食品微生物检验——单增李斯特菌
(十)-单核细胞增生李斯特氏菌检验标准操作程序
DBS22 DBS22/019—2012吉林省食品安全地方标准食品中单核细胞增生李斯特菌的定量检测2013年发布 2013年实施吉林省卫生厅发布前言本标准根据GB/T1。
1—2000《标准化工作导则第1部分:标准的结构和编写规则》的要求编写.本标准分为两种检测方法:第一法:单核细胞增生李斯特氏菌平板计数法;第二法:MPN计数法。
其中第一法适用于污染较严重的食品,第二法适用于单核细胞增生李斯特氏菌含量较低而杂菌含量较高的食品。
本标准负责起草单位:吉林省疾病预防控制中心、长春市疾病预防控制中心.本标准负责起草人:刘桂华、龚云伟、李月婷、赵薇吉林省食品安全地方标准食品中单核细胞增生李斯特菌的定量检测1 范围本操作程序规定了食品中单核细胞增生李斯特氏菌(Listeria monocytogenes)的定量检验方法.本操作程序适用于食品中单核细胞增生李斯特氏菌的定量检验。
2 设备和材料除微生物实验室常规无菌及培养设备外,其他设备和材料如下:2。
1 冰箱:2℃~5℃和—18℃.2.2 恒温培养箱:30℃±1℃、36℃±1℃.2.3 均质器。
2.4 显微镜:10×~100×.2。
5 电子天平:感量0。
1 g。
2.6 锥形瓶:100 mL、500 mL。
2。
7 无菌吸管:1 mL(具0。
01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)。
2.8 无菌平皿:直径90 mm。
2。
9 无菌试管:16 mm×160 mm.。
2。
10 离心管:30 mm×100 mm.2。
11 无菌注射器:1 mL。
2。
12 金黄色葡萄球菌(ATCC 25923)。
2.13 马红球菌(Rhodococcus equi)。
2。
14 全自动微生物生化鉴定系统。
3 培养基和试剂3。
1 含0。
6%酵母浸膏的胰酪胨大豆肉汤(TSB-YE):见附录A中A。
1.3。
2 含0.6%酵母浸膏的胰酪胨大豆琼脂(TSA-YE):见附录A中A.2。
8.单增李斯特检测
血平板
英诺克李斯特氏菌 ATCC 33090
36h,35℃培养
血平板
绵羊李斯特氏菌 ATCC 19119
24h,35℃培养
血平板
单增李斯特氏菌 ATCC 19117
36h,35℃培养
API Listeria
VITEK
结果报告
❖ 报告: 25g(ml)样品中检出或未检出单核细胞增生李 斯特氏菌。
步骤3---初筛试验
❖ 分别挑取5个以上的可疑菌落;初筛
木糖
阴性(-)
鼠李糖 阳性(+)
注意:①在接种糖发酵管的同事时,接种一个
TSA-YE平板用于生化试验,
②选择上述结果的菌株进行系统生化鉴定
步骤4—鉴定
❖ 传统生化 ❖ 生化鉴定系统 如API 10300 ❖ 全自动微生物鉴定系统
动 力 试
30℃±1 ℃24h
木糖—、鼠李糖+
鉴定
结果报告
❖ 步骤1 ❖ 步骤2 ❖ 步骤3 ❖ 步骤4
检验步骤
增菌 分离培养 初筛 鉴定
步骤1---增菌
1、称取样品25 g(mL)于225 mL LB1中,均质, 30±1℃ 24h培养
2、吸取LB1培养物 0.1 mL,转种于10 mL LB2 内,30 ℃±1 ℃ 18 - 24h
通常只有单增李斯特氏菌和人类的李斯特氏菌 症相关。因此,李斯特氏菌中最有检测意义的是 单核细胞增生李斯特氏菌。
概况
❖ 1981年加拿大由卷心菜引起的一次单增李 斯特氏菌引起的食物中毒爆发流行后,首 次明确了该菌是食源性病源菌
❖ 1981以后发生了多次世界范围的大流行 ❖ 2001年后我国检测机构多次从美国、加拿
❖ PALCAM培养基,分离原理主要是基于李斯特菌具 有β-D-葡萄糖苷酶的活性,能水解培养基中的七 叶灵,产生并七叶苷并与铁离子产生颜色反应,使 菌落为棕褐色,并带有褐色晕圈。但所有的李斯特 氏菌都能发生这种反应
单增李斯特菌
市场情况
1999年底,美国发生了历史上因食用带有李斯特菌的食 品而引发的最严重的食物中毒事件,据美国疾病控制和防 治中心资料显示,在美国密歇根州有14人因食用被该菌污 染的“热狗”和熟肉而死亡,在另外22个州97人患此病,6 名妇女流产。1992~1995年法国出产的奶酪及猪肉中发现 李斯特菌。2001—2009年以来,我国质检部门多次从美国、 加拿大、法国、爱尔兰、比利时、丹麦等20多家肉类加工 厂进口的猪腰、猪肚、猪耳、小排等30多批近千吨猪副产 品中检出单增李斯特菌、沙门氏菌等致病菌。为了解北京 市食品受单核细胞增生性李斯特菌污染状况,2004—2005 年间,崔京辉等从北京市几个市场及宾馆饭店共采集了270 份熟食、生肉制品、水产品等8类食品进行检测LM。
(4) PCR试剂盒
1)北京吉诺思科贸公司:美国伯乐iQ-Check单增李斯特 菌的检测:iQ-Check系统采用了所有的实时荧光PCR方法 的优点为食品中病原微生物提供快速和可靠地检测解决方 案。iQ-Check试剂盒为食品和环境样品中的单增李斯特菌 (Listeria monocytogenes)定性检测试剂盒。 2)陆桥: 单核细胞增生李斯特氏菌(Listeria monocytogenes)荧 光定量PCR检测试剂盒 报价:1680 48T 3)索奥: 单增李斯特菌(LM)核酸检测试剂盒(PCR-荧光探针法) 报价:2800 40T
在美国LM被列为7种主要的食源性致死病菌之一,已经被 WHO食品安全工作计划列为重点检测的食源性病原菌之一。
二、单增李斯特菌的检测方法
(1)食品安全国家标准:单核细胞增生李斯特氏菌 检验 (2010年最新)平板培养法
2007年食品中单增李斯特菌国 家标准检验方法实验 室验证及结果分析:用不同浓度的沙门菌菌悬液人 工染菌二类食品各40份,用增菌液两步增菌,两种 分离培养基分离,对比检出率及分离效果。检出率 62.5%,最低检出限为0.5cfu/25g-13cfu/25g。
单核细胞增生李斯特菌检验
血清学分型:
Lm是根据O抗原和H抗原的差异进行血清 学分型.虽然Lm有16种血清型,1/2a、1/2b 、1/2c、3a、3b、3c、4a、4ab、4b、4c、 4d、4e、5、6a、6b和7,但只有3种血清型 <1/2a、1/2b、4b>可引起疾病.从食品和患 者中分离的菌株95%以上是1/2a,1/2b,1/2c 和4b等血清型,而3a、3b、3c、4a、4c、4e 、4d和7等血清型在食品中非常少见,也没 有引起李斯特菌病的报道.
溶血反应 + - + - + -
协同溶血
葡萄糖
麦芽糖
MR-VP
甘露醇
鼠李糖
木糖
七叶苷
+
+
+
+/+
-
+
-
+
-
+
+
+/+
+
-
-
+
+
+
+
+/+
-
-
+
+
-
+
+
+/+
-
V
+
+
+
+
+
+/+
-
-
+
+
-
+
+
+/+
-
V
-
+
动力试验
将TSA-YE平板上的疑似菌落穿刺接种到SIM培 养基中,于30℃培养24h-48h,李斯特菌有动力, 呈伞状生长.
PCR检测方法:〔1取1ml被检样李斯特氏 菌增菌肉汤用于提取DNA的,模板DNA的 制备, 根据试剂盒说明书进行;〔2PCR反 应体系:20μl .
H2O<二馏灭菌水>12.8μl,
10×buffer2.0μl,
Mg2+<25mol/l> 2.0μl,4×dNTP<10mmol/ml> 1.6μl,Primer<30pmol/μl>各0.25μl,
食品中单增李斯特菌检测
食品中单增李斯特菌检测食品中单核细胞增生李斯特氏菌的检测实验目的1)了解单核细胞增生李斯特氏菌的生物学特性。
2)熟悉单核细胞增生李斯特氏菌的分离鉴定方法。
基本原理单核细胞增生李斯特菌(L. monocytogenes)归属于李斯特菌属(Listeria)。
单核细胞增生李斯特菌是李斯特菌属中唯一对人致病的病菌。
李斯特菌是一种细胞内寄生菌,它不仅可能存在于肉类产品中,也可能存在于乳制品、蔬菜、沙拉及海产品等日常食物里面。
此菌广泛分布于自然界中,在土壤、排污下水、地表水、青贮饲料、烂菜中均可分离到。
人也可作为无症状携带者。
据报道,健康人粪便中该菌的携带率为0.6%~16%,4%~8%的水产品、5%~10%的奶及其制品、30%以上的肉制品及15%以上的家禽均被该菌污染。
李斯特菌能在1~45℃的温度下生存,能在家用电冰箱的冷藏室内较长时间生长、繁殖。
该菌为革兰氏阳性短杆菌,有的菌体略弯曲,两端钝圆,大小约为0.4~0.5μm ′0.5~2.0μm。
多单在,有时是V字型排列。
无芽孢,不产生荚膜。
在陈旧培养物中或粗糙型菌落的菌体长度可达6~20μm 或更长的丝状。
在20~25℃培养时可产生2~4根鞭毛而运动,但在37℃培养时鞭毛发育不良,无运动性。
本菌需氧或兼性厌氧,生长温度为1~45℃,最适温度为30~37℃。
对营养要求不高,可在普通琼脂培养基中生长,但在血琼脂培养基或胰酪胴琼脂上生长更好。
加入0.2%~1%(W/V)的葡萄糖及2%~3%(V/V)的甘油生长更佳。
在含1%(W/V)NaCl的复合培养基中能生长。
在4℃可缓慢增殖,形成菌落约需7d。
在液体培养基中培养18~24h后,肉汤呈轻度均匀混浊,数天后形成粘稠沉淀附着于管底,摇动时沉淀呈螺旋状,继续培养可形成颗粒状沉淀。
不形成菌环、菌膜。
在营养琼脂上,光滑(S)型可形成直径0.5~1.5mm、圆形、露滴状半透明、低隆起、边缘整齐、表面有细致纹理的蓝灰色菌落,斜射光照射时,菌落呈特征性蓝绿光泽。
食品微生物检验技术W4404单增李斯特氏菌检验—结果报告-5-微测试
《农产品/食品质量安全检测技术》课程-微测试一、单选题1、综合生化实验和溶血试验结果,报告()g(mL)样品中检出或未检出单核细胞增生李斯特氏菌。
A. 20B. 25C. 30D. 40参考答案:B难度:中2、根据GB4789.1总则要求,检出致病菌的样品要经过()处理。
A. 无害化B.洗掉C. 丢弃D.不用参考答案:A难度:低3、单增李斯特菌的检验,()试验可根据需要进行,常规检验可不进行这些试验。
A. 生化B.分子生物学C. 溶血D. 血清学参考答案:D难度:中二、多选题1、可判定为检出单增李斯特氏菌,结果报告为25 g样品检出,最后填写()。
A. 原始记录单;B. 检验报告;C. 注意事项;D. 检验报告。
参考答案:AB难度:中三、判断题1、单增李斯特标准菌株在靠近金黄色葡萄球菌的接种端溶血增强。
参考答案:T难度:低2、单增李斯特标准菌株菌落刺种点周围产生长长的透明溶血环。
参考答案:F难度:中四、填空题1、在糖发酵试验中,单增李斯特氏菌在葡萄糖、麦芽糖中呈性、在甘露醇、木糖中呈性。
参考答案:阳阴难度:中2、单增李斯特氏菌溶血试验中,将羊血琼脂平板底面划分为个小格。
参考答案:20个-25难度:中五、简答题1、单增李斯特氏菌的结果报告如何进行。
参考答案:综合以上生化实验和溶血试验结果,报告25 g(mL)样品中检出或未检出单核细胞增生李斯特氏菌。
本实验在PALCAM和李斯特氏菌显色平板上的菌落形态典型,经染色镜检为革兰氏阳性杆菌,生化试验符合单增李斯特氏菌的生化现象,即可判定为检出单增李斯特氏菌,结果报告为25 g样品检出。
填写原始记录单和报告。
另外,根据GB4789.1总则要求,检出致病菌的样品要经过无害化处理。
食品中单核细胞增生李斯特氏菌检测分析
食品中单核细胞增生李斯特氏菌检测分析石红霞(内蒙古乌兰察布市疾病预防控制中心,内蒙古乌兰察布 012000)摘 要:目的:分析食品中单核细胞增生李斯特氏菌的检测结果,以及时发现食品安全隐患,为食品安全监管提供参考依据。
方法:严格按照《全国食源性致病菌监测工作手册》中的单核细胞增生李斯特氏菌检验标准,对某市2021年1—12月定期采样的10类常用食品进行单核细胞增生李斯特氏菌检测,分析其阳性检出率。
结果:897份10类常用食品中,检出单核细胞增生李斯特氏菌36份,阳性检出率为4.01%,结论:食品中存在单核细胞增生李斯特氏菌污染的风险,其中以凉拌菜及冷藏食品的污染风险最高,应加强该方面的防控,确保食品安全。
关键词:单核细胞增生李斯特氏菌;食品安全;检测Detection and Analysis of Listeria Monocytogenes in FoodSHI Hongxia(Ulanqab Center for Disease Control and Prevention Inner Mongolia, Ulanqab 012000, China)Abstract: Objective: To analyze the detection results of Listeria monocytogenes in food, find the hidden dangers of food safety in time, and provide reference basis for food safety supervision. Methods: The detection of Listeria monocytogenes in the national manual for the monitoring of foodborne pathogens shall be strictly followed. According to the test standard, 10 kinds of common foods regularly sampled in a city from January to December 2021 were tested for Listeria monocytogenes, and the positive detection rate was analyzed. Conclusion: There is a risk of Listeria monocytogenes contamination in foods, among which cold dishes and refrigerated foods have the highest risk of contamination. Prevention and control in this regard should be strengthened to ensure food safety.Keywords:listeria monocytogenes; food safety; testing单核细胞增生李斯特氏菌广泛存在于土壤、蔬菜、粪便及多数食品中,该病菌对低温环境具有较好的耐受性,在5℃时可大量繁殖,当该病菌进入生物表层后会形成生物膜,并能提高对理化因素的抵抗力,是食源性疾病的主要致病菌之一,可通过粪便或食物进行传播。
食品源单增李斯特菌的分离鉴定及耐药性检测
食品源单增李斯特菌的分离鉴定及耐药性检测食品源单增李斯特菌的分离鉴定及耐药性检测引言:李斯特菌(Listeria monocytogenes)是一种革兰氏阳性杆菌,可以通过食物传播给人类,并引发李斯特菌感染。
李斯特菌感染是一种严重的食物中毒疾病,可能导致严重的并发症甚至死亡。
因此,对食品中的李斯特菌进行分离鉴定及耐药性检测非常重要,以确保食品的安全性。
分离鉴定方法:1. 样本采集:从怀疑被污染的食品中,选择不同部位的样本进行采集,如肉类、奶制品、蔬菜等。
2. 李斯特菌分离:将样本加入到富营养培养基中,在适宜的温度下(37℃),培养16-24小时。
然后将培养液进行测定,寻找典型的李斯特菌菌落。
3. 形态特点观察:通过显微镜观察菌落的形态特征,如形状、颜色等。
4. 生化性质检测:经过形态观察后,选取具有典型形态特征的菌落用于进一步的生化测试,如靶心李斯特菌鉴定板、鲁埃斯鸟氏培养基等。
5. PCR检测:利用李斯特菌特异性基因进行PCR鉴定,以确认是否为李斯特菌。
耐药性检测方法:1. 选择抗生素:选择常见的抗生素,包括头孢呋辛、青霉素、氨基糖苷类药物等,同时也选择一些非常见的抗生素,以探索其耐药性情况。
2. 可兰霉素敏感测试:可通过培养基中加入不同浓度的可兰霉素,观察菌落的生长情况,确定最低抑菌浓度(MIC)。
3. 扩散法:将李斯特菌涂布在富营养培养基上,然后将不同抗生素药片放置在不同区域,观察菌落生长与否。
4. PCR检测:利用PCR方法检测耐药基因的存在情况,进一步确定李斯特菌的耐药性。
讨论:通过以上的分离鉴定及耐药性检测方法,可以有效地检测食品样本中的李斯特菌,并了解其耐药性情况。
应用这些方法,可以及早发现李斯特菌的污染源,并采取相应的措施来控制和预防李斯特菌感染的发生。
此外,这些方法也可为食品监测部门提供参考,加强对食品安全的监管。
结论:李斯特菌是一种严重的食源性病原菌,对人类健康构成潜在威胁。
FDA食品中单增李斯特氏菌的检测与计数方法
FDA食品中单增李斯特氏菌的检测与计数方法食品中单增李斯特氏菌的检测与计数李斯特有6种菌种:L.innocua , L.seeligcri , L.welshimeri , L.ivanovii , L.grayi、L.grayi和L.ivanovii含有2个亚种,这里不作明确分析。
Rocourt最新的细菌分类法代替了以前的分类法。
L.ivanovii与单增李斯特氏菌是老鼠和其他动物的致病菌,然而,只有单增李斯特氏菌是人类致病菌,L.ivanoviij与L.seeligeri在人类中很少见。
近来,我们充分讨论了食品中单增李斯特氏菌的存在性,及其传染性详细资料。
因而本篇重点介绍单增李斯特氏菌的鉴定与计数。
食品加工过程中,例如食品接触表面及加工工具的致病原检测就不作介绍了。
分离与检测单增李斯特氏菌快速有效的方法如下:以污染的食品为样品,通常据FDA实验规则,样品是混合物。
待分析的部分样品放入BLEB(奶制品放入AOAC或IDF)中,30℃培养4h,进行李斯特菌选择性增菌。
在第四个小时加入选择剂:acriflavin(10mg/L),sodium nalidixate(40mg/L),optional antifungal,cycloheximide(50mg/L)。
然后继续培养48h,在24h和48h时,将培养物划线接种于不同的选择性培养基来分离李斯特菌。
有些快速检测到李斯特菌的存在。
先在标准增菌液或呈现阳性的增菌液中进行李斯特菌增菌,之后划线到选择培养基上进行纯化,然后在非选择培养基上纯化,最后通过常规检测实验或一系列生化实验来确定是否为单增李斯特氏菌。
利用具体实验,分离物会快速地被鉴定是否为单增李斯特氏菌。
FDA规则中,必须依照血清类型`PFGE及核糖类型分类。
利用选择性培养基的菌落计数及MPN计数法可以对单李进行计数。
(MPN计数法是先用BLEB选择性增菌,再涂布于ALOA或BCM选择性培养基上)主要内容如下:1.增菌液及快速检测实验是可以选择的2.可用任一种选择分离培养基(OXA 、PALLCAM 、添加七叶苷和三价铁的LPM 、MOX)来代替两种选择性培养基。
单核细胞增生李斯特菌检验
允许使用经过确 认的商业化生产 的单核增生李斯 特氏菌菌株鉴定 试验,但没列明 具体试剂盒名称
检测程序
目前常用的单核增生李斯特氏菌检测增菌 肉汤主要有半量Fraser肉汤、 Fraser肉汤 (FB)、UVM(Modified University of Vermont broth,也叫UVM1)、LEB (Listeria enrichment broth)和BLEB (buffered Listeria enrichment broth)
半量Fraser ISO 肉汤 11290(30℃, 1:1996(E) ( ) 24±2h)
OXA和 PALCAM Fraser肉汤 (30、35或37℃, (35或37℃, 24-48h,) 48±2h) PALCAM平板微 需氧或好氧条件 培养
蓝色菌落*;过氧化氢酶;革 兰氏染色;动力试验或典型 运动*;溶血试验;糖发酵试 验;协同溶血;送参考实验 室(血清或噬菌体分型)
选择性增菌肉汤的比较和筛选
通过对高污染及低污染食品进行增菌效 果比对,结果表明: LB肉汤的增菌效果 最佳 BLEB更适于背景微生物较少的熟食样品 修订标准选择LB增菌肉汤
分离培养基的比较和筛选
方法 原国标 AFNOR FDA USDA Health Welfare Canada 培养基 MMA OXA、PALCAM MMA、OXA、LPM MOX PALCAM、OXA
修订原则
参照FDA、AOAC、ISO、 AFNOR等有 关标准,使本标准更接近现行国际标准 保持与原标准的连续性
修订依据
FDA BAM (2001) chapter10 AOAC 975.55 987.09 ISO11290-1 AFNOR DGAL/SDHA/N93 USDA/FSIS Microbiology laboratory Guidebook 3rd Edition Canada Health and Welfare Canada MFHPB30 各省、市CDC和其他系统专家提出的修改意见
单增李斯特菌的检验方法
单增李斯特菌的检验方法
一. 增菌:
1. EB肉汤
2. LB 肉汤(根据我的实验结果和请教其他老师的说法,LB 增菌效
果优于EB)
LB分为LB和LR,两者基础培养基相同,区别在于添加辅助试剂丫啶黄、萘啶酮酸的量(基础培养基-- 杭州天河生物试剂公司;丫、萘—上海疾控中心。
上海的辅助试剂已按一定浓度配置成溶液, 使用起来比较方便)
25g样品加入到225mlLB增菌液中,30C培养24h,吸O.lmlLB i
增菌液到LR增菌液中,30C培养24h。
二.选择分离
挑一环LB2增菌液划线接种到科玛嘉选择性培养基上,37 C培养24h,观察现象,可疑菌落在此培养基上为兰色,周围有白晕的菌落。
(国标上使用的选择性培养基是MM,A 但是其选择性不强,科玛嘉选择性培养基是法国制造,选择性比MMA强的多,而且现象明显,许多发达国家使用。
此培养基是国标编委白萍女士向我推荐的)
三.生化实验
挑可疑菌落穿刺接种到SIM, 25C培养3---5d ,观察伞状生长情况、TSI (三糖铁)斜面30C培养24h—48h,观察,单增李斯特菌在TSI上应该是底面、斜面均产酸,不产H2S不产气的培养物•
这是单增李斯特菌落在SIM动力培养基上的伞状情形再挑取TSI上培养物接种其他生化管。
单核细胞增生李斯特氏菌检验检测细则
单核细胞增生李斯特氏菌检验检测细则1、目的根据《中华人民共和国国家标准》GB/T4789.30-2003单核细胞增生李斯特氏菌检验进行单核细胞增生李斯特氏菌检验。
2、适用范围适用于食品和食物中毒样品中单核细胞增生李斯特氏菌的检验。
3、职责检测人员负责按照本规程对被测样品进行检测;校核人员负责对检测操作人员是否规范以及检测结果是否准确进行审核;授权签字人负责综合管理和检测报告的签发。
4、试剂及器材4.1 单核细胞增生李斯特氏菌标准菌株4.2 马红球菌4.3 小白鼠:16-18g4.4 TSB-YE4.5 TSA-YE4.6 EB增菌液4.7 李氏增菌液(LB1,LB2)4.8 三糖铁琼脂4.9SIM动力培养基4.10 琼脂4.11 改良的Mc Bride琼脂(MMA)4.12 硝酸盐培养基4.13 缓冲葡萄糖蛋白胨水4.14 糖发酵培养基4.15 过氧化氢4.16 1%盐酸丫啶黄溶液4.17 1%萘啶酮酸盐溶液5、仪器设备5.1 恒温培养箱:30±1℃、24℃±1℃5.2 恒温水浴锅:46±1℃5.3 离心机:4000r/min5.4 显微镜5.5 均质器6、检测步骤6.1样品的收集及处理:无菌取样25g(ml)放灭菌均质器中加225mlEB和LB1增菌液中,充分搅拌成均质。
如不能及时检验,可暂存4℃冰箱。
6.2增菌培养:EB增菌液30℃培养48小时,LB1增菌液225ml放30℃培养24小时,吸取0.1ml,加入10ml LB2增菌液中二次增菌。
6.3分离培养:将EB增菌液和LB2二次增菌分离于选择培养基MMA琼脂平板上,培养30℃48小时,挑选可疑菌落,用白织灯45。
角斜光照射平板。
6.4选五个以上的上述可疑菌落接种三糖铁琼脂和SIM动力培养基,培养于25℃。
一般观察2天-7天,阳性者可做下一步鉴定。
6.5纯培养:将上述有动力、形成伞状者并在三糖铁琼脂培养基上层、下层的产酸而不产硫化氢的可疑培养物接种于TSA-YE上纯培养,做以下鉴定。
食品微生物检验——单增李斯特菌
食品微生物检验——单增李斯特菌食品中单增李斯特检测技术李斯特氏菌属包括七个种:单核细胞增生李斯特氏菌绵羊李斯特氏菌英诺克李斯特氏菌威尔斯李斯特氏菌西尔李斯特氏菌格氏李斯特氏菌默氏李斯特氏菌其中单核细胞增生李斯特氏菌对人类致病性强,绵羊李斯特氏菌对人类也有一定的致病性,其余李斯特氏菌无致病性。
单核细胞增生李斯特氏菌是一种人畜共患病的病原菌。
它能引起人畜的李氏菌的病,感染后主要表现为败血症、脑膜炎和单核细胞增多。
它广泛存在于自然界中,食品中存在的单增李氏菌对人类的安全具有危险,该菌在4℃的环境中仍可生长繁殖,是冷藏食品威胁人类健康的主要病原菌之一,因此,在食品卫生微生物检验中,必须加以重视。
该菌为革兰氏阳性短杆菌,大小约为0.5μmх 1.0-2.0μm,直或稍弯,两端钝圆,常呈V字型排列,偶有球状、双球状。
兼性厌氧、无芽胞,一般不形成荚膜,但在营养丰富的环境中可形成荚膜,在陈旧培养中的菌体可呈丝状及革兰氏阴性。
该菌有4根周毛和1根端毛,但周毛易脱落。
该菌营养要求不高,在20--25℃培养有动力,穿刺培养2-5天可见倒立伞状生长,肉汤培养物在显微镜下可见翻跟斗运动。
该菌的生长范围为2--42℃(也有报道在0℃能缓慢生长),最适培养温度为35--37℃,在pH中性至弱碱性(pH9.6)、氧分压略低、二氧化碳张力略高的条件下该菌生长良好,在pH3.8-4.4能缓慢生长,在6.5% NaCl 肉汤中生长良好。
在固体培养基上,菌落初始很小,透明,边缘整齐,呈露滴状,但随着菌落的增大,变得不透明。
在5-7%的血平板上,菌落通常也不大,灰白色,刺种血平板培养后可产生窄小的β-溶血环。
在0.6%酵母浸膏胰酪大豆琼脂(TSAYE)和改良Mc Bride(MMA)琼脂上,用45度角入射光照射菌落,通过解剖镜垂直观察,菌落呈兰色、灰色或兰灰色。
该菌触酶阳性,氧化酶阴性。
发酵多种糖类,产酸不产气。
如发酵葡萄糖、乳糖、水杨素、麦芽糖、鼠李糖、七叶苷、蔗糖(迟发酵)、山梨醇、海藻糖、果糖。
单核细胞增生李斯特氏菌检验(食品微生物学检验)
食品安全国家标准食品微生物学检验单核细胞增生李斯特氏菌检验1范围本标准规定了食品中单核细胞增生李斯特氏菌(L i s t e r i am o n o c y t o g e n e s)的检验方法㊂本标准第一法适用于食品中单核细胞增生李斯特氏菌的定性检验;第二法适用于单核细胞增生李斯特氏菌含量较高的食品中单核细胞增生李斯特氏菌的计数;第三法适用于单核细胞增生李斯特氏菌含量较低(<100C F U/g)而杂菌含量较高的食品中单核细胞增生李斯特氏菌的计数,特别是牛奶㊁水以及含干扰菌落计数的颗粒物质的食品㊂2设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:2.1冰箱:2ħ~5ħ㊂2.2恒温培养箱:30ħʃ1ħ㊁36ħʃ1ħ㊂2.3均质器㊂2.4显微镜:10x~100x㊂2.5电子天平:感量0.1g㊂2.6锥形瓶:100m L㊁500m L㊂2.7无菌吸管:1m L(具0.01m L刻度)㊁10m L(具0.1m L刻度)或微量移液器及吸头㊂2.8无菌平皿:直径90mm㊂2.9无菌试管:16mmˑ160mm㊂2.10离心管:30mmˑ100mm㊂2.11无菌注射器:1m L㊂2.12单核细胞增生李斯特氏菌(L i s t e r i a m o n o c y t o g e n e s)A T C C19111或C M C C54004,或其他等效标准菌株㊂2.13英诺克李斯特氏菌(L i s t e r i a i n n o c u a)A T C C33090,或其他等效标准菌株㊂2.14伊氏李斯特氏菌(L i s t e r i a i v a n o v i i)A T C C19119,或其他等效标准菌株㊂2.15斯氏李斯特氏菌(L i s t e r i a s e e l i g e r i)A T C C35967,或其他等效标准菌株㊂2.16金黄色葡萄球菌(S t a p h y l o c o c c u s a u r e u s)A T C C25923或其他产β-溶血环金葡菌,或其他等效标准菌株㊂2.17马红球菌(R h o d o c o c c u s e q u i)A T C C6939或N C T C1621,或其他等效标准菌株㊂2.18小白鼠:I C R体重18g~22g㊂2.19全自动微生物生化鉴定系统㊂3培养基和试剂3.1含0.6%酵母浸膏的胰酪胨大豆肉汤(T S B-Y E):见A.1㊂3.2含0.6%酵母浸膏的胰酪胨大豆琼脂(T S A-Y E):见A.2㊂3.3李氏增菌肉汤L B(L B1,L B2):见A.3㊂3.41%盐酸吖啶黄(a c r i f l a v i n eH C l)溶液:见A.3.2.1㊁A.3.2.2㊂3.51%萘啶酮酸钠盐(n a l a d i x i c a c i d)溶液:见A.3.2.1㊁A.3.2.2㊂3.6 P A L C AM琼脂:见A.4㊂3.7革兰氏染液:见A.5㊂3.8S I M动力培养基:见A.6㊂3.9缓冲葡萄糖蛋白胨水[甲基红(M R)和V-P试验用]:见A.7㊂3.105%~8%羊血琼脂:见A.8㊂3.11糖发酵管:见A.9㊂3.12过氧化氢试剂:见A.10㊂3.13李斯特氏菌显色培养基㊂3.14生化鉴定试剂盒或全自动微生物鉴定系统㊂3.15缓冲蛋白胨水:见A.11㊂第一法单核细胞增生李斯特氏菌定性检验4检验程序单核细胞增生李斯特氏菌定性检验程序见图1㊂图1单核细胞增生李斯特氏菌定性检验程序5操作步骤5.1增菌以无菌操作取样品25g(m L)加入到含有225m LL B1增菌液的均质袋中,在拍击式均质器上连续均质1m i n~2m i n;或放入盛有225m LL B1增菌液的均质杯中,以8000r/m i n~10000r/m i n均质1m i n~2m i n㊂于30ħʃ1ħ培养24hʃ2h,移取0.1m L,转种于10m LL B2增菌液内,于30ħʃ1ħ培养24hʃ2h㊂5.2分离取L B2二次增菌液划线接种于李斯特氏菌显色平板和P A L C AM琼脂平板,于36ħʃ1ħ培养24h~48h,观察各个平板上生长的菌落㊂典型菌落在P A L C AM琼脂平板上为小的圆形灰绿色菌落,周围有棕黑色水解圈,有些菌落有黑色凹陷;在李斯特氏菌显色平板上的菌落特征,参照产品说明进行判定㊂5.3初筛自选择性琼脂平板上分别挑取3个~5个典型或可疑菌落,分别接种木糖㊁鼠李糖发酵管,于36ħʃ1ħ培养24hʃ2h,同时在T S A-Y E平板上划线,于36ħʃ1ħ培养18h~24h,然后选择木糖阴性㊁鼠李糖阳性的纯培养物继续进行鉴定㊂5.4鉴定(或选择生化鉴定试剂盒或全自动微生物鉴定系统等)5.4.1染色镜检:李斯特氏菌为革兰氏阳性短杆菌,大小为(0.4μm~0.5μm)ˑ(0.5μm~2.0μm);用生理盐水制成菌悬液,在油镜或相差显微镜下观察,该菌出现轻微旋转或翻滚样的运动㊂5.4.2动力试验:挑取纯培养的单个可疑菌落穿刺半固体或S I M动力培养基,于25ħ~30ħ培养48h,李斯特氏菌有动力,在半固体或S I M培养基上方呈伞状生长,如伞状生长不明显,可继续培养5d,再观察结果㊂5.4.3生化鉴定:挑取纯培养的单个可疑菌落,进行过氧化氢酶试验,过氧化氢酶阳性反应的菌落继续进行糖发酵试验和M R-V P试验㊂单核细胞增生李斯特氏菌的主要生化特征见表1㊂5.4.4溶血试验:将新鲜的羊血琼脂平板底面划分为20个~25个小格,挑取纯培养的单个可疑菌落刺种到血平板上,每格刺种一个菌落,并刺种阳性对照菌(单增李斯特氏菌㊁伊氏李斯特氏菌和斯氏李斯特氏菌)和阴性对照菌(英诺克李斯特氏菌),穿刺时尽量接近底部,但不要触到底面,同时避免琼脂破裂, 36ħʃ1ħ培养24h~48h,于明亮处观察,单增李斯特氏菌呈现狭窄㊁清晰㊁明亮的溶血圈,斯氏李斯特氏菌在刺种点周围产生弱的透明溶血圈,英诺克李斯特氏菌无溶血圈,伊氏李斯特氏菌产生宽的㊁轮廓清晰的β-溶血区域,若结果不明显,可置4ħ冰箱24h~48h再观察㊂注:也可用划线接种法㊂5.4.5协同溶血试验c AM P(可选项目):在羊血琼脂平板上平行划线接种金黄色葡萄球菌和马红球菌,挑取纯培养的单个可疑菌落垂直划线接种于平行线之间,垂直线两端不要触及平行线,距离1mm~ 2mm,同时接种单核细胞增生李斯特氏菌㊁英诺克李斯特氏菌㊁伊氏李斯特氏菌和斯氏李斯特氏菌,于36ħʃ1ħ培养24h~48h㊂单核细胞增生李斯特氏菌在靠近金黄色葡萄球菌处出现约2mm的β-溶血增强区域,斯氏李斯特氏菌也出现微弱的溶血增强区域,伊氏李斯特氏菌在靠近马红球菌处出现约5mm~10mm的 箭头状 β-溶血增强区域,英诺克李斯特氏菌不产生溶血现象㊂若结果不明显,可置4ħ冰箱24h~48h再观察㊂注:5%~8%的单核细胞增生李斯特氏菌在马红球菌一端有溶血增强现象㊂表1单核细胞增生李斯特氏菌生化特征与其他李斯特氏菌的区别菌种溶血反应葡萄糖麦芽糖M R-V P甘露醇鼠李糖木糖七叶苷单核细胞增生李斯特氏菌(L.m o n o c y t o g e n e s)++++/+-+-+格氏李斯特氏菌(L.g r a y i)-+++/++--+斯氏李斯特氏菌(L.s e e l i g e r i)++++/+--++威氏李斯特氏菌(L.w e l s h i m e r i)-+++/+-V++伊氏李斯特氏菌(L.i v a n o v i i)++++/+--++英诺克李斯特氏菌(L.i n n o c u a)-+++/+-V-+注:+阳性;-阴性;V反应不定㊂5.5小鼠毒力试验(可选项目)将符合上述特性的纯培养物接种于T S B-Y E中,于36ħʃ1ħ培养24h,4000r/m i n离心5m i n,弃上清液,用无菌生理盐水制备成浓度为1010C F U/m L的菌悬液,取此菌悬液对3只~5只小鼠进行腹腔注射,每只0.5m L,同时观察小鼠死亡情况㊂接种致病株的小鼠于2d~5d内死亡㊂试验设单增李斯特氏菌致病株和灭菌生理盐水对照组㊂单核细胞增生李斯特氏菌㊁伊氏李斯特氏菌对小鼠有致病性㊂5.6结果与报告综合以上生化试验和溶血试验的结果,报告25g(m L)样品中检出或未检出单核细胞增生李斯特氏菌㊂第二法单核细胞增生李斯特氏菌平板计数法6检验程序单核细胞增生李斯特氏菌平板计数程序见图2㊂图2单核细胞增生李斯特氏菌平板计数程序7操作步骤7.1样品的稀释7.1.1以无菌操作称取样品25g(m L),放入盛有225m L缓冲蛋白胨水或无添加剂的L B肉汤的无菌均质袋内(或均质杯)内,在拍击式均质器上连续均质1m i n~2m i n或以8000r/m i n~10000r/m i n均质1m i n~2m i n㊂液体样品,振荡混匀,制成1ʒ10的样品匀液㊂7.1.2用1m L无菌吸管或微量移液器吸取1ʒ10样品匀液1m L,沿管壁缓慢注于盛有9m L缓冲蛋白胨水或无添加剂的L B肉汤的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支1m L无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1ʒ100的样品匀液㊂7.1.3按7.1.2操作程序,制备10倍系列稀释样品匀液㊂每递增稀释1次,换用1支1m L无菌吸管或吸头㊂7.2样品的接种根据对样品污染状况的估计,选择2个~3个适宜连续稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),每个稀释度的样品匀液分别吸取1m L以0.3m L㊁0.3m L㊁0.4m L的接种量分别加入3块李斯特氏菌显色平板,用无菌L棒涂布整个平板,注意不要触及平板边缘㊂使用前,如琼脂平板表面有水珠,可放在25ħ~50ħ的培养箱里干燥,直到平板表面的水珠消失㊂7.3培养7.3.1在通常情况下,涂布后,将平板静置10m i n,如样液不易吸收,可将平板放在培养箱36ħʃ1ħ培养1h;等样品匀液吸收后翻转平皿,倒置于培养箱,36ħʃ1ħ培养24h~48h㊂7.4典型菌落计数和确认7.4.1单核细胞增生李斯特氏菌在李斯特氏菌显色平板上的菌落特征以产品说明为准㊂7.4.2选择有典型单核细胞增生李斯特氏菌菌落的平板,且同一稀释度3个平板所有菌落数合计在15C F U~150C F U之间的平板,计数典型菌落数㊂如果:a)只有一个稀释度的平板菌落数在15C F U~150C F U之间且有典型菌落,计数该稀释度平板上的典型菌落;b)所有稀释度的平板菌落数均小于15C F U且有典型菌落,应计数最低稀释度平板上的典型菌落;c ) 某一稀释度的平板菌落数大于150C F U 且有典型菌落,但下一稀释度平板上没有典型菌落,应计数该稀释度平板上的典型菌落;d ) 所有稀释度的平板菌落数大于150C F U 且有典型菌落,应计数最高稀释度平板上的典型菌落;e ) 所有稀释度的平板菌落数均不在15C F U~150C F U 之间且有典型菌落,其中一部分小于15C F U 或大于150C F U 时,应计数最接近15C F U 或150C F U 的稀释度平板上的典型菌落㊂以上按式(1)计算㊂f ) 2个连续稀释度的平板菌落数均在15C F U~150C F U 之间,按式(2)计算㊂7.4.3 从典型菌落中任选5个菌落(小于5个全选),分别按5.3㊁5.4进行鉴定㊂8 结果计数T =A BC d(1)式中:T样品中单核细胞增生李斯特氏菌菌落数;A某一稀释度典型菌落的总数;B某一稀释度确证为单核细胞增生李斯特氏菌的菌落数;C某一稀释度用于单核细胞增生李斯特氏菌确证试验的菌落数;d稀释因子㊂T =A 1B 1/C 1+A 2B 2/C 21.1d(2)式中:T样品中单核细胞增生李斯特氏菌菌落数;A 1第一稀释度(低稀释倍数)典型菌落的总数;B 1 第一稀释度(低稀释倍数)确证为单核细胞增生李斯特氏菌的菌落数;C 1 第一稀释度(低稀释倍数)用于单核细胞增生李斯特氏菌确证试验的菌落数;A 2 第二稀释度(高稀释倍数)典型菌落的总数;B 2 第二稀释度(高稀释倍数)确证为单核细胞增生李斯特氏菌的菌落数;C 2第二稀释度(高稀释倍数)用于单核细胞增生李斯特氏菌确证试验的菌落数;1.1 计算系数;d 稀释因子(第一稀释度)㊂9 结果报告报告每g (m L )样品中单核细胞增生李斯特氏菌菌数,以C F U /g(m L )表示;如T 值为0,则以小于1乘以最低稀释倍数报告㊂第三法 单核细胞增生李斯特氏菌M P N 计数法10 检验程序单核细胞增生李斯特氏菌M P N 计数法检验程序见图3㊂图3单核细胞增生李斯特氏菌M P N计数程序11操作步骤11.1样品的稀释按7.1进行㊂11.2接种和培养11.2.1根据对样品污染状况的估计,选取3个适宜连续稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),接种于10m LL B1肉汤,每一稀释度接种3管,每管接种1m L(如果接种量需要超过1m L,则用双料L B1增菌液)于30ħʃ1ħ培养24hʃ2h㊂每管各移取0.1m L,转种于10m LL B2增菌液内,于30ħʃ1ħ培养24hʃ2h㊂11.2.2用接种环从各管中移取1环,接种李斯特氏菌显色平板,36ħʃ1ħ培养24h~48h㊂11.3确证试验自每块平板上挑取5个典型菌落(5个以下全选),按照5.3㊁5.4进行鉴定㊂12结果与报告根据证实为单核细胞增生李斯特氏菌阳性的试管管数,查M P N检索表(见附录B),报告每g(m L)样品中单核细胞增生李斯特氏菌的最可能数,以M P N/g(m L)表示㊂附录A培养基和试剂A.1含0.6%酵母浸膏的胰酪胨大豆肉汤(T S B-Y E)A.1.1成分胰胨17.0g多价胨3.0g酵母膏6.0g氯化钠5.0g磷酸氢二钾2.5g葡萄糖2.5g蒸馏水1000m LA.1.2制法将上述各成分加热搅拌溶解,调节p H至7.2ʃ0.2,分装,121ħ高压灭菌15m i n,备用㊂A.2含0.6%酵母膏的胰酪胨大豆琼脂(T S A-Y E)A.2.1成分胰胨17.0g多价胨3.0g酵母膏6.0g氯化钠5.0g磷酸氢二钾2.5g葡萄糖2.5g琼脂15.0g蒸馏水1000m LA.2.2制法将上述各成分加热搅拌溶解,调节p H至7.2ʃ0.2,分装,121ħ高压灭菌15m i n,备用㊂A.3李氏增菌肉汤(L B1,L B2)A.3.1成分胰胨5.0g多价胨5.0g酵母膏5.0g氯化钠20.0g磷酸二氢钾1.4g磷酸氢二钠12.0g七叶苷1.0g蒸馏水1000m LA.3.2制法将上述成分加热溶解,调节p H至7.2ʃ0.2,分装,121ħ高压灭菌15m i n,备用㊂A.3.2.1李氏Ⅰ液(L B1)225m L中加入:1%萘啶酮酸(用0.05m o l/L氢氧化钠溶液配制)0.5m L1%吖啶黄(用无菌蒸馏水配制)0.3m LA.3.2.2李氏Ⅱ液(L B2)200m L中加入:1%萘啶酮酸0.4m L1%吖啶黄0.5m LA.4P A L C A M琼脂A.4.1成分酵母膏8.0g葡萄糖0.5g七叶甙0.8g柠檬酸铁铵0.5g甘露醇10.0g酚红0.1g氯化锂15.0g酪蛋白胰酶消化物10.0g心胰酶消化物3.0g玉米淀粉1.0g肉胃酶消化物5.0g氯化钠5.0g琼脂15.0g蒸馏水1000m LA.4.2制法将上述成分加热溶解,调节p H至7.2ʃ0.2,分装,121ħ高压灭菌15m i n,备用㊂A.4.2.1P A L C A M选择性添加剂多粘菌素B5.0m g盐酸吖啶黄2.5m g头孢他啶10.0m g无菌蒸馏水500m LA.4.2.2制法将P A L C AM基础培养基溶化后冷却到50ħ,加入2m LP A L C AM选择性添加剂,混匀后倾倒在无菌的平皿中,备用㊂A.5革兰氏染色液A.5.1结晶紫染色液A.5.1.1成分结晶紫1.0g95%乙醇20.0m L1%草酸铵水溶液80.0m LA.5.1.2制法将结晶紫完全溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合㊂A.5.2革兰氏碘液A.5.2.1成分碘1.0g碘化钾2.0g蒸馏水300m LA.5.2.2制法将碘与碘化钾先进行混合,加入蒸馏水少许,充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至300m L㊂A.5.3沙黄复染液A.5.3.1成分沙黄0.25g95%乙醇10.0m L蒸馏水90.0m LA.5.3.2制法将沙黄溶解于乙醇中,然后用蒸馏水稀释㊂A.5.4染色法A.5.4.1涂片用火焰固定后滴加结晶紫染液,作用1m i n,水洗㊂A.5.4.2滴加革兰氏碘液,作用1m i n,水洗㊂A.5.4.3滴加95%乙醇脱色,约15s~30s,直至染色液被洗掉,不要过分脱色,水洗㊂A.5.4.4滴加复染液,复染1m i n,水洗㊁待干㊁镜检㊂A.6S I M动力培养基A.6.1成分胰胨20.0g多价胨6.0gG B 4789.30 201611 硫酸铁铵0.2g 硫代硫酸钠0.2g 琼脂3.5g 蒸馏水1000m L A .6.2 制法将上述各成分加热混匀,调节p H 至7.2ʃ0.2,分装小试管,121ħ高压灭菌15m i n,备用㊂A .6.3 试验方法挑取纯培养的单个可疑菌落穿刺接种到S I M 培养基中,于25ħ~30ħ培养48h ,观察结果㊂A .7 缓冲葡萄糖蛋白胨水(M R 和V P 试验用)A .7.1 成分多价胨7.0g 葡萄糖5.0g 磷酸氢二钾5.0g 蒸馏水1000m L A .7.2 制法溶化后调节p H 至7.0ʃ0.2,分装试管,每管1m L ,121ħ高压灭菌15m i n ,备用㊂A .7.3 甲基红(M R )试验A .7.3.1 甲基红试剂A .7.3.1.1 成分甲基红10m g 95%乙醇30m L 蒸馏水20m LA .7.3.1.2 制法10m g 甲基红溶于30m L95%乙醇中,然后加入20m L 蒸馏水㊂A .7.3.1.3 试验方法取适量琼脂培养物接种于缓冲葡萄糖蛋白胨水中,36ħʃ1ħ培养2d ~5d ㊂滴加甲基红试剂一滴,立即观察结果㊂鲜红色为阳性,黄色为阴性㊂A .7.4 V -P 试验A .7.4.1 6%α-萘酚-乙醇溶液成分及制法:取α-萘酚6.0g ,加无水乙醇溶解,定容至100m L ㊂。
《食品单增李斯特菌检测研究国内外文献综述4300字》
食品单增李斯特菌检测研究国内外文献综述目录1.食品安全问题现状 (1)2.单增李斯特菌存在现状 (2)3.食源性致病菌的检测技术 (3)参考文献 (4)1.食品安全问题现状由于恶劣的自然环境和时间的变化,人类的饮食生活习惯也发生了很大的变化。
食品加工和销售方式也发生了很大的转折和变革,随着我国开展全球性的食品贸易迅猛增长,食品的流通速度加快,然而安全性下降,食物中毒的现象屡屡发生,食源性疾病的患者和发病率也呈现出明显的上升倾向[10]。
无论是发达国家还是在发展中国家,食源性疾病已经极大地损害了人类的身体健康与生命安全,也对经济产生了重要的冲击。
所以,食源性疾病已逐渐成为我们当前必须面对的严峻挑战[11]。
由于受到社会经济效益的驱使,食品企业在生产、销售中屡屡使用各种违规或其他非法的手段。
比如,使用大量的剧毒性农药或者喷洒各种蔬菜、水果等方式进行除虫:或者使用瘦肉精等一些非违禁的激素进行饲养,从而增加瘦肉的产量;随意地使用一个吊白块的方式来添加新鲜的白面粉;把稻草水兑颜料+黄色的带绿勾盐作为酱油卖给企业获利的现象,不胜枚举。
随着企业时代的不断进步和企业改革史的变迁,食品安全企业在批量生产和规模经营这个过程中产品规模的逐步扩大和不断普及以至我国食品安全贸易逐渐逐步呈现走向国际化,世界上所有国家和地区都在不断发生重大食品安全污染事件。
例如,2006年比利时"二嗯英英事件"、英国"疯牛病"、日本的大肠杆菌0157:h7食物细菌中毒[12],以及被人在我国广泛媒体曝光的安徽阜阳劣质生鲜乳制品("大头娃娃事件")、霉变菌中毒米、苏丹红鸭蛋污染事件、孔雀石虾等绿色海藻鱼虾的排放养殖和其他各类污染事件,都已经逐渐使得我国食品安全突出问题逐渐成为了社会众人广泛密切关注的一个热门话题,再次向人敲响了对我国食品安全领域存在突出问题的重要警钟。
"民以食为天,食以安为先"已成为当今人类对食品质量最基本的诉求[13]。
李斯特菌国标
李斯特菌国标
李斯特菌的国标是GB 4789.30-2016《食品安全国家标准食品微生物学检验单核细胞增生李斯特氏菌检验》。
在已发现的李斯特菌菌株中,唯一能导致人体生病的是单核细胞增生李斯特氏菌(以下简称“单增李斯特菌”)。
我国近几年食品安全风险检测结果显示,单增李斯特菌在生肉和即食食品中污染率最高。
而且这种病菌非常顽强,能适应各种环境,不仅能在低温环境下繁殖,还能在无氧条件下生存。
目前,检测单增李斯特菌的标准还有SN/T 2552.12-2010《乳及乳制品卫生微生物学检验方法第 12 部分:单核细胞增生李斯特氏菌检测与计数》等。
食品微生物检验技术W4403单增李斯特氏菌检验—检验操作程序及要点-1-微设计优选全文
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《农产品/食品质量安全检测技术》课程-微设计
附:
1、微课类型(限填项):讲授型、实验实训型、答疑型、总结型、其它;
2、微课形式:画中画式、讲坛式、录播教室实录式、讨论式、访谈式、实地拍摄式、可汗学院式、PPT动画式、Prezi动画式、二维动画式、三维动画式、虚拟抠像式、混合拍摄式、师生形象的处理、混合拍摄式等(可参考给的学习资料),应根据课程的特点,选用丰富的形式;
3、微课教学设计模式:讲授法、直观演示法、任务驱动法、讨论法、案例分析法、角色扮演法等;。
出口食品单核细胞增生李斯特氏菌的检验方法
文件制修订记录1.仪器和设备1.1恒温培养箱:36±1℃1.2恒温水浴箱:45±1℃1.3高压灭菌锅1.4均质器1. 5冰箱:0-4℃和-15~-20℃1.6试管:18×150mm 12 mm×100 mm1.7锥形瓶:500ml 250ml1.8平皿:直径为90mm1.9灭菌吸管1.10灭菌均质杯1.11酒精棉1.12天平:感量0.1g2.培养基的制备2.1含0.6%酵母浸膏的胰酪大豆肉汤(TSB-YE)称取3.6g药品溶入100ml蒸馏水中,水浴加热30min,分装试管,121℃高压灭菌15min,冷却后0~4℃冰箱保存备用。
2.2含0.6%酵母浸膏的胰酪大豆琼脂(TSA-YE)称取4.7g药品溶入100ml蒸馏水中,121℃高压灭菌15min,冷却50℃左右倒平板,待琼脂凝固后,放入0~4℃冰箱保存备用。
2.3 Fraser肉汤增菌液(FB1、FB2)FB1:称取12.38g药品溶入225ml蒸馏水中,121℃高压灭菌15min,冷却至50℃左右加入FB1添加剂1和添加剂2各1支备用。
FB2:称取1.1g药品溶入20ml蒸馏水中,水浴加热30min,分装试管,121℃高压灭菌15min,冷却至50℃左右加入FB2添加剂1和添加剂2各1支备用。
2.4 PALCAM琼脂称取6.61g药品溶入100ml蒸馏水中,121℃高压灭菌15min,冷却至50℃左右加入PALCAM 添加剂1和添加剂2各0.4ml,倒平板,待琼脂凝固后,放入0~4℃冰箱保存备用。
2.5 OXA琼脂称取5.85g 药品溶入100ml 蒸馏水中,121℃高压灭菌15min ,冷却至50℃左右加入吖啶黄素、放线菌酮、多粘菌素E 各1支,倒平板,待琼脂凝固后,放入0~4℃冰箱保存备用。
2.6 7%羊血琼脂 2.7 SIM 动力培养基称取3.0g 药品溶入100ml 蒸馏水中,水浴加热30min ,分装试管,121℃高压灭菌15min ,制成高层斜面,冷却后0~4℃冰箱保存备用。
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食品中单增李斯特检测技术
李斯特氏菌属包括七个种:
单核细胞增生李斯特氏菌
绵羊李斯特氏菌
英诺克李斯特氏菌
威尔斯李斯特氏菌
西尔李斯特氏菌
格氏李斯特氏菌
默氏李斯特氏菌
其中单核细胞增生李斯特氏菌对人类致病性强,绵羊李斯特氏菌对人类也有一定的致病性,其余李斯特氏菌无致病性。
单核细胞增生李斯特氏菌是一种人畜共患病的病原菌。
它能引起人畜的李氏菌的病,感染后主要表现为败血症、脑膜炎和单核细胞增多。
它广泛存在于自然界中,食品中存在的单增李氏菌对人类的安全具有危险,该菌在4℃的环境中仍可生长繁殖,是冷藏食品威胁人类健康的主要病原菌之一,因此,在食品卫生微生物检验中,必须加以重视。
该菌为革兰氏阳性短杆菌,大小约为0.5μmх 1.0-2.0μm,直或稍弯,两端钝圆,常呈V字型排列,偶有球状、双球状。
兼性厌氧、无芽胞,一般不形成荚膜,但在营养丰富的环境中可形成荚膜,在陈旧培养中的菌体可呈丝状及革兰氏阴性。
该菌有4根周毛和1根端毛,但周毛易脱落。
该菌营养要求不高,在20--25℃培养有动力,穿刺培养2-5天可见倒立伞状生长,肉汤培养物在显微镜下可见翻跟斗运动。
该菌的生长范围为2--42℃(也有报道在0℃能缓慢生长),最适培养温度为35--37℃,在pH中性至弱碱性(pH9.6)、氧分压略低、二氧化碳张力略高的条件下该菌生长良好,在pH3.8-4.4能缓慢生长,在6.5% NaCl 肉汤中生长良好。
在固体培养基上,菌落初始很小,透明,边缘整齐,呈露滴状,但随着菌落的增大,变得不透明。
在5-7%的血平板上,菌落通常也不大,灰白色,刺种血平板培养后可产生窄小的β-溶血环。
在0.6%酵母浸膏胰酪大豆琼脂(TSAYE)和改良Mc Bride(MMA)琼脂上,用45度角入射光照射菌落,通过解剖镜垂直观察,菌落呈兰色、灰色或兰灰色。
该菌触酶阳性,氧化酶阴性。
发酵多种糖类,产酸不产气。
如发酵葡萄糖、乳糖、水杨素、麦芽糖、鼠李糖、七叶苷、蔗糖(迟发酵)、山梨醇、海藻糖、果糖。
不发酵木糖、甘露醇、肌醇、阿拉伯糖、侧金盏花醇、棉子糖、卫矛醇和纤维二糖。
不利用枸橼酸盐,40%胆汁不溶解。
吲哚、硫化氢、尿素、明胶液化、硝酸盐还原、赖氨酸、鸟氨酸均阴性。
VP、甲基红试验和精氨酸水解阳性。
该菌对理化因素抵抗力较强。
在土壤、粪便、青储饲料和干草内能长期存活。
对碱和盐抵抗力强,60-70℃经5-20min可杀死,70%酒精5min、2.5%石炭酸、2.5%氢氧化钠、2.5%福尔马林20min 可杀死此菌。
该菌对青霉素、氨苄青霉素、四环素、磺胺均敏感。
李斯特氏菌(Listeria)是条件致病菌,大多为散发病例,也可因污染食品而爆发。
本菌能产生一种溶血素性质的外毒素。
能引起人和牛、绵羊等动物的脑膜炎,可使家兔豚鼠等实验动物感染引起血中单核细胞增高。
可引起婴儿及新生儿的化脓性脑膜炎或脑膜脑炎,死亡率可达70%。
子宫内感染的新生儿可导致新生儿李斯特氏菌病、流产、死胎或习惯性流产。
SN 0184-93 出口食品中单核细胞增生李斯特氏菌检验方法
样品:冷冻样品,2-5℃解冻,不超过18h
若不能及时检验,应置于-15 ℃保存。
非冷冻易腐样品应尽可能及时检验。
若不能及时检验,应置于4 ℃冰箱保存,在24h之内检验。
两次增菌:
巴氏消毒乳、乳制品、冷冻水产品、冻肉及其它加工食品应该前增菌。
25g+225ml改良缓冲蛋白胨水,均质。
30 ℃培养18-24h,移取1ml接种于100ml增菌培养液(EB)中,30 ℃培养24、48h,分别进行分离。
直接增菌:
生乳、鲜肉以及未经加工处理过的样品。
25g+225ml 增菌培养液,30 ℃培养24和48h,分别进行分离。
分离:
划线接种于MMA或者OXA平板,35 ℃培养24-48h。
斜射光镜检。
MMA平板:
蓝色或者兰灰色,扁平圆润,稍有凸起,边缘整齐
菌落较小,约为0.5mm左右
OXA平板:
菌落呈黑色,直径1mm,
在其周围形成一个黑色环。
从MMA或OXA上挑取5个可疑菌落,接种TSA-YE平板,进行纯培养。
纯化菌落再转接到TSB-YE肉汤,35℃培养24h。
进行生化试验。
典型运动镜检:
从TSA-YE平板挑取生长良好的菌落于洁净载玻片上。
用0.85%灭菌生理盐水制成悬浮液。
在显微镜下用油镜观察。
短棒状杆菌,显微镜下可见轻微旋转和翻滚。
过氧化氢酶:
过氧化氢酶又称接触酶,能催化过氧化氢分解成水和氧。
菌落-平板-1滴3%的过氧化氢。
阳性。
过氧化氢酶实验也可以在试管中进行
革兰氏染色镜检:革兰氏阳性
溶血试验:
7%羊血琼脂平板,划分小格,刺种菌落。
做阳性对照和阴性对照(英诺克李斯特氏菌)。
35 ℃培养24-48h,于明亮处观察。
单核细胞增生李斯特氏菌在刺种点产生窄小的透明β溶血环
尿素酶(Urease)试验:
有些细菌能产生尿素酶,将尿素分解、产生2个分子的氨,使培养基变为碱性,酚红呈粉红色。
穿刺接种尿素酶琼脂斜面,35℃培养5天,逐日观察,阴性。
硝酸盐还原试验:
某些细菌能够把培养基中的硝酸盐还原为亚硝酸盐。
亚硝酸盐与乙酸反应生成亚硝酸。
硝酸与对氨基苯磺酸作用,形成偶氮苯磺酸。
偶氮苯磺酸与α萘氨结合,形成红色的N-α苯氨偶氮苯磺酸
接种硝酸盐肉汤,35℃培养5天,
加入0.2ml试剂A,再加入 0.2ml试剂B,轻摇混合。
红色:阳性
没有颜色变化:加入少量锌粉
-变红-阴性(硝酸盐未被还原)
-不变-阳性(亚硝酸盐已经分解成氨和氮)
甲基红(Methyl Red)试验:
某些细菌在分解葡萄糖过程中产生丙酮酸,进一步分解中,可产生乳酸,琥珀酸、醋酸和甲酸等大量酸性产物,可使培养基PH值下降至pH4.5以下,使甲基红指示剂变红。
有些细菌产酸量少,培养基的pH保持在6.2以上,指示剂呈现黄色
V-P试验:
某些细菌在葡萄糖蛋白胨水培养基中能分解葡萄糖产生丙酮酸,丙酮酸缩合,脱羧成乙酰甲基甲醇,后者在强碱环境下,被空气中氧氧化为二乙酰,二乙酰与蛋白胨中的胍基生成红色化合物,称V-P(+)反应。
操作:
接种MR-VP肉汤,35℃培养48h。
移取1ml于洁净试管,加入5%α-萘酚溶液6ml,
再加入10%氢氧化钾溶液0.2ml,轻摇1min,静置20min
VP-阳性反应:红色
剩余培养液继续培养2d,
加入甲基红指示剂5滴。
MR-阳性反应:红色
三糖铁(TSI)琼脂试验:
本试验可同时观察乳糖和蔗糖发酵产酸或产酸产气(变黄);产生硫化氢(变黑)。
葡萄糖被分解产酸可使斜面先变黄,但因量少,生成的少量酸,因接触空气而氧
化,加之细菌利用培养基中含氮物质,生成碱性产物,故使斜面后来又变红,底
部由于是在厌氧状态下,酸类不被氧化,所以仍保持黄色。
三糖铁试验:
接种三糖铁琼脂,35℃培养5天。
斜面和底层产酸,不产生硫化氢。
(发酵葡萄糖和蔗糖)
糖酵解试验
不同微生物分解利用糖类的能力有很大差异,或能利用或不能利用,能利用者,或产气或不产气。
可用指示剂及发酵管检验。
接种0.5%糖类发酵管。
35℃培养24-48h,阴性继续培养到5天。
李斯特氏菌不产气。
葡萄糖:阳性
麦芽糖:阳性
七叶苷:阳性
甘露醇:阴性
鼠李糖:阳性
木糖:阴性
动力观察:
穿刺接种半固体动力培养基,
室温(20-25℃)培养2-5天,逐日观察。
有动力。
自穿刺线向四周蔓延生长,
呈典型伞状生长,底部为弯月牙状
协同凝血试验:企业可不做。
血清学检验:企业可不做。
小鼠毒力试验:企业可不做。
结果报告:
阳性结果:检出单核细胞增生李斯特氏菌
阴性结果:未检出单核细胞增生李斯特氏菌
这是李斯特的协同溶血实验。
(cAMP)
两条竖线,左面是马红球菌,右面是金葡。
三条横线,上面是单增,中间是一种非溶血李斯特,下面是绵羊李斯特。
结果:单增在靠近金葡处溶血增强。
绵羊在靠近马红处溶血增强。
溶血实验:
从左向右依次是:
单增,窄小的贝塔溶血环。
绵羊,大的透明贝塔溶血环。
无溶血环的李斯特。
溶血实验局部放大照片。
从左向右依次是:
单增,窄小的贝塔溶血环。
绵羊,大的透明贝塔溶血环。
无溶血环的李斯特。