大小鼠实验动物的一般操作技术文稿演示
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小鼠大鼠实验动物生物学特性详解演示文稿
➢ 遗传：aabbCCdd ，淡棕色，H2q(DBA/1) ， H-2d(DBA/2)
第30页，共117页。
生物学特征
➢ 老年雌鼠有乳腺癌发生，61.5%，白血 病 8.4%；
➢ RBC增多； ➢ SPFA 400—600天； ➢ 几乎全部繁殖后的雌鼠可见心脏钙质沉
着。
第31页，共117页。
其它亚系
第16页，共117页。
（一） 常见近交系介绍
➢ BALB/c ➢ A系 ➢ C3H ➢ C57BL ➢ DBA
第17页，共117页。
1. BALB/c
➢ 起源： H. Bagg 博 士获得白化原种（1913 年）→Little→1923年 MacDowell近交育成 →1932（F26）Snell加 上/c→1947 Jax→BALB/CJ
➢ 遗传： AAbbccDD ，H-2d
第18页，共117页。
生物学特征
1. 乳腺肿瘤发病率较低，但对致癌因子敏感。有一定数量的卵巢、 肾上腺和肺肿瘤发生；
2. 生育年龄较长，一般不互相侵袭，易群养；
3. 易患慢性肺炎，有自发性高血压，老龄鼠心脏有病变；
4. 对X-ray极为敏感，对鼠伤寒沙门菌，对麻疹病毒敏感；
肉桂色，白斑色
5.阴暗群居，昼伏夜动 6.性情温驯，胆小怕惊
7.喜欢啃咬，雄性好斗
8.杂食性，但以粮食作物为主
第6页，共117页。
(二) 解剖学特性
1.齿式 1003 =16 1003
2.下颌骨形态稳定
门齿终生生长 遗传监测的指标
3.脊椎55-61个，肋骨12-14对，胸骨6块
4.食管细长（约2cm），胃由嵴分隔成前胃和腺胃,胃容量
3
第39页，共117页。
第30页，共117页。
生物学特征
➢ 老年雌鼠有乳腺癌发生，61.5%，白血 病 8.4%；
➢ RBC增多； ➢ SPFA 400—600天； ➢ 几乎全部繁殖后的雌鼠可见心脏钙质沉
着。
第31页，共117页。
其它亚系
第16页，共117页。
（一） 常见近交系介绍
➢ BALB/c ➢ A系 ➢ C3H ➢ C57BL ➢ DBA
第17页，共117页。
1. BALB/c
➢ 起源： H. Bagg 博 士获得白化原种（1913 年）→Little→1923年 MacDowell近交育成 →1932（F26）Snell加 上/c→1947 Jax→BALB/CJ
➢ 遗传： AAbbccDD ，H-2d
第18页，共117页。
生物学特征
1. 乳腺肿瘤发病率较低，但对致癌因子敏感。有一定数量的卵巢、 肾上腺和肺肿瘤发生；
2. 生育年龄较长，一般不互相侵袭，易群养；
3. 易患慢性肺炎，有自发性高血压，老龄鼠心脏有病变；
4. 对X-ray极为敏感，对鼠伤寒沙门菌，对麻疹病毒敏感；
肉桂色，白斑色
5.阴暗群居，昼伏夜动 6.性情温驯，胆小怕惊
7.喜欢啃咬，雄性好斗
8.杂食性，但以粮食作物为主
第6页，共117页。
(二) 解剖学特性
1.齿式 1003 =16 1003
2.下颌骨形态稳定
门齿终生生长 遗传监测的指标
3.脊椎55-61个，肋骨12-14对，胸骨6块
4.食管细长（约2cm），胃由嵴分隔成前胃和腺胃,胃容量
3
第39页，共117页。
小鼠的基本实验操作演示文稿
小鼠的基本实验操作
• 3、编号
•
苦味酸，背部，
• 逆毛发生长方向
• 4、去毛
•
脱毛剂：8%Na2S,自毛发根部涂抹
小鼠的基本实验操作
• 5、给药
• （1）灌胃法
•
固定小鼠，保持头颈部竖直
•
口角进针，紧贴咽后壁进入消化道
•
进针2/3后灌生理盐水0.5ml
• （2）腹腔注射
•
下腹部两侧进针，针与腹部成45〫
• 1、抓取和固定
• 2、性别鉴定
• （3）尾静脉注射
小鼠的基本实验操作
• 6、采血
•
（1）眼眶后静脉丛采血
（2）眼球摘除采血
• 7、麻醉
•
2%水合氯醛，20ml/kgBW，腹腔注射
8、处死
Hale Waihona Puke •颈椎脱臼•
过量麻醉
小鼠的基本实验操作
• 9、解剖
腹腔：肝脏、胃、肠道、胰腺、脾脏、肾脏、肾上腺、 输尿管、膀胱；卵巢、输卵管、子宫；睾丸、附睾、输精 管。
• （1）麻醉 固定 • （2）受体小鼠，背部剪毛（1.5cm×1.5cm），酒精消毒，
去皮（0.3cm×0.3cm） • （3）供体小鼠，酒精消毒尾部，尾背部剪皮
（0.5cm×0.5cm） • （4）供体皮片覆盖受体背部方洞 • （5）1～3周后观察结果
近交系小鼠皮肤移植试验
• 2、自体尾-尾植皮法
胸腔：肺、心脏。 颈部：甲状腺。 头部：开颅取脑。
• 要求：辨识各个器官，观察正常大小、形状、色泽、 表面形态。
小鼠皮肤移植试验、卵巢摘除术
近交系小鼠皮肤移植试验
• 一、动物
•
KM小鼠2只（1雌1雄）
大鼠一般操作技术ppt课件
灌胃时注意胃容量 0.1ml/10g-0.3ml/10g ，
＜1mL
14
精选课件ppt
腹腔注射
腹下1/3外侧，避 免损伤实质器官
30-45°角刺入 扎入时有“落空
感”，回抽无尿 液或血液
15
精选课件ppt
尾静脉注射
酒精擦拭尾部 左手食指，拇
指配合按住尾 端 右手持注射器 ，针尖轻轻抬 起与血管平行 刺入 血管由红变白 ，按压止血
18
精选课件ppt
生物标本的采集
血液采集
（断尾采血、眼眶采血、心脏采血等）
尿液采集
粪便采集
19
精选课件ppt
尾尖静脉采血法
固定→用手轻揉鼠尾→静脉充血后剪尾尖（12mm）→用手从尾根向尾尖推挤→采血→干棉 止血。每次0.1mL
20
精选课件ppt
眼眶后静脉丛采血
左手固定动物→滴少量10%可卡因于动物眼内→ 右手持消毒过毛细吸管→以抗凝剂湿润内壁→ 眼睑和眼球间旋转刺入→采血后消毒纱布止血 30秒。每次0.2-0.3mL
23
精选课件ppt
脏器标本的采集
将动物固定于解剖台上，从耻骨联合至下颌沿 正中线切开皮肤，再从耻骨联合至肋骨下缘沿 腹正中线切开腹壁肌肉（不要用力过猛，以免 切破腹腔脏器，特别是膀胱）。从肋骨下端向 脊柱方向，将两侧腹壁剪开，以便观察腹腔内 脏器。应注意不可将腹腔内脏器翻乱，应有次 序地检查。
24
动物的编号标记
常用标记，两种染 料（苦味酸和中性 红或品红）
先左后右，先上后 下
10
精选课件ppt
穿耳孔法
左耳代表十位，右耳代 表个位
应注意防止孔口愈合， 多使用消毒滑石粉涂抹 在打孔局部
11
＜1mL
14
精选课件ppt
腹腔注射
腹下1/3外侧，避 免损伤实质器官
30-45°角刺入 扎入时有“落空
感”，回抽无尿 液或血液
15
精选课件ppt
尾静脉注射
酒精擦拭尾部 左手食指，拇
指配合按住尾 端 右手持注射器 ，针尖轻轻抬 起与血管平行 刺入 血管由红变白 ，按压止血
18
精选课件ppt
生物标本的采集
血液采集
（断尾采血、眼眶采血、心脏采血等）
尿液采集
粪便采集
19
精选课件ppt
尾尖静脉采血法
固定→用手轻揉鼠尾→静脉充血后剪尾尖（12mm）→用手从尾根向尾尖推挤→采血→干棉 止血。每次0.1mL
20
精选课件ppt
眼眶后静脉丛采血
左手固定动物→滴少量10%可卡因于动物眼内→ 右手持消毒过毛细吸管→以抗凝剂湿润内壁→ 眼睑和眼球间旋转刺入→采血后消毒纱布止血 30秒。每次0.2-0.3mL
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精选课件ppt
脏器标本的采集
将动物固定于解剖台上，从耻骨联合至下颌沿 正中线切开皮肤，再从耻骨联合至肋骨下缘沿 腹正中线切开腹壁肌肉（不要用力过猛，以免 切破腹腔脏器，特别是膀胱）。从肋骨下端向 脊柱方向，将两侧腹壁剪开，以便观察腹腔内 脏器。应注意不可将腹腔内脏器翻乱，应有次 序地检查。
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动物的编号标记
常用标记，两种染 料（苦味酸和中性 红或品红）
先左后右，先上后 下
10
精选课件ppt
穿耳孔法
左耳代表十位，右耳代 表个位
应注意防止孔口愈合， 多使用消毒滑石粉涂抹 在打孔局部
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课件医实动学实验(大鼠、小鼠)
实验三大、小鼠的基本操作技术[实验目的]：通过大鼠、小鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、麻醉、标记、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作，掌握大、小鼠动物实验的基本操作技术。
[实验动物]：大鼠、小鼠[材料与器材]：大、小鼠饲养盒（带面罩）、大鼠和小鼠手术固定台，常规手术器械、大鼠灌胃针、小鼠灌胃针、lml注射器、5ml注射器、l0ml注射器、烧杯、75％酒精及酒精棉，干棉球。
生理盐水、20％乌拉坦溶液（或3％戊巴比妥钠）、乙醚、新洁尔灭、3—5％苦味酸溶液、0.5％中性红或品红溶液、[实验内容]：一、实验动物标记编号的方法一染色法（一）被毛染色法1、单色涂染法；（3—5％苦味酸溶液，可染成黄色）。
2、双色涂染法：苦味酸（黄色）—为个位数；品红（红色）—为十位数．（二）耳缘打孔法：适于做长期实验用。
、（三）刺数钳烙印法：适用于长期或慢性实验的大动物编号。
（四）号牌法：用于大动物实验。
二、实验动物被毛的去除方法（一）剪毛法；（二）拔毛法；（三）剃毛法；（四）脱毛法；三、大鼠、小鼠性别的鉴定方法步骤：1、将动物抓取后，腹部朝上，观察肛门与生殖器之间的距离，距离近的为雌性，距离远的为雄性，2、成年雌性大小鼠有12个乳头。
3、天热时或性成熟后，雄性动物的睾丸一般会从腹腔降至阴囊内，此时易于区别。
四、大鼠、小鼠的抓取和固定（一）小鼠的抓取固定：[实验器材]：小鼠饲养盒(带面罩)1套，小鼠防护手套若干。
[方法步骤]：1、用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将小鼠提起，放在饲养盒面罩上。
2、用左手拇指和食指迅速、准确地捏住小鼠的两耳后、颈背部的皮肤，将小鼠提起。
3、翻转左手掌，以左手掌心和中指夹小鼠背部的皮肤，使小鼠整个呈一条直线。
4、用左手无名指压住小鼠背部的皮肤，小指压住小鼠的尾巴根部。
5、松开捏住小鼠尾巴的右手拇指和食指。
[注意事项]：1、在抓取动物时，禁止对动物采取突然、粗暴的方法。
2、抓取时注意，过分用力，会使动物窒息或颈椎脱臼，用力过小，动物头部能反转过来咬伤实验者的手，必须熟练掌握。
大小白鼠的基本操作实验报告
大小白鼠的基本操作实验报告实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的：通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛，摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物：昆明小鼠2只（1雌1雄）三、实验步骤1、抓取和固定，标记2、去毛3、给药：消化道、腹腔注射、尾静脉注射4、取血：眼眶后静脉处丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉6、处死：脊椎脱臼法7、解剖：雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方，胶质状，透明)雌性：双角子宫、卵巢、肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果1抓取和固定标记：抓取：抓小鼠的尾根部固定：抓住小鼠的屋根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
并标记；灌胃法：左手抓取小鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，进针三分之二后灌生理盐水0.5ml；注射给药：腹腔注射：从下腹部的两侧进针，进针时针与腹部成45°。
进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可注射药物；尾静脉注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部，在尾动脉位置进针注射0.5ml 生理盐水。
注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。
4采血：从眼角内侧0.5cm处进针眼球摘除法：左手抓取用固定小鼠，右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除，头朝下，眼眶内血迅速流出。
5、麻醉：0.5%氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重22g，按100mg/kg的药量给药，2分钟麻醉成功。
6处死：脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7解：雄性：寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性：双角子宫、卵巢3.7.2 肾上腺：米粒大小胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状 3.7.4 ，胆囊：芗麻大小，浅绿色，半透明，甲状腺：紧贴环状软骨，另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
小鼠的基本实验操作 ppt课件
小鼠的基本实验操作
近交系小鼠皮肤移植试验
• 2、自体尾-尾植皮法
• （1）麻醉 固定 • （2）上一供体小鼠尾背部创面的下方取皮片
（0.5cm×0.5cm） • （3）旋转180〫，覆盖在创面上 • （4）1～3周后观察
小鼠的基本实验），右侧卧位，以左腹外侧区 （左肋弓下缘）为手术区，剪毛，酒精消毒，沿腹中线平 行切开1cm
胸腔：肺、心脏。 颈部：甲状腺。 头部：开颅取脑。
• 要求：辨识各个器官，观察正常大小、形状、色泽、 表面形态。
小鼠的基本实验操作
小鼠皮肤移植试验、卵巢摘除术
小鼠的基本实验操作
近交系小鼠皮肤移植试验
• 一、动物
•
KM小鼠2只（1雌1雄）
• 二、方法：
•
尾-背植皮法
•
尾-尾植皮法
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
• 3、编号
•
苦味酸，背部，
• 逆毛发生长方向
• 4、去毛
•
脱毛剂：8%Na2S,自毛发根部涂抹
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
• 5、给药
• （1）灌胃法
•
固定小鼠，保持头颈部竖直
•
口角进针，紧贴咽后壁进入消化道
•
进针2/3后灌生理盐水0.5ml
• （2）腹腔注射
胸腔：肺、心脏。
颈部：甲状腺。
头部：开颅取脑。
小鼠的基本实验操作
兔的一般实验操作
• 1、抓取和固定
• 2、性别鉴定
小鼠的基本实验操作
兔的一般实验操作
• 3、给药
• （1）灌胃 • （2）耳缘静脉注射
• 4、采血
• （1）耳缘静脉采血
近交系小鼠皮肤移植试验
• 2、自体尾-尾植皮法
• （1）麻醉 固定 • （2）上一供体小鼠尾背部创面的下方取皮片
（0.5cm×0.5cm） • （3）旋转180〫，覆盖在创面上 • （4）1～3周后观察
小鼠的基本实验），右侧卧位，以左腹外侧区 （左肋弓下缘）为手术区，剪毛，酒精消毒，沿腹中线平 行切开1cm
胸腔：肺、心脏。 颈部：甲状腺。 头部：开颅取脑。
• 要求：辨识各个器官，观察正常大小、形状、色泽、 表面形态。
小鼠的基本实验操作
小鼠皮肤移植试验、卵巢摘除术
小鼠的基本实验操作
近交系小鼠皮肤移植试验
• 一、动物
•
KM小鼠2只（1雌1雄）
• 二、方法：
•
尾-背植皮法
•
尾-尾植皮法
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
• 3、编号
•
苦味酸，背部，
• 逆毛发生长方向
• 4、去毛
•
脱毛剂：8%Na2S,自毛发根部涂抹
小鼠的基本实验操作
小鼠的基本实验操作
• 5、给药
• （1）灌胃法
•
固定小鼠，保持头颈部竖直
•
口角进针，紧贴咽后壁进入消化道
•
进针2/3后灌生理盐水0.5ml
• （2）腹腔注射
胸腔：肺、心脏。
颈部：甲状腺。
头部：开颅取脑。
小鼠的基本实验操作
兔的一般实验操作
• 1、抓取和固定
• 2、性别鉴定
小鼠的基本实验操作
兔的一般实验操作
• 3、给药
• （1）灌胃 • （2）耳缘静脉注射
• 4、采血
• （1）耳缘静脉采血
动物实验基本操作技术课件 PPT
兔灌胃法
器械： • 灌胃管（特制胃管或导尿管） • 开口器（木质纺锤状）
兔灌胃法
操作方法： 1.固定：动物取直立或平卧体位，固定动物头
部。 直立位需2人合作，一人取坐位，将兔的躯 体和下肢夹在两腿之间，左手紧握双耳固 定头部，右手抓住前肢，将兔固定于竖立 体位。另一人将开口器横放于兔口中，让 动物咬住开口器，即可开始插入灌胃管。
2. 家兔
• 一手抓住兔颈部的被毛与皮肤，另一手托其臀部 或腹部，使其躯干的重量大部分集中在手上。
兔手术固定台
实验动物的编号方法
1. 染色法 2. 耳缘剪孔法 3. 挂牌法 4. 烙印法
1、染色法：浅色动物
➢3～5％苦味酸溶液（黄色） ➢0.5%中性红或碱性品红溶液（红色） ➢2％硝酸银溶液（咖啡色，涂后光照10分钟） ➢煤焦油乙醇溶液（黑色） ➢甲紫（龙胆紫）溶液（紫色）
动物实验基本操作技术
实验动物的捉拿和固定方法 实验动物的给药方法 实验动物的麻醉方法 实验动物的编号方法 实验动物的去毛方法 实验动物的取血方法 实验动物的处死方法
一、实验动物的捉拿和固定方法 1. 小鼠
捉拿时先用右手将鼠尾抓住提起，放在较粗糙的台面 或鼠笼上， 在其向前爬行时，右手向后拉尾，用左手拇指 和食指抓住小鼠的两耳和头颈部皮肤，将其固定于左手手 心中，拉直四肢并用左手无名指压紧尾和后肢，右手即可 作注射或其他实验操作。取尾血及尾静脉注射时，可将小 鼠固定在金属或木制的固定器上。
一、常用手术器械 二、常用手术插管技术 ✓ 气管插管术 ✓ 颈动脉插管术 ✓ 颈静脉插管术
动物实验常用手术器械
眼科剪
组织镊 眼科镊
止血钳
组织剪
粗剪刀
粗剪
用于蛙类实验中的剪骨、肌肉和皮 肤等粗硬组织以及家兔等实验动物的 剪毛。
动物实验基本操作技术课件
*
二、豚鼠 一般老年豚鼠牙齿和趾爪长，被毛稀疏无光泽，眼神呆滞，行动迟缓。而年轻豚鼠牙齿短白，爪短软，眼睛圆亮，行动敏捷，被毛有光泽，且紧贴身体。同样，也可根据体重来推断大致年龄。同日龄豚鼠，雌性体重略高于雄性。与大鼠一样，其体重受多种因素的制约。实验对年龄要求比较严格时，必须由卡片记录提供准确年龄。
*
*
采血时要注意
采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25～28℃，冬季，15～20℃为宜； 采血用具有采用部位一般需要进行消毒； 采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥； 若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂。
*
*
部 位
动物种类
ａ．尾静脉
大鼠、小鼠
*
*
外部检查法 摸胎法 阴道检查法 直肠检查法 超声波检查法 孕酮含量测定法
妊娠检查方法有
*
*
第五节 分组与编号
动物实验之前，必须对实验动物进行随机分组和编号标记，这是做好实验和实验记录的前提。 随机分组 当分为二组时 例：设有雄性Wistar大鼠12只，按体重大小依次编为1，2，3，…，12号，试用完全随机的方法，分为甲、乙两组。 分组方法：假设所产生的点是随机数字表上第21行第31列的78，则从78开始，由上向下抄12个随机数字，如下：
ｂ．耳静脉
兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊
ｃ．眼底静脉丛
兔、大鼠、小鼠
d．舌下静脉
兔
e．腹壁静脉
青蛙、蟾蜍
f．冠、脚蹼皮下静脉
鸡、鸭、鹅
１．取少量血
*
*
部 位
动物种类
ａ．后肢外侧皮下小隐静脉
狗、猴、猫
ｂ．前肢内侧皮下头静脉
狗、猴、猫
ｃ．耳中央动脉
兔
二、豚鼠 一般老年豚鼠牙齿和趾爪长，被毛稀疏无光泽，眼神呆滞，行动迟缓。而年轻豚鼠牙齿短白，爪短软，眼睛圆亮，行动敏捷，被毛有光泽，且紧贴身体。同样，也可根据体重来推断大致年龄。同日龄豚鼠，雌性体重略高于雄性。与大鼠一样，其体重受多种因素的制约。实验对年龄要求比较严格时，必须由卡片记录提供准确年龄。
*
*
采血时要注意
采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25～28℃，冬季，15～20℃为宜； 采血用具有采用部位一般需要进行消毒； 采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥； 若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂。
*
*
部 位
动物种类
ａ．尾静脉
大鼠、小鼠
*
*
外部检查法 摸胎法 阴道检查法 直肠检查法 超声波检查法 孕酮含量测定法
妊娠检查方法有
*
*
第五节 分组与编号
动物实验之前，必须对实验动物进行随机分组和编号标记，这是做好实验和实验记录的前提。 随机分组 当分为二组时 例：设有雄性Wistar大鼠12只，按体重大小依次编为1，2，3，…，12号，试用完全随机的方法，分为甲、乙两组。 分组方法：假设所产生的点是随机数字表上第21行第31列的78，则从78开始，由上向下抄12个随机数字，如下：
ｂ．耳静脉
兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊
ｃ．眼底静脉丛
兔、大鼠、小鼠
d．舌下静脉
兔
e．腹壁静脉
青蛙、蟾蜍
f．冠、脚蹼皮下静脉
鸡、鸭、鹅
１．取少量血
*
*
部 位
动物种类
ａ．后肢外侧皮下小隐静脉
狗、猴、猫
ｂ．前肢内侧皮下头静脉
狗、猴、猫
ｃ．耳中央动脉
兔
大小鼠实验动物的一般操作技术(共22张PPT)
• 实验讨论： • 大动物要求：
• 某公司现研发出一种新型农药要做产品登记，请根据今天所学的内容设 计一个简要的一般毒性试验方案（主要是操作思路和关键手法）。
• 1.实验目的。 2.实验过程：包括（1）动物的选择和分组；（2）选取两种染毒方式；（3）关键的操作 步骤。 3.实验心得体会。
• 小动物要求：
1.了解动物实验的目的和意义 1、大、小鼠的抓取和性别判断；
（3）关键的操作步骤。
不同组间同性别动物体重均值差异小于5%； 了解实验动物选择和染毒途径。 生物标本的采集 （鼠尾取血、眼眶取血） 注射染毒时要注意安全，注射器不用时要盖上盖子，不要被扎伤。
2.了解实验动物选择和染毒途径。 掌握大、小鼠实验的基本操作技术。
12
注意拽鼠尾时不要用力过大，以免损伤鼠尾或使小鼠致死
原则： 大小鼠固定器（两人一套） 棉签 棉球 剪刀 血色素吸管 纱手套 一次性胶手套 染液 头皮针（4号半或5号）小鼠笼（每组2个）、搪瓷托盘
（每组一个）
同组、同性别动物体重差异应小于平均体重的10%；
体形丰满，同被毛一浓密实有光泽验、紧中贴体，表，实眼睛验明亮动，反应物行动的灵活年。 龄尽可能一致，实验动物体重
• 1、大、小鼠的抓取和性别判断；2、实验动物的标记方法；3、实验动物的分组方法；4、实验动物的染
毒途径和方法（灌胃，腹腔注射和尾静脉注射方法）；5、动物的处死方法。 （还可包括实验中你觉得那些操作的手法自己不适合，或那些实验步骤需要改进等，还可有其他的关于这堂
课相关的扩展知识都可上）
21
1. 抓取与操作动物时小心不要被咬伤，如果被咬伤
3. 性别鉴定 4. 实验动物编号标记
5. 实验动物染毒途径和方法（灌胃、腹腔注射、尾静脉注射） 6. 生物标本的采集 （鼠尾取血、眼眶取血） 7. 实验动物的处死
• 某公司现研发出一种新型农药要做产品登记，请根据今天所学的内容设 计一个简要的一般毒性试验方案（主要是操作思路和关键手法）。
• 1.实验目的。 2.实验过程：包括（1）动物的选择和分组；（2）选取两种染毒方式；（3）关键的操作 步骤。 3.实验心得体会。
• 小动物要求：
1.了解动物实验的目的和意义 1、大、小鼠的抓取和性别判断；
（3）关键的操作步骤。
不同组间同性别动物体重均值差异小于5%； 了解实验动物选择和染毒途径。 生物标本的采集 （鼠尾取血、眼眶取血） 注射染毒时要注意安全，注射器不用时要盖上盖子，不要被扎伤。
2.了解实验动物选择和染毒途径。 掌握大、小鼠实验的基本操作技术。
12
注意拽鼠尾时不要用力过大，以免损伤鼠尾或使小鼠致死
原则： 大小鼠固定器（两人一套） 棉签 棉球 剪刀 血色素吸管 纱手套 一次性胶手套 染液 头皮针（4号半或5号）小鼠笼（每组2个）、搪瓷托盘
（每组一个）
同组、同性别动物体重差异应小于平均体重的10%；
体形丰满，同被毛一浓密实有光泽验、紧中贴体，表，实眼睛验明亮动，反应物行动的灵活年。 龄尽可能一致，实验动物体重
• 1、大、小鼠的抓取和性别判断；2、实验动物的标记方法；3、实验动物的分组方法；4、实验动物的染
毒途径和方法（灌胃，腹腔注射和尾静脉注射方法）；5、动物的处死方法。 （还可包括实验中你觉得那些操作的手法自己不适合，或那些实验步骤需要改进等，还可有其他的关于这堂
课相关的扩展知识都可上）
21
1. 抓取与操作动物时小心不要被咬伤，如果被咬伤
3. 性别鉴定 4. 实验动物编号标记
5. 实验动物染毒途径和方法（灌胃、腹腔注射、尾静脉注射） 6. 生物标本的采集 （鼠尾取血、眼眶取血） 7. 实验动物的处死
鼠的基本实验操
20～40ml空气，急性循环衰竭
单击此处添加正文，文字是您思想的提炼，为了演示发布的良好效果，请言简意赅地阐述您的观点。您的内容已经简明扼 要，字字珠玑，但信息却千丝万缕、错综复杂，需要用更多的文字来表述；但请您尽可能提炼思想的精髓，否则容易造成 观者的阅读压力，适得其反。正如我们都希望改变世界，希望给别人带去光明，但更多时候我们只需要播下一颗种子，自 然有微风吹拂，雨露滋养。恰如其分地表达观点，往往事半功倍。当您的内容到达这个限度时，或许已经不纯粹作用于演 示，极大可能运用于阅读领域；无论是传播观点、知识分享还是汇报工作，内容的详尽固然重要，但请一定注意信息框架 的清晰，这样才能使内容层次分明，页面简洁易读。如果您的内容确实非常重要又难以精简，也请使用分段处理，对内容 进行简单的梳理和提炼，这样会使逻辑框架相对清晰。
解剖
腹腔：肝脏、胃、肠道、圆小囊、胰腺、脾脏、肾脏、肾上腺、输尿 管、膀胱；卵巢、输卵管、子宫；睾丸、附睾、输精管。
胸腔：肺、心脏。胸腔纵隔。
颈部：甲状腺。颈部N：迷走、交感、减压N。
○ 胸腔：肺、心脏。 ○ 颈部：甲状腺。 ○ 头部：开颅取脑。
要求：辨识各个器官，观察正常大小、形状、色泽、表面形态。
01
小鼠皮肤移植试验、 卵巢摘除术
ห้องสมุดไป่ตู้
近交系小鼠皮肤移 植试验
一．动物 KM小鼠2只（1雌1雄） 一．方法： 尾-背植皮法 尾-尾植皮法
近交系小鼠皮肤移植试验
步骤 异体尾-背植皮法 麻醉 固定 受体小鼠，背部剪毛（1.5cm×1.5cm），酒精消毒，去皮（0.3cm×0.3cm） 供体小鼠，酒精消毒尾部，尾背部剪皮（0.5cm×0.5cm） 供体皮片覆盖受体背部方洞 1～3周后观察结果
腹 位肉 肌 ）肤 皮 注 豚 豚
单击此处添加正文，文字是您思想的提炼，为了演示发布的良好效果，请言简意赅地阐述您的观点。您的内容已经简明扼 要，字字珠玑，但信息却千丝万缕、错综复杂，需要用更多的文字来表述；但请您尽可能提炼思想的精髓，否则容易造成 观者的阅读压力，适得其反。正如我们都希望改变世界，希望给别人带去光明，但更多时候我们只需要播下一颗种子，自 然有微风吹拂，雨露滋养。恰如其分地表达观点，往往事半功倍。当您的内容到达这个限度时，或许已经不纯粹作用于演 示，极大可能运用于阅读领域；无论是传播观点、知识分享还是汇报工作，内容的详尽固然重要，但请一定注意信息框架 的清晰，这样才能使内容层次分明，页面简洁易读。如果您的内容确实非常重要又难以精简，也请使用分段处理，对内容 进行简单的梳理和提炼，这样会使逻辑框架相对清晰。
解剖
腹腔：肝脏、胃、肠道、圆小囊、胰腺、脾脏、肾脏、肾上腺、输尿 管、膀胱；卵巢、输卵管、子宫；睾丸、附睾、输精管。
胸腔：肺、心脏。胸腔纵隔。
颈部：甲状腺。颈部N：迷走、交感、减压N。
○ 胸腔：肺、心脏。 ○ 颈部：甲状腺。 ○ 头部：开颅取脑。
要求：辨识各个器官，观察正常大小、形状、色泽、表面形态。
01
小鼠皮肤移植试验、 卵巢摘除术
ห้องสมุดไป่ตู้
近交系小鼠皮肤移 植试验
一．动物 KM小鼠2只（1雌1雄） 一．方法： 尾-背植皮法 尾-尾植皮法
近交系小鼠皮肤移植试验
步骤 异体尾-背植皮法 麻醉 固定 受体小鼠，背部剪毛（1.5cm×1.5cm），酒精消毒，去皮（0.3cm×0.3cm） 供体小鼠，酒精消毒尾部，尾背部剪皮（0.5cm×0.5cm） 供体皮片覆盖受体背部方洞 1～3周后观察结果
腹 位肉 肌 ）肤 皮 注 豚 豚
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腹下1/3外侧，避 免损伤实质器官
扎入时有“落空 感”，回抽无尿 液或血液
尾静脉注射
从远端进针 注意拽鼠尾时
不要用力过大 ，以免损伤鼠 尾或使小鼠致 死
生物标本的采集
血液采集
（断尾采血、眼眶采血、动脉采血等）
尿液采集
胆汁采集
粪便采集
眼眶后静脉丛采血
动物的处死
脊椎脱臼法（断髓处死）：大、小鼠 断头法；急性大失血法；（摘取眼球法）击打
成年鼠：雄性卧位 可见睾丸，雌性可 见腹部有12个乳头。
动物的编号标记
常用标记，两种染 料（苦味酸和中性 红或品红）
实验动物的分组
原则： 同一实验中，实验动物的年龄尽可能一致，实验动物 体重大致相近； 同组、同性别动物体重差异应小于平均体重的10%； 不同组间同性别动物体重均值差异小于5%；♀♂动物 各半，且♀♂实验结果分开统计、分析。
（还可包括实验中你觉得那些操作的手法自己不适合，或那些实验步骤需要改进等，还 可有其他的关于这堂课相关的扩展知识都可上）
注意事项：
1. 抓取与操作动物时小心不要被咬伤，如果被 咬伤需立即用清水冲洗并用碘酒消毒。
2. 抓取动物时用力要恰当,防止动物窒息死亡。 3. 抓取动物时要小心其身上可能存在的虱子。 4. 注射染毒时要注意安全，注射器不用时要盖
二. 实验内容：
1. 实验动物的选择 ✓ 2. 实验动物的抓取和固定 ✓ 3. 性别鉴定 4. 实验动物编号标记 ✓ 5. 实验动物染毒途径和方法（灌胃、腹腔注射、尾静脉注射） ✓ 6. 生物标本的采集 （鼠尾取血、眼眶取血） ✓ 7. 实验动物的处死
实验流程
动物的选择
动物物种选择基本原则：
大小鼠实验动物的一般操作技术文稿演示
实验动物一般操作技术（一）
―――大鼠、小鼠
体外替代实验
3R原则 体外替代实验（目前在国际上被承认的体外替
代实验的方法） 皮肤刺激实验 眼刺激实验等
一、实验目的：
1.了解动物实验的目的和意义 2.了解实验动物选择和染毒途径。 3.掌握大、小鼠实验的基本操作技术。
头部法；麻醉后急性放血法； 开放性气胸法。
三、实验报告书写和实验讨
论：
报告要求书写整洁，过程明了
内容包括：
实验目的，主要的实验内容，各项实验内容的主要的操作手法及注意 事项（内容可和后面的讨论一起写，按照每一个小问题来答题）
• 实验讨论： • 大动物要求： • 某公司现研发出一种新型农药要做产品登记，请根据今天所学的内容
设计一个简要的一般毒性试验方案（主要是操作思路和关键手法）。
• 1.实验目的。 2.实验过程：包括（1）动物的选择和分组；（2）选取两种染毒方式； （3）关键的操作步骤。 3.实验心得体会。
• 小动物要求：
• 1、大、小鼠的抓取和性别判断；2、实验动物的标记方法；3、实验动物的分组方法；4、 实验动物的染毒途径和方法（灌胃，腹腔注射和尾静脉注射方法）；5、动物的处死方法。
称重 编号 随机分组
实验动物染毒途径和方法
经口染毒
（喂饲、灌胃、吞咽胶囊等）
经呼吸道染毒（静式、动式和气管内注入） 经皮肤染毒
注射染毒
（皮下、皮内、肌内、腹腔和鼠尾静脉注射等）
其它
（直肠内、鼻腔等）
灌胃
抓取老鼠时应是鼠 成竖直线
灌胃成功时，所遇阻 力较小
灌胃时注意胃容量
腹腔注射
上盖子，不要被扎伤。 5. 实验动物在做完所有操作后才进行处死，处
死后的动物不要与其他垃圾混合丢弃。
外观观察
健康动物首先看外观： 体形丰满，被毛浓密有光泽、紧贴体表，眼睛 明亮，反应行动灵活。
有无明显疾病症状 体重、年龄
小鼠3周体重约为10~15g，大鼠3~4周体重约为 50~70g
动物的抓取和固定
注意抓取动物的 手法
抓取固定时力量 大小适宜性别 Nhomakorabea定未成熟鼠生殖器发 育不明显，肛门与 生殖器之间的距离 来区分。远——♂、 近——♀。
扎入时有“落空 感”，回抽无尿 液或血液
尾静脉注射
从远端进针 注意拽鼠尾时
不要用力过大 ，以免损伤鼠 尾或使小鼠致 死
生物标本的采集
血液采集
（断尾采血、眼眶采血、动脉采血等）
尿液采集
胆汁采集
粪便采集
眼眶后静脉丛采血
动物的处死
脊椎脱臼法（断髓处死）：大、小鼠 断头法；急性大失血法；（摘取眼球法）击打
成年鼠：雄性卧位 可见睾丸，雌性可 见腹部有12个乳头。
动物的编号标记
常用标记，两种染 料（苦味酸和中性 红或品红）
实验动物的分组
原则： 同一实验中，实验动物的年龄尽可能一致，实验动物 体重大致相近； 同组、同性别动物体重差异应小于平均体重的10%； 不同组间同性别动物体重均值差异小于5%；♀♂动物 各半，且♀♂实验结果分开统计、分析。
（还可包括实验中你觉得那些操作的手法自己不适合，或那些实验步骤需要改进等，还 可有其他的关于这堂课相关的扩展知识都可上）
注意事项：
1. 抓取与操作动物时小心不要被咬伤，如果被 咬伤需立即用清水冲洗并用碘酒消毒。
2. 抓取动物时用力要恰当,防止动物窒息死亡。 3. 抓取动物时要小心其身上可能存在的虱子。 4. 注射染毒时要注意安全，注射器不用时要盖
二. 实验内容：
1. 实验动物的选择 ✓ 2. 实验动物的抓取和固定 ✓ 3. 性别鉴定 4. 实验动物编号标记 ✓ 5. 实验动物染毒途径和方法（灌胃、腹腔注射、尾静脉注射） ✓ 6. 生物标本的采集 （鼠尾取血、眼眶取血） ✓ 7. 实验动物的处死
实验流程
动物的选择
动物物种选择基本原则：
大小鼠实验动物的一般操作技术文稿演示
实验动物一般操作技术（一）
―――大鼠、小鼠
体外替代实验
3R原则 体外替代实验（目前在国际上被承认的体外替
代实验的方法） 皮肤刺激实验 眼刺激实验等
一、实验目的：
1.了解动物实验的目的和意义 2.了解实验动物选择和染毒途径。 3.掌握大、小鼠实验的基本操作技术。
头部法；麻醉后急性放血法； 开放性气胸法。
三、实验报告书写和实验讨
论：
报告要求书写整洁，过程明了
内容包括：
实验目的，主要的实验内容，各项实验内容的主要的操作手法及注意 事项（内容可和后面的讨论一起写，按照每一个小问题来答题）
• 实验讨论： • 大动物要求： • 某公司现研发出一种新型农药要做产品登记，请根据今天所学的内容
设计一个简要的一般毒性试验方案（主要是操作思路和关键手法）。
• 1.实验目的。 2.实验过程：包括（1）动物的选择和分组；（2）选取两种染毒方式； （3）关键的操作步骤。 3.实验心得体会。
• 小动物要求：
• 1、大、小鼠的抓取和性别判断；2、实验动物的标记方法；3、实验动物的分组方法；4、 实验动物的染毒途径和方法（灌胃，腹腔注射和尾静脉注射方法）；5、动物的处死方法。
称重 编号 随机分组
实验动物染毒途径和方法
经口染毒
（喂饲、灌胃、吞咽胶囊等）
经呼吸道染毒（静式、动式和气管内注入） 经皮肤染毒
注射染毒
（皮下、皮内、肌内、腹腔和鼠尾静脉注射等）
其它
（直肠内、鼻腔等）
灌胃
抓取老鼠时应是鼠 成竖直线
灌胃成功时，所遇阻 力较小
灌胃时注意胃容量
腹腔注射
上盖子，不要被扎伤。 5. 实验动物在做完所有操作后才进行处死，处
死后的动物不要与其他垃圾混合丢弃。
外观观察
健康动物首先看外观： 体形丰满，被毛浓密有光泽、紧贴体表，眼睛 明亮，反应行动灵活。
有无明显疾病症状 体重、年龄
小鼠3周体重约为10~15g，大鼠3~4周体重约为 50~70g
动物的抓取和固定
注意抓取动物的 手法
抓取固定时力量 大小适宜性别 Nhomakorabea定未成熟鼠生殖器发 育不明显，肛门与 生殖器之间的距离 来区分。远——♂、 近——♀。