测定(100-105摄氏度烘干/真空干燥/低温烘干)三、生物样品的预处理常用的预处理方法有湿法消解法、灰化法、提取、分别和浓缩法等。

1、湿化消解法利用强酸等与生物样品共同煮沸,将样品中有机物分解成二氧化碳和水除去。

常用的消解试剂体系有浓硝酸-高氯酸、浓硝酸-浓硫酸、浓硫酸-过氧化氢等。

2、灰化法利用坩埚或氧燃烧瓶,使样品在高温条件下分解,并用适当的溶液溶解或汲取分解产物,制成分析试液。

3、提取法整个过程包括提取、分别、浓缩三个步骤。

(1)提取应依据样品的特点、待测组分的性质、存在形态和数量、分析方法等因素选择,常用方法有:1、振荡提取法2、组织捣碎提取法3、脂肪提取器提取4、直接球磨提取法(2)分别用提取剂从生物样品中提取欲测组分的同时,不可避开的会将其他相关组分提取出来,因此,在测定之前,还必需将上述杂质分别出去。

初中生物实验操作步骤详解

初中生物实验操作步骤详解

初中生物实验操作步骤详解生物实验操作步骤详解生物实验是初中生物学学习的重要组成部分。

通过实验,学生可以深入了解生命现象的本质和生物学的基本原理。

本文将详细介绍三个常见的初中生物实验操作步骤,包括“观察离心沉淀”、“观察显微镜下的细胞”和“观察植物光合作用”。

实验一:观察离心沉淀步骤一:制备样品首先准备好需要观察的物质样品,这可以是含有悬浮颗粒的液体,如土壤悬浮液或其他生物体组织悬浮液。

步骤二:制备离心管准备两个离心管,一个标注为“上清液”(A管),另一个标注为“沉淀物”(B 管)。

确保离心管干净且无杂质。

步骤三:加入样品将样品小心地加入到A管中,约占据管的一半。

注意不要使液体溢出。

步骤四:离心将A管放入离心机,并设定适当的转速和离心时间。

一般情况下,较大和较重的颗粒沉淀于离心管底部,而较小和较轻的颗粒保持在上清液中。

步骤五:观察结果离心机停止后,取出A管。

观察A管中的上清液,注意上清液是否变清,以及是否有沉淀物。

如果有沉淀物,将A管中的上清液倒入B管中,注意不要将沉淀物倒入B管。

实验二:观察显微镜下的细胞步骤一:制备玻片与载玻片准备一个玻片和一个载玻片。

将一滴水滴在玻片中央,并轻轻放置一个载玻片,使水均匀分布在两个玻片之间。

步骤二:制备样本从植物组织(如洋葱)或动物组织(如叶皮层)中取一小块组织。

用镊子将组织小心地撕成薄片,并将薄片放在玻片上的水滴中。

步骤三:加入染料将一滴鲜碘溶液滴在组织上。

碘溶液可以染色细胞结构,使其更容易观察。

步骤四:观察显微镜下的细胞将制备好的玻片放在显微镜物镜下。

首先用低倍镜观察整个组织片,然后转至高倍或油镜,观察细胞内部结构,例如细胞核、细胞质等。

实验三:观察植物光合作用步骤一:制备植物从室外选择一片绿叶,将其放入一个黑暗的塑料袋中,待10-20分钟。

步骤二:制备样本取出叶片,用刀小心地剪下一片绿叶,并用夹子将其固定在橡胶管上。

步骤三:制备氢氧化钠液将一小段橡胶管与一滴氢氧化钠溶液相连。

sem生物样品制备步骤

sem生物样品制备步骤

sem生物样品制备步骤
SEM(扫描电子显微镜)是一种高分辨率的显微镜,常用于观察生物样品的微观结构。

生物样品制备是SEM观察的关键步骤之一,以下是一般的生物样品制备步骤:
1. 固定样品,首先,生物样品需要被固定以保持其原始结构。

常用的固定剂包括乙醛、戊二醛或glutaraldehyde等。

固定样品的方法可以根据具体的样品类型而有所不同。

2. 脱水,固定后的样品需要被脱水以去除水分,通常使用酒精逐渐替代水分。

这个过程需要逐渐提高酒精浓度,最终将样品置于无水酒精中。

3. 干燥,脱水后的样品需要被干燥以去除残留的溶剂。

常用的干燥方法包括自然干燥、临界点干燥或者冻干等。

4. 样品制备,干燥后的样品需要被切割、切片或者表面处理以展示所需的结构。

这可能涉及到金属喷镀以增加导电性,或者使用特殊的切割技术。

以上是一般的SEM生物样品制备步骤,不同类型的生物样品可能需要特定的处理步骤。

在进行SEM观察之前,样品制备的质量对于最终观察结果至关重要。

希望这些信息能够帮助到你。

第3章 生物样品与样品制备

第3章 生物样品与样品制备

硅烷化:R-OH;R-COOH;R-NH-R´等极性基团药物
酰化:R-OH;R-NH2;R-NH-R´等极性基团药物
烷基化:R-OH;R-COOH;R-NH-R´等极性基团药物
生成非对应异构体衍生化法:具有光学异构体的药R(-)与 (+),用不对称试剂使其生成非对应异构体衍生物,GC分析 B:HPLC法中的化学衍生化法 使极性药物变成非极性的、易挥 目的:提高灵敏度;提高分离度
2.待测样品的浓度范围
A:生物样本中药物浓度个体差异大 地高辛1-2ng/ml;水杨酸
盐20-100μg/ml。
B:浓度高的对样品与处理要求低,低的要求高
3.药物测定的目
A:急性中毒病例 B:大部分的体内药物分析,均需要进行全面的样品与处理研究
4.选用的生物样本类型
A:血浆、血清出蛋白后处理 B:唾液通过离心除蛋白后萃取
D:分析物的洗脱和收集 重要,用水-有机溶剂(5:95)洗脱
E:收集的样直接进样,或浓集 4)其他萃取技术
A:固相微萃取技术
B:膜萃及位微透析技术取技术 C:超临界流体萃取技术
4.化学衍生化
1)光谱技术 (1)紫外分光光度法 紫外没有吸收或吸收小的药物 (2)荧光光度法 不具天然荧光的药物 (3)色谱分析法 极性大、挥发性低、热不稳定、检测灵敏度 不够 A:GC法中的化学衍生化法 使极性药物变成非极性的、易挥发 法的药物;增加药物稳定性;提高光学异构体的分离能力 主要衍生化反应
C:制备全血
D:血浆和血清的区别 抗凝剂;血浆量(50-60%),血清 量(20-40%);纤维蛋白原;C血浆=C血清
E:用全血分析 测定细胞内、外液的浓度;血浆中药物浓
度波动大;血浆中药物浓度低而细胞内药物浓度高

第2章 生物样品制备技术

第2章 生物样品制备技术

5、用以收集细胞,细胞器,生物大分子等
6、分离条件温和 ,但是温度需要控制
.
(二)等电点沉淀法
等电点沉淀法利用蛋白质是具不同等电点的两性电解质
,在达到电中性时溶解度最低,易发生沉淀,从而实现分离 的方法 。 由于许多蛋白质的等电点十分接近,而且带有水膜的 蛋白质等生物大分子仍有一定的溶解度,因此单独使用此
价格昂贵 为小分子多肽,在双向电 泳结果中出现 抑肽素pepstatin在pH9时 不能发挥其抑制作用
1 mM EDTA , 1 mM EGTA
抑制金属蛋白酶
除去影响双向电泳的污染物 :
污染物
样品制备过程中带来的盐、残留缓冲液和 其它带电小分子
除杂技术
1、 透 析 2、 旋 转 透 析 3 、凝胶过滤 4 、沉淀 / 重悬法 1、DNase-l RNase-A 2、 超 速 离 心 3、 超 声 TCAI 丙酮沉淀法 离心
蛋白质样品处理中经常使用的添加剂:
1、变性剂 (尿素,打开氢键、增溶)
2、去垢剂 (CHAPS ,SDS等,消除疏水基团之间的相互
作用,增强蛋白质在其pI值处的溶解性)
3、两性电解质 (减少蛋白聚合,维持其溶解性)
4、还原剂 (DDT ,二硫苏糖醇,用于打开二硫键) 5、炕基化-SH (保护其不被再氧化)
由于样品可含有数千种乃至上万种生物分子同处于一个 体系中,因此不可能有一个适合于各类分子的固定的一劳永
逸的分离程序,但很多基本手段是相同的。为了避免盲目性
,节省实验探索时间,要认真参考和借鉴前人的经验 。
常用的分离纯化方法和技术有: 离心法、沉淀法(包括:
盐析、有机溶剂沉淀、选择性沉淀等)、透析法、色谱法、 等电聚焦制备电泳法等。

生物样品的制备与提取

生物样品的制备与提取

第二章生物样品的制备§2. 1 生物分析化学分析对象的复杂性生物样品往往是一种具有高度复杂性的体系,这种复杂性表现在组成、含量、动力学范围、时空依存性等各个方面,这使得生物样品的处理有很大的难度。

因此,与经典分析化学的样品制备相比,生物分析化学的样品制备有以下特点:(1)生物样品的组成极其复杂,常常包含有数百种乃至几千种化合物。

如人类血浆蛋白质组学的阶段性研究结果表明,正常人血浆中的蛋白质至2005 年时已鉴定了3020 种。

有的生物分子在分离过程中还在不断的代谢,所以生物分子的分离纯化方法差别极大,想找到一种适合各种生物大分子分离制备的标准方法是很困难的。

(2)许多生物分子在生物材料中的含量极微,只有万分之一、几十万分之一,甚至几百万分之一。

分离纯化的步骤繁多,流程长,有的目的产物要经过十几步、几十步的操作才能达到所需纯度的要求。

(3)生物分子往往有很宽的动力学浓度范围。

如不同的蛋白质在细胞内的浓度分布范围相差106〜1010倍,而同一种蛋白质在不同的生理或病理状态下浓度相差有时也很大。

(4)许多生物分子一旦离开了生物体内的环境时就极易失活,因此分离过程中如何防止其失活,就是生物分子提取制备最困难之处。

过酸、过碱、高温、剧烈的搅拌、强辐射及本身的自溶等都会使生物大分子变性而失活。

(5)生物分子的分离和制备几乎都是在溶液中进行的,很难准确估计和判断温度、pH 值、离子强度等各种参数对溶液中各种成分的综合影响,因而实验结果常常带有很大的经验成份,实验的重复性较差,分析仪器、分析方法学、乃至个人的实验技术水平和经验对实验结果会有较大的影响。

制备生物分子的基本原则是:以尽可能少的步骤、尽可能短的时间,获得尽可能多的目标产品。

通常包括以下步骤:①确定要制备的生物分子的目的和要求;②通过文献调研和预备性实验,掌握目标产物的物理、化学以及生物学性质;③生物材料的破碎和预处理;④分离纯化方案的选择和探索;⑤选择相应的、可靠的分析技术,建立鉴定生物分子制备物的均一性(即纯度)的方法;⑥产物的浓缩、干燥和保存。

体内药物分析 第三章 生物样品与样品制备

体内药物分析     第三章  生物样品与样品制备
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(二) 去除蛋白质
2、加入中性盐
常用中性盐(置换蛋白结合的水,使蛋白 脱水而沉淀):
饱和硫酸铵、硫酸钠、镁盐、磷酸盐、枸 橼酸盐
比例:1:2 90%去除 方法:超速离心(10000r/min)
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(二) 去除蛋白质
3、加入强酸
常用溶剂(与蛋白质阳离子形成不溶性盐沉淀): 10%三氯醋酸、6%高氯酸、硫酸-钨酸混合液 、5%偏磷酸
完,不能反复冷冻→解冻→冷冻(FTC);样品应以小 体积分装存放。
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第二节 生物样品的预处理与制备
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一、预处理目的
(一)药物从缀合物中释放,测定总浓度 (二)纯化、富集药物 (三)适应和满足测定方法要求的灵敏度 (四)防止对分析仪器的污染和劣化
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二、样品制备时应考虑的问题
(一)药物的理化性质、存在形式和浓度范围 (二)药物测定的目的 (三)生物样品种类和杂质干扰类型 (四)样品的化学组成 (五)药物的蛋白结合率 (六)被测组分在预处理过程中的稳定性 (七)样品在收集、储存等过程中容器的污染 (八)样品的预处理过程要求简便 (九)预处理的最后一步应富集被测组分 (十)对分析方法的要求
离子对提取法:是一种用有机溶剂提取离子型药物的 方法。
原理:一些酸性或碱性的有机药物在体液中呈离子状 态,成为强亲水性的带电荷离子,不易被提取出来 。当加入与药物呈相反电荷的反离子物质时,即可 成为具有一定脂溶性的离子对,用有机溶剂可萃取 出来。
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碱性药物:庚烷磺酸、辛烷磺酸、己烷磺酸等 酸性药物:四丁基铵、四乙基铵、四辛基铵 提取溶剂:氯仿、二氯甲烷
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SPE的缺点:
1、价格昂贵 2、技术要求高 3、小柱各批之间有差异 4、主子容易堵塞,影响分离效果

透射电镜生物样品制备步骤

透射电镜生物样品制备步骤

透射电镜生物样品制备步骤
一.取材:
组织块小于1立方毫米
二.固定:
%戊二醛,磷酸缓冲液配制固定2小时或更长时间。

用磷酸漂洗液漂洗15分三次
1%锇酸固定液固定2-3小时
用磷酸漂洗液漂洗15分三次
三.脱水:
50%乙醇15-20分
70%乙醇15-20分
90%乙醇15-20分
90%乙醇90%丙酮(1:1)15-20分
90%丙酮15-20分
以上在4度冰箱内进行
100%丙酮室温15-20分三次四.包埋:
纯丙酮+包埋液(2:1)室温3-4小时
纯丙酮+包埋液(1:2)室温过夜
纯包埋液37度2-3小时
五.固化:
37度烘箱内过夜
45度烘箱内12小时
60度烘箱内48小时
六.超薄切片机切片70 nm
七.3%醋酸铀-枸橼酸铅双染色
八.透射电镜JEOL JEM-1230(80KV)观察。

拍片。

生物样品制备和分离技术的研究与应用

生物样品制备和分离技术的研究与应用

生物样品制备和分离技术的研究与应用生物样品的制备和分离是生命科学研究中不可或缺的环节。

为了获得准确、可靠的实验数据,必须对生物样品进行有效的处理。

随着科技的不断进步和应用的深入,各种生物样品制备和分离技术得到了快速发展和广泛应用。

1. DNA/RNA的提取纯化技术DNA和RNA是基因遗传信息的重要载体。

提取纯化这两种生物大分子是许多基础和应用领域的重要工作。

传统的提取纯化方法通常采用有机物或离心柱纯化等手段,这些方法通常需要大量时间和耗材成本。

然而,现在的技术趋势则更加倾向于“快速、定量、经济”的提取纯化技术。

目前主流的DNA/RNA提取纯化方法有:1.1 磁珠法磁珠法是利用磁性珠子(magnetic beads)的特殊性质分离生物大分子的过程。

当应用磁场时,可以使那些带负电荷的DNA分子黏附于带正电荷的磁珠子上,以此实现目标DNA的纯化和分离。

1.2 硅膜法硅膜法是指将DNA/RNA与无机硅膜表面的氢键作用,从而通过洗涤、脱离和稀释的方式进行样品分离纯化的技术。

它通常采用硅柱式柱层析法进行。

作为无机材料,具有稳定的化学性质和良好的结构性能,能够在一定程度上避免DNA的降解和脱失。

1.3 自旋柱法自旋柱法是另外一种相对常用的分离纯化技术,利用一系列结构精细的离心柱实现生物大分子分离纯化。

它的操作过程简单,耗时短,不需要特殊设备的支持,因而具有非常广泛的应用场景。

2. 蛋白分离技术蛋白是构成生物体的重要基础物质,它参与了许多生命过程以及生理、病理现象。

为了探究蛋白的功能与调控机制,必须对其进行分离纯化。

现代蛋白质分离技术多数基于电泳原理和质谱分析原理实现。

2.1 电泳分离电泳分离是指将带电的蛋白质样品在电场作用下移动的过程。

根据蛋白质的分子质量、电荷性质、等电点等特性,可以采用不同类型的电泳分离方法。

最常用的蛋白质电泳分离方法有SDS-PAGE以及等电点聚焦等技术。

2.2 质谱分析质谱分析是指根据分子量、离子化能力、碎片特征等特性,通过质谱仪测量物质的组成结构和化学性质的方法。

生物样品制备(精)

生物样品制备(精)
则微透析的回收率保持一定。
微透析探针由膜,导管及套管等部分组成, 探针的长度一般在0.5 ~10mm,膜材料常用纤 维素膜、聚丙稀腈膜和聚碳酸脂膜,这些膜完 全不具有化学选择性,小分子进出膜完全由膜 孔大小所决定。
高速组织捣碎机:动物组织内脏、植物肉质种子、 柔嫩的叶、菜籽材料破碎。样品配成稀糊状液,装 1/3 体积
玻璃匀浆器:细胞破碎程度比高速组织捣碎机高, 机械切力对生物大分子破坏少。
研磨:细菌和植物材料,加玻璃砂效果更好。
(2)物理法 原理:通过各种物理作用使组织细胞破碎。 反复冻融法:适于大部分动物细胞及细胞内的
结合的脂质位置,还可阻止脂质重新与蛋白质分
子结合,使蛋白质在水中的溶解能力增加);
选择溶剂时注意: 极性物质易溶于极性溶剂; 非极性物质易溶于非极性有机溶剂中; 碱性物质易溶于酸性溶剂; 酸性物质易溶于碱性溶剂; 温度升高时溶解度相应增大; 远离等电点时溶解度增加。
(2) pH值 pH值的选择与溶解度、稳定性有很大关系。 一般在稳定的范围内,选择在偏离pI的两侧。 如细胞色素C和溶菌酶都属碱性蛋白质,常用 稀酸提取。 提取时,某些蛋白质或酶与其他物质结合, 常以离子键形式存在,选择pH=3~6范围,对 分离离子键有利 注意测量pH值的准确性,误差不应超过±0.1。
1.2 生物大分子提取条件 影响提取的因素较多,要根据经验,结合具体 实验条件,选择最佳条件和方法,达到提取的 最佳效果。影响生物大分子提取的主要因素: • 溶剂性质 • pH值 • 离子强度 • 介电常数 •提取温度等。
(1)溶剂的选择 常用水以及稀盐、稀碱、稀酸溶液,有的用 不同比例的有机溶剂,如乙醇、丙酮、氯 仿、四氯化碳等; 一些与脂质结合比较牢固或分子中非极性 侧链较多的蛋白质和酶,常用丁醇提取效果 较好(丁醇亲脂性强,兼亲水性,可取代蛋白质

生物样品制备

生物样品制备

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生物样品制备
•(2) 盐析法
▪ 原理:利用不同蛋白质在高浓度的盐溶液中溶
解度不同程度的降低来沉淀除去蛋白质。
▪ 在低盐浓度下,蛋白质溶解度随着盐浓度升 高
而增加--盐溶作用;
▪ 当盐浓度不断升高时,不同蛋白质溶解度又以
不同程度下降,并先后析出沉淀--盐析作
用。(这是蛋白质分子内及分子间电荷的极性基团的静电引力造成的。由
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生物样品制备
•三 微透析技术
❖微透析(microdialysis)技术起源于20世纪 60年代,目前微透析技术在用色谱分析,
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生物样品制备
•二 生物大分子的提取与蛋白质的去除 •1、生物大分子的提取 1.1 生物大分子 ▪是指在分子量在数千到数百万的大分子。 ▪主要包括多肽、蛋白质、酶、核酸、多糖等, •在细胞破碎时被充分释放出来。 ▪为了将它们制备成色谱分析的样品需要用一定 的溶剂将它们抽提出来,与细胞残渣分离。
•③蛋白质浓度的影响 • 在相同盐析的条件下,蛋白质浓度越大越 易沉淀。 • ④温度的影响 • 一般可在室温下进行。
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生物样品制备
•(3)有机溶剂沉淀法 ▪ 蛋白质的沉淀与溶解,与溶剂的介电常数有关。 降低溶液的介电常数,能增加蛋白质分子上 不 同电荷的引力,使其溶解度变小,同时还破 坏 蛋白质的水化膜而使蛋白质沉淀析出。 ▪ 乙醇和丙酮是最常用的有机溶剂,丙酮的介电 常数小于乙醇,故沉淀的能力较强。
❖研磨:细菌和植物材料,加玻璃砂效果更好。
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生物样品制备
•(2)物理法
•原理:通过各种物理作用使组织细胞破碎。
❖反复冻融法:适于大部分动物细胞及细胞内的

生物样品的样品制备技术

生物样品的样品制备技术

生物样品的样品制备技术生物样品的样品制备技术是一项复杂的过程,它可以影响数据的准确性和可重复性。

生物样本包括血液、组织、血清、唾液、尿液等等。

生物医学研究和临床实践都需要对这些生物样品进行定量、定性、分析和诊断,因此,在样品的制备过程中,需要考虑样品的种类、处理方法、仪器设备和操作技巧等因素。

本文将对生物样品的样品制备技术进行讨论。

一、生物样品的收集和保存样品的质量和稳定性对最终的结果至关重要。

因此,在样品的收集和保存过程中,需要注意以下几点:(1)准确记录样品的信息包括样品编号、收集日期、收集地点、样品类型、收集量等信息。

这些信息对于后续的分析和研究非常重要。

(2)样品的收集采用适宜的采集管或容器进行收集,避免污染和损伤。

例如,血样的采集需要用无菌针头和无菌采血管,并且需要严格按照标准操作程序进行采血。

(3)样品的处理样品的预处理可以移除杂质、保护样品、提高分析灵敏度等目的,简化后续的操作流程。

如,将血样进行离心分离血浆和血细胞。

(4)样品保存根据不同的样品种类,选择合适的保存方法,避免样品的降解和变质。

例如,血样和组织样品应该保存在低温和冷冻条件下。

二、生物样品的样品制备流程生物样品的样品制备流程包括样品的处理、分离、纯化等步骤。

这些步骤可以提取感兴趣的化合物、分子、生物标志物等,从而实现对样品的定量、定性、分析和诊断。

(1)样品的处理样品的处理包括前处理、蛋白质去除、核酸去除等步骤。

前处理可以清洗或降解杂质,保护目标样品,如血液样品的前处理可以去除氯仿、磷酸钾等浓度高的化合物。

蛋白质去除可以通常使用抗体、酶等进行。

核酸去除可以使用RNAase或DNase酶。

(2)样品的分离样品的分离包括离心分离、柱层析分离、电泳分离、毛细管电泳等步骤。

这些方法根据样品类型和杂质特征进行选择。

离心分离可以分离细胞、血浆等物质。

柱层析分离可以根据物质的大小、电性、化学性等特征进行分离。

电泳分离主要用于分离DNA、RNA、蛋白质等。

体内药物分析生物样品与样品制备

体内药物分析生物样品与样品制备

体内药物分析生物样品与样品制备
生物样品是指人体或动物体内的生物组织、体液以及排泄物等样品。

常用的生物样品有血液、尿液、唾液、头发、毛发等。

生物样品的选择要根据分析目的和药物的特性来确定。

例如,如果需要了解药物在机体内的浓度变化情况,可以选择血液样品进行分析;如果需要了解药物的排泄情况,可以选择尿液样品进行分析。

样品制备是体内药物分析的重要环节之一、样品制备的目的是将生物样品中的药物分离出来,以便后续的分析和检测。

常用的样品制备方法有固相萃取、液液萃取、凝胶过滤、超滤和离心等。

具体选择哪种方法要根据药物的特性和样品的性质来确定。

在体内药物分析中,分析方法的选择很重要。

常用的分析方法有高效液相色谱法(HPLC)、气相色谱法(GC)、质谱法(MS)等。

这些方法可以用于测定药物的浓度、代谢产物、分布情况等。

分析方法的选择要根据样品的性质、药物的特性和分析目标来确定。

体内药物分析常用的指标包括药物浓度、药物代谢产物的生成率、生物样品中药物的分布情况等。

这些指标可以通过分析样品中药物的浓度、代谢产物的生成率以及其他相关指标来获得。

通过对这些指标的测定和分析,可以对体内药物的代谢和排泄等过程进行研究,从而了解药物的药效和药代动力学特性。

总之,体内药物分析是研究药物在机体内吸收、分布、转化和排泄等过程的重要手段之一、通过对生物样品进行分析和检测,可以了解药物的代谢和排泄情况,为药物的研发和应用提供科学依据。

样品制备和分析方法的选择对于体内药物分析的结果和准确性起到至关重要的作用。

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③蛋白质浓度的影响
在相同盐析的条件下,蛋白质浓度越大越 易沉淀。 ④温度的影响 一般可在室温下进行。
(3)有机溶剂沉淀法
蛋白质的沉淀与溶解,与溶剂的介电常数有关。 降低溶液的介电常数,能增加蛋白质分子上不 同电荷的引力,使其溶解度变小,同时还破坏 蛋白质的水化膜而使蛋白质沉淀析出。 乙醇和丙酮是最常用的有机溶剂,丙酮的介电
(3)温度 一般提取温度在5℃以下,但对温度耐受力较 高的欲测组分,可适当提高提取温度,使得某 些杂蛋白质变性分离,有利于提取和下一步的 色谱分析。如胃蛋白酶、酵母醇脱氢酶以及许 多多肽激素,选择在37~ 50℃下提取,效果比
低温提取更好。
2 蛋白质的去除 蛋白质的存在常常干扰生物样品中的一些小分 子化合物及一些多肽类化合物的分析,需要在 制备色谱分析样品时将这些蛋白质除去。
表面活性剂处理法:
常用的有:十二烷基磺酸钠
氯化十二烷基吡啶
去氧胆酸钠
其他方法:
改变细胞膜透性、破坏蛋白质与脂类结合等。 如真空干燥、制成丙酮粉。 注意:
• 无论用哪一种方法破碎细胞,都需要在一定的
稀盐溶液或缓冲溶液中进行;
• 一般还需加入保护剂防止生物大分子变性和
降解。
二 生物大分子的提取与蛋白质的去除
加入少量盐,增加了溶液的极性,减弱了蛋白质分子间的作用力,促使其溶解 度增大。当盐浓度增加到一定程度时,水活度被降低,蛋白质表面的电荷大量 被中和,水化膜被破坏,蛋白质分子又相互聚集而沉淀析出。)
盐析法的优点: 对设备和条件要求低,安全,应用范围广泛; 一般可在室温下操作; 常用的中性盐有硫酸铵、硫酸镁、硫酸钠、 氯化钠、磷酸钠等。 硫酸铵的盐析能力强,饱和液浓度大,溶解
高速组织捣碎机:动物组织内脏、植物肉质种子、 柔嫩的叶、菜籽材料破碎。样品配成稀糊状液,装 1/3 体积
玻璃匀浆器:细胞破碎程度比高速组织捣碎机高, 机械切力对生物大分子破坏少。 研磨:细菌和植物材料,加玻璃砂效果更好。
(2)物理法
原理:通过各种物理作用使组织细胞破碎。
反复冻融法:适于大部分动物细胞及细胞内的 颗粒破碎。 方法:待破碎样品冷至-15--20 ℃使 之冻固,然后缓慢融化。
超声波 机械搅 研磨
压力
空气干燥 物理的 化学的 酶的溶菌 真空干燥渗透冲击 阳离子和 酶和有 冷冻干燥压力释放 阴离子 溶剂干燥
冻结 和融化 洗涤剂 抗生素 甘氨酸 关的酶 噬菌体 溶胞 抗菌素
拌压力 杆、臼 Hughes 球磨机 压榨机 X压榨机
(1)机械法
原理:通过机械切力的作用使组织细胞破碎。
冷热交替法:从细菌或病毒中提取蛋白质和核 酸。 方法:材料在90 ℃左右维持数分钟,立即 臵于冰浴中使迅速冷却,以破坏绝 大多数细胞。
超声波处理法:
多用于微生物材料 处理效果与样品浓度和使用频率有关 注意避免溶液中沉淀存在

对超声波敏感的核酸和酶慎用
加压破碎法:
加水压或气压,当压力达到20-35 MPa 时,
生物样品制备
一 生物样品采集及细胞破碎
生物样品指:
植物的花、茎、叶、根、种子
动物的体液:尿、血、唾液、胆汁、胃液、淋
巴液、其他分泌液
毛发、肌肉、组织器官;
各种微生物。
1 生物样品采集 1.1采样工具 生物样品采集与自然界中其他样品采集不同,可 以用: 注射器吸取 手术刀、剪切割
90%以上的细胞被压碎。
(3)化学及生物化学法 原理:通过化学试剂或酶破坏细胞壁使细胞破 碎。 自溶法:新鲜生物样品在一定的pH和温度下, 利用组织细胞中自身的酶系将细胞破坏,使细 胞内含物释放出来。 动物样品一般0-4 ℃;
微生物:室温。
加入甲苯、氯仿可以防止外界细菌污染。
酶处理: 溶菌酶可以专一性地破坏细菌细胞壁; 蜗牛酶也可以破坏细菌细胞; 纤维素酶常用于破坏植物细胞。
出样品进行色谱分析。
注意:
在选择蛋白质的方法时要考虑欲测小分子 化合物的性质,所需除去的蛋白质的性质 及色谱分析时使用何种色谱技术;
最好是使用加热法、有机溶剂沉淀法、膜
分离方法和柱层析法。(不会引入新的干扰化合
物,而盐析法将引入高浓度的盐,当这些盐对下一步色谱 分析不干扰时可考虑盐析法,否则在除去了蛋白质后还要 消除盐的干扰。)
常用的除蛋白质方法有:
• 加热法 • 盐析法 • 有机溶剂沉淀法
• 等电点沉淀法
• 膜分离法
•凝胶层析
(1)加热法 当欲测组分热稳定性好时,可采用加热的方 法将一些热变性蛋白沉淀; 加热温度视欲测组分的热稳定性而定,通常 可加热到90℃。 蛋白沉淀后可用离心或过滤除去; 加热法最简单,但只能除去热变性蛋白。
(5) 膜分离法
膜分离技术可将欲测小分子化合物和大分子的 蛋白质很好分离。包括: 超滤 反渗透析 电渗析 微孔过滤 气体渗析
超精密过滤等。
超滤是一种除去样品中蛋白质和其他大分 子的方法,利用分子分离的薄膜分离技术, 依靠薄膜两侧压力差作为推动力来分离溶 液中不同分子量的物质。 超滤膜的制作材料有醋酸纤维素、聚酰胺、 聚砜等,其中醋酸纤维素最常用。
(2) 盐析法 原理:利用不同蛋白质在高浓度的盐溶液中溶 解度不同程度的降低来沉淀除去蛋白质。 在低盐浓度下,蛋白质溶解度随着盐浓度升 高 而增加--盐溶作用; 当盐浓度不断升高时,不同蛋白质溶解度又以
不同程度下降,并先后析出沉淀--盐析作用。 (这是蛋白质分子内及分子间电荷的极性基团的静电引力造成的。由于水中
常数小于乙醇,故沉淀的能力较强。
常用的蛋白质沉淀剂的蛋白质沉淀效率
沉 淀 剂 上清液pH 沉淀0.5ml血浆中95%以上蛋
白时所需沉淀剂体积/ml
三氯醋酸(0.1g/ml) 1.4~2.0
0.2
高氯酸(0.06g/ml)
钨酸 焦磷酸(0.05g/ml)
<1.5
2.2~3.9 1.6~2.7
0.2
0.6 0.4
过预柱,除去蛋白质,直接进入HPLC分析。
(8)高速离心
•原理:高速离心是根据物质沉降系数、质量、 浮力因子等不同,应用强大的离心力使物质分 离、浓缩、提纯的方法,是生物样品制备中常
用的分离方法之一。
•在高速离心时蛋白质等生物大分子将首先沉淀在
离心管底部,不同分子量的蛋白质等生物大分子 沉降速度不同,也可按分子量大小沉降在离心管 的不同位臵,这样就可以从离心管的不同位臵取
远离等电点时溶解度增加。
(2) pH值 pH值的选择与溶解度、稳定性有很大关系。 一般在稳定的范围内,选择在偏离pI的两侧。 如细胞色素C和溶菌酶都属碱性蛋白质,常用 稀酸提取。 提取时,某些蛋白质或酶与其他物质结合,
常以离子键形式存在,选择pH=3~6范围,对
分离离子键有利
注意测量pH值的准确性,误差不应超过±0.1。
与沉淀法相比,超滤的优点在于适用于小量
样品,不用稀释样品也不用改变样品的pH
值,尤其适用于对酸碱不稳定的化合物特
别是欲测组分易被某种酶分解时用超滤可除
去该酶,避免欲测物分解。
但超滤可能会由于欲测组分结合在膜上面影
响回收率。
(6)凝胶层析 利用分子大小不同的物质在流过凝胶固定 相的保留时间不同,大分子首先流出,小 分子最后流出,可将欲测小分子化合物与大 分子蛋白质分离。 由于欲测小分子化合物的浓度被流动相所
1.2 生物大分子提取条件
影响提取的因素较多,要根据经验,结合具体
实验条件,选择最佳条件和方法,达到提取的 最佳效果。影响生物大分子提取的主要因素: • 溶剂性质 • pH值 • 离子强度 • 介电常数 •提取温度等。
(1)溶剂的选择
常用水以及稀盐、稀碱、稀酸溶液,有的用 不同比例的有机溶剂,如乙醇、丙酮、氯 仿、四氯化碳等;
稀释,必要时还要进行浓缩后再用色谱分
析。
((7)柱层析
用能吸附蛋白质的材料装填成小柱,使欲测蛋 白质的样品流过小柱,样品中的蛋白质被柱填 料吸附,欲测组分不被吸附,从小柱中流出。
这种小柱称为预柱。
预柱可以直接连在HPLC的进样装臵上,含蛋
白质的样品通过预柱后可直接HPLC系统分析。
如分析尿中的某些Βιβλιοθήκη 谢产物时,可将样品通1、生物大分子的提取
1.1 生物大分子
是指在分子量在数千到数百万的大分子。
主要包括多肽、蛋白质、酶、核酸、多糖等,
在细胞破碎时被充分释放出来。 为了将它们制备成色谱分析的样品需要用一定 的溶剂将它们抽提出来,与细胞残渣分离。
生物大分子大部分可溶于水或含有少量酸、碱、 盐的水溶液。 有时也加入一些有机溶剂改善欲测组分的提取 效率,并使欲测组分与其他组分分离,以便于 色谱分析。
同一生物体的不同组织
不同细胞破碎方法
比较柔软的组织(胰脏、肝脏、脑组织):普 通匀浆器研磨 植物肉组织:一般研磨 含纤维多的植物组织:组织捣碎器捣碎或加砂 研磨 具有坚韧细胞壁的微生物:自溶、冷热交替、
加砂研磨、超声波或加压处理。
2.2 实验室中常用细胞破碎方法
细胞破裂
机械法 液体剪切 固体剪切 脱水 非机械法 溶胞作用
硫酸铜-钨酸钠
氢氧化锌 硫酸铵
5.7~7.3
6.5~7.5 7.0~7.7
1.0
1.5 2.0
乙腈
丙酮 乙醇
8.5~9.5
9~10 9~10
1.0
1.0 1.5
甲醇
8.5~9.5
1.5
(4) 等电点沉淀法 利用蛋白质在等电点时溶解度最低,用酸、 碱调pH,可使蛋白沉淀析出, 但等电点沉淀法沉淀不完全,可与有机溶剂 沉淀法,盐析法联合使用。
探针的长度一般在0.5 ~10mm,膜材料常用纤 维素膜、聚丙稀腈膜和聚碳酸脂膜,这些膜完 全不具有化学选择性,小分子进出膜完全由膜
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