药理学实验常用仪器操作技术
药理学实验基本知识
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四 实 验 报 告 的 书 写
药理学实验报告 姓名: 班级: 组别: 日期: 实验题目: 实验目的: 实验对象: 实验步骤: 实验结果: 分析与讨论: 结论:
五
殊情况下,需要请假。
实验室规则
1 遵守学习纪律,准时上下课。实验期间不得借故外出或早退,特 2 必须认真地进行实验操作、观察实验结果。实验期间要保持安 静,
五 动物的取血方法(限小鼠和家兔)
家兔耳缘静脉采血
拔去耳缘被毛,用灯泡照射加热耳朵或75%酒精涂擦局部,使静 脉扩张,再用石蜡油涂擦耳缘,防止血液凝固。耳受热之后用小血管 夹夹紧耳根部,用粗号针头逆静脉回流方向刺破静脉或用刀片切开静 脉,血液可自动流出,一般可采血2ml~3ml。取血后棉球压迫止血。 家兔耳中央动脉采血
不得进行任何与实验无关的活动。
3 实验数据及实验纪录,必须经过教师审核,否则不能结束实验。
4 各组的仪器、用品,由本组使用,不得与别组调换,以免5 爱护公共财物,注意节约各种实验用品。实验动物按组发给,如
需要补充使用,须经教师同意之后才能补领。
6 保持实验室清洁整齐,随时清除污物。实验完毕后,应将实验器
将家兔被部固定,剪去左侧胸部相当于心脏部位的被毛,用碘酒和 酒精消毒皮肤,选择心脏跳动最明显处穿刺。一般由胸骨左缘外3mm处 刺入兔的第三肋间隙。穿刺时,最好用左手触诊心脏,以作配合。当针 头接近心脏时,就会感到心脏的跳动。这是需将针头再向里穿刺,便可 进入心室。由于心脏的搏动,血液会自然进入注射器。如认为针头已经 进入心脏,但抽不出血液,可将针头稍微退出或进入一点。 一般来讲, 心脏采血经6~7天后,可以重复进行。采血量大约20ml~30ml。
表1 在离心场中沉降生物颗粒所需的重力和时间的比较
药理学实训教学大纲-楚雄医药高等专科学校
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药理学实训教学大纲课程名称:药理学实验学时:34学时一、课程性质与任务本课程是楚雄医药高等专科学校药学专业三年制专科必修专业课。
药理学实验教学不仅是药理学理论教学的补充,而且是培养学生思维、锻炼学生技能的实践性课程。
其目的是使学生所学的基本理论和基本知识通过实验使得到进一步理解和验证,培养学生严肃的科学态度和严谨的科学作风。
其任务是通过实验课使学生掌握研究药理学的基本实验技能和实验方法,为将来的工作和科研奠定基础,使之具有从事新药开发、理论研究和药学服务等工作所必备的实验技能。
1.熟悉血浆半衰期(t1/2)的临床意义。
2.了解用比色法测定水杨酸钠血浆浓度和计算其半衰期的方法。
1.观察乙酰胆碱和阿托品对离体肠平滑肌的作用。
实训六苯巴比妥钠的抗惊厥作用(一)实验学时:1学时(二)实验类型:验证性实验(三)实验目的和要求观察苯巴比妥钠的抗惊厥作用,并联系其临床应用。
1.熟悉家兔耳静脉注射法和体温测量法。
2.观察氯丙嗪的镇静安定作用。
(一)实验学时:2学时(二)实验类型:验证性实验(三)实验目的和要求1.学习小白鼠的捉拿方法及腹腔注射法2.观察麻醉性镇痛药哌替啶与非麻醉性镇痛药罗通定的镇痛效应。
(五)实验内容开启PL-200热刺痛仪、测每只小白鼠给药前的痛阈值、给药、观察、计算1.熟悉离体蛙心标本的制作。
(一)实验学时:2学时(二)实验类型:验证性实验(三)实验目的和要求1.观察呋塞米的利尿效果。
2.分析呋塞米的利尿作用原理,并联系其临床应用。
(四)编组:6人/组(五)实验内容1.选择公兔背位固定。
2.插导尿管、给药、尿液收集,结果分析并写出实验报告。
(六)实验原理呋塞米是一种高效能利尿药,主要作用与肾脏髓袢升支粗断皮质部和髓质部,抑制Na+-K+-2Cl-共转运系统,影响尿液的浓缩和稀释功能,产生强大的利尿作用,可排除大量近似与等渗的尿液。
此外,可明显增加肾皮质血流量,增加尿流率。
临床上主要用于急性肾功能衰竭的治疗、脑水中、严重的心性、肾性水肿及加速毒物排泄等。
药理学实验
![药理学实验](https://img.taocdn.com/s3/m/cff042f84afe04a1b071ded4.png)
药理学实验一药理学实验基础及基本技能训练【实验目的】熟悉注射器、灌胃针头的构造、规格和主要用途。
学会正确使用注射器及灌胃针头;学常用实验动物的捉持和给药方法;学会实验动物给药量的计算。
【实验对象】小白鼠【实验器材】注射器、灌胃针头、鼠笼、棉签。
【实验药品】生理盐水、碘伏。
【实验步骤】1.多媒体示教实验动物的捉持及给药方法:(实验原理1)(1)捉持法用右手提起鼠尾,将其放于粗糙面(如鼠笼)上。
右手向后拉鼠尾,使其固定在粗糙面上。
此时应趁其不备迅速用左手拇指和食指捏住小鼠双耳及头颈部皮肤。
然后,翻转小鼠使其腹部向上平卧于掌心中,用无名指和小指压住鼠尾并固定于手中(2)给药法①灌胃法(ig):左手捉持小鼠,头部向上,颈部拉直。
右手持配有灌胃针头的注射器,自口角插入口腔,与食管成一直线,然后沿上颚轻轻插入食管,如插入无阻力、小鼠无挣扎、呼吸无异常、口唇无发绀等现象,即可注入药液。
若遇阻力,应退回重插,以免插入气管引起小鼠死亡。
药液量一般为0.1~0.3ml/10g体重,每只不超过0.5ml (图1)。
②腹腔注射法(ip):左手捉持小鼠,右手持注射器(选用5或6号注射针头),与腹壁呈45°角,自下腹部一侧向头端刺入腹腔。
进针时角度不宜太小,部位不能太高,刺入不能太深,否则会损伤内脏。
药液量一般为0.1~0.2ml/10g体重,每只不超过0.5ml(图2)。
③皮下注射法(sc):可两人合作,一人用左手捏住小鼠头部皮肤、右手拉住鼠尾固定小鼠;另一人左手捏起小鼠背部皮肤,右手持注射器,将针头刺入背部皮下注入药液。
也可单人操作,按前法捉持小鼠,右手持注射器,针头沿右侧肋缘上穿入皮下,向前推至右前肢腋下部位,推入药液即可。
药液量一般为0.05~0.2ml/10g体重,每只不超过0.3ml。
④肌内注射法(im):两人合作,一人固定小鼠,另一人将注射器针头刺入小鼠后肢外侧肌肉内注入药液。
药液量每腿不超过0.1ml。
药理学实验常用仪器操作技术
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图22
图形剪辑后形成的剪辑页
(2)数据剪辑 选择 或从反演控制按钮中选择“单屏内数据剪辑按钮”,此 时波形将被停止,同时在当前通道中将 出现一条白色的垂直线,该线 用来确定剪辑数据的起始点,它将随着鼠标左右移动,按下鼠标左键 确定剪辑数据的起始点,此时,屏幕上又将出现另一条垂直线,它用 来确定剪辑数据的末点(图23),按下鼠标左键确定剪辑数据末点, 这段数据将被存储到编辑文件中。
打开比色皿暗箱盖切断光路。
6、重复上述操作1次或2次,读取相应的吸光度, 取其平均值。 7、比色完毕后,关上电源开关,取出比色皿,将 比色皿暗箱盖好,清洗比色皿并晾干。
三、AJ5805型微量注射泵
AJ5805型微量注射泵在动物实验中,可用来均匀、微量、恒速推 注药液,其各功能开关说明见图25所示。
形按钮,分别代表系统复位、自动回零、直流平衡增档、
直流平衡减档、打开上一次实验设置、反演数据读取、打 印当前通道图形、数据记录、启动波形显示、暂停波形显
示、停止波形显示等命令。下面简单介绍常用的几个按钮。
图12
工具条
启动波形显示按钮,选择它可快捷进入波形显示。
暂停波形显示按钮,选择它将暂停波形显示。
图23
数据剪辑示意图
二、721分光光度计
721分光光度计(图24)是一种在可见 光区进行一般比色分析用的精密仪器。其
波长范围为360-800nm,但在410-710nm之
间的灵敏度较好。
使用方法
1、打开电源开关,使仪器预热20分钟。 2、根据实验要求,选择所需波长及灵敏度。 3、打开比色皿暗箱盖,调节“0”电位器。
这是一个实验者观察生物信号波形的显示窗口。当系统
处于初始状态时屏幕上共有4个波形显示窗口,实验中可根 据自己的需要选择在屏幕上显示1个、2个、3个或4个波形显 示窗口,图2表示的是一个波形显示窗口,窗口中包含有背 景格线、标尺、基线和基线调节旋钮等四部分。
药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药
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郑州澍青医学高等专科学校教案(首页)灌胃、腹腔注射、皮下注射及尾静脉注射与小鼠相似。
静脉注射也可在麻醉下行舌下静脉注射。
3、家兔给药途径与方法灌胃:一人将兔身固定于腋下,一手固定兔头,另一手将开口器放入兔口。
另一人将胃管从开口器孔插入口内,再慢慢插入食道和胃(图39)。
为慎重起见,可将胃管外端放入水中,如无气泡,则可证实胃管在胃内。
灌胃量一般为10ml/kg。
如用兔固定盒,可由一人操作。
静脉注射:一人固定兔身和兔头,另一人在使兔耳边缘血管(耳缘静脉)扩张后,将针头从静脉末端刺入血管,左手拇指和食指固定针头和兔耳,右手注药(图310)。
注药量一般为2ml/kg,等渗液可达10ml/kg。
皮下、肌肉、腹腔注射与鼠类相似。
常用注药量分别为0.5、1.0、5.0ml/kg。
三、实验动物的处死方法颈椎脱位法:小白鼠和大白鼠:术者左手持镊子或用拇指、食指固定鼠头后部,右手捏住鼠尾,用力向后上方牵拉,听到鼠颈部喀嚓声即颈椎脱位,脊髓断裂,鼠瞬间死亡。
豚鼠:术者左手倒持豚鼠,用右手掌尺侧或木棒猛击颈部,使颈椎脱位迅速死亡。
断头、毁脑法:常用于蛙类。
可用剪刀剪去头部或用金属探针经枕骨大孔破坏大脑和脊髓而致死。
大鼠和小鼠也可用断头法处死,术者需戴手套,两手分别抓住鼠头与鼠身,拉紧并显露颈部,由助手持剪刀,从颈部剪断头部。
空气栓塞法:术者用50~100ml注射器,向静脉血管内迅速注入空气,气体栓塞心腔和大血管而使动物死亡。
使猫与家兔致死的空气量为10~20ml,犬为70~150ml。
大量放血法:鼠可用摘除眼球,从眼眶动静脉大量放血而致死。
如不立即死亡,可摘除另一眼球。
猫可在麻醉状态下切开颈三角区,分离出动脉,钳夹上下两端,插入动脉插管,再松开下方钳子,轻压胸部可放大量血液,动物可立即死亡。
对于麻醉犬,可横向切开股三角区,切断股动静脉,血液喷出;同时用自来水冲洗出血部位(防止血液凝固),3~5min动物死亡。
采集病理切片标本宜用此法。
《药理学》药理学实验与设计 ppt课件
![《药理学》药理学实验与设计 ppt课件](https://img.taocdn.com/s3/m/c1916905192e45361066f5db.png)
ppt课件
3
一、实验设计的基本要素
处理因素 实验对象 实验效应
无论是新药的研制,还是药物的药效学研究 或毒理学研究,其药理学实验设计都包括最 基本的三大要素。
ppt课件 4
处理因素
实验中根据研究目的确而定的,由实验者 人为施加给受试对象的因素称处理因素,如 给病用药物、给病人实行某种手术等。
ppt课件
ห้องสมุดไป่ตู้ppt课件
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随机原则
随机分组的目的:使各组间不受主观因素 的影响 方法:编号抽签或随机数字表法。 目前主张“均衡下的随机” 即先将主要因素(体重,性别等)均衡归 类分档,再将难控制的因素(活泼程度、 饥饱程度、 疲劳程度、 性周期……)随机 安排。
ppt课件 35
重复原则
重复是指实验中受试对象的例数或实验次数要达 到一定的数量。一般而言,计量资料的样本数每 组不少于5例,以10 – 20例为好。计数资料的样 本数则需每组不少于10例,以30例为好 。
ppt课件
25
选择指标时,还应注意以下关系及特点 ①计量指标优于计数指标
②动态指标优于静态指标, 把静态指标变为动态指标 如体温、疗效、体内激素水平变化等, 可按时、日、年龄等作动态观察
③所选指标要便于统计分析。
ppt课件 26
二、实验设计的基本原则
对照原则
随机原则
重复原则
为了提高研究效率,控制误差,药理学实 验设计必须遵循三大基本原则。
ppt课件 23
(4)灵敏性 根据实验要可相应显示出微小的变化。 如肝功能指标:GPT 98单位,100单位 它是由实验方法和仪器的灵敏度共同决定 的。 如果灵敏性差,对已经发生的变化不能及 时检测出来,或常常得到假阴性结果,这 种指标应该放弃。
实验一药理学实验基本技能
![实验一药理学实验基本技能](https://img.taocdn.com/s3/m/21f81ed504a1b0717fd5dd45.png)
实验一药理学实验的基本技能一、实验动物的基本技能和实验技术基础1.实验动物的标记大、小鼠和白色家兔的标记常用3~5%黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。
常用的方法:1号 ---左前腿2号 ---左腰部3号 ---左后腿4号 ---头部5号 ---正中6号 ---尾根部7号 ---右前腿8号 ---右腰部9号 ---右后腿10号 ---不标记2.实验动物的捉持(大、小鼠)(1)小鼠的捉持用右手提起鼠尾,放在粗糙物(如鼠笼盖)上面,向后轻拉鼠尾;用左手拇指和食指捏住其两耳颈背部皮肤,将小鼠固定在掌中,使其腹部朝上,然后以无名指和小指夹住鼠尾或小鼠的左后肢。
(2)大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠,无经验者可戴上防护手套,并应动作轻柔。
用右手捉住鼠尾,放在鼠笼盖上,向后轻拉鼠尾;左手掌面向鼠背,食指和中指压住鼠的头顶,拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入,将鼠的两前肢卡住;或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。
图 1 小白鼠捉持法3、实验动物的给药方法(大、小鼠)(1)小鼠的给药方法灌胃(ig):将小鼠固定后,使颈部拉直,右手持装有灌胃针头的注射器,自口角插入口腔,压其头部,使口腔与食道成一直线,沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。
如遇阻力,可将针头抽出再插,以免刺破食管或误入气管。
一般给药量为0.1~0.3ml/10g(体重)。
图 2 小白鼠灌胃法实验图 3 小白鼠腹腔注射法皮下注射(H或sc):常在背部皮下。
轻轻捏起背部皮肤,将注射针头刺入皮下,稍稍摆动针头,若容易摆动则表明针尖位于皮下。
然后注入药液。
一般给药量为0.1~0.20ml/10g (体重)。
图 4 小白鼠皮下注射法腹腔注射(ip):左手固定动物,右手持注射器,从下腹部外侧,呈45度角刺入腹腔,进针约3~5mm,一般给药量为0.1~0.3ml/10g(体重)。
肌内注射(im):多注射于后肢股部肌肉,一般每侧不超过0.1ml。
尾静脉注射(iv):将小鼠置于固定筒内,使尾部露在外面,用70%~75%的乙醇棉球擦尾部,或将鼠尾浸入45~59ºC温水中,待尾部左右侧静脉扩张后,左手拉尾,右手进针。
《实验实训指导书》(药理学)
![《实验实训指导书》(药理学)](https://img.taocdn.com/s3/m/4c5595300912a21614792945.png)
实验一药理学实验基本知识和技术实验目的:1、掌握基本操作,锻炼动手、动脑能力;2、更好地掌握药理学基本理论知识;3、培养科学思维。
实验内容:一、药理实验的基本目的与要求二、实验动物:1、动物的选择;2、动物的标记与捉拿、固定方法;3、动物的取血方法(尾尖、眼眶静脉丛、摘眼球、断头);4、动物的给药方法(灌胃、腹腔、皮下、尾静脉);5、动物的麻醉方法;6、动物的处死方法。
三、实验设计基本原则。
实验步骤:一、药理学实验的基本目的与要求药理学实验课在药理学教学中占有非常重要的地位。
药理学实验课的目的在于通过实验验证药理学的基本理论,加深理解与掌握药理学的基本知识和规律;也是了解获得药理学知识的科学途径。
同时,培养学生独立思考,独立工作,科学思维的能力;培养学生动手操作、分析问题和解决问题的能力;还应培养学生对科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法及实事求是的工作作风。
为了达到上述目的,要求做到下列事项:1. 实验前:预习实验内容并复习相关理论知识;2. 实验时:(1)实验分小组进行,实验前分工明确,实验时密切配合;(2)确定实验仪器、药品、动物与实验指导相符时,将实验器材妥善安排,正确装置、保管;(3)实验操作按步骤进行,仔细观察实验中出现的现象,实事求是地做好记录;(4)注意爱护动物、节约实验药品;(5)实验过程中保持实验室肃静、清洁。
3. 实验后:⑴各组同学将实验动物处死,实验台擦干净,将实验方盘送回准备室;⑵值日生搞好实验室卫生,将死亡动物送至指定场所;⑶整理实验结果,经分析思考作出结论,按要求写出实验报告,按时交给指导老师。
实验报告的书写1.题目2.目的3.原理4.材料:实验动物,器材,药品5.方法:用自己的语言简单扼要描述出来;6.结果:要求真实、清楚;7.讨论:将实验结果进行比较、分析;实验中有哪些不足之处;结果异常或失败的原因;8.结论:将实验结果进行归纳总结,应带有提示性质。
药理实验课讲义(药学专业)
![药理实验课讲义(药学专业)](https://img.taocdn.com/s3/m/6a94a0fdf90f76c661371a4a.png)
药理学实验须知一、明确药理实验的目的要求药理学实验课是药理学教学的一个重要组成部分。
它的目的任务一方面是验证理论,巩固并加强对理论知识的理解;另一方面是通过实验掌握研究药物作用的基本操作方法和技能,培养对科学工作严肃的态度,严肃的方法和严格的要求,培养根据客观实际分析问题和解决问题的能力,为今后进行科学研究,打下初步基础,以便为实现中西医药结合作出贡献。
药理实验包括进行实验操作(有些部分可进行病例讨论)、整理实验结果写出实验报告等环节。
为了提高实验效果,实验前应作好预习,明确本次实验目的、方法步骤和原理,做到心中有数,避免实验中出现忙乱和差错。
实验过程中要在教师指导下加强培养独力操作能力,克服对教师的依赖性。
通过实验操作要求在生理生化实验的基础上掌握固定动物和各种给药方法,掌握剂量换算和麻醉方法,学会观察记录主要生理生化指标,掌握注射器、天平、磅秤、二导生理记录仪、药理生理多用仪及描记装置等用法,掌握离体心脏、肠管、子宫和在体动物血压、呼吸及各系统药物的主要实验方法。
二、作好实验结果的处理药理实验结果有生理记录仪等记录的曲线、测量资料(如血压、心率、瞳孔大小、睡眠时间等测量的数据)和计数资料(如动物死活数、阴性和阳性反应数等数据)等几种。
要如实地准确地对观察到的数据及时加以记录,决不可想当然地用主要观想象或书本理论代替实验观察到的客观事实。
实验完毕对结果分别加以整理。
记录曲线要加以剪裁。
注明动物性别、体重、日期、实验题目、给药剂量等。
计数资料和测量资料应酌情列表或画图以便比较,使结果一目了解。
三、写好实验报告写实验报告是培养文字表达能力和概括综合分析问题能力的重要训练方法。
每次实验后要求用统—实验报告本写好报告,交负责教师评阅。
在实验报告中要求列出实验题目、实验方法和实验结果。
有时要对实验结果产生的原理或对实验结果异常的原因略加讨论。
讨论不可离开实验结果去抄书。
实验指导所列思考题或讨论题是为加深对实验的理解,如果与实验结果无关,不必写入实验报告。
药理学实验方法
![药理学实验方法](https://img.taocdn.com/s3/m/e6ccc32269dc5022aaea00cd.png)
药理学实验方法药理学实验方法第-讲实验动物的选择在药理学实验中,要根据实验目的,选择不同动物,常用动物有:1、青蛙和蟾蜍心脏(离体、在体)实验, 制备坐骨N-腓肠标本等。
2、小白鼠:药物初筛:镇痛、耐缺氧、抗肿瘤药物、LD50测定、避孕药实验等。
3、大白鼠:抗炎作用,大白鼠踝关节肿胀实验,血压测量,胆管插管等。
长期性毒性试验。
4、豚鼠:对组胺敏感,并易于致敏,常用抗过敏药(平喘药、抗组胺药)实验。
离体心房、心脏、肠管实验等。
豚鼠对结核菌也敏感,也用于抗结核病药物实验。
5、兔:家兔易得,驯服,便于静脉注射和灌胃,常用于观察药物对心脏的作用和对CNS 的作用。
又由于其体温变化较敏感,也常用于体温实验及热原检查。
家兔也常用于避孕药实验。
6、猫:猫的血压比较稳定,具有咳咳嗽反射和呕吐动作。
因而常用于心血管药物实验和镇咳药、镇吐药实验。
7、狗:狗的血压比较稳定,常用于降压药、升压药和抗休克药实验。
狗比较容易驯服,最适用于慢性实验。
手术造瘘(胃、肠)以便观察药物对胃肠蠕动和分泌的影响。
此外,长期毒性实验也常用狗来进行。
* 附:给药途径及剂量限制1. 小白鼠(1)灌畏法:0.1~0.25ml/10g体重。
(2)皮下注射:0.1~0.3ml/10g体重。
(3)肌肉注射:0.2ml/每侧。
(4)腔注射:0.1~0.25ml/10g体重。
(5)静脉注射:0.05~0.1ml/10g体重。
1.大白鼠(1)灌畏法:2.0ml/10og体重。
<3.0ml/只。
(2)腔注射:0.1~0.25ml/10g体重。
第二讲实验动物的麻醉和处死一、各种实验动物的麻醉药物和麻醉方法1药理学实验方法1、乙醚乙醚为挥发性麻醉药。
常用于小动物(小鼠)的麻醉。
使用方法有:开放发和封闭法。
2、戊巴比妥钠戊巴比妥钠的作用稳定、麻醉持续时间中等(一次给药可维持作用2~4 hr),一般实验均可使用。
常用其3% 溶液。
各种动物所用剂量如下:狗:30mg/kg,iv猫、兔:30~40mg/kg,iv或ip大鼠、小鼠:40~50mg/kg,ip3、乌拉坦乌拉坦的作用较弱,对呼吸的抑制作用小是其优点。
药理学小白鼠实训报告
![药理学小白鼠实训报告](https://img.taocdn.com/s3/m/858f028651e2524de518964bcf84b9d528ea2cbf.png)
一、实验目的1. 了解小白鼠的生理结构和生理功能,为药理学实验提供动物模型。
2. 掌握小白鼠给药方法、采血技术及基本生理指标的测定方法。
3. 学习药理学实验的基本操作流程,提高实验技能。
4. 通过观察药物在小白鼠体内的作用,了解药物的药效学及药代动力学特点。
二、实验材料1. 实验动物:小白鼠2. 主要试剂:生理盐水、药物、生理盐水溶液、药物溶液3. 主要仪器:注射器、针头、试管、移液器、显微镜、电子天平、体温计、血压计等三、实验方法1. 小白鼠的观察与处理- 观察小白鼠的形态、行为、生理指标等,如体重、体温、呼吸、心率等。
- 记录小白鼠的生理指标,为实验提供基础数据。
2. 给药方法- 口服给药:将药物与生理盐水混合,用注射器将药物溶液灌入小白鼠口中。
- 腹腔注射给药:将药物溶液用注射器注入小白鼠腹腔。
- 肌肉注射给药:将药物溶液用注射器注入小白鼠肌肉。
3. 采血技术- 采取小白鼠尾静脉血:将小白鼠尾部固定,用酒精消毒,用针头穿刺尾静脉,收集血液。
- 采取小白鼠眼眶静脉血:将小白鼠头部固定,用酒精消毒,用针头穿刺眼眶静脉,收集血液。
4. 生理指标测定- 体温测定:用体温计测定小白鼠的体温。
- 呼吸测定:观察小白鼠的呼吸频率和深度。
- 心率测定:用听诊器测定小白鼠的心率。
5. 药物作用观察- 观察小白鼠给药后的行为变化,如活动减少、呼吸加快、心率增快等。
- 测定小白鼠的生理指标变化,如体温、呼吸、心率等。
- 分析药物在小白鼠体内的药效学及药代动力学特点。
四、实验结果1. 小白鼠给药后,体温、呼吸、心率等生理指标发生明显变化。
2. 药物在小白鼠体内的药效学及药代动力学特点如下:- 药物在小白鼠体内的吸收速度较快,药物浓度在短时间内达到峰值。
- 药物在小白鼠体内的分布广泛,主要集中在肝脏、肾脏等器官。
- 药物在小白鼠体内的代谢速度较快,药物浓度在短时间内降低。
- 药物在小白鼠体内的排泄速度较快,主要通过尿液排泄。
药理学实验中常见的操作失误和防治措施论文
![药理学实验中常见的操作失误和防治措施论文](https://img.taocdn.com/s3/m/bca7593bb90d6c85ec3ac6c5.png)
药理学实验中常见的操作失误和防治措施【中图分类号】r96 【文献标识码】a 【文章编号】1672-3783(2012)07-0397-01【摘要】:药理学是医学教育的桥梁学科,药理学实验是药理学教学不可缺少的组成部分,对学习和掌握药理学知识具有重要作用。
总结药理学实验过程中常见的操作失误即可减少对学生造成的伤害,又可保证实验的准确性,也有助于培养学生严谨的工作态度,为将来的工作奠定基础。
【关键词】:药理学实验操作失误防治措施药理学作为医药学教育的一门桥梁学科,在医学基础理论与临床实践、医学与药学、医学各基础学科之间的联系及中西医药结合方面均起到重要的作用。
药理学是一门实验性学科,其理论来自生物实验,即观察药物对实验动物或人体作用而建立的一门学科。
因此,药理学实验是药理学教学不可缺少的组成部分,对学习和掌握药理学知识具有重要作用。
总结药理学实验过程中常见的操作失误即可减少对学生造成的伤害,又可保证实验的准确性,也有助于培养学生严谨的工作态度,为将来的工作奠定基础。
1 常见操作失误1.1 给错药物药理学实验是验证理论知识,每一次实验要用到相应的几种药物,学生由于粗心大意给药错误在实验中是较常见的。
例如在硫酸镁中毒及钙剂的解救实验中,就出现学生在做硫酸镁中毒模型中错误的把氯化钙先耳缘静脉注射入家兔体内,久等硫酸镁中毒不出现的情况。
1.2 给药剂量不准确药理学实验一般用到1ml、5ml、10m注射器等,在注射器使用过程中方法不正确易造成剂量误差,常见在给小白鼠注射时使用的1ml注射器内的气泡没排出,在药理实验中小白鼠所需剂量就很小,要求剂量一定要精确,较明显的气泡就已经造成很大的误差。
药理学实验给药剂量都是按照动物的体重给药,如果称重不准确,剂量就会计算错误,影响实验结果。
1.3 给药方法和给药途径不正确药理学实验中给药方法一定要正确,否则会引起实验动物的死亡或实验结果不正确。
小白鼠常见的给药方法是腹腔注射、背部皮下注射、灌胃等,小白鼠对脏器的损害非常敏感,如果腹腔注射位置太高损伤肝脏,灌胃损伤食管和肺组织都会引起小白鼠死亡或不出现实验结果。
理学小学期 药理实验动物基本知识及基本操作实验方法
![理学小学期 药理实验动物基本知识及基本操作实验方法](https://img.taocdn.com/s3/m/089e40ff01f69e314232942d.png)
(五)动物被毛的去除法
? 拔毛法 ? 剪毛法 ? 剃毛法 ? 脱毛法
三、实验动物的麻醉
? 常用麻醉药
? 氨基甲酸乙酯(乌拉坦) ? 氯醛糖 ? 巴比妥类 ? 乙醚 ? 局部麻醉药
三、实验动物的麻醉
? 常用麻醉方法
? 全身麻醉
? 吸入麻醉 ? 注射麻醉
? 局部麻醉
三、实验动物的麻醉
? 麻醉操作要求
? 对于存贮在计算机内部的实验数据,生 物机能实验系统软件可以随时将其调出 进行观察和分析,还可以将重要的实验 波形和分析数据进行打印。
手术器械,按实验步骤进行实验。 4.认真观察和记录实验结果,并加上必要的标记、文字说明;实验过程中还
要思考出现了什么样的结果,为什么会有这些结果,有什么意义。若出 现非可预期结果,还应分析其原因,尽可能地及时解决。 5.试验中要有耐心,必须等前一项实验基本恢复正常后,才能进行下一项实 验,注意观察实验的全过程。
(一)实验动物的种类
蟾蜍( Toad )
雄蟾
婚垫
雄蟾
雌蟾
蟾蜍属两栖动物,其一些基本生命活动与哺乳动物近似,其 离体组织和器官所需的生理环境比较简单 (无须供氧和恒温)。
蟾蜍常用于神经生理、肌肉生理、心脏生理,微循环、水肿 等实验。
(一)实验动物的种类
小鼠(M 药理、毒理、肿瘤、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教 学。
首先将原始的生物机能信号包括生物电信号呾通过传感器引入的生物非电信号迚行放大有些生物电信号非常微弱比如减压神经放电其信号为微伏级信号如果丌迚行信号的前置放大根本无法观察滤波由于在生物信号中夹杂有众多声光电等干扰信号比如电网的50hz信号这些干扰信号的幅度往往比生物电信号本身的强度还要大如果丌将这些干扰信号滤除掉那么可能会因为过大干扰信号致使有用的生物机能信号本身无法观察等处理然后对处理的信号通过模数转换迚行数字化并将数字化后的生物机能信号传输到计算机内部计算机则通过与用的生物机能实验系统软件接收从生物信号放大采集卡传入的数字信号然后对这些收到的信号迚行实时处理一方面迚行生物机能波形的显示一方面迚行生物机能信号的存贮另外它还要根据使用者的命令对数据迚行指定的处理呾分析比如平滑滤波微积分频谱分析等
药理学实验常用仪器操作技术
![药理学实验常用仪器操作技术](https://img.taocdn.com/s3/m/13ed5e8b88eb172ded630b1c59eef8c75ebf9545.png)
生理仪器
如心电图机、血压计等, 用于监测动物的生理指标, 研究药物对生理功能的影 响。
药理仪器
如行为学实验装置、疼痛 刺激装置等,用于研究药 物对动物行为、神经系统 等方面的影响。
实验安全及注意事项
实验前准备
熟悉实验流程,检查实验仪 器和设备是否完好,准备好 实验所需的试剂和药品。
实验操作规范
废弃物处理
高压输液系统
进样系统
包括高压输液泵、流动相贮存器和梯度洗 脱装置,用于将流动相以高压形式连续不 断地送入色谱柱系统。
包括进样器和进样阀,用于将样品定量地 引入色谱柱。
分离系统
检测系统
色谱柱是高效液相色谱仪的核心部件,由 柱管和固定相组成,用于实现样品的分离 。
包括检测器和数据处理器,用于将色谱柱 流出的组分浓度信号转换为电信号,并进 行数据处理和记录。
和高温环境。
04
移液器的操作技术
移液器的结构与原理
移液器的基本结构
包括吸头、容量调节旋钮、活塞、弹簧、吸液管等部分。
移液器的工作原理
通过活塞在吸液管内的上下移动,实现液体的吸入和排出。
移液器的使用方法
准备工作
选择合适的吸头,并将其安装在移液器上。
吸液操作
将移液器吸头插入待吸取的液体中,轻轻按 下活塞,使液体吸入吸头。
高效液相色谱仪的维护与保养
定期更换流动相和清洗液
避免流动相变质和污染,保证色谱分离效果。
定期清洗进样器和进样阀
避免样品残留和交叉污染。
定期清洗色谱柱
去除色谱柱内的杂质和污染物,恢复色谱柱性能。
定期校准检测器
保证检测器的准确性和稳定性。
07
其他常用仪器的操作技术
[药学]药理学实验详解
![[药学]药理学实验详解](https://img.taocdn.com/s3/m/71e1741c376baf1ffc4fad57.png)
药理学实验详悉一、动物实验动物实验是根据研究目的,恰当地选用标准的符合实验要求的实验动物,在设计的条件下,进行各种科学实验、观察、记录动物的反应过程或反应结果,以探讨或检验生命科学中未知因素的专门活动。
动物实验是人类生存和发展的必要手段。
动物实验方法是进行动物实验时的各种实验手段、技术、方法和标准化操作程序。
也探讨实验动物科学中的减少、替代、优化问题。
实验动物的选择:首先应从生物医学研究的目的和实验要求来选择实验动物,进而考虑实验动物是否容易获得、是否经济、是否容易饲养。
一切实验动物应具有个体间的均一性,遗传的稳定性和容易获得三个基本要求。
标准化原则:根据对实验质量的要求选择标准化的实验动物。
动物实验中选择和使用与研究内容相匹配的标准化的实验动物标准化动物:是指遗传背景明确或来源清楚的,对其携带的微生物和寄生虫实行控制,模型性状显著且稳定的动物。
在精确试验中,鉴于动物体内外的微生物和寄生虫会干扰试验的结果,最好选择无菌动物或悉生动物,至少也应SPF级动物。
规格化原则:选择与实验要求一致的动物规格。
实验动物年龄与体重一般呈正相关性,可按体重推算年龄。
一般来说,实验动物年龄、体重应尽可能一致,相差不得超过10%。
不同性别的动物对同一药物的敏感程度是有差异的,如实验无特殊要求应选择雌雄各半做实验,以避免因性别差异所造成的结果误差。
特殊的生理状态下,如发情、妊娠及哺乳期,机体对实验的反应性发生改变。
★实验动物的选择应用应注意有关国际规范:GLP、SOP、“3R”(Replacement替代 Reduction减少 Refinement优化)(一)实验动物:系指遗传背景明确、来源清楚、对其携带的微生物、寄生虫实行控制,经科学方法人工培育用于科学实验的动物。
(二)实验动物的分类方法1、按遗传学控制分类*近交系:杂种动物经过相当于20代全同胞兄弟单纯连续繁殖,各条染色体上的基因趋于纯合,品系内个体差异趋于零。
液质联用法在药理学实验教学中的应用蒲妍池
![液质联用法在药理学实验教学中的应用蒲妍池](https://img.taocdn.com/s3/m/30992d3a26284b73f242336c1eb91a37f11132a6.png)
液质联用法在药理学实验教学中的应用蒲妍池发布时间:2023-02-21T08:50:23.612Z 来源:《新潮·建筑与设计》2022年8期作者:蒲妍池[导读] 药理学是以生理学、解剖学、生物化学、病理学、病理生理学、微生物学、免疫学等多门课程作为基础,探讨药物与机体(包括病原体)的相互作用及作用规律的学科,是医药院校基础课的核心课程之一,更是连接医学和药学、基础医学和临床医学的桥梁学科。
药理学是一门以实验为基础的学科,药理学实验教学是药理学教育的重要组成部分。
近年来,高等院校鼓励培养创新型人才,重视学生科研与创新思维的培养,并一定程度地开展药理学实验的改革探索。
药理学实验课程的建设与改革已是势在必行,这将有利于培养学生创新意识,提高药学综合素养,从知识、技能、方法和意识等方面,为未来长远的发展做好充分准备。
(重庆交通职业学院重庆江津区 402247)摘要:药理学是以生理学、解剖学、生物化学、病理学、病理生理学、微生物学、免疫学等多门课程作为基础,探讨药物与机体(包括病原体)的相互作用及作用规律的学科,是医药院校基础课的核心课程之一,更是连接医学和药学、基础医学和临床医学的桥梁学科。
药理学是一门以实验为基础的学科,药理学实验教学是药理学教育的重要组成部分。
近年来,高等院校鼓励培养创新型人才,重视学生科研与创新思维的培养,并一定程度地开展药理学实验的改革探索。
药理学实验课程的建设与改革已是势在必行,这将有利于培养学生创新意识,提高药学综合素养,从知识、技能、方法和意识等方面,为未来长远的发展做好充分准备。
关键词:液质联用法;药理学;实验教学;应用引言如何在实验教学中培养学生的科研思维,培养学生的创新实践能力,各高校在教学中一直都在积极努力地不断探索。
在实验教学中,对学生创新能力的培养也是适应国家创新型人才培养的需要。
以往各院校在药理学实验教学改革方面都进行了积极地探索与实践,并取得了丰硕的成果,如虚拟实验教学、多媒体的应用、以问题为基础的教学法(problem-basedlearning,PBL)、分阶段教学、研发药理学综合性、设计性实验等。
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滤波、显示速度以及特殊标记选择
区等,可根据实验需要设定实验参
数和选择特殊标记。
图17 控制区总体图
(2)数据显示 选择信息按钮,弹出信息区总 体图(图18),通常每个通道可 同时显示6个测量数据,一般而
言,信息显示区内所测量的数据
与当前通道的设置有关,如:在 输入信号选择压力信号时,信息
4、使电表指针读数恰好在透光度为“0”处,然后
盖上比色皿暗箱盖,比色皿座处于蒸馏水校正位置, 调节“100%”电位器,使电表指针到满刻度附近。 重复上述操作2-3次,待仪器稳定后即可进行测定。
5、将盛有待测溶液的比色皿放入比色皿座中,盖上
暗箱盖,拉动暗箱轴,使测定皿进入光路,此时电
表指针所示即为该待测溶液的吸光度A。读数后,
区将显示收缩压、舒张压和平均
压;如果选择输入信号选择的是 电信号或张力信号时,那么信息
区显示的是最大值、最小值和平
均值。
图18 信息区总体图
(3)特殊实验标记的选择
特殊实验标记选择区位于控制区的最下方,是一个选择特
殊实验标记的下拉式列表(图19),根据实验的需要可预先 通过编辑菜单中的“特殊实验标记编辑”命令任意编辑一组 实验模块,实验时将其选入特殊实验标记区中。
置数开关设定为9 mm/h。
精品课件!
精品课件!
(2)注射速度换算法:
先确定注射器内实验所需药液在微量泵上所示的 毫米数(mm),然后用该毫米数(mm)+药液 注射完所需时间(h),即为置数开关值。 例:注射器内的药液为9ml,注射器安装在微量泵上 所示标尺刻度为40mm,将该药液注射完需要5小 时 则:40mm÷5h=8mm/h,置数开关设定为 8mm/h。
2、设置推进速度:推进速度以每小时毫米数计算
(mm/h),有两种换算方法。
(1)注射流量换算法:
先测量注射器每毫升刻度所示毫米(mm/ml), 然后根据所需注射流量ml/h×mm/ml,即为推进速 度置数开关数值。
例:测得注射器刻度为4.5mm/ml,需要注射
流量为2ml/h
则:4.5mm/ml×2ml/h=9mm/h,
定在5个汉字内;麻醉方法和
麻醉剂名称则限定在10个汉 字内。 图11 设置实验相关数据对话框
4、观察与记录
在实验中观察与记录,可利用工具条(图12)上的图形 按钮进行选择,BL-410工具条上从左到右一共有24个图
形按钮,分别代表系统复位、自动回零、直流平衡增档、
直流平衡减档、打开上一次实验设置、反演数据读取、打 印当前通道图形、数据记录、启动波形显示、暂停波形显
图形。
反演数据按钮,选择它(与“文件”菜单中的“选择反演数据” 命令功能相同)将弹出打开对话框(图13),在文件名列表中选 择一个文件或在文件名编辑框中直接输入需要反演的文件名,按 “确定”按钮,即可启动反演数据文件。
图13 打开对话框
5、数据的打印
鼠标单击菜单条“打印”菜
单项,弹出下拉式打印菜单 (图14),该菜单包括1通道 图形、2通道图形、3通道图 形、4通道图形、1、2通道图 形、1、2、3通道图形、所有 通道图形、打印比例、打印位 置等11个命令。下面重点介
记滴时 间设置、实验标题编辑 和实验相关数据编辑等8个命令,
以下介绍其中常用的4个命令。
图7 编辑下拉式菜单
(1)实验标记编辑 选择实验标记编辑选项 会弹出“设置实验标记” 对话框(图8),可根据实
验的需要编辑和选择所需
的实验标记组或实验标记 组内的特殊实验标记,包 括添加、修改和删除实验 标记组或实验标记组内的
绍打印比例和打印位置命令。
图14 打印下拉式菜单
(1)打印比例
图15 打印比例子菜单
选择该命令时,弹出打印比例子菜单,包括4 个子命令:100%、70%、50%、25%(图 15),分别表示原来图形的100%、70%、 50%或25% 进行打印,可以根据实验需要进行
选择。默认的打印比例为100%。
图19 特殊实验标记选择区
7、数据编辑
(1)图形剪辑
图形剪辑是为了把不同实验阶段所显示的波形粘贴在一起,形成一张完 整的图形,该图形不能进行测量,但可以与其它windows的应用程序所 共享。在进行图形剪辑时,选择 或从反演控制按钮中选择“图形剪辑” ,此时图形显示将被暂停,按下鼠标左键,确定需剪辑图形的左上角,按 住鼠标不放,并向右拖动鼠标,此时,屏幕上将出现一个方形虚线框(图 20),虚线框内是你准备剪辑的图形。
1、运行BL-410生物机能实验系统 (1)在Windows操作系统下用 鼠标双击图标(图3),进入实验系 统。 (2)在实验系统面板上用鼠标随
图3 BL-410启动图标
意单击一下进入系统主界面。
2、选择输入方式
在顶级菜单条上一共有10个菜单选项,它们是:文件、 编辑、显示方式、输入信号、实验项目、定标、刺激、
图20 图形剪辑示意图
当选择确定后,松开鼠标,这时会出现一张白色剪辑页(图
21),你选定的图形将被放在该页的左下角,利用鼠标可随
意调节图形的位置。
图21 图形剪辑页
在反演过程中,可重复选择你需要的图形,最后,在剪辑页
上形成一张剪辑的整体图形(图22),用windows操作系统 平台,直接粘贴到其它文件中去,如word文档、小画板等。
1. 注射器固定带
2. 推进器 3. 标尺刻度 4. 加注线控插口
5. 直流6 v插口
6. 注射启动开关 7. 推进速度置数 8. 注射器安装活动纽指示 9. 电池充电指示 10. 电池低电压指示 11. 完成/阻塞报警指示
图25 AJ5805型微量注射泵
使用方法
1、用注射器固定带将注射器固定在微量泵上。
这是一个实验者观察生物信号波形的显示窗口。当系统处
于初始状态时屏幕上共有4个波形显示窗口,实验中可根据 自己的需要选择在屏幕上显示1个、2个、3个或4个波形显 示窗口,图2表示的是一个波形显示窗口,窗口中包含有背 景格线、标尺、基线和基线调节旋钮等四部分。
图2
生物信号显示窗口
(三)常用实验的一般操作步骤
实验系统主要由以下三部分组成: 1、IBM兼容微机 2、Biolap410生物信号采集、放大硬卡 3、Biolap98生物信号显示与处理软件
(二)生物信号显示与处理软件界面介绍
控制、信息区切换按钮
标题条
菜单条
工具条
时间显示窗口
设置刺激器参数对话框
状态条
数据查找滚动条
四个数据反演相关功能按钮
图1 BL-410生物信号显示与处理软件主界面
来改变实验题目,并且可以为同一个实验设置第二个实验标 题,这样便于资料存档。
(4)实验相关数据编辑
选择该命令,在“设置实 验相关数据”对话框(图11)
中,可根据实验要 ,设置实
验动物的名称、体重、麻醉 方法、麻醉剂名称、麻醉剂
量等参数。动物名称的输入,
可在动物名称下拉式列表中 选择,也可直接输入,但限
一、BL-410生物机能实验系统
(一)概述 BL-410生物机能实验系统是配置在微机上的4 通道生物信号采集、放大、显示、记录与处理系 统,它将现代电子技术与计算机数据处理技术有 机地融合在一起,替代了原来利用分离的放大器、 示波器、记录仪、刺激器等众多仪器组成的烦琐 的生物信号观测与记录装置,在微机上以中文 Windows操作系统平台为基础,直观而操作简便。
示、停止波形显示等命令。下面简单介绍常用的几个按钮。
图12 工具条
启动波形显示按钮,选择它可快捷进入波形显示。
暂停波形显示按钮,选择它将暂停波形显示。
数选择它时呈绿色,表示系统停止记录。
停止波形显示按钮,选择它将停止波形显示。
打印当前通道图形按钮,选择它可打印当前通道的
图22 图形剪辑后形成的剪辑页
(2)数据剪辑 选择 或从反演控制按钮中选择“单屏内数据剪辑按钮”,此时波 形将被停止,同时在当前通道中将 出现一条白色的垂直线,该线用来 确定剪辑数据的起始点,它将随着鼠标左右移动,按下鼠标左键确定剪 辑数据的起始点,此时,屏幕上又将出现另一条垂直线,它用来确定剪 辑数据的末点(图23),按下鼠标左键确定剪辑数据末点,这段数据 将被存储到编辑文件中。
数据处理、打印及帮助。从菜单条(图4)进入,可从两
种途径选择输入方式:
图4
顶级菜单条
图5
输入信号下拉式菜单
图6 实验项目下拉式菜单
3、编辑实验参数
鼠标单击顶级菜单条上的 “编 辑”菜单项,弹出“编辑”下拉 式菜单(图7),编辑菜单中包 括复制、粘贴、显示剪辑页、实
验标记编辑、实验人员名单编辑、
(2)打印位置
选择该命令时,弹出打印 位置选择子菜单(图16), 子菜单包含9个子命令:左上 角、右上角、左下角、右下角、 上中、下中、横向左、横向右 和4组/张,可根据实验需要选 择打印位置。
图16 打印位置子菜单
6、实验参数设定与实验数据显示
(1)参数设定 参数设置时,选择控制按钮,主
界面上弹出控制区总体图(图17),
打开比色皿暗箱盖切断光路。
6、重复上述操作1次或2次,读取相应的吸光度, 取其平均值。 7、比色完毕后,关上电源开关,取出比色皿,将比 色皿暗箱盖好,清洗比色皿并晾干。
三、AJ5805型微量注射泵
AJ5805型微量注射泵在动物实验中,可用来均匀、微量、恒速推注 药液,其各功能开关说明见图25所示。
图23 数据剪辑示意图
二、721分光光度计
721分光光度计(图24)是一种在可见 光区进行一般比色分析用的精密仪器。其
波长范围为360-800nm,但在410710nm之间的灵敏度较好。
使用方法
1、打开电源开关,使仪器预热20分钟。 2、根据实验要求,选择所需波长及灵敏度。 3、打开比色皿暗箱盖,调节“0”电位器。