尿液标本采集和运送操作规程

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临床检验标本采集、运输、保存操作规程

临床检验标本采集、运输、保存操作规程

临床检验标本采集、运输、保存操作规程临床检验标本采集、运输和保存操作规程第一章体液标本的采集、运输和保存操作规程一、尿液标本的采集、运输和保存尿液标本的采集、运输和保存是临床检验中非常重要的一环。

尿液干化学测定的检查项目包括尿液比重、pH值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖和抗坏血酸等。

同时也需要检测尿液有形成份,如红细胞和白细胞形态等。

此外,还需要检测24小时尿总蛋白、尿肌酐和尿尿酸等。

二、脑脊液标本的采集、运输和保存脑脊液标本的采集、运输和保存也是非常重要的。

在采集脑脊液标本时,需要注意消毒和无菌操作。

运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。

三、浆膜腔积液标本的采集、运输和保存浆膜腔积液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。

四、分泌物标本的采集、运输分泌物标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温。

五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温。

六、标本的采集、运输和保存标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。

七、前列腺液标本的采集、运输和保存前列腺液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。

八、粪便采集、运输和保存粪便采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。

采集时需要避免污染和空气污染。

运输时需要保持标本的低温,保存时需要在低温环境下保存。

第二章血液一般检验的标本采集、运输和保存操作规程一、未梢血标本采集未梢血标本采集需要注意消毒和无菌操作。

尿液标本采集的标准操作程序

尿液标本采集的标准操作程序

尿液标本采集的标准操作程序【目的】保证尿液检验的准确性。

【该SOP变动程序】本标准操作程序的改动,可由任一使用本SOP的工作人员提出,并报请专业组长及科主任签字后生效。

【一般要求】1、患者告知尿液标本采集,首先应告知患者关于尿液标本采集的目的,以及以头和书面的形式具体指导尿液标本留取的方法。

尿液标本采集的一般要求如下:1.1患者应处于安静状态,按平常生活饮食1.2用于细菌培养的尿标本须在使用抗生素治疗前采集,以有利于细菌生长1.3运动、性生活、月经、过度空腹或饮食、饮酒、吸烟及姿势和体位等可影响某些检查的结果1.4清洁外生殖器、尿道及周围皮肤,女性患者应特别避免阴道分泌物或经血污染尿液1.5如采用导尿标本或耻骨上穿刺尿标本,一般应由医护人员先告知患者及家属有关注意事项,然后由医护人员进行采集。

采集婴幼儿尿,应由儿科医护人员指导,用小儿专用尿袋收集。

2、明确标记在尿液采集容器和检验申请单上,应准确标记患者姓名、性别、年龄、留尿日期和时间、尿量、标本种类等信息,或以条形码做唯一标识。

信息标记尿标本容器、离心管(试管)、载玻片必须便于标记和识别,且应保持洁净。

信息标记必须粘贴于容器上,不能粘贴于容器盖,牢固且防潮,即使在冰箱内仍保持信息清晰完整。

【标本种类及采集方法】尿液标本类型的选择和收集方式取决于尿液检查目的(通常主要包括化学检查、尿有形成分显微镜检查和细菌学检查等,见表2)、患者状况和检验要求。

临床常用的尿液标本,依据时间或检测项目的分类如下:1、晨尿晨尿(first morning urine)指清晨起床、未进早餐和做运动之前排出的尿液。

通常晨尿在膀胱中的存留时间达6〜8h,各种成分较浓缩,已达检测或培养所需浓度。

可用于肾浓缩功能的评价、绒毛膜促性腺激素测定以及血细胞、上皮细胞、管型及细胞病理学等有形成分分析。

住院患者最适宜收集晨尿标本,然而在标本采集前1d,应提供患者尿采集容器和书面采集说明,如外阴、生殖器清洁方法、留中段清洁尿的注意事项等。

检验标本采集转运规范

检验标本采集转运规范

查验标本的采集、转运规范查验标本的采集一、血液标本的采集血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。

静脉血是最常用的标本,静脉穿刺是最常用的采血方法。

毛细血管采血主要用于小孩,血气剖析多使用动脉血。

(一)静脉采血法1.采血步骤采血前查对病人姓名、性别、年纪、编号及查验项目等,按试验项目要求,准备好相应的容器,如空白试管、抗凝管或促凝管等。

病人应取坐位或卧位,采血部位往常是前臂肘窝的正中静脉。

若用一般采血法,采血后应取下针头,将血液沿管壁迟缓注入试管内。

2.注意事项(1 )防备溶血:造成溶血的要素有注射器和容器不干燥、不洁净;淤血时间过长;穿刺不顺利,组织损害过多;抽血速度太快;血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大批泡沫;震荡过于强烈等。

若用一般注射器采血后,未取针头直接将血注入真空管内,也易造成溶血。

体内溶血属合格标本,但应在报告单上注明。

(2 )防止充血和血液浓缩:采血时应动作快速,尽可能缩短止血带使用时间。

用止血带压迫时间最好不超出半分钟,不然将使生化结果高升或降落。

(3 )若病人正在进行静脉输液,不宜在输液同侧手臂采血;若女性病人做了乳腺切除术,应在手术对侧手臂采血。

(4 )采血的体位:体位改变可惹起一系列的生理变化,使血液中的很多指标发生改变。

采血时要注意保持正确的体位(坐位或卧位),以及体位的一致性。

(5 )采血时只好向外抽,决不可以向静脉内推,免得注入空气,形成气栓而造成严重结果。

(6 )好多生化成分受饮食影响,所以,采血前要确认病人能否空肚。

(二)动脉采血法肱动脉、股动脉、桡动脉以及其余任何部位的动脉都能够作为采血点,但多项选择择肱动脉和桡动脉。

在摸到显然搏动处,按惯例消毒,左手固定搏动处,右手持注射器,针头成60°角刺入,血液将自动进入注射器内。

采血注意事项见血气剖析部分。

(三)真空采血法双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉,另一端插入真空试管内,血液在负压作用下自动流入试管内。

尿液采集和处理

尿液采集和处理

尿培养标本采集与运送标准操作规程尿液标本采集的一般要求一般要求①患者应处于安静状态,按平常生活饮食②用于细菌培养的尿标本须在使用抗生素治疗前采集,以有利于细菌生长③运动、性生活、月经、过度空腹或饮食、饮酒、吸烟及姿势和体位等可影响某些检查的结果④清洁外生殖器、尿道口及周围皮肤,女性患者应特别避免阴道分泌物或经血污染尿液⑤如采用导尿标本或耻骨上穿刺尿标本,一般应由医护人员先告知患者及家属有关注意事项,然后由医护人员进行采集。

采集婴幼儿尿,应由儿科医护人员指导,用小儿专用尿袋收集标本种类尿液标本类型和应用范围标本类型和采集方法应用范围随机尿常规筛检、细胞学研究等晨尿常规筛查、直立性蛋白尿检查、细胞学研究定时尿物质定量检测、细胞学研究、清除率试验等中段尿常规筛检、细胞学研究、微生物培养导管尿(经尿道)常规筛检、微生物培养导管尿(经输尿管)鉴别肾脏和膀胱感染耻骨上穿刺尿微生物(尤其厌氧菌)培养、常规筛查、细胞学研究容器的准备:1.用于收集尿标本的容器应保证清洁、无渗漏、无颗粒,其制备材料与尿液成分不发生反应。

容器和盖子无干扰物质附着,如清洁剂等。

2.容器的容积三50mL,收集24h尿标本容器的容积应为3L左右。

3.容器的开口为圆形,直径三4cm。

4.容器具有较宽的底部,适于稳定放置。

5.容器具有安全、易于开启且密封性良好的盖子。

6.推荐使用一次性容器。

7.收集微生物检查标本的容器应干燥、无菌。

患者自己收集的尿标本分为随机尿、晨尿和计时尿标本(包括24h尿)。

患者留取标本前,医务人员应对患者进行指导,给患者介绍留取标本的正确方法及有关注意事项,如语言无法交流,应给予书面指导,指导内容如下:a)患者留取标本前要洗手,以及实施其他必要的清洁措施;b)交给患者的尿液收集容器应贴有标签,并要求核对姓名;c)告知患者留取所需实验的最小标本量;d)指导患者留取标本时避免污染;e)指导患者留取标本后,将容器盖好,防止尿液外溢,并记录标本留取时间。

尿液标本采集技术规范

尿液标本采集技术规范

尿液标本采集技术规范【名词定义】取患者尿液做细菌培养。

【适应证】当患者出现尿频、尿急、尿痛、血尿、肾区疼痛等症状,同时可能伴有寒战、高热、白细胞计数升高,怀疑存在泌尿系感染;或尿常规结果提示泌尿系感染;或留置导尿管患者出现发热时,应考虑送检尿液标本。

无症状的患者不建议常规进行尿培养检测。

【禁忌证】禁止从集尿袋中采集尿液作标本,禁止取长期留置导管的导管尿液作为标本。

【目的】采集尿液标本进行微生物学检测,以诊断泌尿系统感染是单纯性尿路感染、复杂性尿路感染还是尿脓毒血症。

【制度与依据】1.本规范理论部分主要依据:中华预防医学会医院感染控制分会发表于2018年第28卷第20期中华医院感染学杂志的《临床微生物标本采集和送检指南》。

感染性疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导,而正确的病原学检测其前提是采集和送检合格标本。

因此,必须规范微生物标本的采集和运送,避免因标本的不合格,产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。

2.本规范操作部分主要依据:中华人民共和国国家卫生健康委员会2018年12月11日发布,2019年6月1日实施的《临床微生物学检验标本的采集和转运》,是中华人民共和国卫生行业标准,WS/T640—2018o本标准是按照GB/TL1—2009给出的规则起草;起草单位:北京大学人民医院、中日友好医院、安徽省立医院、首都医科大学附属北京友谊医院、北京医院、北京市垂杨柳医院;主要起草人:王辉、刘颖梅、张正、马筱玲、苏建荣、胡云建、宁永忠、王晓娟。

【准备】1.用物准备:医嘱单、尿液标本化验单或标本条形码、带螺帽无菌容器1个、检查手套、IOnIl注射器1个、75%酒精、棉签、利器盒、手消液,检查用物的有效期,物品处于备用状态。

2.环境准备:病室安静整洁,光线充足,适宜操作,关闭门窗(或窗帘),请无关人员回避,保护患者隐私。

3.护士准备:衣帽整洁,洗手戴口罩。

4.患者准备:患者处于安静状态,配合操作。

尿液培 养操作规程 SOP文件

尿液培 养操作规程  SOP文件

尿液培养操作规程之SOP文件1 检验目的做疾病的病原学诊断,查找于疾病有关的病原菌以及了解与疾病的关系,指导临床治疗及预后和流行病学的调查。

患有泌尿系感染时,尿中的数高于104/mL,以此作为诊断泌尿系感染依据。

2 原理使用BACT-IST黑马微生物鉴定系统,原理见鉴定系统操作规程。

3 标本要求(1)标本类型:中段尿液。

(2)标本采集:见标本采集手册(3)标本储存和运输:室温放置,室温运输并立即送检。

(4)标本拒收状态:非无菌方式采集的标本。

4 容器和添加剂类型使用灭菌器皿盛放标本,不加任何防腐剂。

5 试剂(1)试剂名称:革兰氏染液、氧化酶试剂、3%触酶、血平板、麦康凯平板、相关试剂等(2)试剂生产厂家:珠海黑马生物技术有限公司(3)包装规格:4X500Ml(4)试剂盒组成:试剂1:龙胆紫液试剂2:碘溶液试剂3:脱色液试剂4:沙黄溶液6设备:(1)接种针、接种环、酒精灯、(2)BACT-IST黑马微生物鉴定系统(3)、GNP-P270隔水式恒温培养箱、SW-CJ-IF超净工作台、MCO-15A三洋牌二氧化碳培养箱、0414-1台式、FA1004电子天平7 校准程序(送XX市计量质量检测研究所校准)8操作步骤(1)细菌的分离培养:用接种环取1uL标本接种于血平板及麦康凯琼脂培养基,35℃培养过夜,观察结果。

菌落生长者做菌落计数,并挑取优势菌菌落做纯培养。

(若初次分离菌落单一且生长较多时可直接做鉴定)(2)涂片:取菌落涂片做革兰氏染色,确认时G+或G-以及是球菌还是杆菌(球杆菌)。

(3)细菌鉴定及药敏实验:革兰氏阴性杆菌做氧化酶试验(必要时做动力试验),氧化酶试验阳性或氧化酶试验阴性但不利用葡萄糖不产酸者使用非发酵鉴定测试板;氧化酶试验阴性者则使用肠杆菌科细菌测试板;革兰氏阳性球菌(主要是成簇或四联排列),触酶试验阳性者接种葡萄球菌、微球菌鉴定/药敏测试板;触酶试验阴性者则接种链球菌鉴定/药敏测试板;革兰氏阴性双球菌,氧化酶试验阳性者使用淋球菌鉴定/药敏试剂盒测试。

尿培养标本采集与运送标准操作规程

尿培养标本采集与运送标准操作规程
尿培养标本采集与运送标准操作规程
适用对象:需采集尿培养标本的科室
文件编号:RJ-I核者:倪语星
版次:01
编写日期:2007-5-30
审核日期:2007-6-20
执行日期:2007-7-1
注:本文件程序仅供本院医务人员使用,未经同意,不得翻印
目的:正确采集尿培养标本并运送
内容:
一.采集指征
1.发热、尿频、尿急、脓尿、小便困难、耻骨上压痛等临床症状。
2.尿常规异常者
3.怀疑有泌尿系统感染时
二.采集方法
(一)普通中段尿采集
女性采样前用肥皂水或0.1%高锰酸钾溶液冲洗外阴部尿道口(男性须翻转包皮冲洗),用0.1%新洁尔灭或无痛碘消毒尿道口,灭菌纱布擦干。
为避免尿道周围皮肤及器官的正常菌群污染尿液,自然留取时,尿液需呈直线状排出,或插导尿管留取中段尿,但可能损伤尿道,应注意动作轻柔,严格无菌操作。消毒时按照中、左、右、中的顺序进行。
3.已用抗菌药或经导尿管采集的尿液,多次尿培养为单一的同种菌,细菌浓度虽未达到上述界限,也可认为是感染的病原菌。
4.尿培养显示浓度超过上述界限的但有三种或三种以上细菌和真菌时,应考虑污染菌可能。
5.尿培养中常见病原菌为大肠埃希菌、肠球菌等。
五.临床微生物标本送检的注意事项
1.所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在2小时内。如果不能及时送检,放置于冰箱内,但不要超过24小时。
三.注意事项:
1.采集的尿液标本放入无菌容器中立即送检,标本不能立即送检者,暂存4℃冰箱;但不得超过6h
2.在用药前采集尿液,不加防腐剂;
3.严格无菌操作,避免污染;
4.不可从集尿袋下端管口留取标本。
四.结果判断
1.正常人体内膀胱中的尿液是无菌的。

尿液标本采集和运送标准操作规程

尿液标本采集和运送标准操作规程

尿液标本采集和运送标准操作规程(SOP)
一、采集时机
宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。

二、采集方法
(一)清洁中段尿
1、女性:采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴,用手指分开阴唇,弃其前段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。

2、男性:采样前用肥皂水或0.05%-0.1%的聚维酮碘(碘伏)溶液等消毒液清洗尿道口,擦干后上翻包皮,弃其前段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。

(二)导尿管尿
1、直接导尿法:使用0.05%-0.1%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒会阴局部,用
导尿管直接经尿道插入膀胱,先弃其前段尿液约15ml,再留取中段尿液10-20ml于
无菌容器内。

2、留置导尿管法:医院内尿路感染中,临床最常用此法。

采集前先夹住导尿管,采集时则松管弃其前段尿液,使用0.25%-0.5%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位,使用无菌注射器斜刺入导尿管(从采样口或靠近尿道的导尿管管壁)抽取10-20ml尿液于无菌容器内。

三、标本运送:
标本采集后及时送检并接种,室温下保存时间不应超过2 h(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存)。

如果不能及时运送或接种,应4℃冷藏,但保存时间也不应超过8h。

四、注意事项
1、不应从集尿袋中采集尿液。

2、尿液中不应加防腐剂或消毒剂。

3、若尿液培养前患者曾使用抗菌药物,应反复多次送检。

4、多次采集或24h尿不应用于尿液培养。

5、除非进行流行病学调查,不应对长期留置导尿管患者常规进行尿液培养。

6、培养结果应结合临床表现、菌落计数以及微生物种类等,进行综合判断。

标本采集及运送制度

标本采集及运送制度

标本采集及运送制度〔一〕、各种标本采集:1、血液标本的采集依据化验单,认真核对患者身份。

釆血尽可能在上午7—9 点间进展。

病人采血前应禁食12 小时,以保证各类物质检验结果的恒定。

静脉采血时,除卧床病人,采血时一般取坐位,成人多用肘前静脉,肥胖者可用腕背静脉,婴幼儿常用颈静脉,偶用前肉静脉。

采血者要戴口罩,帽子,手套。

做到一人一巾一针一管,防止交义污染。

用一次性采血针由静脉采血,穿刺成功后应马上松开止血带,使用止血带的时间不应超过一分钟。

正在静脉输液者应停顿输液三分钟,从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。

消毒时,用络合碘拭子以静脉穿刺点为中心向外环状擦拭,消毒范围的直径至少为lcm。

需要全血或血浆,应将血液注入含有适当抗凝剂的真空采血管内,马上轻轻充分混匀。

需要血清标本,则直接将血液注入真空采血管内,待其凝固后分别血清。

2、尿液标本的采集一般以早晨第一次尿液作试验,其结果较为恒定牢靠。

采集时应避开月经血、及其他分泌物混入,容器务必清洁,必要时加防腐剂。

中段尿、导管尿等特别尿样的釆集一般III 医护人员行相关操作留取标本。

尿液标本应准时送检并在采集后2 小时内完成检验。

3、粪便标本采集宜颖,不行混有尿液,一般取指头大小,并取有病理成份的局部〔如脓血、粘液〕送检,外观无特别的从外表、深处及粪端多处取材,放于不吸水一次性干净专用盒内,检查阿米巴时应马上送检,并留意保温。

4、脑脊液标本的采集脑脊液一般由腰椎穿刺术取得,格外必要时也可由小脑髓池或脑室穿刺,收集于三支无菌管内,马上送检。

避开放置过久形成凝块、细胞破坏、葡萄糖分解、细菌溶解或死亡。

5>阴道分泌物标本的采集一般山妇科医师采集。

采集阴道分泌物标本前24 小时应避开性生活、盆浴。

应于各种治疗、检查前采集标本,避开阴道冲洗或上药,被检者在采样前2 小时不能排尿。

患者取膀胱截石位。

用阴道扩张器暴露宫颈,采样前,用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。

尿液标本采集

尿液标本采集

尿液标本采集规范
采集时机:宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。

清洁尿(中段尿、导尿、膀胱穿刺尿):适用于细菌培养,应注意无菌操作。

采集方法:1)清洁中段尿
女性:采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液等清洗外阴,用手指分开阴唇,弃其前端段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。

男性:采样前用肥皂水或0.05%-0.1%的碘伏溶液等清洗尿道口,擦干后上翻包皮,弃其前端段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。

2)导管导尿:
直接导尿法:使用0.05%-0.1%的碘伏溶液等消毒剂消毒会阴局部,用导尿管经尿道插入膀胱,先弃其前段尿液约15ml,再留取中段尿液10-20ml于无菌容器内。

留置导尿管法:采集前先夹闭导尿管,采集时则松管弃其前段尿液,使用0.25%-0.5%的碘伏溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位,使用无菌注射器斜刺入导尿管(从采样口或靠近尿道的导尿管管壁)抽取10-20ml尿液于无菌容器内。

标本运送:标本采集后应及时送检并接种,室温下保存时间不应超过2h(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存),如果不能及时送检或接种,应4℃冷藏,但保存时间也不应超过8h。

注意事项:不应从集尿袋中采集尿液。

尿液中不应加防腐剂或消毒剂。

多次采集或24小时尿不应用于尿液培养。

若尿液培养前患者曾使用抗菌药物,应反复多次送检。

不应对长期留置导尿管病人常规进行尿液培养。

2019年5月22日。

尿液标本采集及运送

尿液标本采集及运送
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无菌体液标本采集及运送
无菌体液标本—严格无菌穿刺采集; 生殖道标本—拭子采集、穿刺采集; 眼耳部标本—拭子采集,标本少时可床旁接种; 创伤、组织、脓肿标本—清洁消毒后采集交界部位,组织
可手术时采集; 静脉导管—取尖端5cm送检10; 尿导管—不适合培养。
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二、标本的实验室质量评估标准
第二十三章 临床常见病原体检测
第一节 标本的采集运送、实验室评价和检查 方法 第二节 抗感染药物的敏感性检测 第三节 临床感染常见病原体免疫检测 第四节 病毒性肝炎检测 第五节 性传播疾病病原体检测 第六节 医院感染常见病原体检查
第一节 标本的采集运送、实验室评价和 检查方法
一、标本采集与运送 二、标本的实验室质量评估标准 三、常用检查方法
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病原体的分离培养和鉴定
病原体分离培养是病原学诊断的关键步骤,分离出病原 菌后,才能进行鉴定和药敏实验。步骤如下: 选择适当的培养基; 适当的孵育条件; 挑取可疑菌落; 根据细菌镜下形态、染色1形5 和生化反应确定细菌种属; 需同时做药敏试验。
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临床一常、见标标本本采集与运送
血液及骨髓标本 脑脊液标本 尿液标本 呼吸道标本 粪便标本 无菌体液标本 生殖道标本 眼、耳部标本
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创伤、组织和脓肿标本 导管标本
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血培养采集及运送
当怀疑有菌血症或真菌血症时,应在抗生素使用前立即采集 血培养送检。 • 标本采集应尽量在抗生素使用前,发热初期或寒战时; • 短时间内多个部位采集,24小时内采血一般不超过3次(亚急
养标本; 厌氧菌培养,采用膀胱穿刺法收集、无菌厌氧小瓶运送; 24小时尿、尿袋内尿、导管末端7尿不能用于培养; 标本应立即送检,如不能立即送检应冷藏保存,但不能超过24小时。

尿液组学的送样方法

尿液组学的送样方法

尿液组学的送样方法
1. 采集样本,在进行尿液组学研究时,首先需要准备好采集尿液的容器。

一般情况下,使用无菌容器采集早晨起床后的第一次尿液是最为常见的方法。

这样采集的尿液样本更加浓缩,含有更多的代谢产物和蛋白质,适合进行组学分析。

2. 样本保存,采集好尿液样本后,需要尽快将其送至实验室进行分析。

如果不能立即送样,尿液样本应该保存在4摄氏度的冰箱中,避免长时间暴露在室温下,以防止样本中代谢产物的降解。

3. 样本处理,在送样之前,需要对尿液样本进行标本处理。

这包括离心、过滤等步骤,以去除尿液中的细胞残留和杂质,保证后续分析的准确性和稳定性。

4. 送样方式,送样的方式通常是将尿液样本放置在密封的容器中,并填写详细的样本信息,如采集时间、个体信息等。

然后将样本送至指定的实验室进行尿液组学分析。

5. 注意事项,在进行尿液组学研究时,需要遵守严格的标本处理和送样标准,以确保样本的质量和可靠性。

此外,还需要注意个
体差异、采集时间等因素对尿液组学分析结果的影响,以保证研究
的准确性和可靠性。

总之,尿液组学的送样方法包括采集样本、样本保存、样本处理、送样方式等多个环节,每个环节都需要严格遵守标准操作程序,以确保尿液样本的质量和可靠性,从而得到准确的组学分析结果。

尿培养标本采集与转运标准操作规程

尿培养标本采集与转运标准操作规程

尿培养标本采集与转运标准操作规程一、适应症1.患者出现尿频、尿急、尿痛、血尿、肾区疼痛等症状,同时可能伴有寒战、高热、白细胞计数升高,怀疑存在泌尿系统感染时;尿常规结果提示泌尿系统感染时;留置导尿管患者出现发热时。

2.对于门诊患者、大部分非复杂性泌尿系统感染患者,一般可采集清洁中段尿进行常规培养;对于有持续症状但既往培养未发现致病菌、有持续症状但治疗无效的患者以及怀疑为少见菌感染的患者,一般可通过耻骨上膀胱穿刺或膀胱导尿采集标本进行特殊培养.包括厌氧培养等。

3.对于留置导尿管患者,如无症状,通常不建议常规进行尿培养检测。

二、尿液标本的常用采集方法(一)清洁中段尿采集1.女性:在采集标本前分开大阴唇,用肥皂水充分清洗会阴部,再用清水冲洗尿道口周围。

2.男性:在采集标本前上翻包皮,用肥皂水充分清洗会阴部,再用清水冲洗尿道口。

3.拧开无菌杯盖,手持无菌杯外侧,避免接触杯口边缘。

先排出几毫升尿液丢弃,不停止尿流,然后用无菌杯盛装约10 ml尿液(>1 ml)。

4.立即盖上无菌杯盖,旋紧,避免溢洒。

5.及时送检。

尿标本采集后尽可能在30分钟内送检,室温下一般不超过2小时,如不能及时送检,普通采集容器应置于4°C冰箱内暂存;专用防腐转运管可置于室温下暂存,但均不应超过24小时。

(二)留置导尿管采集1.夹闭导尿管10-20分钟;2.消毒:用75%乙醴消毒导管近端采样部位周围外壁;3.穿刺收集:注射器穿剌进入导管腔,抽取5〜10 ml尿液置于无菌杯或专用转运试管中;4.立即盖上无菌杯盖,旋紧,避免溢洒;5.及时运送。

尿标本采集后尽可能在30分钟内送检,室温下一般不超过2小时,如不能及时送检,普通采集容器应置于4°C冰箱内暂存;专用防腐转运管可置于室温下暂存,但均不应超过24小时。

6.禁止从集尿袋中采集标本。

(三)耻骨上膀胱穿刺采集1.消毒:脐部与耻骨区域皮肤;2.局部麻醉:对穿刺部位进行局部麻醉;3.穿刺收集:在耻骨联合和脐部中线位置穿刺插入充盈的膀胱并吸取尿液约20 ml置无菌杯或专用转运试管中;4.立即盖上无菌杯盖,旋紧,避免溢洒;5.及时运送。

临床微生物学尿培养操作规范

临床微生物学尿培养操作规范

2.关于尿培育检验培育基的选择: 没有一种平板可以适合全部尿道病
原体的生长,所以应当依据标原来源 及临床对目标菌的要求选择适宜的培 育基和培育条件。一般培育推举使用 血平板和麦康凯〔或中国蓝〕平板, 不能以血平板代替麦康凯或中国蓝平 板。
一般标准。对一个试验室而言,假设仅使用一个 标准对试验结果进展解释,那么假设标准制定过 松,将会造成抗生素滥用和不必要的资源铺张; 制定过严,将有可能导致尿路感染的漏诊。所以 每个试验室应在与临床医生亲密合作的根底上, 依据不同的状况制定不同的解释标准。尿培育菌 落计数可受多种因素的影响,在一些患者即使菌 落计数较少,也有明显的临床意义,所以对菌落 计数<5×104CFU/ml,“标准”中认为无意义 的阳性结果,不应随便丢弃,必要时应依据患者 的具体状况或与临床医生联系后,打算是否需要 做细菌鉴定和药敏试验。
〔3〕一般培育18~24h无细菌生长时,应将全部培 养基连续培育24h。
四、结果观看和报告 1.结果观看和评价:
〔1〕菌落计数:计数平板上的菌落数, 承受1ul接种量者,将菌落数乘以103; 采10ul接种量者,将平板菌落数乘以 102,即为每ml尿液中所含有的细菌数 〔CFU/ml〕。如菌落生长过多无法准 确计数时,则报告>105CFU/ml。
感谢大家!
2.清洁中段尿培育结果评价和报告? 答:菌落计数<5×104 CFU/ml时,无意 义,仅报告菌落数及革兰染色特征,并注明 是纯培育或是混合菌生长。菌落计数为(5~ 10)×104 时,纯培育有意义,报告菌落计 数和菌种鉴定及药敏试验结果;混合菌生长 无意义,仅做革兰染色镜检,并报告镜检结 果。菌落计数>105 时,纯培育或混合菌生 长,其中某种细菌数≥105者有意义,需进 展细菌鉴定及药敏试验;4种及以上细菌生 长无意义,报告标本污染。

尿液培养标准操作流程

尿液培养标准操作流程

尿液培养标准操作流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。

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尿液标本的采集运送及注意事项

尿液标本的采集运送及注意事项

尿液标本的采集运送及注意事项一、尿液标本采集方法1.术前准备:首先,需要告知患者不要将任何物质加入到尿液中,以免影响检测结果。

其次,要确保采集器具的干净和无菌。

最后,告诉患者应该如何采集尿液,可以提供一份详细的指导。

2.采集容器的选择:一般选择尿杯或尿采集器作为采集容器,采集容器需要干净、无菌,并且能够密封以保持尿液的新鲜度。

3.采集尿液的步骤:首先,要确保私密性,让患者有安全感。

然后,患者需要用清洁水清洗外阴部,女性患者需要用清洁纸擦拭从前向后。

接着,患者用尿杯接尿,要保证中段尿,即排尿时先让一小部分尿液排入厕所,然后将接尿杯放入尿流中采集尿液,最后在接满尿液后,轻轻拧上尿盖,确保密封。

4. 采集尿液的数量:一般采集40-60ml的尿液,以确保有足够的样本供检测使用。

5.记录相关信息:采集完尿液后,需要在采集容器上标明患者的姓名、性别、年龄、住院号、采集时间等重要信息,以免混淆。

二、尿液标本运送方法1.时间要求:尿液标本采集完后,尽快送到检验科室,尽量保持标本的新鲜度,一般在2小时之内送检为宜。

2.标本的保存:如果无法及时送到检验科室,可以将尿液标本放置在干净、无菌、密封的容器中,并放置于4℃的冰箱中保存,但不要冻结,以免影响检测结果。

三、尿液标本注意事项1.采集过程中应避免污染:采集尿液时,注意不要将采集容器与外界物品接触,以免污染尿液样本。

同时,女性患者要确保从前向后擦拭,以防细菌沾染。

2.采集尿液的时间:对于需要检测晨尿的项目,应该在患者早晨刚醒后采集尿液,尽量避免其他时间段的尿液采集。

3.饮食和药物干扰:在采集尿液前,要告知患者避免进食过多的黄色食物,如胡萝卜、柚子等,以免影响尿液的颜色。

此外,还要询问患者是否正在服用特殊药物,如利尿剂、抗生素等,以免影响检测结果。

4.注意顺序:在单个患者需要进行多项尿液检测的情况下,应按照特定的顺序采集样本,以免互相干扰。

以上就是尿液标本的采集、运送及注意事项的详细介绍。

尿培养标本采集与运送标准操作规程

尿培养标本采集与运送标准操作规程

尿培养标本采集与运送标准操作规程目的:正确采集尿培养标本并运送一.采集指征1.发热、尿频、尿急、脓尿、小便困难、耻骨上压痛等临床症状。

2.尿常规异常者3.怀疑有泌尿系统感染时二.采集方法(一)普通中段尿采集女性采样前用肥皂水或0.1%高锰酸钾溶液冲洗外阴部尿道口(男性须翻转包皮冲洗),用0.1%新洁尔灭或无痛碘消毒尿道口,灭菌纱布擦干。

为避免尿道周围皮肤及器官的正常菌群污染尿液,自然留取时,尿液需呈直线状排出,或插导尿管留取中段尿,但可能损伤尿道,应注意动作轻柔,严格无菌操作。

消毒时按照中、左、右、中的顺序进行。

如果需要可收集第一段尿液数毫升作淋球菌和衣原体检查;不中止排尿,在排去数毫升尿液后用无菌试管收集第二段尿,即为所需中段尿。

(二)留置导尿尿标本采集培养前,有条件者可夹管4~5小时以上,使细菌有足够的时间繁殖,以提高阳性率。

采样时应松管弃去前端尿液,左手戴无菌手套固定导尿管后,按中、左、右、中的顺序,严格消毒尿道口处的导尿管壁,用无菌注射器针头斜穿管壁抽吸尿液。

不可打开导尿管和引流管连接处收集标本。

三.注意事项:1.采集的尿液标本放入无菌容器中立即送检,标本不能立即送检者,暂存4℃冰箱;但不得超过6h;2.在用药前采集尿液,不加防腐剂;3.严格无菌操作,避免污染;4.不可从集尿袋下端管口留取标本。

四.结果判断1.正常人体内膀胱中的尿液是无菌的。

2.中段尿以晨起第一次尿液为主,其革兰阴性杆菌浓度大于105/ml,革兰阳性球菌大于104/ml可认为是感染的病原菌,反之污染菌可能性大。

真菌浓度大于103~4/ml可认为感染菌。

3.已用抗菌药或经导尿管采集的尿液,多次尿培养为单一的同种菌,细菌浓度虽未达到上述界限,也可认为是感染的病原菌。

4.尿培养显示浓度超过上述界限的但有三种或三种以上细菌和真菌时,应考虑污染菌可能。

5.尿培养中常见病原菌为大肠埃希菌、肠球菌等。

五.临床微生物标本送检的注意事项1.所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在2小时内。

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尿液标本采集和运送操作规程
1 Women and Children ' Hospital
1.目的
规范尿液标本采集和运送,提高标本检测合格率。

2.范围
医院科室/部门、员工、医学学员、患者、来访者。

3.定义
无。

4.内容
4.1采集时机:宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿
液。

4.2采集方法:
4.2.1清洁中段尿:
4.2.1.1女性:采样前用肥皂水或0. 1%的高锰酸钾溶液
等冲洗外阴,弃去前段尿,不终止排尿,留取中段尿10 - 20mL 于无菌容器内。

4.2.1.2男性:采样前用肥皂水或0. 05%-0.1010的碘伏消毒液清洗消毒
尿道口,弃去前段尿,不终止排尿,留取中段
尿10 - 20mL于无菌容器内。

422耻骨上膀胱穿刺:
4.2.2.1主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。

4.2.2.2消毒穿刺部位皮肤,然后使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿
液10 - 20mL于无菌容器内。

4.2.3导尿管尿:
4.2.3.1直接导尿法:0.5010碘伏消毒会阴局部,用导尿管直接经尿道插人膀胱,先弃其前段尿液约15mL,再留取
中段尿液10 - 20mL于无菌容器内。

4.2.3.2留置导尿管法:采集前先夹住导尿管,采集时弃其前段尿液,消毒导尿管的采样部位,使用无菌注射器斜刺人导尿管(从采样口或靠近尿道的导尿管管壁)抽取10 -
20mL尿液于无菌容器内。

4.233回肠造口导尿管法:摘除导管,弃去里面的尿液,消毒吻合口后,再将导尿管插入到清洁的吻合口,直至筋膜的深部采集10 - 20mL尿液于无菌容器内。

4.2.4小儿收集包:
4.2.4.1对于无自控能力的小儿可采用收集包采集尿液,
这种方法易污染产生假阳性。

424.2如果检验结果为阳性,应结合临床进行分析,必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。

4.3标本运送:标本采集后应及时送检,室温下保存时间不应超过2小时(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存)如果不能及时运送或接种,应4C冷藏,但保存时间也不应
超过8小时。

4.4注意事项:
4.4.1不应从集尿袋中采集尿液。

4.4.2尿液中不应加防腐剂或消毒剂。

4.4.3若尿液培养前患者曾使用抗菌药物,应反复多次送
检。

4.4.4除非进行流行病学调查,不建议对长期留置导尿管患者常规进行尿液培养。

4.4.5培养结果应结合临床表现、菌落计数以及微生物种
类等,进行综合判断。

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