1坐骨神经腓肠肌标本
实验一 坐骨神经腓肠肌标本的制备 骨骼肌收缩PPT演示课件
六、结果分析（作业）
3、观察和记录单收缩和复合收缩曲线（不完全强 直和完全强直收缩）并对其特性进行分析（刺 激神经或肌肉任选一种），测出复合收缩的临 界刺激频率
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直收缩现象
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二、原理
腓肠肌由许多肌纤维组成，刺激腓肠肌时，不同的刺激强度会引起肌 肉的不同反应。当刺激强度过小时，肌肉不发生收缩反应，刺激为阈 下刺激。而能引起肌肉发生收缩反应的最小刺激为阈刺激，刺激的强 度称为阈强度，当全部肌纤维同时收缩时，出现最大的收缩反应，引 起最大收缩反应的最小刺激强度称为最适刺激强度。
2连接实验装臵将张力换能器和肌槽固定在铁支架上肌肉标本的股骨固定于肌槽侧面的小孔中腓肠肌跟腱的结扎线连于张力换能器的受力片上连线应松紧适宜并与桌面垂直张力换能器的输入端与第四通道相连步骤3调节刺激器改变刺激强度从弱到强观察刺激强度变化对肌肉收缩的影响步骤步骤4单收缩的分析电极直接刺激腓肠肌测量单收缩的3个时程
实验一 第一部分
坐骨神经腓肠肌标本的制备
1
目的和原理
• 蛙类的某些基本生命活动和生理功能与哺 乳类动物有相似之处，而且其离体组织的 生活条件比较简单，易于控制和掌握，来 源也较丰富，由此在生理学实验，尤其是 细胞生理学的某些实验中，常用蛙或蟾蜍 的坐骨神经腓肠肌标本来观察神经肌肉的 兴奋性、刺激与反应的规律及肌肉收缩的 特点等。制备具有正常兴奋收缩功能的蛙 类坐骨神经腓肠肌标本是生理学实验的基 本操作技术之一。
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• 6、完成坐骨神经腓肠肌标本：将已
游离的坐骨神经搭在腓肠肌上。用粗剪 刀自膝关节周围向上剪除并刮净所有大 腿肌肉，在距膝关节约1cm处剪断股骨。 弃去上段股骨，保留部分即为坐骨神经 腓肠肌标本
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坐骨神经腓肠肌标本制备实验结论
坐骨神经腓肠肌标本制备实验结论一、实验目的二、实验原理三、实验步骤四、实验结果五、实验结论一、实验目的本次实验的主要目的是通过坐骨神经腓肠肌标本制备，了解人体肌肉组织的结构和特点。
同时，通过对标本制备过程中各个步骤的操作，掌握标本制备技能和方法。
二、实验原理1. 坐骨神经腓肠肌标本制备原理坐骨神经腓肠肌标本制备是指将动物或人体组织切割成薄片并进行染色处理，使其能够在显微镜下观察。
在这个过程中，需要进行以下几个步骤：（1）取样：从动物或人体中取出需要观察的组织样品。
（2）固定：将组织样品放入固定液中进行固定处理。
（3）包埋：将固定后的组织样品放入包埋剂中进行包埋处理。
（4）切片：将包埋后的组织样品切成薄片。
（5）染色：将切片进行染色处理，使其能够在显微镜下观察。
2. 坐骨神经腓肠肌结构原理坐骨神经腓肠肌是人体下肢的一部分，由坐骨神经支配。
它主要由三个部分组成：大腿后侧的半膜状肌、半腱状肌和小腿后侧的胫长伸肌。
这三个部分都是由肌纤维束组成的，每个束内又包含有许多个单独的肌纤维。
三、实验步骤1. 取样：从动物或人体中取出需要观察的组织样品。
2. 固定：将组织样品放入10%福尔马林液中进行固定处理，固定时间为24小时。
3. 包埋：将固定后的组织样品放入包埋剂中进行包埋处理，包埋时间为48小时。
4. 切片：将包埋后的组织样品切成厚度为5微米左右的薄片。
5. 染色：将切片进行染色处理，常用染色方法有HE染色法和Masson染色法等。
本次实验采用HE染色法进行染色处理。
6. 封片：将染好色的切片放入玻璃片上，加上封片胶，用玻璃片盖住，使其能够在显微镜下观察。
四、实验结果经过以上步骤的操作，制备出了坐骨神经腓肠肌标本。
在显微镜下观察到了肌纤维束组成的三个部分：半膜状肌、半腱状肌和胫长伸肌。
每个束内又包含有许多个单独的肌纤维。
五、实验结论通过本次实验，我们了解到了坐骨神经腓肠肌标本制备的基本步骤和操作方法，并且通过观察标本结构，掌握了人体肌肉组织的结构和特点。
坐骨神经-腓肠肌标本的制备
8、检验标本
01.
用经任氏液蘸湿的锌铜弓的两极，接触 神经，观察腓肠肌是否收缩！
02.
此标本用于神经干兴奋传导、神经-肌肉 接点的传递以及骨骼肌收缩等实验研究
பைடு நூலகம்意：
1. 保护标本——神经和肌肉：不用赃的皮肤碰标 本，不用自来水冲洗标本，不用金属接触神经以 及损伤肌肉。
2. 注意标本的完整，尤其注意保存股骨头一定的长 度
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坐骨神经——腓 肠肌标本的制备
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• • 方法
目的要求： 学习蛙类动物毁髓的方法 学习掌握蛙类腓肠肌及坐骨神经——腓肠肌标本的制备
步骤：
双毁髓
剥离后肢标本
分离两后肢
分离坐骨神经
分离股骨头
游离腓肠肌
检验标本
完整的神经肌肉标本应包括以下几个部分
1、首先准备手术所需的用品
动物瘫软如泥。
3、剥离后肢标本
动物腹面向上放置于蜡盘，手术镊轻轻提 起耻骨联合上方，剪开皮肤，再剪开体壁 肌肉，然后轻轻提起内脏，自耻骨部剪断 （勿伤脊神经），把内脏拨向头端，剪断 脊柱。然后一手捏住脊柱后端，另一手向 后撕剥皮肤，并除去头端肢体和内脏
4、分离两后肢
把去皮的后肢腹面向上置于玻璃板上， 于耻骨联合处按压刀刃，切开耻骨联合。 然后用金冠剪剪开两后肢相连的肌肉， 并纵向剪开脊柱。
5、分离坐骨神经
将一侧后肢的脊柱端腹面向上，趾端向外 侧翻转，使其足底向上，用固定针将标本 固定在玻璃板下面的蛙板上。用玻璃分针 分离坐骨神经。股部的坐骨神经在股二头 肌与半膜肌之间。
6、分离股骨头或胫腓骨头
动物小，留股骨头 1cm
动物大，留胫腓骨 头1cm
7、游离腓肠肌
生理学实验报告-《坐骨神经-腓肠肌标本的制备》
实验二-坐骨神经标本—腓肠肌标本的制备一、实验目的：1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本及腓肠肌的制备方法。
3.了解电刺激的极性法则。
二、实验原理：1、牛蛙作为实验动物的优势：离体实验是动物生理学主要的实验方法之一。
两栖动物是冷血动物，其基本生理机能与温血动物近似，而其离体组织器官维持活性所需要的条件比较简单，因此它常被选为生理学实验提供离体组织或器官的实验动物。
蟾蜍或青蛙坐骨神经—腓肠肌在任氏液中可维持生理活性数小时，在其基础上还可进一步制作神经干标本、腓肠肌标本，可用于研究肌肉收缩的特性，神经和肌肉的兴奋性、传导性，刺激与反应的关系，神经肌肉接头活动等生理活动及相关机制，甚至还可以用于药物筛选如抗疲劳药物的模型。
其中牛蛙人工养殖成本低产出率高，相对蟾蜍要更安全。
因此，本次实验选择牛蛙作为实验对象。
2、锌铜弓刺激检测标本活性的原理：锌铜弓在溶液中沾湿以后，锌的表面电离出正离子，里面形成负离子；而铜的表面电离出负离子,里面形成正离子。
当用锌铜弓接触活组织时，电流便沿着锌一活组织→铜的方向流动而产生刺激效应。
所以锌相当于正极,面铜相当于负极发挥刺激作用；当断开时，则发生相反的效应。
锌的金属电势比铜低，形成一定的电势差（就相当于有电压），锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起，另一段分开，则接触样本（例如神经干）时，会引起样本局部去极化，引发动作电位。
三、实验器材：牛蛙，常用手术器械（手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、毁髓针、玻璃分针)，蜡盘，蛙板（木质或硬泡沫塑料），玻璃板，固定针，锌铜弓，培养皿或不锈钢盘，污物缸，滴管，纱布，粗棉线，任氏液。
四、实验流程和步骤：1.牛蛙的双毁髓一手握住牛蛙，背部向上。
用拇指压住牛蛙的背部，食指按压其头部前端，使头端向下低垂；另一手持毁髓针，由两眼之间沿中线向后触划，当触及两耳中间的凹陷处（此处与两眼的连线成等边三角形）时，持针手即感觉针尖下陷，此处即是枕骨大孔的位置。
坐骨神经-腓肠肌标本制备
使用轮转式切片机将组织切成薄片，调整切片厚度以满足实验要求。
染色
染色液选择
根据实验需要选择适当的染色液，如苏木素-伊红染色液 （H&E）、Masson三色染色液等。
染色过程
将切片放入染色液中，按照染色液的要求进行染色处理，以 便更好地观察组织结构和细胞形态。
03 结果观察
显微镜观察
观察神经纤维的排列和结构
结果对比
结果解释
02
03
Байду номын сангаас
结果应用
将实验结果与预期结果进行了对 比，分析了实验误差产生的原因。
对实验结果进行了详细的解释， 阐明了实验现象背后的原理和机 制。
探讨了实验结果在现实生活和生 产中的应用前景，为后续研究和 应用提供了参考。
实验改进与优化
实验方法优化
针对实验过程中存在的问题和不足，提出了 改进措施和方法，以提高实验效率和准确性 。
实验设备升级
针对实验设备的局限性和不足，提出了设备升级和 改进的建议，以提高设备的性能和稳定性。
实验流程完善
针对实验流程的缺陷和不足，提出了完善和 优化的建议，以使实验流程更加合理和高效 。
THANKS FOR WATCHING
感谢您的观看
肝素钠 葡萄糖溶液
02 实验步骤
取材
取材前准备
01
确保实验环境清洁，准备好所需器材和试剂，如手术刀、镊子、
固定液、脱水剂、包埋剂等。
选取适宜的坐骨神经-腓肠肌标本
02
选择健康、新鲜的动物，如小白鼠或大白鼠，并确保所选标本
无病变或损伤。
剥离组织
03
使用手术刀和镊子仔细剥离坐骨神经和腓肠肌周围的脂肪和结
生理学实验——坐骨神经-腓肠肌标本制备
4、分离坐骨神经：
将一侧后肢的脊柱端腹面向上，趾端向外侧翻转，使其足底向上，用固 定针将标本固定在蛙板上。用玻璃分针在半膜肌和股二头肌之间分离出坐骨 神经。注意分离时要仔细用剪刀剪断坐骨神经的分支，勿伤神经干，前面分 离至脊柱坐骨神经丛基部，向下分离至腘窝。保留与坐骨神经相连的一小块 脊柱，将分离出来的坐骨神经搭于腓肠肌上，或放于蛙板上。
注意事项
1.破坏脑、脊髓要完全，以蟾蜍四肢松弛、无自发运动为准。 2.制作标本过程中，应经常用任氏液湿润标本，以防标本干 燥，丧失活性。 3.分离神经须用玻璃分针，不可用金属器械，操作过程中应 避免过度牵拉及损伤神经。 4.股骨保留不可过短，否则标本不易固定。
思考题
神经上的兴奋如何传递给骨骼肌的？试述其过程及特点。
基本要求
实验准备：穿隔离衣、戴手套、携带实验指导和实验报 告纸 实验分组：按分组名单分组并确定组长 实验报告：认真书写，按时完成，下次实验上课上交 卫生打扫：清洗器械及实验台，打扫实验室卫生、
垃圾分类处理
实验报3.实验原理 4.实验步骤 5.实验结果：按实验项目逐一描述，利用图表展示具体数据 6.结果分析：就实验结果进行分析与讨论 7.思考题
5、分离股骨头：
去除膝关节周围以上的全部大腿肌肉，用剪刀刮净股骨上附着的肌肉， 保留约1cm的股骨。
6、游离腓肠肌：在腓肠肌的跟腱处穿线结扎，在结扎处远端剪断并
游离腓肠肌至膝关节处，最后在膝关节处剪断。完成坐骨神经支配的腓肠肌 标本。
7、检验标本活性：用经任氏液蘸湿的锌铜弓的两极，接触神经，观
察腓肠肌是否收缩。
2、剪除躯干上部及内脏：
在骶髂关节上约1cm处用粗剪刀剪断脊柱，将头、前肢和内脏一并弃 去，仅保存一段脊柱和后肢。脊柱的两旁可见坐骨神经丛。
坐骨神经腓肠肌标本制备实验结论
坐骨神经腓肠肌标本制备实验结论【知乎文章格式】坐骨神经腓肠肌标本制备实验结论1. 引言坐骨神经腓肠肌标本制备是生物学研究中常用的重要实验之一。
通过掌握该实验的结果和结论，我们可以更好地理解腓肠肌的结构与功能，以及与坐骨神经的关系。
本文将对坐骨神经腓肠肌标本制备实验的结论进行深入探讨，并分享我对该实验的观点和理解。
2. 实验方法回顾在进行坐骨神经腓肠肌标本制备实验前，我们需要准备一具成年小鼠标本。
将小鼠安乐死并取出下肢部分。
根据实验设计的要求，切割开腓肠肌，暴露坐骨神经。
接下来，将坐骨神经和腓肠肌分离，并制备成适当大小的标本。
可选地对标本进行染色或其他后续处理。
3. 实验结论通过坐骨神经腓肠肌标本制备实验，我们可以得出以下结论：3.1. 标本制备的合理性在进行标本制备实验时，需要确保充分保留腓肠肌和坐骨神经的完整性。
只有在标本保持完整的前提下，才能准确观察和研究腓肠肌的结构和功能。
在实验中应尽量避免对标本进行过多的切割和处理。
3.2. 标本观察结果标本制备实验的观察结果显示，腓肠肌呈细长的形态，由多束肌纤维组成。
坐骨神经与腓肠肌相连接，通过神经末梢向肌纤维传递信号。
腓肠肌标本的形态和结构对进一步研究其功能提供了必要的基础。
3.3. 实验注意事项在进行坐骨神经腓肠肌标本制备实验过程中，有几个重要的注意事项需要考虑。
实验操作应细致谨慎，以免对标本造成破坏。
在标本制备过程中，应避免应力过大或过度牵拉，以免影响标本的完整性。
在实验时还需要注意保持实验环境的卫生和洁净，以减少污染对实验结果的干扰。
4. 我的观点和理解在我看来，坐骨神经腓肠肌标本制备实验是一项重要且有意义的研究方法。
通过观察和研究标本，我们可以更全面地了解腓肠肌的结构特点和功能特性，为进一步深入研究提供必要的基础。
我认为在进行标本制备实验时，我们应注重细节和准确性。
只有确保标本的完整性和质量，才能得到可靠的实验结果。
注意实验操作中的细致和规范，可以减少人为因素对实验结果的影响。
实验1坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握蛙类的捉拿和破坏脑
实验1 坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握蛙类的捉拿和破坏脑脊髓的方法，掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术、获得兴奋性良好的标本。
【实验原理】蟾蜍及蛙类的一些基本生命活动与哺乳动物相似，又因其离体组织在短时间内所需的生活条件简单，易于控制和掌握，因此在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标本来观察兴奋和兴奋性、刺激与反应及肌肉收缩等基本生理现象。
因而制备坐骨神经腓肠肌标本是生理学实验中必须掌握的一项基本技能。
【实验对象】蟾蜍或青蛙。
【实验用品】蛙类手术器械一套，（普通剪刀、手术剪刀、眼科剪、组织镊子、眼科镊子、探针、锌铜弓、玻璃分针、蛙板、玻璃板、蛙钉）任氏液、方瓷盘、培养皿、棉线、纱布、滴管等。
【实验步骤】1.破坏脑和脊髓取蟾蜍一只，用左手握住蟾蜍，食指按压头部前端，拇指按压背部，使头部前俯；右手持金属探针由头端沿中线向尾方划触、触及凹陷处即枕骨大孔的所在。
将探针由凹陷处垂直刺入2~3mm，刺破皮肤即入枕骨大孔，这时将探针尖端水平转向头方，向前探入颅腔内，然后向各方搅动探针，以捣毁脑组织。
脑组织捣毁后，将探针退出；再由枕骨大孔刺入，并水平转向尾方，与脊髓平行刺入椎管，来回抽动探针以彻底破坏脊髓。
当动物四肢肌肉的紧张性完全消失时，提示脑和脊髓完全破坏（见图2-1）。
2.剪除躯干上部及内脏在骶髂关节水平以上1～1.5cm处剪断脊柱。
左手握止蟾蜍后肢、用拇指压止骶骨，使蟾蜍头与内脏自然下垂，右手持普通剪刀（严禁用手术剪剪骨骼），沿脊柱两侧剪除一切内脏及头胸部，留下后肢、骶骨、脊柱以及紧贴于脊柱两侧的坐骨神经。
剪除过程中注意勿损伤坐骨神经。
3.剥皮左手握紧脊柱断端（注意不要握住或压迫神经），右手捏住其上的皮肤边缘、用力向下剥掉全部后肢的皮肤（图2-2 ）4.清洗把剥皮后的标本放在盛有任氏液的培养皿中。
将手及用过的剪刀、镊子等全部手术器械洗净，再继续下面步骤。
注意剥皮后的标本不能用自来水冲洗。
5.分离两腿用镊子夹住脊柱标本背面朝上，剪去向上突起的尾骨（注意勿损伤坐骨神经）。
实验1坐骨神经-腓肠肌标本的制备
实验１坐骨神经-腓肠肌标本的制备实验目的掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
实验原理蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与恒温动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。
因此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
实验器材和药品蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。
实验对象蟾蜍。
实验方法和步骤1．破坏脑和脊髓以左手持蟾蜍，将其腹面朝向手心，前肢夹在食指和中指之间固定，后肢夹在无名指和小指之间固定，并用拇指按压蟾蜍头部使之下俯30－40度角；然后右手持金属探针沿蟾蜍头部的中线下划，可触及一凹陷处即为枕骨大孔(此处与两眼的连线成等边三角形)。
将探针从枕骨大孔垂直刺入1－1.5mm，再向前刺入颅腔，左右搅动（如毁髓针确在颅腔内，实验者可感到针尖触及颅骨），破坏脑组织；再将探针退回至进针处，但不拔出而是转向后方刺入椎管，破坏脊髓。
彻底捣毁脊髓时，可看到动物的后肢突然蹬直，而后瘫软如棉，此时的动物为双毁髓动物。
如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如，必须重新毁髓。
操作过程中应注意使蟾蜍头部向外侧(不要挤压耳后腺)，防止耳后腺分泌物射人实验者眼内(如被射入，则需立即用生理盐水冲洗眼睛)。
破坏脑和脊髓成功后，蟾蜍出现四肢（尤其是后肢）瘫软，并常有尿失禁现象。
2．剪去躯干上部及内脏用粗剪刀在两侧腋部稍下（或在骶髂关节以上1.5－2cm处）剪断脊柱，用左手握住蟾蜍后肢，拇指按压骶骨，使蟾蜍头部及内脏自然下垂；避开腰骶神经丛后，右手用粗剪刀沿脊柱两侧剪开腹壁，在耻骨联合处将躯干上部及内脏剪掉，弃入废物缸内。
3．剥皮左手持大镊子夹住脊柱断端 (小心勿伤神经)，右手捏住脊柱断端的皮肤边缘，逐步向下剥去全部后肢皮肤。
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生理学实验一、神经和肌肉实验1 坐骨神经腓肠肌标本的制备坐骨神经干标本的制备【实验目的】学习坐骨神经腓肠肌和坐骨神经干标本的制备方法。
【实验原理】两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物类似，但其离体组织所需存活条件比较简单，易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蛙或蟾蜍的离体组织或器官作为实验标本来观察组织的兴奋性、兴奋过程、兴奋性的变化以及骨骼肌的收缩特点等。
【实验对象】蟾蜍(或蛙)。
【器材和药品】蛙类手术器械一套(蛙板、玻璃板、探针、粗剪刀、组织剪、眼科剪、眼科镊、大头针、玻璃分针、搪瓷碗、培养皿、滴管、纱布、丝线)、锌铜弓、任氏液。
【操作步骤和观察项目】(1)破坏脑和脊髓：左手持蛙，用食指下压头部，拇指按压背部，使头前俯。
右手持探针从枕骨大孔处垂直刺入，再将针插向前方刺入颅腔搅碎脑组织。
将探针退回进针处，向下刺入椎管捣毁，待蛙四肢松软，表明脑和脊髓已完全破坏（图5-1）。
图5-1 破坏蛙脑和脊髓图5-2 横断脊柱图5-3 剪断躯干上部及内脏图5-4 剥离皮肤(2)剪除躯干上部及内脏：在骶髂关节水平以上1cm处剪断脊柱，将头、前肢及内脏一并剪除，保留腰骶部脊柱及后肢。
在腹部脊柱的两旁可以见到坐骨神经丛(图5-2、图5-3)。
(3)剥皮：左手捏紧脊柱断端，右手捏住断端处皮肤边缘，用力向下剥掉全部后肢皮肤(肛门皮肤粘膜移行处先行剪开)，把标本放入任氏液中，洗净手及所有用过的器械(图5-4)。
(4)游离坐骨神经：将后肢标本腹面向上用大头针固定于蛙板上，沿脊柱两侧用玻璃分针分离坐骨神经，用普通剪刀剪下一小段与神经相连的脊柱，提起脊柱，逐一剪去神经分支。
从耻骨联合处将两下肢分开。
将一侧下肢背面向上，用玻璃分针划开梨状肌及附近的结缔组织，循坐骨神经沟(股二头肌与半膜肌之间)找出坐骨神经的大腿部分，提起坐骨神经，小心剪断坐骨神经的所有分支，一直游离到膝关节(图5-5)。
图5-5 坐骨神经走向示意图图5-6 蛙坐骨神经腓肠肌标本示意图(5)游离腓肠肌：将分离干净的坐骨神经搭于腓肠肌，在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉，并用普通剪刀将股骨刮干净，在股骨中部剪去上段股骨。
坐骨神经腓肠肌标本制备实验原理
坐骨神经腓肠肌标本制备实验原理下载提示：该文档是本店铺精心编制而成的，希望大家下载后，能够帮助大家解决实际问题。
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实验一坐骨神经腓肠肌标本的制备、刺激强度和刺激频率与骨骼肌收缩反应的关系
实验目的
1、学习并掌握坐骨神经—腓肠肌标本 的制备方法。 2、观察刺激强度和收缩反应的关系。
3、观察骨骼肌的强直收缩。
一、基本原理：
腓肠肌由许多肌纤维组成，刺激支配腓肠 肌的坐骨神经时，不同的刺激强度会引起 肌肉的不同反应。肌组织对于一个阈上强 度的刺激，发生一次迅速的收缩反应，称 为单收缩，可以引起肌肉发生最大收缩反 应的最小刺激强度为最适刺激强度。当同 等强度的连续阈上刺激作用于标本时，则 出现多个收缩的叠加，此为强直收缩。
注意事项：
1 避免蟾蜍体表毒液和血液污染标版，压 挤、损伤和用力牵拉标本，不可用金属器 械触碰神经干。 2 在操作过程中，应给神经和肌肉滴加任 氏液，防止表面干燥，以免影响标本的兴 奋性
3 标本制成后须放在任氏液中浸泡数分 钟，使标本的兴奋性稳定，再开始实验 效果会较好
四、结果分析
1标记“刺激强度与肌肉收缩的关系”曲 线、编辑并打印结果；标出最适刺激强 度
在操作过程中应给神经和肌肉滴加任氏液防止表面干燥以免影响标本的兴标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟使标本的兴奋性稳定再开始实验效果会较好四结果分析1标记刺激强度与肌肉收缩的关系曲线编辑并打印结果
实验一
坐骨神经腓肠肌标本的制备、刺激强度 和刺激频率与骨骼肌收缩反应的关系
哈尔滨师范大学生命科学与技术学院
（二）标本与仪器的连接
1、刺激强度与肌肉收缩的关系：点击桌 面RM度对骨骼肌收缩的影响→手动点 击左侧，选择→显示刺激标注→强度（v） →记录键→开始刺激→记录键→存盘。
2、刺激频率与肌肉收缩的关系： 实验→肌肉神经→刺激频率对骨骼肌收 缩的影响→常规实验→手动：点击左侧， 选择→显示刺激标注→频率[Hz]→点击 刺激器强度（修改数值）→记录键→开 始刺激→开始存盘 。
实验一坐骨神经腓肠肌标本的制备
（5）制成坐骨神经小腿标本 取一蛙后肢放在蛙板上，使背面向上，辨认清楚坐骨神经沟的位置和腓肠肌等，用剪刀剪断梨状肌及其附近的结缔组织，左手持剪刀或玻璃针沿坐骨够细心游离坐骨神经，一直到腘窝为止。遇到坐骨神经的分支，应小心的剪断，切勿损伤神经主干。将游离的坐骨神经放在小腿的肌肉上。沿膝关节的周围将大腿的所有肌腱剪断，刮净股骨下端附着的肌肉。在股骨的上三分之一与中三分之一交界处，用粗剪刀剪去上端股骨及所附的肌肉，即制成坐骨神经小腿标本。游离腓肠肌，完成坐骨神经腓肠肌标本的制备：在坐骨神经小腿标本的基础上，用玻璃针或镊子将腓肠肌跟腱分离并穿线结扎，在结扎出的下端将跟腱剪断，用结扎线提起腓肠肌，剪去周围的结缔组织游离腓肠肌，直到膝关节为止。用粗剪刀在膝关节下将小腿剪去，留下的即为坐骨神经腓肠肌标本，包括2-3节椎骨、坐骨神经、下端股骨、膝关节和腓肠肌。
（6）检验标本的兴奋性（机能状态） 用浸有任氏液的锌铜弓轻轻接触神经以刺激之，若腓肠肌有灵敏的收缩反应，则表明标本的兴奋性良好，可将标本放于任氏液中备用。
注意事项 制备标本时应避免损伤神经，并常滴任氏液液湿润神经和肌肉。
实验五 坐骨神经腓肠肌标本的制备
1、实验目的
（1）学习并掌握蛙类动物双毁髓的实验方法。
（2）学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
2、实验原理
蛙和蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动与温血动物近似，但其离体组织所需的生活条件则比较简单，且易于控制，因此在生理实验中常用其离体组织或器官作为实验标本。如蛙或蟾蜍的坐骨神经腓肠肌标本，可用来观察和研究兴奋性、兴奋的过程、刺激引起兴奋的条件、兴奋在神经-及接头处的传递、肌肉收缩的特点等多种生理现象，所以制备坐骨神经-腓肠肌标本，是生理实验的一项基本操作技术。
实验1 蛙坐骨神经–腓肠肌标本制备、1
实验1 蛙坐骨神经–腓肠肌标本制备、刺激频率对肌肉收缩的影响【目的要求】1.学习坐骨神经–腓肠肌标本的制备方法。
2.分析探讨刺激频率对肌肉收缩的影响。
【原理】刺激坐骨神经能引起腓肠肌产生收缩。
在其他条件不变情况下，不断增大刺激频率可引起肌肉收缩形式发生改变。
若刺激频率较小，两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩和舒张所持续的时间（即单收缩）时，肌肉收缩表现为一连串的单收缩；若增大刺激频率，使两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩的收缩期时间，而小于单收缩时，肌肉呈现不完全强直收缩；若继续增加刺激频率，使两次刺激间隔时间小于一次肌肉收缩的收缩期时间，肌肉则表现出完全强直收缩。
【器材】蟾蜍或蛙；任氏液；二道生理记录仪、双脉冲刺激器、肌槽、常规手术器械、玻璃分针、毁髓针、锌铜弓、解剖盘、烧杯、滴灌、任氏液等。
【步骤】1、双毁髓：左手握蟾蜍，背部向上。
用食指按压其头部前端，拇指压住躯干的背部，使头向前俯；右手持毁髓针，由两眼之间中线向后方划触，触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。
将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔，然后针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以毁脑组织。
再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转向后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。
脊髓彻底捣毁时，可看到蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软，此时的动物为双毁髓动物。
2、剥制后肢标本：左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤，右手持手术剪横向剪断皮肤，然后往后肢方向撕剥皮肤。
剪开腹壁肌肉，用手术镊提起内脏，翻向头部，在看清支配后肢的脊神经发出部位后，于其前方剪断脊柱。
3、分离两后肢：将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上，右手持金冠剪纵向剪开脊柱，再剪开耻骨联合，使两后肢完全分离。
4、分离坐骨神经：将一侧后肢的脊柱端腹面向上，用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经，股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝，找出坐骨神经，剪断盖在上方的梨状肌，完全暴露坐骨神经，剪去支配腓肠肌之外的分支，再剪去脊柱及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。
1坐骨神经-腓肠肌标本的制备与骨骼肌的收缩反应
2 材料和方法
2.1 材料 蟾蜍、蛙类手术器械、支架、肌动器、张力
换能器、生物信号采集处理系统、任氏液。
2.2 方法
2.2.1 蟾蜍或蛙坐骨神经腓肠肌标本制备
毁蟾蜍脑脊髓
剪除躯干上部及内脏
去皮
完成标本的坐骨神经部分
（ 1 ）为什么刺激神经会引起肌肉收缩，在一定的刺 激强度范围内，为什么肌肉收缩的幅度会随刺 激强度的增大而增大？ （ 2 ）分析讨论不完全强直收缩与完全强直收缩的条 件与机制？
（3）为什么刺激频率增高肌肉收缩的幅度也增大？
坐骨神经-腓肠肌标本的
肌肉和其它任何活组织一样，都具有兴奋性。当受到刺激而发
生兴奋时，便表现出收缩活动的反应。一个短促的阈上刺激直
接作用于肌肉或通过神经间接作用于肌肉，则肌肉发生一次收 缩，这一现象称为单收缩；如果使两个相继的刺激作用于骨骼
肌，而第二个刺激正好落在第一个刺激所引起的收缩期或舒张
2.2.2 实验装置连接
2.2.3 实验观察
（1）刺激强度对骨骼肌收缩的影响 使用单刺激或自动强度调节方式，波宽为0.1ms， 刺激强度从零开始逐渐增大，观察肌肉收缩反应， 找出刚能引起肌肉出现微小收缩的强度 （即阈强
度）。
（2）刺激频率对骨骼肌收缩的影响 用较强的连续刺激，刺激频率按2 Hz、15 Hz、30 Hz逐渐增加，观察不同频率刺激的肌肉收缩变化。
（3）刺激强度对骨骼肌收缩的影响
初始刺激强度为 0.05V ，增量为 0.05V ，启动刺激，
顺序刺激肌肉标本，观察不同强度刺激的肌肉收缩 变化。
2 结果
（1）整理实验所得曲线，并在曲线下注明刺激强度和
坐骨神经腓肠肌标本制备顺序
坐骨神经腓肠肌标本制备顺序坐骨神经腓肠肌标本制备顺序是进行解剖学研究和医学诊断的重要步骤。
它涉及到将坐骨神经和腓肠肌样本准备成适合观察和分析的形式。
以下是标本制备的一般顺序：1. 选择适当的动物模型或人体样本：坐骨神经和腓肠肌标本可以从动物模型或人体中获取。
在选择样本时，需要考虑到研究的目的和特定的实验要求。
2. 获取标本：在动物模型中，可以通过解剖手术或动物牺牲来获得坐骨神经和腓肠肌标本。
在人体样本中，可以通过手术获取标本，或者在尸检过程中收集。
3. 固定标本：为了保持样本的形态结构和细胞组织的完整性，需要将标本进行固定。
常用的固定剂包括福尔马林、乙醛和缓冲盐水。
固定时间的长短会因样本的大小和类型而有所不同。
4. 切割标本：在固定完成后，需要将标本进行切割。
这可以使用显微切片机或手动刀具来完成。
切割的厚度和方向应根据研究的需要进行调整。
5. 石蜡包埋：切割完成后，需要将标本进行石蜡包埋。
这个过程包括将标本浸泡在不同浓度的石蜡溶液中，使其逐渐渗透和固化。
6. 制作组织切片：石蜡包埋完成后，可以使用组织切片机将标本切割成所需的厚度。
切片的厚度通常为5-10微米。
7. 制作染色切片：为了更好地观察组织的细胞结构和组织学特征，可以对切片进行染色，如常见的血液和组织染色方法。
8. 镜检和分析：制作好的染色切片可以用显微镜观察，并进行相关的分析和测量。
这些分析可以涉及到细胞数量、组织结构和病理变化等方面。
总而言之，坐骨神经腓肠肌标本制备的顺序包括获得标本、固定、切割、石蜡包埋、制作组织切片、染色以及镜检和分析。
这些步骤的正确执行有助于获得高质量的标本，进而促进相关研究和诊断的进展。
坐骨神经腓肠肌标本制备实验报告
坐骨神经腓肠肌标本制备实验报告
实验目的：
本实验的目的是为了熟练掌握坐骨神经腓肠肌标本制备的方法，了解其组织结构和功能。
实验原理：
坐骨神经腓肠肌是人体大腿部一个较为重要的肌肉，其向下延伸直至小腿后面，在这个过程中穿过髁突下缘成为胫后神经。
在制备坐骨神经腓肠肌标本时，需先用剪刀将腓肠肌清晰地分离出来，然后用解剖刀将腓肠肌割开，取出其中间的神经和血管，最终在显微镜下观察其组织结构。
实验步骤：
1.将新鲜坐骨神经腓肠肌标本取出，清洗干净。
2.用清水将腓肠肌表面的杂质和污物清洗干净。
3.用手按压腓肠肌，找到神经和血管的位置。
4.用剪刀沿着神经和血管的位置将腓肠肌分离。
5.用解剖刀将腓肠肌割开，取出其中间的神经和血管。
6.将标本置于显微镜下，调节放大倍数，观察其组织结构。
实验结果：
在实验中制备的坐骨神经腓肠肌标本中，可以观察到神经和血管的位置和分布情况，以及腓肠肌纤维和肌肉组织的结构和排列方式。
实验结论：
通过本实验，我们可以熟练掌握坐骨神经腓肠肌标本制备的方法，了解其组织结构和功能，为进一步研究坐骨神经腓肠肌在生理和病理情况下的作用提供了基础。
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观察结果：
用已经湿润的铜锌弓两端先后接触坐骨神经，可观察到腓肠肌产生一次收缩。
并且课观察到先用铜极接触，后用锌极接触时坐骨神经的收缩强度大于先用锌极接触后用铜极接触的收缩强度。
讨论分析：
铜锌弓在溶液中沾湿以后，锌的表面店里出正离子，里面形成负离子，而铜的表面电离出负离子，里面形成正离子。
当铜锌弓接触或组织时，电流便沿着锌片，活组织，铜片的方向流动产生刺激反应。
所以锌相当于正极，而铜相当于负极。
正极的电势高于负极。
所以锌极后接触坐骨神经时，收缩的强度比较大。
任氏液的组成模拟了两栖动物的血浆成分，含有神经传导所需的钠离子钾离子葡萄糖等物质，并起维持渗透压的作用。
神经与肌肉是可兴奋组织，神经细胞的静息膜电位为外正内负，坐骨神经接受一次刺激时，膜对钠离子的通透性增加，细胞外的任氏液中的钠离子顺浓度梯度内流，导致膜内负电位减小，当达到阈电位时，钠离子通道全部开放，钠离子大量内流，细胞内正电荷增加，膜内负电位从减小到消失，进而出现膜内正电位。
动作电位产生。
由于任氏液是导电的，于是在膜的兴奋段和未兴奋段之间，会由于电位差的存在而产生电荷的移动。
于是刺激就顺着坐骨神经传导。
当传递到腓肠肌时，即由神经兴奋到肌肉收缩，这个过程就是神经传导电信号，电信号传导至神经-肌肉节点即为突触，轴突末梢膜的钙离子通道开放，膜对钙离子的通透性增加，钙离子就由细胞外进入轴突内。
钙离子浓度增高可促进大量囊泡向接头前膜靠近，囊泡膜与接头前模发生融合而破裂，囊泡中的递质乙酰胆碱通过胞作用释放入接头间隙，电信号转化为了化学信号，递质作用于突触后膜（也就是肌肉细胞膜），产生胞内信号，使储存于肌质网中的钙离子释放，引起肌肉收缩。
整个标本包括了神经中枢，传出神经即坐骨神经，效应器即腓肠肌。
缺少接收器和传入神经。
结论：
整个标本不是一条完整的反射弧，不是一次反射，只能算为反应。
电刺激可以通过坐骨神经传导并能是腓肠肌产生收缩。
说明标本制备成功。