Annexin V---PI双染方法
AnnexinV-PI双染方法
Annexin V是一种检测细胞凋亡的试剂，在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸只分布在细胞膜脂质双层的内侧，细胞发生凋亡早期，膜磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。
Annexin V作为一种磷脂结合蛋白，与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力，它通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。
因此Annexin V是检测细胞早期凋亡的灵敏指标。
细胞凋亡是细胞的基本特征之一，它在机体的胚胎发育、组织修复、内环境的稳定等方面起着十分重要的作用。
在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸（PS）只分布在细胞膜脂质双层的内侧，而在细胞凋亡早期，细胞膜中的磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。
AnnexinⅤ是一种分子量为35-36kD的Ca依赖性磷脂结合蛋白，能与细胞凋亡过程中翻转到膜外的PS高亲和力特异性结合。
用标记了FITC的AnnexinⅤ作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测细胞凋亡的发生，正常细胞和早期凋亡细胞的细胞膜是完整的。
Propidium iodide（PI）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜与细胞核结合呈现红色。
将AnnexinⅤ与PI匹配使用，可以将凋亡早期的细胞和晚期的细胞以及死细胞区分开来。
离心收集悬浮细胞，微量离心机转速2000RPM，离心时间5min，弃培养基；用冷PBS洗涤细胞两次；用400ul 1X Binding Buffer悬浮细胞，浓度大约为1 X 10 cells/ml；在细胞悬浮液中加入5ul Annexin V-FITC，轻轻混匀后于2-8°C避光条件下孵育15分钟。
5. 加入10ul PI后轻轻混匀于2-8°C避光条件下孵育5分钟；在1小时内用流式细胞仪或荧光显微镜检测。
使用流式细胞仪正确分析Annexin V-FITC/PI双染的细胞前要求仪器的荧光补偿来去除两种染料激发光之间的叠加。
因为荧光补偿设置与PMT的电压直接相关，所以不同仪器之间的补偿不同。
FITC-AnnexinVPI双染色法检测凋亡细胞
FITC-AnnexinV/PI双染色法检测凋亡细胞一、实验目的a)了解凋亡细胞的变化及检测方法。
b)了解FITC-AnnexinV/PI双染色法检测凋亡细胞的原理及方法。
二、实验原理a)细胞凋亡是细胞内由多个基因控制的死亡程序被活化而导致的细胞自杀（cell suicide）。
膜磷脂酰丝氨酸原来位于细胞膜的内部。
在细胞凋亡早期，细胞膜上的膜磷脂酰丝氨酸外翻与AnnexinV结合，使其被染成绿色。
在细胞凋亡晚期，细胞膜破裂，使得PI进入细胞当中与DNA结合，使其被染成红色。
b)细胞坏死（cell necrosis）：是由外部化学、物理或生物因素的侵袭而造成的细胞崩溃裂解，也被描述为细胞谋杀（cell murder）。
c)喜树碱（camp tothecin，CPT）是一种植物来源的抗肿瘤药物，可诱导肿瘤细胞凋亡。
d)Annexin V是一种可与磷脂酰丝氨酸（phosphatidylserine，PS）特异结合但不能通过正常细胞膜的物质。
碘化丙啶（propidium iodide，PI）是一种发出红色荧光的DNA结合染料，也不能透过活细胞完整细胞膜。
e)细胞凋亡早期，细胞膜PS由膜脂双层内侧转位至外侧，FITC标记的AnnexinV（AnnexinV-FITC）即可与其结合，使细胞膜处呈绿色。
细胞凋亡中晚期，膜通透性变大，PI可进入细胞与核内DNA结合。
f)激光共聚焦显微镜（LSCM）以单色激光作为光源，并用附设光源针孔(pinhole)使光源成为点光源.除此之外，在检测器前方也有一个检测针孔，点光源对标本内焦平面上的每一检测针孔后的光电点扫描，标本上的被照射点在检测针孔成像，由倍增管或冷电耦合器件逐点或逐线接受，迅速在计算机监视器屏幕上形成荧光图像，光源针孔与检测针孔的位置相对于物镜焦平面是共轭的，焦平面上的点同时聚焦于光源针孔和检测针孔，焦平面以外的点不会在检测针孔成像，这就是所谓的“共聚焦”，这样得到的共聚焦图像是标本的光学横断面，克服了普通显微镜图像模糊的缺点。
流式细胞仪检测细胞凋亡Annexin VPI双染色法
流式细胞仪检测细胞凋亡——Annexin V/PI双染色法
实验步骤
1. 细胞收集：悬浮细胞直接收集到10ml的离心管中，每样本细胞数为（1~5）×106，/mL 500~1000r/min离心5min，弃去培养液。
2. 用孵育缓冲液洗涤1次，500~1000r/min离心5min。
3. 用100ul的标记溶液重悬细胞，室温下避光孵育10~15min。
4. 500~1000r/min离心5min沉淀细胞孵育缓冲液洗1次。
5. 加入荧光（SA-FLOUS）溶液4℃下孵育20min，避光并不时振动。
6. 流式细胞仪分析：流式细胞仪激发光波长用488nm，用一波长为515nm 的通带滤器检测FITC荧光，另一波长大于560nm的滤器检测PI。
7. 结果判断：凋亡细胞对所有用于细胞活性鉴定的染料如PI有抗染性，坏死细胞则不能。
细胞膜有损伤的细胞的DNA可被PI着染产生红色荧光，而细胞膜保持完好的细胞则不会有红色荧光产生。
因此，在细胞凋亡的早期PI不会着染而没有红色荧光信号。
正常活细胞与此相似。
在双变量流式细胞仪的散点图上，左下象限显示活细胞，为（FITC-/PI-）；右上象限是非活细胞，即坏死细胞，为（FITC+/PI+）；而右下象限为凋亡细胞，显现（FITC+/PI-）。
热点实验：Annexin V凋亡流式双染与Tunel凋亡免疫组化案例介绍
原位末端凋亡法（Tunel）实验服务TUNEL实验技术简介：TUNE技术，即脱氧核苷酸末端转移酶(terminal deoxynucleotidyl transferase，TdT )介导的2dUTP 缺口末端标记(TdT-mediated dUTP nick end labeling，TUNEL ) 技术是目前原位检测细胞凋亡最敏感、快速、特异的新方法，已广泛用于生物、医学研究领域。
TdT-mediated dUTP nick end labeling (TUNEL)是一种用来检测细胞凋亡(apoptosis)的分析方法。
细胞凋亡有一项重要的特征为细胞内的DNA会碎裂成片段(DNA fragmentation)，TUNEL可以有效的去探测DNA片段的产生，所以可以传达细胞凋亡的讯息。
TdT为terminal deoxynucleotidyl transferase，此种酵素可以在没有DNA模板的情形下，连结核甘酸到DNA的3'-OH处。
1992年，以色列科学家Gavrieli等人将TdT引为为标定DNA片段的一个酵素，自此衍生出TUNEL此项技术。
TUNEL的好处是可以在细胞凋亡发生的早期，即可侦测到DNA片段的产生，并且可以直接使用在组织切片上，观察细胞凋亡发生的位置。
所以TUNEL目前为广泛接受与使用的一种细胞凋亡的分析方法。
实验服务注意事项1. 实验委托者提供实验分组情况及实验背景资料，有具体要求请事先说明；2. 实验委托者可提供组织块（以中性福尔马林或多聚甲醛固定，如组织块极小请事先说明）、蜡块或切片（使用免疫组化专用切片，以避免实验过程中掉片）；3. TUNEL染色完毕后，照相1-2张/每切片，如需要图片分析请事先说明；4. TUNEL试剂盒的购买：事先咨询嘉美生物，明确是否有该抗体可使用，如无则由双方协商公司代购。
标本收集、保存、运输1. 组织标本：事先应以10%的福尔马林或4%的多聚甲醛固定（后者同时适合免疫荧光检测）；2. 细胞检测：由实验室负责准备检测样本，实验委托者提供细胞或实验室负责提供细胞；3. 样本运输：样本密封完毕，建议以塑料瓶装好标本寄送以免路途损坏；如寄送切片则选择纸盒包装完好，周围加以泡沫或纸巾填塞以免路途损坏，常温寄送即可。
AnnexinV-PI 步骤
1.细胞处理，注意设置阴性对照。
2.准备1x Annexin-binding buffer(Component C)，5ml5X Annexin-binding buffer+20ml去离子水.3.准备100ug/ml的PI工作液。
（初始保存液(Component B) 浓度为1mg/ml，用1X Annexin-binding buffer 稀释10倍。
5ul(Component B) +45ul 1x Annexin-binding buffer）,将没用完的储存起来。
下次使用。
4.用预冷的PBS洗两次细胞，然后用500ul pbs将细胞吹下来，然后4°离心，1500r,7min,弃上清，然后用100ul 1xbuffer重悬，每管加入5ulannexinV和1ul PI工作液。
5.室温孵育15min.搜集细胞。
上流式1.细胞处理，注意设置阴性对照。
2.准备1x Annexin-binding buffer(Component C)，1ml5X Annexin-binding buffer+4ml去离子水.3.准备100ug/ml的PI工作液。
（初始保存液(Component B) 浓度为1mg/ml，用1X Annexin-binding buffer 稀释10倍。
5ul(Component B) +45ul 1x Annexin-binding buffer）,将没用完的储存起来。
下次使用。
4.配制染液（每孔100ul 1X buffer+5ul AnnexinV+1ul 1X PI）5.用预冷的PBS洗两次细胞，然后每孔加100ul上述染液。
6.室温孵育15min.7.每孔补加400ul1XAnnexin-binding buffer。
吹下来。
上流式。
AnnexinV-FITCPI双染法流式细胞术检测细胞凋亡
AnnexinV-FITCPI双染法流式细胞术检测细胞凋亡看到来我们眼科公共平台来使用Fortessa检测凋亡时，看到很多人都是泪流满面，鉴于此，作者大找网络资源结合自己的理解，针对普遍的问题给眼科的童鞋们一个交代，期待对大家有用，期待大家板砖！！Reference1. Galluzzi L, Aaronson SA, Abrams J, et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring cell death in higher eukaryotes. Cell Death Differ 2009; 16:1093-107.一、原理在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸（PS）只分布在细胞膜脂质双层的内侧，而在细胞凋亡早期，细胞膜中的磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。
Annexin V是一种分子量为35~36kD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力，故可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。
因此Annexin V被作为检测细胞早期凋亡的灵敏指标之一。
将Annexin V进行荧光素（FITC）标记，以标记了的Annexin V作为荧光探针，利用荧光显微镜或流式细胞仪可检测细胞早期凋亡的发生。
碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但对凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而使细胞核染红。
因此将Annexin V与PI（7-AAD也可以）匹配使用，就可以将处于不同凋亡时期的细胞区分开来。
二、注意事项1．Annexin V-EGFP，Propidium Iodide （PI）避光保存及使用。
2． Propidium Iodide （PI）有毒，操作时要戴手套。
3．推荐使用悬浮培养细胞，如果是贴壁细胞，用胰酶消化不当，会引起假阳性，而用细胞刮子会造成细胞粘连成团，而影响检测。
ANNEXIN V-FITC PI 凋亡检测试剂盒说明书
第1页，共3页ANNEXIN V-FITC/PI 凋亡检测试剂盒说明书注意：本产品试剂浓度发生变化，使用前请仔细阅读说明书。
货号：CA1020规格：20T/50T /100T保存：2-8°C ，避光保存，有效期1年。
产品说明：细胞凋亡早期改变发生在细胞膜表面，这些细胞膜表面的改变之一是磷脂酰丝氨酸(PS)从细胞膜内转移到细胞膜外，使PS 暴露在细胞膜外表面。
PS 是一种带负电荷的磷脂，正常主要存在于细胞膜的内面，在细胞发生凋亡时细胞膜上的这种磷脂分布的不对称性被破坏而使PS 暴露在细胞膜外。
Annexin V 具有易于结合到磷脂类如PS 的特性，对PS 有高度的亲和性。
因此，该蛋白可充当一敏感的探针检测暴露在细胞膜表面的PS 。
PS 转移到细胞膜外不是凋亡所独特的，也可发生在细胞坏死中。
两种细胞死亡方式间的差别是在凋亡的初始阶段细胞膜是完好的，而细胞坏死在其早期阶段细胞膜的完整性就破坏了。
因此，可以采用Annexin V 与PI 双染的方法，通过流式检测细胞早期凋亡。
操作步骤:1.细胞样品的准备：a)对于贴壁细胞：小心收集细胞培养液到一离心管内备用。
用不含EDTA 的胰酶消化细胞，至细胞可以被轻轻用移液管或枪头吹打下来时，加入前面收集的细胞培养液，吹打下所有的贴壁细胞，并轻轻吹散细胞。
再次收集到离心管内。
1000rpm 左右离心5min ，沉淀细胞。
对于特定的细胞，如果细胞无法完全离心至离心管底，可以适当延长离心时间或稍稍加大离心力。
小心吸除上清，可以残留约50µl 左右的培养液，以避免吸走细胞。
加入约1ml 4℃预冷的PBS ，重悬细胞，再次离心沉淀细胞，小心吸除上清。
b)对于悬浮细胞：1000rpm 左右离心5min ，沉淀细胞。
对于特定的细胞，如果细胞无法完全离心至离心管底，可以适当延长离心时间或稍稍加大离心力。
小心吸除上清，可以残留约50µl 左右的培养液，以避免吸走细胞。
AnnexinV-FITCPI双染法细胞凋亡检测试剂盒操作说明
AnnexinV-FITCPI双染法细胞凋亡检测试剂盒操作说明细胞凋亡是细胞的基本特征之一,它在机体的胚胎发育、组织修复、内环境的稳定等方面起着十分重要的作用。
在细胞凋亡过程中,细胞内膜的磷酯酰丝氨酸外翻到细胞外膜,而Annexin V(膜联蛋白V)对其有天然的高亲和能力,故可以用FITC标记(绿色荧光)的Annexin V来检测细胞凋亡,但本方法的缺点是不能区分早期和晚期的凋亡细胞。
早期和晚期的凋亡细胞的一个重要区别在于细胞膜的完整性(凋亡早期细胞没有丧失膜的完整性),故可以用碘化丙啶(PropidiumIodide,PI)来染色加以区分。
图源：网络Annexin V-FITC/PI双染法细胞凋亡检测试剂盒特点：1. 即开即用,不需要专门花时间准备各种成分。
2. 整合了Annexin V-FITC和PI检测法的优点,提高了凋亡细胞检测的灵敏度和特异性,本方法是目前极为灵敏的细胞凋亡检测方法。
3. 跟流式细胞仪、荧光显微镜或其它荧光检测兼容。
Annexin V-FITC/PI双染法细胞凋亡检测试剂盒操作步骤：(一)获得目的基因1、通过PCR方法:以含目的基因的克隆质粒为模板,按基因序列设计一对引物(在上游和下游引物分别引入不同的酶切位点),PCR循环获得所需基因片段。
2、通过RT-PCR方法:用TRIzol法从细胞或组织中提取总RNA,以mRNA为模板,逆转录形成cDNA第一链,以逆转录产物为模板进行PCR循环获得产物。
(二)构建重组表达载体1、Annexin V-FITC/PI双染法细胞凋亡检测试剂盒载体酶切:将表达质粒用限制性内切酶(同引物的酶切位点)进行双酶切,酶切产物行琼脂糖电泳后,用胶回收Kit或冻融法回收载体大片段。
2、PCR产物双酶切后回收,在T4DNA连接酶作用下连接入载体。
(三) 获得含重组表达质粒的表达菌种1、将连接产物转化大肠杆菌DH5α,根据重组载体的标志(抗Amp 或蓝白斑)作筛选,挑取单斑,碱裂解法小量抽提质粒,双酶切初步鉴定。
流式测凋亡原理步骤和结果判断
流式双染测凋亡原理、步骤和结果判断一、原理：磷脂酰丝氨酸（Phosphatidylserine, PS）正常位于细胞膜的内侧，但在细胞凋亡的早期，PS可从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面，暴露在细胞外环境中。
Annexin-V是一种分子量为35～36KD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力特异性结合。
将Annexin-V进行荧光素（FITC）标记，以标记了荧光素（FITC）的Annexin-V作为荧光探针，利用流式细胞仪可检测细胞凋亡的发生。
碘化丙啶(propidine iodide, PI)是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和坏死细胞，PI能够穿透细胞膜而使细胞核红染，所以PI主要检测坏死或中晚期调亡细胞（二者的膜都发生了破裂）。
因此将Annexin-V与PI匹配使用，就可以将早期凋亡细胞和中晚期以及坏死细胞区分开来。
二、步骤：1、无菌条件下获取新鲜的肝组织，置于事先消毒好的200目不锈钢细胞筛网上，下接50ml小烧杯。
用眼科剪把组织剪成小块，眼科镊去除小血管及结缔组织，用玻璃棒轻轻研磨组织，使细胞脱落。
待研磨充分后，用5％预冷的RPMI-1640液冲洗，收集小烧杯中单细胞悬液，随后以500-1000r/min离心5min ,弃上清。
重悬、离心洗涤2次 ,以获得较纯化的肝细胞。
将肝细胞悬液取样在光镜下用血细胞计数板计数，调节细胞数目至1×106 ∕ml。
2、取1ml单细胞悬液，用预冷的PBS洗涤两次，然后加入1×结合缓冲液1ml重悬细胞。
3、取100ul加入到5ml的培养管中，加入5ulFITC标记的Annexin-V和5ul PI，混匀后室温下避光孵育15min，然后再加入400ul的1×结合缓冲液。
整个操作过程动作要尽量轻柔，勿用力吹打细胞。
4、反应完毕后尽快在一小时内上机检测，用FL1通道检测FITC- Annexin V荧光，FL2通道检测PI荧光。
(AnnexinV-FITC) PI双染法检测肿瘤细胞坏死及凋亡情况
（Annexin V－FITC）/ PI双染法检测肿瘤细胞坏死及凋亡情况：原理：细胞膜组分磷脂酰丝氨酸（PS）在正常情况下位于细胞膜内侧，当细胞坏死或凋亡时，则迁移至细胞膜外侧。
磷脂结合蛋白V（Annexin V）是一种钙依赖性的磷脂结合蛋白，它与PS具有高度的结合力。
荧光素FITC 标记的Annexin V 可以作为探针检测暴露在细胞膜外侧的磷脂酰丝氨酸，指示坏死或凋亡的细胞。
FITC-Annexin V结合到细胞后，在蓝色光的激发下，发出绿色荧光。
碘化丙啶（Propidium iodide，PI）是一种核酸染料，它不能穿透完整细胞膜，但对凋亡晚期细胞和死细胞的破损细胞膜能够穿透，并使细胞核红染，而细胞膜保持完好的早期凋亡细胞则不会有红色荧光产生。
联合应用Annexin V-FITC和PI对培养体系中的细胞进行染色，Annexin V(-)/PI(-)代表健康活细胞，Annexin V(+)/PI(-)代表早期凋亡细胞，Annexin V(+)/PI(+)代表晚期凋亡细胞和坏死细胞，后两者之和即为受损细胞总量。
步骤：1．如上法构建杀伤体系靶细胞0.5ml、效细胞0.5ml，分别加入24孔培养板，置37℃、5％CO2培养箱中分别孵育3h、6h、12h；2. 把杀伤体系中的细胞培养液吸出至一合适离心管内（内含已经悬浮的发生凋亡或坏死的细胞）；3. PBS洗涤贴壁细胞一次，加入适量胰酶消化细胞，室温孵育至轻轻吹打可以使细胞吹打下来时，吸除胰酶，避免胰酶消化不够或消化过度；4. 加入收集的细胞培养液，轻轻吹打均匀，转移到离心管内，1000g 离心5min，弃上清，用1ml PBS轻轻重悬细胞并计数（细胞数量不少于1×105），然后1000g离心5min，收集细胞；5. 加入400μl 1×Binding Buffer 轻轻重悬细胞；6. 加入5μl AnnexinV-FITC，轻轻混匀，室温避光孵育15 min；7. 加入10μl PI染色液，轻轻混匀，冰浴避光放置5min；8. 在30min内进行流式细胞仪检测，AnnexinV-FITC为绿色荧光，PI为红色荧光。
anneinv和pi染色步骤及注意事项
a n n e i n v和p i染色步骤及注意事项集团标准化办公室：[VV986T-J682P28-JP266L8-68PNN]磷脂酰丝氨酸外翻分析（Annexin V法）磷脂酰丝氨酸（Phosphatidylserine, PS）正常位于细胞膜内侧，但在细胞凋亡早期，PS可从细胞膜内侧翻转到细胞膜表面，暴露在细胞外环境中。
磷脂酰丝氨酸的转位发生在凋亡早期阶段，先于细胞核的改变、DNA断裂、细胞膜起泡。
体内的吞噬细胞可通过识别磷脂酰丝氨酸来清除凋亡细胞。
Annexin-V（green）是一种分子量为35~36KD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力特异性结合，细胞处于调亡或坏死时，Annexin-V可为阳性（早期坏死细胞可能为阴性），是检测细胞早期凋亡的灵敏指标。
将Annexin-V进行荧光素（FITC、PE）或biotin标记，以标记了的Annexin-V作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测的发生。
PI和Annexin-V双标：碘化丙啶(propidine iodide, PI)是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而使细胞核红染。
因此将Annexin-V与PI匹配使用，就可以将凋亡早晚期的细胞以及死细胞区分开来。
*注意：时其DNA可染性降低被认为是凋亡细胞标志之一，但这种DNA可染性降低也可能是因为DNA含量的降低，或者是因为DNA结构的改变使其与染料结合的能力发生改变所致。
在分析结果时应该注意。
活细胞不能被Annexin V-FITC或PI染色（右图左下象限）。
早期凋亡细胞因磷脂酰丝氨酸的暴露及具有完整细胞膜，故呈Annexin V-FITC染色阳性及PI染色阴性（右图右下象限）。
坏死或晚期凋亡的细胞呈Annexin V-FITC及PI染色双阳性（右图右上象限）。
*注意：未处理的对照细胞进行常规培养的过程中也有一小部分的细胞死亡发生。
Annexin V和PI染色步骤及注意事项
磷脂酰丝氨酸外翻分析（Annexin V法）磷脂酰丝氨酸（Phosphatidylserine, PS）正常位于细胞膜内侧，但在细胞凋亡早期，PS 可从细胞膜内侧翻转到细胞膜表面，暴露在细胞外环境中。
磷脂酰丝氨酸的转位发生在凋亡早期阶段，先于细胞核的改变、DNA断裂、细胞膜起泡。
体内的吞噬细胞可通过识别磷脂酰丝氨酸来清除凋亡细胞。
Annexin-V（green）是一种分子量为35~36KD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力特异性结合，细胞处于调亡或坏死时，Annexin-V可为阳性（早期坏死细胞可能为阴性），是检测细胞早期凋亡的灵敏指标。
将Annexin-V进行荧光素（FITC、PE）或biotin标记，以标记了的Annexin-V作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测细胞凋亡的发生。
PI和Annexin-V双标：碘化丙啶(propidine iodide, PI)是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而使细胞核红染。
因此将Annexin-V与PI匹配使用，就可以将凋亡早晚期的细胞以及死细胞区分开来。
*注意：细胞凋亡时其DNA可染性降低被认为是凋亡细胞标志之一，但这种DNA可染性降低也可能是因为DNA含量的降低，或者是因为DNA结构的改变使其与染料结合的能力发生改变所致。
在分析结果时应该注意。
活细胞不能被Annexin V-FITC或PI染色（右图左下象限）。
早期凋亡细胞因磷脂酰丝氨酸的暴露及具有完整细胞膜，故呈Annexin V-FITC染色阳性及PI染色阴性（右图右下象限）。
坏死或晚期凋亡的细胞呈Annexin V-FITC及PI染色双阳性（右图右上象限）。
*注意：未处理的对照细胞进行常规培养的过程中也有一小部分的细胞死亡发生。
悬浮细胞的染色：Ⅰ、将正常培养和诱导凋亡的悬浮细胞（0.5×106）用PBS洗2次，加入200μlBinding Buffer和FITC标记的Annexin-V(20ug/ml)10μl及PI(50ug/ml)5μl,室温避光30min,加入400μlPBS，立即用FACScan进行流式细胞术定量检测（一般不超过1小时），同时以不加AnnexinV-FITC及PI的一管作为阴性对照。
AnnexinV-FITC-PI原理
annexinＶ-FITC(FL1 通道)+ PI（FL2通道）双染细胞，FITC阳性＋PI阴性细胞百％就是早期凋亡％。
一、原理磷脂酰丝氨酸（Phosphatidylserine，PS）正常位于细胞膜的内侧，但在细胞凋亡的早期，PS可从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面，暴露在细胞外环境中。
Annexin V 是一种分子量为35~36kD 的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能与PS 高亲和力特异性结合。
将Annexi n V 进行荧光素（FITC、PE）或Biotin 标记，以标记了的Annexin V 作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测细胞凋亡的发生。
碘化丙啶（propidine iodide，PI）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI 能够透过细胞膜而使细胞核红染。
因此将Annexin V 与PI 匹配使用，就可以将凋亡早晚期的细胞以及死细胞区分开来。
二、方法1、调整待检测细胞浓度为106个/ml，取200ul，1000rpm×5min(4℃)。
2、预冷的PBS1ml 润洗两次2，1000rpm×5min(4℃)。
3、将细胞重悬于100ul binding buffer，加入2ulAnnexin-V-FITC(20ug/ml)，轻轻混匀，避光冰上放置15分钟。
4、转至流式检测管，加入400ulPBS，每个样品临上机前加入1ulPI（50ug/ml），2分钟后迅速检测。
5、同时以不加Annexin V-FITC 及PI 的一管作为阴性对照。
三、注意事项1、整个操作动作要尽量轻柔，勿用力吹打细胞。
2、操作时注意避光，反应完毕后尽快在一小时内检测四、结果判定以AnnexinV为横轴，PI为纵轴；左上象限为机械性损伤细胞；右上为晚期凋亡细胞或者坏死细胞；左下为阴性正常细胞；右下为早期凋亡细胞。
细胞凋亡实验报告
一、实验背景细胞凋亡，又称程序性细胞死亡，是一种由基因调控的细胞自主性死亡过程。
细胞凋亡在生物体的发育、免疫、代谢等生理过程中具有重要作用。
近年来，细胞凋亡与多种疾病的发生、发展及治疗密切相关，因此，研究细胞凋亡的机制具有重要意义。
本实验旨在通过检测细胞凋亡相关指标，探讨细胞凋亡在特定细胞类型中的作用。
二、实验材料与试剂1. 细胞：实验用细胞为正常细胞系A和肿瘤细胞系B。
2. 试剂：Annexin V-FITC/PI双染试剂盒、RNA提取试剂盒、PCR试剂盒、DNA提取试剂盒、Trizol试剂、DEPC水、无血清培养基、胎牛血清、胰蛋白酶等。
三、实验方法1. 细胞培养：将正常细胞系A和肿瘤细胞系B分别接种于培养瓶中，置于37℃、5%CO2的细胞培养箱中培养。
2. 细胞凋亡检测：将正常细胞系A和肿瘤细胞系B分别分为实验组和对照组。
实验组加入凋亡诱导剂，对照组加入等量无血清培养基。
培养一定时间后，按照Annexin V-FITC/PI双染试剂盒说明书进行细胞凋亡检测。
3. RNA提取：将实验组和对照组细胞收集于离心管中，按照RNA提取试剂盒说明书提取细胞总RNA。
4. PCR检测：将提取的RNA进行逆转录，得到cDNA。
以cDNA为模板，进行凋亡相关基因的PCR扩增。
5. DNA提取：将实验组和对照组细胞收集于离心管中，按照DNA提取试剂盒说明书提取细胞DNA。
6.琼脂糖凝胶电泳：将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳，观察条带。
四、实验结果1. 细胞凋亡检测：实验组细胞凋亡率显著高于对照组（P<0.05），说明凋亡诱导剂成功诱导细胞凋亡。
2. RNA提取：成功提取实验组和对照组细胞总RNA。
3. PCR检测：实验组凋亡相关基因表达水平显著高于对照组（P<0.05），说明凋亡诱导剂上调凋亡相关基因表达。
4. 琼脂糖凝胶电泳：实验组凋亡相关基因PCR产物条带较对照组明显，说明凋亡相关基因在实验组中表达上调。
annexinvpi双染流式凋亡原理
annexinvpi双染流式凋亡原理
Annexin V/PI双染流式凋亡是利用FITC标记的 Annexin V蛋白和 PI 脱氧
核糖核酸来检测细胞凋亡状态，是目前敏感度检测细胞凋亡率最高的方法之一，
广泛应用于流式细胞术中研究细胞凋亡。
Annexin V/PI双染流式凋亡原理是基于
凋亡被动法面的研究。
Annexin V/PI双染流式凋亡原理的基本思想是，凋亡是一种特殊的细胞过程，变态的细胞做出正常核心细胞无法做出的反应，即内质网的膜糖的合成和移动。
当凋亡开始发生时，包括酰胺脂类和膜质网性糖在内的细胞面膜糖蛋白质发生变化，从中加入了糖类，也就是细胞膜上张力糖分子（Phosphatidylserine）。
Annexin V抗血凝蛋白，特异性地结合细胞膜上张力糖分子，而PI毒栄藻萘，用来排除细
胞膜的穿透性，仅仅凋亡细胞会染上该物质。
此外，Annexin V/PI双染可以检测
凋亡前，凋亡早期和凋亡晚期的细胞，有助于突出细胞状态的不同阶段时间差异。
Annexin V/PI双染流式凋亡可以用来快速、准确地检测细胞凋亡状态，广泛
应用于抗肿瘤新药开发领域、肿瘤靶向诊断技术、肿瘤治疗方法和药理学等领域。
它可以鉴别凋亡细胞的凋亡阶段，并指导临床凋亡治疗。
通过Annexin V/PI双染
流式凋亡技术，我们可以快速准确地观察细胞的变化，这是推进定量凋亡技术研究的重要进展。
invitrogen_AnnexinV_PI双染试剂盒说明书中文版
流式细胞仪1，使用特定的方法诱导细胞凋亡，设置一个没有处理的control组2，在一定孵育期后收获细胞，用冰冷的PBS清洗3，准备1X的annexin结合液，例如，对于10个实验来说，加1ml 5X annexin 结合液（组分C）到4ml 去离子水中4，准备一个100ug/ml的PI工作液，例如，通过稀释5ul 1mg/ml的PI储存液（组分B）到45ul 1X annexin 结合液中。
没有使用的这部分工作液用于以后的实验。
5，再次离心2步骤中洗过的细胞，弃上清用1X annexin 结合液重悬。
调整细胞密度，用1X的annexin 结合液稀释到大约1x106/ml，为每个实验准备100ul 足够的体积。
6，加5ul Alexa Fluor 488 annexin V(组分A)和1ul 100ug/ml PI工作液（4步骤中准备的）到每100ul的细胞悬液中。
7，室温孵育细胞15min.显微镜观察1，使用特定的方法诱导细胞凋亡，设置一个没有处理的control组2，在一定孵育期后收获细胞，用冰冷的PBS清洗3，准备1X的annexin结合液，例如，配置1ml，加200ul 5X annexin 结合液（组分C）到800ul去离子水中4，准备一个100ug/ml的PI工作液，例如，通过稀释5ul 1mg/ml的PI储存液（组分B）到45ul 1X annexin 结合液中。
没有使用的这部分工作液用于以后的实验。
5，再次离心2步骤中洗过的细胞，弃上清用1X annexin 结合液重悬。
调整细胞密度，用1X的annexin 结合液稀释到大约1x106/ml，为每个实验准备足够的体积。
6，加5-25ul的annexin V缀合物（组分A）和1-2ul(100ug/ml)PI工作液到100ul 的细胞悬液中。
高浓度的annexinV缀合物会产生较好的结果；最佳染色浓度需要凭借经验7，室温孵育细胞15min8，1X annexin 结合液清洗细胞9，用一个合适方法使细胞固定在载玻片上，用一个适当的滤镜观察荧光效果。
Annexin V-FITC PI荧光双染细胞凋亡检测试剂盒说明书
Annexin V-FITC / PI荧光双染细胞凋亡检测试剂盒货号: P-CA-201规格: 20Assays / 50Assays / 100Assays / 200Assays产品编号产品名称20Assays 50Assays 100Assays 200Assays Storage P-CA-101 Annexin V-FITC 染色液100 μL250 μL500 μL 1 mL 2~8℃. 避光P-CA-151 Annexin V Binding Buffer(10×) 1.4 mL×2 5.5 mL 11 mL 11 mL×2 2~8°C 碘化丙啶(PI)染色液P-CA-161 100 μL250 μL500 μL 1 mL 2~8℃, 避光说明书一份保存条件2~8℃可保存1年。
Annexin V-FITC禁止冷冻保存。
实验原理Annexin V-FITC/PI 荧光双染细胞凋亡检测试剂盒，可用于检测悬浮细胞和贴壁细胞的凋亡。
Annexin V是一种钙离子依赖性磷脂结合蛋白，与磷脂酰丝氨酸(PS) 有高度亲和力。
当细胞发生凋亡时，膜内侧的磷脂酰丝氨酸(PS) 外翻到膜表面，而被荧光染料FITC标记的Annexin V结合，可通过流式细胞仪或荧光显微镜进行检测。
由于凋亡晚期或坏死细胞膜丧失完整性，而碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）可与双链DNA特异性结合并产生强烈的荧光，与Annexin V搭配使用，可区分处于不同凋亡时期的细胞。
本试剂盒检测喜树碱诱导的Jurkat细胞凋亡效果如下图所示：Jurkat细胞用 5 μM喜树碱（Camptothecin）(左) 或未加药(右) 处理4 h，本试剂盒染色后流式检测。
Annexin V-FITC单阳细胞为早期凋亡细胞，AnnexinV-FITC和PI双阳细胞为坏死或晚期凋亡细胞，PI单阳细胞为裸核细胞。
BD556547凋亡试剂盒使用方法
BD556547凋亡试剂盒使⽤⽅法⼀、概述在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸只分布在细胞膜脂质双层的内侧，细胞发⽣凋亡早期，膜磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧，这⼀变化早于细胞皱缩、染⾊质浓缩、DNA⽚断化和细胞膜的通透性增加等凋亡现象。
AnnexinV是⼀种磷脂结合蛋⽩，与磷脂酰丝氨酸有⾼度亲和⼒，故可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。
因此AnnexinV被作为检测细胞早期凋亡的灵敏指标之⼀。
碘化丙啶（Propidium Iodide,PI）是⼀种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但凋亡中晚期的细胞和死细胞由于细胞膜通透性的增加，PI能够透过细胞膜⽽使细胞核染红。
因此将Annexin V与PI匹配使⽤，就可以将处于不同凋亡时期的细胞区分开来。
⼆、BD 556547 AnnexinV-FITC/PI细胞凋亡双染试剂盒的组份：556547a Annexin V Binding Buffer, 10X conc (51-66121E）556547b Annexin V-FITC (51-65874X)556547c Propidium Iodide Staining Solution(51-66211E)三、BD 556547 AnnexinV-FITC/PI细胞凋亡双染试剂盒的操作步骤：贴壁细胞需⽤0.25%的胰酶消化。
注意过度消化可损伤细胞。
在消化时可加2％的BSA可防⽌消化过度。
如果⽤含EDTA的胰酶消化时，注意必须清除EDTA：在标记前⽤1×PBS或1×bindingbuffer洗涤，清除EDTA，以免残余的EDTA与Ca2＋螯合，影响Annexin V的结合。
（1）⽤去离⼦⽔将10×Binding Buffer稀释成1×Binding Buffer；（2）细胞收集。
悬浮细胞收集：离⼼5分钟；贴壁细胞：⽤不含EDTA的胰酶消化收集后（注：胰酶消化时间不宜过长，否则会影响细胞膜上磷脂酰丝氨酸与Annexin V-FITC的结合），于室温2000rpm离⼼5～10分钟，收集细胞）（3）细胞洗涤：⽤预冷1×PBS（4℃）重悬细胞⼀次，2000rpm离⼼5～10分钟，洗涤细胞；（4）加⼊300µL 的1×Binding Buffer 悬浮细胞；（5）Annexin V-FITC标记：加⼊5µL的Annexin V-FITC混匀后，避光，室温孵育15分钟；（6）PI标记：上机前5分钟再加⼊5µL的PI染⾊。
annexinvpi双染色法原理
annexinvpi双染色法原理如下：
Annexin V是一种结合磷脂酰丝氨酸（PS）的蛋白质，在细胞凋亡过程中，细胞膜上的PS会外翻到细胞表面，因此Annexin V可以用来检测细胞凋亡的早期阶段。
PI是一种DNA染料，只有在细胞膜破裂后才能进入细胞内结合到DNA 上，因此PI可以用来检测细胞凋亡的后期阶段。
在Annexin V-PI双染色法中，首先使用含有Annexin V荧光标记的染料将细胞进行染色，荧光显微镜下观察细胞，此时可以检测到细胞膜上的PS，以及处于早期凋亡的细胞；然后再加入PI染料，使其进入细胞内，此时可以检测到处于晚期凋亡的细胞。
通过对Annexin V和PI染色的细胞进行分析和计数，可以得到凋亡细胞的比例和分布情况。
这种方法不仅可以检测凋亡细胞的数量，还可以区分凋亡的早期和晚期阶段，因此在细胞凋亡研究中得到了广泛应用。
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Annexin V是一种检测细胞凋亡的试剂，在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸只分布在细胞膜脂质双层的内侧，细胞发生凋亡早期，膜磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。
Annexin V作为一种磷脂结合蛋白，与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力，它通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。
因此Annexin V是检测细胞早期凋亡的灵敏指标。
细胞凋亡是细胞的基本特征之一，它在机体的胚胎发育、组织修复、内环境的稳定等方面起着十分重要的作用。
在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸（PS）只分布在细胞膜脂质双层的内侧，而在细胞凋亡早期，细胞膜中的磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。
AnnexinⅤ是一种分子量为35-36kD的Ca依赖性磷脂结合蛋白，能与细胞凋亡过程中翻转到膜外的PS高亲和力特异性结合。
用标记了FITC的AnnexinⅤ作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测细胞凋亡的发生，正常细胞和早期凋亡细胞的细胞膜是完整的。
Propidium iodide（PI）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜与细胞核结合呈现红色。
将AnnexinⅤ与PI匹配使用，可以将凋亡早期的细胞和晚期的细胞以及死细胞区分开来。
离心收集悬浮细胞，微量离心机转速2000RPM，离心时间5min，弃培养基；
用冷PBS洗涤细胞两次；
用400ul 1X Binding Buffer悬浮细胞，浓度大约为1 X 10 cells/ml；
在细胞悬浮液中加入5ul Annexin V-FITC，轻轻混匀后于2-8°C避光条件下孵育15分钟。
5. 加入10ul PI后轻轻混匀于2-8°C避光条件下孵育5分钟；
在1小时内用流式细胞仪或荧光显微镜检测。
使用流式细胞仪正确分析Annexin V-FITC/PI双染的细胞前要求仪器的荧光补偿来去除两种染料激发光之间的叠加。
因为荧光补偿设置与PMT的电压直接相关，所以不同仪器之间的补偿不同。
建议在实验开始阶段分析经Annexin V、PI分别单染的细胞来调整荧光补偿去除光谱重叠。
根据未处理细胞空白对照和经Annexin V、PI分别细胞染色后的单染对照的分析设定十字门的位置。
1.上样未经染色的细胞，在线性FS-SS点图上显示细胞并设门圈出目标细胞群体。
2.建立LogFL1-LogFL2（最好用FL3）双参数点图并分析以上光散射图中设门的细胞；保证>98%的细胞处于在X、Y轴Log 1为边界的左下象限中心区域。
3.检测annexin V-FITC单染的细胞并检查FL1-FL2（或FL3）散点图，保证在左上和右上象限内没有颗粒。
如果有颗粒出现在上端象限则说明有荧光渗漏；此时FL1的荧光被FL2 （或FL3）PMT检测到了。
为了纠正这种现象，增加FL1漏到FL2（或FL3）荧光的补偿%（这可能在1-5%之间）。
如果这个调节没有有效地去除FL2的阳性信号，此时要降低FL2（或FL3）PMT的电压。
4.检测PI单染的细胞并检查FL1-FL2（或FL3）散点图，保证在右上和右下象限内没有颗粒。
如果有颗粒出现在右侧象限则说明有荧光渗漏；此时PI的荧光被FL1 PMT检测到了。
为了纠正这种现象，增加FL2（或FL3）漏到FL1荧光的补偿%（这可能在15-25%之间）。
如果这个调节没有有效地去除FL1的阳性信号，此时要降低FL1 PMT的电压。
注：如果在以上调节补偿过程中更改了PMT的电压，建议重复3、4步骤，确保不引起过度荧光补偿。
过度补偿可以从阳性细胞十分贴近从标这一现象观察出来。
一个恰当的补偿应该是单阳性细胞荧光强度与落在左下Log 1为边界象限中间阴性细胞的荧光强度一致。
5.设定十字门的位置，FL1和FL2（或FL3）的划定方法如下：
5.1设定FL1标尺位置: 处于左下象限内的大群细胞是Annexin V染色阴性的细胞（一般这些细胞会在FL1轴方向上升至2个对数坐标值）。
将垂直的FL1标尺设定在紧靠Annexin V阴性群体右侧0.1-0.2Log单位的地方。
5.2 设定FL2 （或FL3）标尺位置: 可以通过一定数据的双阳性细胞来区分PI+和PI-的细胞群体。
在此条件下可能会识别出两群细胞，一是位于散点图的右下方（ANN+/PI-）还有就是右上方（ANN+/PI+）。
水平线可以置于这两群细胞的中间。
如果在分析的细胞群体中没有PI+细胞，区分PI+细胞最好是参照双阴性细胞群体，将水平线设在双阴性细胞以上0.1-0.3 Log单位的地方。
注：在阴性群体门以外的细胞可被识为Annexin V或Annexin V和PI阳性的细胞。
荧光显微镜观察：
滴一滴用Annexin V-FITC/PI双染的细胞悬液于载玻片上，并用盖玻片盖上细胞。
注：对于贴壁细胞，可直接用盖玻片培养细胞并诱导细胞凋亡。
在荧光显微镜下用双色滤光片观察。
Annexin V-FITC荧光信号呈绿色，PI 荧光信号呈红色。