反胶束萃取方法步骤
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将阳离子表面活性剂如CTAB溶于有机溶 剂形成反胶束时,还需加入一定量的助 溶剂(助表面活性剂)。 反胶束的必要几何条件是堆砌率
(V/L)/a0>1
(V为碳氢链平均体积,L为碳氢链的长度,a0 为在表面活性剂极性头面积)。
9.1.2 临界胶束浓度 (Critical Micelle Concentration)
– CTAB (cetyl-trimethyl-ammonium bromide)
溴化十六烃基三甲胺 – DDAB(didodecyldimethyl ammonium bromide) 溴化十二烷基二甲铵 – TOMAC(trioctylmethyl ammonium chloride) 氯化三辛基甲铵
临界胶束浓度,是胶束形成所需表面活性剂的最
低浓度,用 CMC来表示,这是体系特性,与表面
活性剂的化学结构、溶剂、温度和压力等因素有
关。 CMC 的数值可通过测定各种物理性质的突变 (如表面张力、渗透压等)来确定,见图10.2。
从图9.2中可以看出表面活性剂十二烷基硫酸钠与溶液 物理化学性质之间的关系,在浓度为 0.008mol/L时各 性质都有一个突变现象。 由于实验方法不同,所得的CMC值往往给于完全一致, 但是突变点总是落在一个很窄的浓度范围内,故用 CMC范围来表示更为方便。 表 9.2 是几种类型表面活性剂的 CMC 值,可以看出, CMC值与活性剂的结构有一定的联系。在非极性溶剂 中CMC值的变化范围是 1.0×10-4~1.0×10-3mol/L。
造成失活。蛋白质的溶解过程和溶解后的情况
示意于图10.4中。
9.1.4 反胶束的形状与大小
从上可知,用于萃取蛋白质等生化物质的胶束是反胶束, 反胶束的形状通常为球形,也有人认为是椭球形或棒形; 反胶束的半径一般为 10~100nm ,可由理论模型推算, 计算公式如下:
Rm 3W0 M W /aau N a W
式中 MW、ρW分别为水的相对分子质量和密度;Na为 阿伏伽德罗常数; aau 为表面活性剂,在室温下, aau=0.5~0.7nm,并可近似认为是一常数;
W0为每个反胶束中水分子与表面活性剂 分子数值的比值,假定表面活性剂全用 于形成反胶束并忽略有机溶液中的游离 水、则 W0 等于反胶束溶液中水与表面活 性剂的摩尔浓度比值: W0≈[H2O]/[Surfactant]。
9.1.3 胶束与反胶束的形成
正常胶束(,结构示意图见图10.3(a)。
– 在胶束中,表面活性剂的排列方面是极性基团在外,与
水接触,非极性基团在内,形成一个非极性的核心,在 此核心可以溶解非极性物质。
反胶束,其结构示意图见图10.3(b)。
– 在反胶中,表面活性剂的非极性基团在外与非极性的有
反胶束萃取
随着基因工程和细胞工程的发展,尽管传统的分离方法 (如溶剂萃取技术)已在抗生素等物质的生产中广泛应 用,并显示出优良的分离性能,但它却难以应用于蛋白 质的提取和分离。其主要原因有两个:一是被分离对 象—蛋白质等在40~50℃便不稳定,开始变性,而且绝大 多数蛋白质都不溶于有机溶剂,若使蛋白质与有机溶剂 接触,也会引起蛋白质有变性;二是萃取剂问题,蛋白 质分子表面带有许多电荷,普通手离子缔合型萃取剂很 难奏效。因此研究和开发易于工业化的、高效的系列化 物质分离方法已民为当务之急。反胶束萃取法就是在这 一背景下发型起来的一种新型分离技术。
9.1 反胶束溶液形成的条件和特性
反胶束溶液是透明的、热力学稳定的系统。 反胶束( reversed micelle )是表面活性剂 分散于连续有机相中一种自发形成的纳米 尺度的聚集体,所以表面活性剂是反胶束 溶液形成的关键,应该首先介绍。
9.1.1 表面活性剂
表面活性剂是由亲水憎油的极性基团和亲 油憎水的非极性基团两部分组成的两性分 子,可分为阴离子表面活性剂、阳离子表 面活性剂和非离子表面活性剂,它们都可 用于形成反胶束。常用的表面活性剂及相 应的有机溶剂见表10.1。
在反胶束萃取蛋白质的研究中,用得最多 的 是 阴 离 子 表 面 活 性 剂 AOT ( AerosolOT ),其化学名为丁二酸 -2- 乙 基已基酯磺酸钠,结构式见图10.1。
这种表面活性剂容易获得,其特点是具有双链, 极性基团较小,形成反胶束时不需加助表面活性 剂,并且所形成的反胶束较大,半径为170nm, 有利于大分子蛋白质进入。 常使用的阳离子表面活性剂名称和结构如下:
机溶剂接触,而极性基协和则排列在内形成一个极性核 (polar core)。此极性核具有溶解极性物质的能力,极 性核溶解水后,就形成了“水池”(water pool)。
当含有此种反胶束的有机溶剂与蛋白质的水溶
液接触后,蛋白质及其他亲水物质能够通过螯
合作用进入此“水池”,由于周围水层和极性
基团的保护,保持了蛋白质的天然构型,不会
1977年,瑞士的Luisi等人首次提出用反胶束萃取蛋白 质,但并未引起人们的广泛注意。直到80年代,生物 学家们才开始认识到其重要性,荷兰的 Van’t Riewenku.baidu.com 和 Dekker、美国的Gokelen和Hatton首先进行了反胶束萃 取蛋白质的研究。近年来该项研究已在国内外深入展 开,从所得结果来看,反胶束萃取具有成本低、溶剂 可反复使用、萃取率和反萃取率都很高等突出的优点。 此外,反胶束萃取还有可能解决外源蛋白的降解,即 蛋白质(胞内酶)在非细胞环境中迅速失活的问题, 而且由于构成反胶束的表面活性剂往往具有溶解细胞 的能力,因此可用于直接从整细胞中提取蛋白质和酶。 可见,反胶束萃取技术为蛋白质的分离提取开辟了一 条具有工业开发前景的新途径。
在反胶束溶液与水相平衡的情况下, W0 值取决 于表面活性剂的种类、助表面活性剂、水相中 盐的种类和浓度等等。 对AOT/异辛烷/H2O体系
当 W0=50 时,反胶束的流体力学半径为 18nm ,每个反 胶束中的表面活性剂分子数为 1380 ,而极性核表面 的AOT分子的有效极性基团面积可达0.568nm2。 当 W0 超过 60 (最大含水量)时,透明的反胶束溶液将 变浑浊,并发生分相。对于季铵盐形成的反胶束, W0一般小于3。在列平衡水相存在的情况下,W0可以 人为地在一定范围内调节。