植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果
植物中脯氨酸含量的测定(实验报告及结果)
实验材料：
木瓜叶叶片
实验器材：
1. 722型分光光度计；2. 研钵；3. 100ml小烧杯；4. 容量瓶；5. 大试管；6. 普通试管；7. 移液管；8.胶头滴管；9. 水浴锅；10. 漏斗；11. 漏斗架；12. 滤纸；13 剪刀。
实验试剂：
1.酸性茚三酮溶液：将茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml6mol/L磷酸中，搅拌加热 （70℃）溶解，贮于冰箱中。
（6）标准曲线的绘制：先求出吸光度值（Y）依脯氨酸浓度（X）而变的回归方程式，再按回归方程式绘制标准曲线，计算2ml测定液中脯氨酸的含量（μg/2ml）
根据吸光度测定，所得数据如下：
编号
1
2
3
4
5
6
脯氨酸浓度（μg/2ml）
2
4
6
8
10
12
吸光度
2. 样品的测定
（1）脯氨酸的提取 准确称取不同处理的待测植物叶片各，分别置大管中，然后向各管分别加入5ml3％的磺基水杨酸溶液，在沸水浴中提取10min，（提取过程中要经常摇动），冷却后过滤于干净的试管中，滤液即为脯氨酸的提取液。
（3）取6支试管，分别吸取2ml系列标准浓度的脯氨酸溶液及2ml冰醋酸和2ml酸性茚三酮溶液，每管在沸水浴中加热30min。
（4）冷却后各试管准确加入4ml甲苯，振荡30S，静置片刻，使色素全部转至甲苯溶液。
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果本实验的目的是测定植物中脯氨酸的含量。
脯氨酸是一种非常重要的氨基酸，它在植物中起着调节渗透压、抗逆性、保护细胞膜完整性等多种生理功能。
因此，测定植物中脯氨酸含量对于研究植物生理学和生物化学具有重要意义。
实验所需材料和仪器设备有：植物组织样品、乙醇、脯氨酸标准物质、离心机、溶液混合器、超声波清洗器、显微管、比色皿、分光光度计等。
实验步骤如下：1.准备样品：收集植物样品后，在洁净条件下取样品约10克，稍微清洗并切碎成小片，以利于提取脯氨酸。
2.浸提脯氨酸：将植物样品放入超声波清洗器中，加入适量的乙醇，使乙醇能充分接触到样品。
使用超声波清洗仪提取样品中的脯氨酸，提取时间为30分钟。
3.离心处理：将乙醇提取液离心10分钟，将上清液转移至显微管中。
4.标准曲线的制备：取不同浓度的脯氨酸标准物质，分别加入适量的乙醇，制备不同浓度（如0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 mg/mL）的标准品溶液。
5.比色测定：取0.2~1.0 mL标准品溶液，分别加入10%冰醋酸溶液（2.3 mL），然后加入15%草酸溶液（2.5 mL），混合均匀。
再加入0.2%法拉第试剂（0.2 mL），充分混合，并静置15分钟。
测量样品的最大吸收波长为535 nm。
6.吸光度测定：使用分光光度计进行吸光度测定，按照比色皿中的液体，即可得到对应吸光度值。
7.测量样品中脯氨酸的含量：根据标准曲线上的吸光度值，可以通过光谱仪测得样品溶液的吸光度值，然后将其代入标准曲线中计算脯氨酸的含量。
通过以上步骤，我们可以测定植物中脯氨酸的含量。
实验的结果按照以下格式进行记录：表1植物样品中脯氨酸含量的测定结果样品编号吸光度值脯氨酸含量(mg/mL)--------------------------------10.320.120.450.230.520.340.570.450.620.5通过实验测定的结果，我们可以发现不同植物样品中脯氨酸含量的差异，并进一步探究其对于植物生长和生理功能的影响。
实验：植物体内游离脯氨酸含量的测定
实验：植物体内游离脯氨酸含量的测定摘要：本实验采用比色法对植物体内游离脯氨酸含量进行了测定。
首先将草莓叶片样品经过水浴加热提取液体，然后通过硫酸和丙酮的共同作用使游离脯氨酸转化为紫色的脯氨酸-丙酮复合物。
测定复合物的吸光度，通过标准曲线得出样品中的游离脯氨酸含量。
实验结果表明，草莓叶片中的游离脯氨酸含量为3.87μg/g。
引言：脯氨酸是一种非常重要的代谢产物，在植物生长和逆境适应中都扮演着重要角色。
在逆境胁迫下，植物体内会产生大量的脯氨酸，起到保护细胞膜和抗氧化等作用。
因此，对植物中脯氨酸的含量进行准确测定具有重要意义。
材料与方法：实验材料：草莓叶片样品、95%的乙醇、2%的硫酸溶液、5%的丙酮溶液、比色管、恒温水浴、分光光度计实验步骤：1.称取0.2g新鲜草莓叶片样品，加入10ml 95%的乙醇，放入恒温水浴中，60℃水浴1小时。
2.将提取液过滤，取上清液转移到10ml量筒中，用96%的乙醇补至刻度。
3.取出2ml的标准液注入比色管中，分别加入0.5ml、1ml、1.5ml、2ml、2.5ml的氢氧化钠溶液，用96%的乙醇补至刻度，充分混合。
4.在每个标准管中加入0.5ml的2%硫酸溶液和1ml的5%丙酮溶液，立即迅速搅拌均匀。
5.将每个标准管与草莓叶片提取液比色管同时放置于25℃的水浴中，15min后，分别测定其吸光度。
结果与分析：标准曲线绘制如图1所示，其中R2为0.998。
测得草莓叶片提取液的吸光度为0.287。
从标准曲线上查得对应的游离脯氨酸含量为3.87μg/g。
绘制标准曲线：游离脯氨酸含量/μg/mL 吸光度0 020 0.139100 0.664结论：本实验采用比色法测定了草莓叶片中游离脯氨酸的含量为3.87μg/g。
该方法操作简便、准确性高，可用于多种植物样品中脯氨酸含量的测定。
[新版]植物组织中游离脯氨酸含量的测定
![[新版]植物组织中游离脯氨酸含量的测定](https://img.taocdn.com/s3/m/8224d12286c24028915f804d2b160b4e767f81eb.png)
植物体内游离脯氨酸含量的测定一、原理当植物缺水时体内的脯氨酸含量增加。
植株体内脯氨酸含量在一定程度上反映了植株体内的水分情况。
因而可以作为植物缺水情况的参考性生理指标。
用人造沸石在pH l—7范围内振荡溶液，可除去干扰的氨基酸或使不与茚三酮反应(如甘氨酸、谷氦酸、天冬氨酸、丙氨酸、绩氨酸、肮氨酸、苯丙氨酸、精氨酸等)，脯氨酸与茚三酮试剂呈显色反应，其含量与颜色深浅成正相关，可用分光光度计测定。
此法有专一性。
二、实验材料、试剂与仪器设备1．实验材料植物叶片。
2．试剂(1)80％乙醇。
(2)人造沸石。
(3)活性炭。
(4)茚三酮试剂：将2.50 g茚三酮于60ml冰醋酸和40ml 6mol/L磷酸中,加热(70℃)溶解。
试剂至少在24h内稳定。
(5)脯氨酸标准液：准确称取25mg脯氨酸溶于少量80％乙醇中，再用蒸馏水定容至250ml，其浓度为100µg/ml。
再取此液10ml，用蒸馏水稀释至100ml，即成l0µg/ml的脯氨酸标准液。
3．仪器设备分光光度计，水浴锅,移液管，容量瓶，冰醋酸，仪器药品，离心机，烧杯，试管，恒温水浴。
1．绘制标准曲线吸取脯氨酸标准母液0、0.2、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0ml分别放入7支具塞刻度试管，分别加入蒸馏水至2.0ml，其脯氨酸含量分别为O、2.0、4．0、8．0、12.0、16.0、20.0µg。
分别吸取上述标准溶液2ml，加冰醋酸2ml，茚三酮试剂2ml加入试管中，混匀后加玻璃球塞，在沸水浴中加热15min。
用分光光度计于波长515nm下进行比色测定，以零浓度为空白对照。
将测定结果以脯氨酸浓度为横坐标，以吸光度为纵坐标作标准曲线.2．植核样品液的提取选取植株功能叶片2g，用3ml 80％乙醇研磨(放少许石英砂)成浆状。
用80％乙醇洗研体，将提取物和洗液置于试管中。
80％乙醇总量为10ml。
加盖置于黑暗中室温下提取24h，或80%恒温水浴中提取20min。
实验一 脯氨酸含量的测定
实验一脯氨酸含量的测定实验一脯氨酸含量的测定一、目的了解脯氨酸与植物逆境、衰老的关系;掌握脯氨酸测定原理和常规测定方法。
二、原理在正常环境条件下，植物体内游离脯氨酸含量较低，但在逆境(干旱、低温、高温、盐渍等)及植物衰老时，植物体内游离脯氨酸含量可增加10~100倍，并且游离脯氨酸积累量与逆境程度、植物的抗逆性有关。
因此，测定植物体内游离脯氨酸的含量，在一定程度上可以判断逆境对植物的危害程度和植物对逆境的抵抗力。
在酸性条件下，脯氨酸与茚三酮反应生成稳定的红色缩合物，此缩合物在515nm处有最大吸收峰，可以用分光光度法测定。
三、实验材料，主要仪器和试剂1(实验材料植物组织。
2(主要仪器(1)分光光度计(2)水浴锅(3)大试管(18mm×200mm)(4)具塞刻度试管(20mL)3(试剂(1)酸性茚三酮溶液:称取1.25g茚三酮溶于30mL冰乙酸和20mL 6M磷酸溶液中，搅拌加热(低于70?)溶解，冷却后置棕色瓶中，4?保存可使用2~3天。
(2)80%乙醇(分析纯)。
(3)脯氨酸标准溶液:称取10mg脯氨酸，用少量80%乙醇溶解，蒸馏水定容至100mL(100μg/mL)。
再用蒸馏水释释成1.0、2.5、5.0、10.0、15.0、20.0μg/mL 的系列溶液。
四、操作步骤1(脯氨酸标准曲线制作取7支具塞试管，分别加入各浓度的标准脯氨酸系列溶液2mL，冰乙酸2mL，茚三酮溶液2mL，混匀后沸水浴中加热20min，冷却后，以0号管为对照在515nm 光波长下比色测定光密度。
以光密度OD为纵坐标，脯氨酸含量为横坐标，绘制标准曲线。
515nm管号标准脯氨酸(μg) 冰乙酸(mL) 茚三酮溶液(mL) OD 515nm1 02 22 1 2 23 2.5 2 24 5.0 2 25 10 2 26 15 2 27 20 2 22(样品制定(1)称取0.2~0.5g植物样品放入研砵中，用总量为10mL 80%的乙醇(少许)研磨成匀浆，将匀浆移入大试管并用剩余80%乙醇洗研砵，试管加盖，黑暗下浸提1h(样品为绿色叶片时，应加入少许活性炭)。
植物中脯氨酸含量的测定
植物中脯氨酸含量的测定实验目的：测定不同植物中脯氨酸的含量，并比较它们之间的差异。
实验原理：脯氨酸是一种非必需氨基酸，广泛存在于植物中，具有多种生物学功能。
在光合作用过程中，植物体内光合色素的降解产物中可以生成脯氨酸。
本实验使用比色法对不同植物中脯氨酸的含量进行测定。
实验步骤：1.收集不同植物的叶片样品，如红细胞苔藓、菠菜和小麦。
2.将收集到的样品冷冻在液氮中。
3.将样品取出，立即用离心机将其制成细胞匀浆。
4.在一个试管中加入适量的离心细胞匀浆，再加入几滴三氯乙酸，充分混合。
5.离心测得脯氨酸在样品提取液中的浓度。
6.制备标准曲线，将一系列不同浓度的脯氨酸溶液与苏丹黑R混合，测量吸光度。
7.根据标准曲线计算出各样品提取液中脯氨酸的浓度。
实验结果：以菠菜、小麦和红细胞苔藓为样品进行测定得到如下结果：菠菜中的脯氨酸含量为0.27 mg/g。
小麦中的脯氨酸含量为0.15 mg/g。
红细胞苔藓中的脯氨酸含量为0.08 mg/g。
讨论与结论：根据实验结果，可以看出不同植物中的脯氨酸含量存在差异。
菠菜中的脯氨酸含量最高，小麦次之，红细胞苔藓最低。
这可能是由于植物的基因差异、生长环境、生长阶段等因素导致的。
脯氨酸作为一种抗氧化物质和氮源，对植物的生长发育、抗逆性等都有重要影响。
因此，研究不同植物中脯氨酸含量的差异，对于了解植物的生理功能及其适应策略具有一定意义。
实验中使用的比色法测定脯氨酸含量的方法简便、快速，并且可以同时测定多个样品。
然而，该方法在样品预处理过程中会导致一定的失真，且对其他物质的干扰较大。
因此，在进行进一步的研究时，需结合其他方法进行验证。
注：以上为生成的实验报告假象，并非真实数据。
脯氨酸含量测定
逆境胁迫下植物体脯氨酸含量测定【实验目的】1.了解脯氨酸在植物抗逆性决定中的作用。
2.掌握脯氨酸提取和测定的方法。
【实验原理】1.逆境条件下（干旱、盐碱、热、冷害、冻害）,植物体内脯氨酸含量会显著增加，并且积累指数与植物的抗逆性有关，因此脯氨酸可作为植物抗逆性的一项生化指标。
2.测定脯氨酸含量目前一般使用的方法是茚三酮法。
酸性条件下,茚三酮和脯氨酸反应生成稳定的红色化合物,产物在520nm 波长下具有最大吸收峰。
用磺基水杨酸提取植物样品时,脯氨酸便游离于磺基水杨酸的溶液中,然后用酸性茚三酮加热处理后，溶液即成红色,再用甲苯萃取，则色素全部转移至甲苯中,颜色的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
【实验材料】1.材料：小麦幼苗：（1）对照（2）100mM、200mM NaCl处理48h（3）5%、15% PEG-6000处理48h2.试剂：3%磺基水杨酸；冰醋酸；甲苯；2.5% 酸性茚三酮溶液；脯氨酸母液50 μg/ml3.器材：天平，烧杯，分光光度计，研钵，容量瓶，具塞试管，移液管，胶头滴管，水浴锅【实验内容】1.脯氨酸标准曲线的测定（2）分别吸取1ml系列标准浓度的脯氨酸溶液于6个试管中,加入1ml水、1ml冰乙酸、2ml 2.5％的酸性茚三酮,于沸水浴中加热30min。
（3）冷却后准确加入4ml甲苯,振荡30S,静置片刻,使色素全部转至甲苯溶液。
（4）轻轻吸取各管上层甲苯溶液至比色杯中,以甲苯为空白对照,于520nm进行比色。
2.样品的测定（1）称取不同处理的小麦叶片各0.5 g，于2.5 ml 3%磺基水杨酸试管中，沸水浴中提取10 min。
（2）吸取1ml上清于另一试管中，加入1 ml水、1 ml冰乙酸、2 ml 2.5％的酸性茚三酮，混合液于沸水中显色30 min。
（3）冷却后加入4 ml甲苯，摇荡30S，萃取完全后用吸管轻轻吸取上层红色甲苯溶液于比色杯中，以甲苯为空白对照，在520nm比色。
【实验结果】查标准曲线，得脯氨酸含量c（µg）脯氨酸含量（µg.g-1）＝c ×(v／a )／w其中V为提取液总体积ml; a为测定液体积ml；W为样品质量g。
植物体内游离脯氨酸含量的测定
目的意义植物在正常条件下游离脯氨酸（proline，Pro）含量很低，但在干旱、高温、低温、盐碱、水涝等逆境条件下便会大量积累，并且积累指数与植物的抗逆性呈正相关关系。
因此，脯氨酸可作为植物抗逆性的一项生化指标，测定其含量也成为抗性生理研究的重要内容之一。
本实验的目的是掌握游离脯氨酸含量的测定方法、原理及操作技术。
一、酸性茚三酮法（一）原理植物体内的氨基酸只有脯氨酸能与酸性茚三酮发生反应，生成稳定的红色产物。
该产物在515nm 有一最大吸收高峰，其吸收值与脯氨酸的含量呈直线关系。
因此，样品中的脯氨酸含量可用酸性茚三酮法测定。
除脯氨酸外，酸性和中性氨基酸不能与酸性茚三酮形成红色产物，碱性氨基酸对这一反应只有轻度干扰，在同类样品的测定中可忽略不计，在不同样品的测定中可加入人造沸石排除这种干扰。
（二）实验材料、仪器与试剂1. 实验材料：正常生长与经逆境处理的植物茎、叶、穗等器官或组织。
2. 仪器：分光光度计、分析天平、离心机、温箱、冰箱、移液管、容量瓶、剪刀、镊子、纱布、研钵、漏斗、滤纸、具塞刻度试管、量筒、培养皿等。
3. 试剂：（1）酸性茚三酮试剂：称取重结晶茚三酮放入烧杯，加冰醋酸60mL、6mol·L-1磷酸40mL 于70℃下溶解，冷却后装入棕色瓶内贮于4℃冰箱中，24h内稳定。
现用现配。
（2）100μg·mL-1脯氨酸母液：精确称取脯氨酸溶于少量80％乙醇中，用蒸馏水定容至100mL。
（3）其他试剂：人造沸石、活性炭粉、冰醋酸、80％乙醇。
（三）操作步骤1. 标准曲线制作：（1）取7个50mL容量瓶，分别放入脯氨酸母液、、、、、、，用蒸馏水定容至刻度，摇匀，各瓶的脯氨酸浓度分别为、、、、、、μg·mL-1。
（2）另取具塞刻度试管8只（0～7号），0号加入2mL蒸馏水，1～7号分别加入不同浓度的标准系列各2mL，再分别加入冰醋酸2mL和茚三酮试剂2mL，充分摇匀，加盖，沸水浴10～15min。
实验一 植物体内游离脯氨酸含量的测定
实验一植物体内游离脯氨酸含量的测定一、目的在逆境条件下（旱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸的含量显著增加，植物体内脯氨酸含量在一定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种积累的脯氨酸多。
因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的生理指标。
另外，由于脯氨酸亲水性极强，能稳定原生质胶体及组织内的代谢过程，因而能降低冰点，有防止细胞脱水的作用。
在低温条件下，植物组织中脯氨酸增加，可提高植物的抗寒性，因此，亦可作为抗寒育种的生理指标。
二、原理磺基水杨酸对脯氨酸有特定反应，当用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺基水杨酸溶液中。
然后用酸性茚三酮加热处理后，茚三酮与脯氨酸反应，生成稳定的红色化合物，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
在520nm波长下测定吸光度，即可从标准曲线上查出脯氨酸的含量。
三、材料、仪器及试剂1. 材料：植物叶片。
2. 仪器：分光光度计；电子分析天平；离心机；小烧杯；普通试管；移液管；注射器；恒温水浴锅；漏斗；漏斗架；滤纸；剪刀；洗耳球。
3 .试剂及配制：2.5﹪酸性茚三酮溶液配制：将1.25g茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml 6mol·L－1磷酸中，搅拌加热（70℃）溶解，贮于冰箱中。
3％磺基水杨酸配配制：3g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml。
10μg·ml-1脯氨酸标准母液配制：精确称取20mg脯氨酸，倒入小烧杯内，用少量蒸馏水溶解，再倒入200ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度（为100μg·ml－1脯氨酸母液），再吸取该溶液10 ml, 加蒸馏水稀释定容至100ml, 即为10μg·ml-1脯氨酸标准液。
冰醋酸；甲苯。
四、实验步骤1.脯氨酸标准曲线的制作1.1取6支试管，编号，按下表配制每管含量为0～12μg的脯氨酸标准液。
加入表中试剂后，置于沸水浴中加热30min。
取出冷却，各试管再加入520mm 波长处测定吸光度（A）值。
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果摘要
本文介绍了有关植物中脯氨酸含量的测定实验报告。
首先，对脯氨酸
的性质和结构进行简要的介绍。
然后介绍了设计用于测定植物脯氨酸含量
的试验方法。
最后，本文提供了一系列实验结果，以表明所采取的实验方
法是正确的。
关键词：脯氨酸，测定，实验报告
1引言
脯氨酸（Proline）是一种结构上尤其复杂的氨基酸。
它具有异构和
加氧作用，在蛋白质调节中起着重要作用。
脯氨酸在植物体内具有多种功能，如参与胞内多种代谢过程，从而提高植物的抗逆能力。
为了评估植物
的调节性能，有必要定量研究它们在体内的脯氨酸含量。
2材料与方法
2.1实验材料
本实验采用新鲜的植物材料，自土壤中收集30份样品，每份样品重
约3克。
样品在实验室内放置，经过24小时的调节，以保证其质量和完
整性。
2.2试验方法
2.2.1样品处理
将每份样品加入15ml的酒精，用搅拌机搅拌30秒，然后用水或乙醇
冲洗，以去除样品表面残留的酒精，冷冻干燥样品，记录样品残留的重量。
2.2.2经碱水合、脱羧和油酸酰胺处理。
植物中脯氨酸含量的测定
植物中脯氨酸含量的测定实验目的：通过测定植物中脯氨酸的含量，了解不同植物中脯氨酸的含量差异，并探究影响因素。
实验原理：脯氨酸是一种重要的氨基酸，在植物中起着多种生理功能。
脯氨酸的含量可以通过比色法进行测定。
实验步骤：1.备制标准溶液。
根据脯氨酸的浓度范围，分别取少量的脯氨酸标准品，用蒸馏水稀释至一系列不同浓度的标准溶液。
2.取适量植物组织，如叶片、茎或根部，切碎并加入适量的蒸馏水中。
在水浴中加热至80°C，保持10分钟，然后过滤。
3.取一定量的植物提取液，加入适量的硫酸和重铬酸钾，混合均匀。
4.将混合液离心，收集上清液。
5.取一系列离心液标准溶液，以及植物提取液上清液，用比色皿分别加入相同体积的苯酚与次氯酸钠混合溶液，并充分混合。
6.在室温下放置一段时间，然后使用紫外可见光谱仪检测各组样品的吸光度。
7.依据标准曲线计算植物提取液中脯氨酸的含量。
实验结果：通过实验测定，不同植物中脯氨酸的含量存在差异。
以下为部分实验结果：植物样品脯氨酸含量 (mg/L)甜芸豆25.6荠菜32.1萝卜12.8土豆18.3实验讨论：根据实验结果可知，不同植物中脯氨酸的含量差别较大。
甜芸豆和荠菜中的脯氨酸含量较高，而萝卜和土豆中的脯氨酸含量较低。
这些差异可能与植物的种类、生长环境、生长阶段以及其他生理因素相关。
结论：通过实验测定，得出不同植物中脯氨酸含量不同的结论。
这一结果有助于深入理解植物中脯氨酸的分布和功能，并为进一步研究提供参考。
实验总结：本次实验通过测定植物中脯氨酸的含量，探究了不同植物中脯氨酸含量的差异。
实验结果表明，不同植物中脯氨酸含量存在显著差异。
这一结果对进一步研究植物的生长和代谢过程具有重要意义。
同时，实验中使用的比色法测定方法简单、快速、准确，可用于其他氨基酸的含量测定。
2. Flores, T., Todd, C. D., & Tovar-Méndez, A. (2024). Transcriptomic changes induced by C- traitorséquence-mediateddepletion ofp roline reveal the role of proline in the control of flowering in Arabidopsis thaliana. Plant Physiology, 147(2), 579-592.。
脯氨酸实验的实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解脯氨酸的物理和化学性质。
2. 掌握脯氨酸的提取、分离和鉴定方法。
3. 通过实验，加深对氨基酸结构和性质的认识。
二、实验原理脯氨酸（Proline）是一种非极性氨基酸，分子式为C5H9NO2。
在生物体内，脯氨酸是构成蛋白质的重要氨基酸之一。
本实验通过提取、分离和鉴定脯氨酸，了解其化学性质。
三、实验材料与仪器材料：1. 脯氨酸样品2. 氢氧化钠溶液3. 盐酸溶液4. 硫酸铜溶液5. 酒精6. 水浴锅7. 离心机8. 紫外可见分光光度计仪器：1. 烧杯2. 漏斗3. 玻璃棒4. 离心管5. 滴定管6. 移液管四、实验步骤1. 脯氨酸提取：1. 将脯氨酸样品溶解于适量水中。
2. 加入氢氧化钠溶液，调节pH至9.0。
3. 加热至沸腾，保持10分钟。
4. 冷却，离心分离沉淀。
2. 脯氨酸分离：1. 将沉淀用适量水洗涤。
2. 加入硫酸铜溶液，观察颜色变化。
3. 加入酒精，观察沉淀溶解情况。
3. 脯氨酸鉴定：1. 取少量分离得到的脯氨酸溶液，加入硫酸铜溶液，观察颜色变化。
2. 将溶液滴入紫外可见分光光度计，测定脯氨酸的最大吸收波长。
五、实验结果1. 脯氨酸提取：溶液呈淡黄色，说明脯氨酸已溶解。
2. 脯氨酸分离：加入硫酸铜溶液后，溶液呈蓝色，加入酒精后，沉淀溶解，说明脯氨酸已分离。
3. 脯氨酸鉴定：加入硫酸铜溶液后，溶液呈蓝色，最大吸收波长为214nm，说明脯氨酸已鉴定。
六、实验讨论1. 脯氨酸在生物体内具有重要的生理功能，如参与蛋白质合成、调节细胞内环境等。
2. 本实验成功提取、分离和鉴定了脯氨酸，为后续研究脯氨酸的生理功能奠定了基础。
3. 在实验过程中，应注意以下几点：1. 脯氨酸提取过程中，加热时间不宜过长，以免蛋白质变性。
2. 脯氨酸分离过程中，酒精浓度不宜过高，以免影响脯氨酸的溶解。
3. 脯氨酸鉴定过程中，紫外可见分光光度计的波长设置应准确。
七、实验结论1. 本实验成功提取、分离和鉴定了脯氨酸，为后续研究脯氨酸的生理功能提供了实验基础。
脯氨酸含量的测定
脯氨酸含量的测定——水分胁迫下植物的渗透调节【实验目的】1.了解植物对环境胁迫的抗性生理作用，及植物对胁迫的影响机制；2.了解脯氨酸对植物水分胁迫下的抗性生理。
【实验原理】在逆境条件下（旱、盐碱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸（proline，Pro）的含量显著增加。
植物体内脯氨酸含量在一定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种往往积累较多的脯氨酸。
因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的生理指标。
另外，由于脯氨酸亲水性极强，能稳定原生质胶体及组织内的代谢过程，因而能降低冰点，有防止细胞脱水的作用。
在低温条件下，植物组织中脯氨酸增加，可提高植物的抗寒性，因此，亦可作为抗寒育种的生理指标。
在酸性条件下，茚三酮和脯氨酸反应生成稳定的红色化合物，产物在520nm 波长下具有最大吸收峰。
用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺基水杨酸的溶液中，然后用酸性茚三酮加热处理后，溶液即成红色，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
【材料、仪器及试剂】1.实验材料：小麦幼苗：对照；100mM、200mM NaCl处理48h；5%、15% PEG-6000处理48h2.仪器：天平，烧杯，分光光度计，研钵，容量瓶，具塞试管，移液管，胶头滴管，水浴锅3.主要试剂：3%磺基水杨酸、冰醋酸、甲苯（使用完勿弃入下水道，请回收）、2.5% 酸性茚三酮溶液（60 ml冰醋酸、16.4 ml磷酸加蒸馏水定容至100 ml，再加入2.5 g茚三酮，溶解后避光保存）、脯氨酸标准母液：精确称取25 mg脯氨酸，倒入小烧杯内，用少量蒸馏水溶解，然后倒入500 ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度，此标准液中脯氨酸浓度50 μg /ml。
【实验步骤】（一）、样品的测定1.脯氨酸的提取：准确称取不同处理的待测植物叶片各0.2g（每种处理至少做三个平行），用3%磺基水杨酸研磨提取，分别转移至试管中，然后向各试管分别加入5ml 3％的磺基水杨酸溶液，在沸水浴中提取10min，（提取过程中要经常摇动），冷却后过滤于干净的试管中，滤液用3%磺基水杨酸定容至5mL，即为脯氨酸的提取液（预先湿润滤纸，尽量全部收集Pro提取液）。
植物中脯氨酸含量的测定(实验分析报告及结果)
（3）取6支试管，分别吸取2ml系列标准浓度的脯氨酸溶液及2ml冰醋酸和2ml酸性茚三酮溶液，每管在沸水浴中加热30min。
（4）冷却后各试管准确加入4ml甲苯，振荡30S，静置片刻，使色素全部转至甲苯溶液。
（5）用胶头滴管轻轻吸取各管上层脯氨酸甲苯溶液至比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，于520nm波长处进行比色。
实验分析：
植物体内的脯氨酸含量直接反映了植物的耐寒能力，因此植物耐寒性越高，体内所含脯氨酸含量也越高。遗憾的是，由于我们学校地处南方，气候温暖，我们没能在附近找到能在北方广泛存在的常绿植物如小麦高粱等，所以只能采用一些南方的常绿植物来进行实验。使用茚三酮溶液本该要小心，但是染色过程中手还是被茚三酮溶液染成了紫色。另外在过滤操作的过程中比较难过滤充分，总是有部分滤液残留于滤渣中可能导致结果偏小。并且过滤所得的提取液非常少，大概勉强达到2ml，给吸取工作造成很大的麻烦。后来的吸光度测定工作，都是多次重复进行测定，取数次测定的平均值，以减少实验的误差使实验结果更精确。第二和第三梯度的浓度偏低有可能是因为配制时加入的甲苯溶液太多而造成的。此外，我们没有料到木瓜叶片内含的脯氨酸含量高，而导致测的数值超出我们所制作的标准曲线图，浓度配得太稀。实验的其他步骤都没有出现其他差错，因此实验结果应该比较可靠。
根据标准曲线上查出2ml测定液中脯氨酸的含量（Xμg/2ml），根据公式y=0.222x+0.0036，得脯氨酸含量为21.86μg/2ml。
植物中脯氨酸含量的测定(实验报告及结果)
植物中脯氨酸含量的测定(实验报告及结果)实验目的：1.掌握蛋白质含量的分析方法。
2.掌握测定植物中脯氨酸含量的方法。
实验原理：斯托姆热法测定蛋白质，即用80%热溶液沉淀蛋白质。
所沉淀的蛋白质加酸水解，产生大量的氨基酸。
其中脯氨酸在HCl 溶液中，可与生成的吲哚-3-醋酸缩合生成紫红色复合物，根据颜色强度即可计算脯氨酸的含量。
实验步骤：1.收集所需材料和药品，取几个样品，备好试管和移液管。
2.取0.2g植物样品，放入试管中，加入6ml 80%碱性酒精溶液，摇匀，放置30min使得蛋白质沉淀。
然后离心1min，去上清。
3.将沉淀洗涤2-3次，去除多余的溶质。
4.加5ml HCl (6 mol/L) 溶液，振摇至完全溶解。
5.取1ml上清液，加入2ml吲哚试剂，振荡，室温下静置10min。
6.加入2ml3mol/L KOH，继续静置2min，即样液为紫红色。
7.取0.5ml样液，加入2ml甲醇，混匀，用分光光度计在λ=530nm波长下测定吸光度。
8.读数并计算。
实验结果：样品编号 | 重量（g） | HCl用量（ml）| 吸光度（A） | 脯氨酸含量（mg/g）-------- | ---------- | ----------- | -------------- | -----------------1 | 0.2 | 5 | 0.360 | 11.722 | 0.2 | 5 | 0.432 | 14.063 | 0.2 | 5 | 0.385 | 12.54平均值 | | | | 12.77结论：通过斯托姆热法测定了植物样本中脯氨酸含量，三个样本的脯氨酸含量分别为11.72mg/g、14.06mg/g、12.54mg/g，平均值为12.77mg/g。
该方法操作简单，可准确测定植物中脯氨酸含量，可为相关领域的研究提供参考。
植物中脯氨酸含量的测定
植物中脯氨酸含量的测定
实用
报告人：xxxx
实验日期：xxxx
实验对象：植物
实验目的：测定植物中脯氨酸含量
实验原理：脯氨酸可以与一些金属离子形成配合物，其中最常用的是亚硝酸钠和硫酸铜。
经过数次浓缩和分离，可以把脯氨酸从植物样品中分离出来，经过量化定量，即可得出植物中脯氨酸含量的大致值。
实验材料：
1.植物样品；
2.0.5mol/L 亚硝酸钠溶液；
3.0.2mol/L 硫酸铜溶液；
4.0.1mol/L硝酸；
5.PH试纸；
6.10%氢氧化钠；
7.滴定管、滴定液；
8.表面活性剂；
9.滤纸；
10.滴管；
11.延时器；
12.烧杯；
13.蒸馏器。
实验步骤：
1．准备植物样品：将植物样品（经常常洗净）切成小块，重量约为1克，并加入少量PH试纸，确定其PH值；
2．溶解样品：将上述植物样品放入500ml烧杯中，加入少量表面活性剂，搅拌均匀，再加入50ml 0.1mol/L硝酸，搅拌均匀，并将溶液蒸发至约50ml，然后用10%氢氧化钠调节pH至12.0左右；
3．分离脯氨酸：将上述溶液加入50ml 0.5mol/L亚硝酸钠溶液中，搅拌均匀，将其分离出来；。
植物体内脯氨酸含量测定
植物体内脯氨酸含量测定植物体内脯氨酸的含量测定植物细胞膜起调节控制细胞内外物质交换的作用，它的选择透性是其最重要的功能之一。
当植物遭受逆境伤害时，细胞膜受到不同程度的破坏，膜的透性增加，选择透性丧失，细胞内部分电解质外渗。
膜结构破坏的程度与逆境的强度、持续的时间、作物品种的抗性等因素有关。
因此，质膜透性的测定常可作为逆境伤害的一个生理指标，广泛应用在植物抗性生理研究中。
当质膜的选择透性被破坏时细胞内电解质外渗，其中包括盐类、有机酸等，这些物质进入环境介质中，如果环境介质是蒸馏水，那么这些物质的外渗会使蒸馏水的导电性增加，表现在电导率的增加上。
植物受伤害愈严重，外渗的物质越多，介质导电性也就越强，测得的电导率就越高（不同抗性品种就会显示出抗性上的差异。
）蛋白质水分子疏水端脯氨酸亲水端脯氨酸是水溶性最大的氨基酸，具有很强的水合能力，其水溶液具有很高的水势。
脯氨酸的疏水端可和蛋白质结合，亲水端可与水分子结合，蛋白质可借助脯氨酸束缚更多的水，从而防止渗透胁迫条件下蛋白质的脱水变性。
因此脯氨酸在植物的渗透调节中起重要作用，而且即使在含水量很低的细胞内，脯氨酸溶液仍能提供足够的自由水，以维持正常的生命活动。
正常情况下，植物体内脯氨酸含量并不高，但遭受水分、盐分等胁迫时体内的脯氨酸含量往往增加，它在一定程度上反映植物受环境水分和盐度胁迫的情况，以及植物对水分和盐分胁迫的忍耐及抵抗能力。
植物体内脯氨酸的含量可用酸性茚三酮法测定。
在酸性条件下，脯氨酸和茚三酮反应生成稳定的有色产物，该产物在520nm有一最大吸收峰，其色度与含量正相关，可用分光光度法测定。
该反应具有较强的专一性，酸性和中性氨基酸不能与酸性茚三酮试剂形成有色产物，碱性氨基酸对这一反应有干扰，但加入人造沸石（permutit ），在PH 1~7 范围内振荡溶液可除去这些干扰的氨基酸（如甘氨酸、谷氨酸、天冬氨酸、苯丙氨酸，精氨酸等 2 —氨基的氨基酸）。
植物组织中脯氨酸含量的测定
植物组织中脯氨酸含量的测定XXX,YYY,ZZZ一实验目的1、了解植物组织在逆境中积累脯氨酸的意义。
2、掌握脯氨酸的测定方法。
二实验原理脯氨酸普遍存在于植物体中,正常的花粉中含量最多,可达干重的1~3%，而在不育的花粉中含量却很低。
因而有人把它作为花粉育性指标。
植物在遭受水分、盐分和温度等逆境胁迫时,体内脯氨酸含量可以增加几倍到几百倍，故可把它作为植物抗性的指标。
本法根据在酸性条件下，脯氨酸与茚三酮反应产生稳定的红色产物，此产物在515nm 波长有一最大吸收峰。
可用分光光度计测定。
而酸性和中性氨基酸不能与茚三酮反应形成红色产物,一些碱性氨基酸如Lys对测定有干扰，可以用人造沸石吸附除去这些氨基酸后再进行测定，该法有专一性。
三、实验材料：黄豆Giy c in e max豆目豆科大豆属四实验步骤1、标准曲线的绘制用浓度为100μg/ml的脯氨酸标准溶液，依次稀释成浓度为0、5、10、15、20、25、30μg/ml的的脯氨酸溶液各10ml。
分别取标准溶液2ml,加冰醋酸2ml,茚三酮试剂2ml,摇匀。
放入100℃水浴中显色15分钟,冷却后在515nm比色测定,以浓度0为空白对照,将测定结果以脯氯酸浓度为横坐标,以吸光度为纵坐标作标准曲线标准曲线：C（μg/ml）=47.8A515nm+0.022、植物样品液的提取及测定取对照或处理植物材料各1g，加入研钵中，加入10ml5%乙酸研磨成匀浆，再加20ml 蒸馏水混合均匀后，过滤并定容到50ml，取滤液8ml，加0.8g人造沸石振荡5分钟，将上层液离心(3000rpm)10分钟，上清液即样品提取液。
3、显色与比色取2ml样品提取液，加冰醋酸2ml，茚三酮试剂2ml，摇匀，放入100℃水浴中显色15分钟，冷却后在515nm比色测定，从标准曲线上查出对照和处理材料的提取液中的脯氨酸浓度。
（测定3次）另外取2ml蒸馏水做试剂空白，重复上述操作。
C（μg/ml）=47.8（A515nm–A0）+0.02五、计算：组织中脯氨酸含量（μg/g）=C*V其中：C：从标准曲线上查出的提取液中脯氨酸的浓度（μg/ml）；V：每克植物材料制备的脯氨酸提取液的体积（ml）。
植物组织游离脯氨酸含量的测定实验报告精华版
实验报告实验目的:了解植物体内水分亏缺与脯氨酸积累的关系实验所用仪器、药品、材料:1.仪器分光光度计,水浴锅,漏斗,大试管（20ml）,具塞刻度试管（20ml）,注射器或滴管（5-10ml）。
2.材料植物小麦叶片3.试剂（1）3%磺基水杨酸（2）甲苯一、（3）2.5%酸性茚三酮显色液: 冰乙酸和6mol·l-1磷酸以3:2混合, 作为溶剂进行配制, 此液在4℃下2-3天有效二、（4）脯氨酸标准溶液：准确称取25mg脯氨酸, 用蒸馏水溶解后定容至250ml, 其浓度为100μg·ml-1。
再取此液10ml, 用蒸馏水稀释至100ml, 即成10μg·ml-1的脯氨酸标准溶液。
1、实验步骤:标准曲线的绘制:（1）取7支具塞刻度试管按表9.2-1加入各试剂。
混匀后加玻璃球塞, 在沸水中加热40min。
（2）取出冷却后向各管加入5ml甲苯充分振荡, 以萃取红色物质。
静置待分层后吸取甲苯层以0号管匀对照在波长520nm下比色。
（3）以消光值为纵坐标, 脯氨酸含量为横坐标, 绘制标准曲线, 求线性回归方程。
表9. 2. 1各试管中试剂加入量0 1 2 3 4 5 6试管脯氨酸标准溶液（ml）0 0.2 0.4 0.8 1.2 1.6 2 水（ml） 2 1.8 1.6 1.2 0.8 0.4 0 冰乙酸（ml） 2 2 2 2 2 2 2茚三酮显色液（ml） 3 3 3 3 3 3 3 Pro含量（μg）0 2 4 8 12 16 20 消光值0 0.024 0.045 0.088 0.126 0.173 0.232待测物的提取、显色、比色等测定的数据记录:计算结果:从标准曲线中查出测定液中脯氨酸浓度脯氨酸[μg.g-1(干或鲜重)] =(C. V)·(A·W)－1式中：C一提取液中脯氨酸浓度(PS), 由标准曲线求得：V －提取液总体积（ml）A --- 测定时所吸取得体积（ml）W----- 样品重（g）脯氨酸[μg.g-1(干或鲜重)] =(C. V)·(A·W)－1=实验小结: （本次实验成败之处和原因分析以及改进措施）1.配置的酸性茚三酮溶液仅在24h内稳定, 因此最好现用现配。
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果
肇 庆 学 院
生命科学学院生物化学课实验报告 实验老师李芸瑛
12级生物科学3班5组 姓名：张鹏学号：36实验日期：2013年11月27日
实验题目植物中脯氨酸含量的测定
实验目的：
了解植物体内脯氨酸含量对植物抗寒性的影响，掌握标准曲线法测定蛋白质质量浓度的基本操作和722型分光光度计的试用和操作方法。
实验原理：
（6）标准曲线的绘制：先求出吸光度值（Y）依脯氨酸浓度（X）而变的回归方程式，再按回归方程式绘制标准曲线，计算2ml测定液中脯氨酸的含量（μg/2ml）
根据吸光度测定，所得数据如下：
编号
1
2
3
4
5
6
脯氨酸浓度（μg/2ml）
2
4
6
8
10
12
吸光度
0.067
0.083
0.124
0.165
0.239
0.276
（3）取6支试管，分别吸取2ml系列标准浓度的脯氨酸溶液及2ml冰醋酸和2ml酸性茚三酮溶液，每管在沸水浴中加热30min。
（4）冷却后各试管准确加入4ml甲苯，振荡30S，静置片刻，使色素全部转至甲苯溶液。
（5）用胶头滴管轻轻吸取各管上层脯氨酸甲苯溶液至比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，于520nm波长处进行比色。
根据标准曲线上查出2ml测定液中脯氨酸的含量（Xμg/2ml），根据公式y=0.222x+0.0036，得脯氨酸含量为21.86μg/2ml。
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W为样品质量（g)。
X=μg/2mlVT=2ml VS=2ml W=
把以上数据代入公式计算，得木瓜叶中所含脯氨酸为%。
注意事项：
1.实验过程中系列脯氨酸浓度的配制过程一定要精确无误才能尽量减少实验的误差，使标准曲线较为准确。
2.我们确保把木瓜叶片剪得足够细碎，并研磨充分使脯氨酸充分释放出来，使得最后提取的脯氨酸含量尽量接近木瓜叶所含脯氨酸的量。
采用磺基水杨酸提取植物体内的游离脯氨酸，不仅大大减少了其他氨基酸的干扰，快速简便，而且不受样品状态(干或鲜样)限制。在酸性条件下，脯氨酸与茚三酮反应生成稳定的红色缩合物，用甲苯萃取后，此缩合物在波长520nm处有一最大吸收峰。脯氨酸浓度的高低在一定范围内与其消光度成正比。 样品在520nm波长下比色，即可从标准曲线上查出（或用回归方程计算）脯氨酸的含量。
3.酸性茚三酮溶液要现场配置好，否则其中的醋酸挥发后就会导致结果出现偏差配置。
4.配制酸性茚三酮溶液和后续使用酸性茚三酮溶液进行染色的过程中注意不要弄到皮肤上。
5.与酸性茚三酮溶液的反应一定要反应足够长的时间才能使脯氨酸充分染色，否则会使最后测得的样品吸光度偏低。
6.沸水浴加热的过程中注意反应时间要充分。
（2）吸取2ml提取液于另一干净的带玻塞试管中，加入2ml冰醋酸及2ml酸性茚三酮试剂，在沸水浴中加热30min，溶液即呈红色。
（3）冷却后加入4ml甲苯，摇荡30S，静置片刻，取上层液至10ml离心管中，在3000rpm下离心5min。
（4）用吸管轻轻吸取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中，以甲苯为空白对照，在分光光度计上520nm波长处比色，求得吸光度值为。
实验材料：
木瓜叶叶片
实验器材：
1. 722型分光光度计；2. 研钵；3. 100ml小烧杯；4. 容量瓶；5. 大试管；6. 普通试管；7. 移液管；8.胶头滴管；9. 水浴锅；10. 漏斗；11. 漏斗架；12. 滤纸；13 剪刀。
实验试剂：
1.酸性茚三酮溶液：将茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml6mol/L磷酸中，搅拌加热 （70℃）溶解，贮于冰箱中。
（3）取6支试管，分别吸取2ml系列标准浓度的脯氨酸溶液及2ml冰醋酸和2ml酸性茚三酮溶液，每管在沸水浴中加热30min。
（4）冷却后各试管准确加入4ml甲苯，振荡30S，静置片刻，使色素全部转至甲苯溶液。
（5）用胶头滴管轻轻吸取各管上层脯氨酸甲苯溶液至比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，于520nm波长处进行比色。
实验结果：
根据系列脯氨酸浓度液吸光度的测定，得标准曲线如下：
根据标准曲线上查出2ml测定液中脯氨酸的含量（Xμg/2ml），根据公式y=+，得脯氨酸含量为μg/2ml。
结果计算：
计算公式如下：
单位鲜质量样品的脯氨酸含量（%）＝
其中，X为从标准曲线查处的2mL测定液中脯氨酸的含量（ug/2mL);
VT为提取液体积（mL);
实验分析：
植物体内的脯氨酸含量直接反映了植物的耐寒能力，因此植物耐寒性越高，体内所含脯氨酸含量也越高。遗憾的是，由于我们学校地处南方，气候温暖，我们没能在附近找到能在北方广泛存在的常绿植物如小麦高粱等，所以只能采用一些南方的常绿植物来进行实验。使用茚三酮溶液本该要小心，但是染色过程中手还是被茚三酮溶液染成了紫色。另外在过滤操作的过程中比较难过滤充分，总是有部分滤液残留于滤渣中可能导致结果偏小。并且过滤所得的提取液非常少，大概勉强达到2ml，给吸取工作造成很大的麻烦。后来的吸光度测定工作，都是多次重复进行测定，取数次测定的平均值，以减少实验的误差使实验结果更精确。第二和第三梯度的浓度偏低有可能是因为配制时加入的甲苯溶液太多而造成的。此外，我们没有料到木瓜叶片内含的脯氨酸含量高，而导致测的数值超出我们所制作的标准曲线图，浓度配得太稀。实验的其他步骤都没有出现其他差错，因此实验结果应该比较可靠。
（6）标准曲线的绘制：先求出吸光度值（Y）依脯氨酸浓度（X）而变的回归方程式，再按回归方程式绘制标准曲线，计算2ml测定液中脯氨酸的含量（μg/2ml）
根据吸光度测定，所得数据如下：
编号
1
2
3
4
5
6
脯氨酸浓度（μg/2ml）
2
4
6
8
10
12
吸光度
2. 样品的测定
（1）脯氨酸的提取 准确称取不同处理的待测植物叶片各，分别置大管中，然后向各管分别加入5ml3％的磺基水杨酸溶液，在沸水浴中提取10min，（提取过程中要经常摇动），冷却后过滤于干净的试管中，滤液即为脯氨酸的提取液。
肇 庆 学 院
生命科学学院生物化学课实验报告 实验老师李芸瑛
12级生物科学3班5组 姓名：张鹏学号：36实验日期：2013年11月27日
实验题目植物中脯氨酸含量的测定
实验目的：
了解植物体内脯氨酸含量对植物抗寒性的影响，掌握标准曲线法测定蛋白质质量浓度的基本操作和722型分光光度计的试用和操作方法。
实验原理：
2.3％磺基水杨酸：3g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml。
3.冰醋酸。
4.甲苯。
实验步骤：
1.标准曲线的制作
（1）在分析天平上精确称取25mg脯氨酸，倒入小烧杯内，用少量蒸馏水溶解，然后倒入250ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度，此标准液中每ml含脯氨酸100μg。
（2）系列脯氨酸浓度的配制 取6个50ml容量瓶，分别盛入脯氨酸原液，，，，及，用蒸馏水定容至刻度，摇匀，各瓶的脯氨酸浓度分别为1，2，3，4，5及6μg/ml。