实验动物的麻醉方法知识
动物实验技术2
小鼠的皮内注射
4.肌肉注射 (i.m)
因小鼠肌肉较少，一般不作肌肉注 射。如实验必须作肌肉注射时，由助手 抓住小鼠两耳和头部皮肤，并提起。操 作者用左手抓住小鼠一侧后肢，右手取 连有 6 号针头的注射器，将针头刺入大 腿外侧肌肉，将药液注入。 小鼠一侧后肢的用药量不超过 0.1mL。
5.腹腔注射 (i.p)
小 鼠 的 尾 静 脉 注 射
7.脑内注射 常用于微生物学动物实验，将病原体等接种于被检动物脑内， 观察接种后的各种变化。 8.涂布给药 小鼠常采用浸尾方式经尾皮给药，用以定性地判定药物或毒物 经皮肤的吸收作用。 9.呼吸道给药 呈粉尘、气体、蒸气或雾等状态存在的药物或毒气，均需通过 呼吸道给药。 10.脚掌注射法 小鼠脚掌注射时一般取后脚掌，一次最大注射量为 0.25mL。
3.皮内注射 (i.d)
常用于观察皮肤血管的通透性变化及观察皮 内反应，多用于接种、致敏实验等。皮内注射通常 选用背部脊柱两侧的皮肤。先将注射部位及其周围 的被毛剪去，酒精棉球消毒局部。然后用左手将皮 肤捏成皱襞，右手持有 5 号针头的注射器，使针 头与皮肤呈 30 °角刺入皮下，然后将针头向上挑 起并稍刺入，即可注射。注射后，可见皮肤表面鼓 起一小丘。注射后5分钟再拔出针头、否则药液会 从针孔漏出。通常小鼠皮内一次注射量不超过 0.05mL。
麻醉时
静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张性、角膜反射和对皮 肤疼痛的反应，当这些活动明显减弱或消失时，要立即停止注射， 并进行抢救。 ① 采取保温措施。在麻醉期间，动物的体温调节机能受 到抑制，会出现体温下降，影响实验结果。 ② 必须保持动物气道的通畅和组织(眼球、舌、肠等器 官)的营养。 ③ 出现麻醉过深情况后，应立刻采取抢救措施。
小 鼠 的 灌 胃 方 法
实验动物麻醉方法
啮齿类实验动物常用麻醉方法
一：吸入式麻醉法
（1）物品准备为：啮齿类动物麻醉盒、小烧杯、棉球、乙醚点滴瓶
（2）操作流程：
1.将棉球浸泡乙醚，盛入小烧杯中；
2.小烧杯放入麻醉盒
3.把实验动物放入麻醉盒，麻醉过程需要4-6分钟，当动物呈跌倒状态说明麻醉成功。
当动物麻醉变浅时可将盛有乙醚的小棉球放在其口、鼻处补吸麻醉药，补充麻醉。
二：注射麻醉法
（常用麻醉剂为-戊巴比妥钠）
腹腔注射给药时一般先给药总剂量的2/3，然后进行观察，如果已经达到所需的麻醉程度，可以不再注射余下的麻醉药。
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
实验动物麻醉方法及注意事项
实验动物麻醉方法及注意事项麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5%～1%;利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1%～2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25%～0.5%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20-30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
麻醉兔子的实验报告
一、实验目的1. 掌握麻醉兔子的方法，确保实验动物的安全。
2. 学习观察麻醉兔子的生理变化，为后续实验打下基础。
3. 提高动物实验操作技能，培养严谨的科学态度。
二、实验原理麻醉是利用药物使动物暂时失去意识、感觉和反射能力的一种方法。
实验中常用的麻醉方法有吸入麻醉、静脉麻醉和肌肉注射麻醉等。
本实验采用肌肉注射麻醉，通过注射麻醉药物使兔子进入麻醉状态。
三、实验材料1. 实验动物：家兔1只2. 实验器材：注射器、针头、解剖盘、剪刀、镊子、纱布、酒精棉球、生理盐水等3. 实验药物：盐酸氯胺酮注射液（2%）四、实验步骤1. 准备工作（1）将兔子放入实验室内，适应环境。
（2）将实验器材和药物准备好。
2. 麻醉（1）在兔子耳朵后部找到肌肉丰满的区域，用酒精棉球消毒。
（2）选用合适长度的针头，抽取盐酸氯胺酮注射液（2%）。
（3）将针头垂直刺入兔子肌肉，缓慢注射药物。
（4）观察兔子反应，待兔子出现四肢无力、呼吸平稳、意识丧失等麻醉状态时，即可进行后续实验操作。
3. 观察麻醉兔子的生理变化（1）观察兔子呼吸频率、深度和节律。
（2）观察兔子心率、血压和脉搏。
（3）观察兔子瞳孔大小和反应。
（4）观察兔子肌肉松弛程度。
4. 实验结束（1）实验结束后，将兔子从实验器材中取出，放入笼内。
（2）观察兔子恢复情况，确保其安全。
五、实验结果与分析1. 麻醉效果兔子注射盐酸氯胺酮注射液后，迅速进入麻醉状态，呼吸平稳，肌肉松弛，符合实验要求。
2. 生理变化（1）呼吸频率：实验前兔子呼吸频率约为40次/分钟，麻醉后呼吸频率降低至20次/分钟。
（2）心率：实验前兔子心率约为120次/分钟，麻醉后心率降低至80次/分钟。
（3）血压：实验前兔子血压约为120/80mmHg，麻醉后血压降低至80/60mmHg。
（4）瞳孔大小：实验前兔子瞳孔大小适中，麻醉后瞳孔缩小。
（5）肌肉松弛程度：实验前兔子肌肉紧张，麻醉后肌肉松弛。
六、实验结论1. 肌肉注射盐酸氯胺酮注射液是一种有效的麻醉方法，可以安全地使兔子进入麻醉状态。
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法 The Standardization Office was revised on the afternoon of December 13, 2020实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用％～％溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。
(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法是根据实验的目的和动物物种的不同而有所区别。
以下是一些常用的麻醉方法：
1. 全身麻醉：使用全身麻醉药物，如氯化乙酰胺或异氟醚等，通过静脉注射或吸入的方式进行麻醉。
这种方法适用于大型动物或需要长时间麻醉的实验。
2. 局部麻醉：使用局部麻醉药物，如利多卡因或普鲁卡因等，通过局部注射或浸润的方式进行麻醉。
这种方法适用于小型动物或需要局部麻醉的实验。
3. 镇静剂：使用镇静剂，如地西泮或苯巴比妥等，通过口服或注射的方式进行麻醉。
这种方法适用于需要轻度麻醉或对镇静剂敏感的动物。
4. 吸入麻醉气体：使用麻醉气体，如笑气或七氟醚等，通过吸入的方式进行麻醉。
这种方法适用于小鼠或需要快速麻醉的实验。
需要注意的是，麻醉方法的选择应根据实验的需要和动物的安全性来确定，并且应严格按照相关伦理和法规要求进行操作。
另外，麻醉时应监测动物的生理指标，确保其在麻醉状态下保持稳定。
实验动物麻醉方法及注意事项
实验动物麻醉方法及注意事项麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5%～1%;利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1%～2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25%～0.5%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20-30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
动物实验常用操作技术
动物实验常用操作技术动物实验常用操作技术是指在动物实验过程中常用的一些操作技术，用于进行动物实验的各项实验操作。
这些操作技术的选择和使用对于实验结果的准确性和可靠性有着重要的影响。
在动物实验中，常用的操作技术主要包括动物麻醉、注射、剖检、培养和观察等。
一、动物麻醉技术动物麻醉技术是在动物实验中常用的首要操作技术之一、麻醉技术的运用可以使实验动物保持在一定的安静状态下，减轻动物实验过程中的痛苦和压力，同时还可以提高实验的可靠性和准确性。
常用的动物麻醉技术主要有局部麻醉、全身麻醉和麻醉复苏等技术。
局部麻醉常用的方法有局麻药物的表面涂擦、注射、浸渍和包扎等方式；全身麻醉常用的方法有麻醉药物的口服、皮下、肌肉注射、静脉注射等方式；麻醉复苏技术包括将动物由麻醉状态逐渐恢复到清醒状态，并监测复苏过程中的生理指标。
二、动物注射技术动物注射技术是在动物实验中常用的操作技术之一、注射技术的运用可以向实验动物的体内引入药物、疫苗或其他试剂，观察其对动物的作用和效果。
常用的动物注射技术主要有皮下注射、肌肉注射、静脉注射和腹腔注射等。
皮下注射一般是将药物或试剂注射到动物的皮下组织中；肌肉注射是将药物或试剂注射到动物的肌肉组织中；静脉注射是将药物或试剂注射到动物的血管中；腹腔注射是将药物或试剂注射到动物的腹腔腔隙中。
三、动物剖检技术动物剖检技术是在动物实验中常用的操作技术之一、剖检技术的运用可以观察动物内部器官的结构和病变，对实验结果的解释和分析起到关键的作用。
常用的动物剖检技术主要包括尸体解剖和活体解剖两种。
尸体解剖是在动物死亡后对尸体进行的解剖，以观察其内部器官的结构和异常情况；活体解剖是在动物存活的情况下进行的解剖，以观察其内部器官的运动和功能情况。
四、动物培养技术动物培养技术是在动物实验中常用的操作技术之一、培养技术的运用可以在体外条件下维持动物细胞和组织的生长和繁殖，为研究动物细胞和组织的生物学特性提供便利。
常用的动物培养技术主要有细胞培养和组织培养两种。
实验动物麻醉方法
实验动物麻醉方法实验动物麻醉方法一、动物实验中常用的麻醉剂1、挥发性麻醉剂这类麻药包括乙醚、氯仿等。
乙醚吸入麻醉适用于各种动物，其麻醉量和致死量差距大，所发安全度亦大，动物麻醉深度容易掌握，而且麻后苏醒较快。
其缺点是对局部刺激作用大，可引起上呼吸道粘膜液体分泌增多，再通过神经反射可影响呼吸、血压和心跳活动，并且容易引起窒息，故在乙醚吸入麻醚时必需有人照看，以防麻醉过深而出现上情况。
2、非挥发性麻醉剂这类麻醉剂种类较多，包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物，氨基甲酸乙脂和水合氯醛。
这些麻醉剂使用方便，一次给药可维持较长的麻醉时间，麻醉过程较平衡，动物无明显挣扎现象。
但缺点是苏醒较慢。
3、中药麻醉剂动物实验时有时也用到象洋金花和氢溴酸东莨菪碱等中药麻醉剂，但由于其作用不够稳定，而且常需加佐剂麻醉效果才能理想，故在使用过程中不能得到普及，因而，多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉二、实验动物的麻醉方法1、全身麻醉（1）吸入法（2）腹腔和静脉给药麻醉法2、局部麻醉（1）猫的局部麻醉一般应用0.5-1.0%盐酸普鲁卡因注射。
粘膜表面麻醉宜用2%盐酸可卡因。
（2）在眼球手术时，可于结膜囊滴入0.02%盐酸可卡因溶液，数秒钟即可出现麻醉。
（3）狗的局部麻醉用0.5-1%盐酸普鲁卡因注射。
眼、鼻、咽喉表面麻醉可用2%盐酸可卡因。
3、麻醉注意事项（1）静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张性、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，立即停止注射。
配制的药液浓度要适中，不可过高，以兔麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
（2）麻醉时需注意保温。
麻醉期间，动物的体温调节机能往往受到抑制，出现体温下降，可影响实验的准确性。
此时常需采取保温措施。
保温的方法有：实验桌装灯，电褥，台灯照射等。
无论用哪种方法加温都应根据动物的肛门体温而定。
常用实验动物正常体温：猫为38.6℃±1.0℃，兔为38.4℃±1.0℃，大鼠为39.3℃±0.5℃。
实验动物的麻醉
巴比妥类
硫喷妥钠：超短效巴比妥类
戊巴比妥钠：短效巴比妥类，多用3％溶液。静脉一
次注射，犬用40mg/kg，兔、鼠用30mg／kg，腹腔注
射剂量增加20％，可维持持2小时有效全麻，在外科
麻醉中，对呼吸和循环系统都有严重抑制。用于兔、 鼠死亡率较高；用于大等较大动物，亦需要辅助呼 吸和其他复苏措施，且完全苏醒需要6～8小时。
2.5%（0.6-0.8ml/Kg）
现用现配，由于对腹膜刺激大，不宜腹腔注射。
动物麻醉流程图
动物的准备
麻醉人员及仪器的准备
麻醉方式的选择
麻醉药品的准备
术前药 麻醉诱导 麻醉维持
的使用是比较安全的，因为它很少因为过量而致动
物死亡。
(2)不良反应：动物诱导时不舒服，而且乙醚对粘膜的 刺激可导致咳嗽、大量的支气管和唾液腺分泌物， 偶尔还会导致喉痉挛。乙醚还能在动物的麻醉苏醒 期后诱发既有的慢性呼吸系统疾病急性发作，特别
是兔和啮齿类动物。乙醚是可燃的，和空气或氧气
构成爆炸性混合物。
麻醉效果的观察
③肌张力：亢进，麻醉过浅；全身肌肉松弛，麻 醉合适。
④皮肤夹捏反应：麻醉过程中可随时用止血钳或 有齿镊夹捏动物皮肤，若反应灵敏，则麻醉过浅； 若反应消失，则麻醉程度合适。
麻醉意外及处理
呼吸系统
呼吸频率的变化 潮气量的变化 SpO2
心血管系统
血压 心率 心律
麻醉注意事项
麻醉前用药
麻醉前用药是指在手术前30分钟以内适当使用抗
胆碱类药物(如阿托品)及镇静镇痛药物(如安定、 鲁米那、度冷丁等)，可以减少呼吸道的分泌物和
防止呕吐，使动物安静以保证麻醉诱导的平稳和
动物实验麻醉方法
动物实验麻醉方法
动物实验对于推动科学研究和医学进步起着至关重要的作用啊！而在动物实验中，麻醉方法可是非常关键的一环呢！就好像我们人要做手术得先麻醉一样，动物们也需要合适的麻醉来减少它们的痛苦呀。
你知道吗，常用的吸入麻醉就像是给动物罩上了一个神奇的“睡眠罩”！让它们在不知不觉中就进入了麻醉状态。
这种方法快速生效，而且还比较容易控制麻醉的深度呢。
还有注射麻醉，就像是给动物打了一针“魔法药水”，能让它们迅速安静下来。
就拿戊巴比妥钠来说吧，它可是个厉害的角色呢！通过静脉注射，能让动物很快进入麻醉状态，就好像它们一下子进入了一个宁静的梦乡。
但这可不能随便用哦，得掌握好剂量，不然可就麻烦啦！这不就跟我们人吃药一样嘛，多了少了都不行。
还有啊，氯胺酮也是常用的麻醉剂呢。
它能让动物产生一种奇特的“恍惚感”，仿佛它们置身于一个虚幻的世界。
这多神奇呀！但用它的时候也要小心谨慎，要密切观察动物的反应呢。
动物实验的麻醉方法选择可不能马虎呀！这就好比是给动物建一个舒适的“小窝”，得让它们安心地在里面度过麻醉的时光。
要是选不好，那动物得多遭罪呀！我们可不能这么残忍对不对？我们要尽可能地减少它们的痛苦，让它们也能感受到我们的关爱和尊重呢。
所以呀，在进行动物实验时，一定要认真选择合适的麻醉方法，就像我们精心挑选礼物送给重要的人一样。
要考虑到动物的种类、体重、健康状况等等好多因素呢。
只有这样，才能让动物们在实验中既安全又舒适，为我们的科学研究做出更大的贡献呀！总之，动物实验麻醉方法真的太重要啦，我们一定要重视起来呀！。
动物医学麻醉实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在了解和掌握动物医学麻醉的基本原理、常用麻醉药物及其作用特点，熟悉动物麻醉前的准备工作、麻醉方法的操作步骤以及麻醉后的观察与护理。
通过本实验，提高动物医学专业学生的实践操作技能和临床思维能力。
二、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2只2. 器材：麻醉机、气管插管、注射器、针头、开口器、喉镜、心电图仪、血压计、温度计、呼吸机、生理盐水、普鲁卡因、氯胺酮、硫酸阿托品、硫酸镁等。
三、实验方法1. 麻醉前准备（1）观察动物的精神状态、呼吸、心跳、体温等生命体征。
（2）对动物进行编号、称重，记录基本信息。
（3）对动物进行禁食禁水，防止麻醉过程中发生呕吐。
（4）准备实验药品和器材。
2. 麻醉方法（1）静脉注射氯胺酮（剂量：5mg/kg），观察动物的反应。
（2）静脉注射硫酸阿托品（剂量：0.01mg/kg），观察动物的反应。
（3）静脉注射硫酸镁（剂量：0.1mg/kg），观察动物的反应。
（4）静脉注射普鲁卡因（剂量：5mg/kg），观察动物的反应。
（5）将动物放入麻醉机，调节氧流量，连接呼吸机，观察动物的生命体征。
3. 麻醉观察与护理（1）观察动物的呼吸、心跳、血压、体温等生命体征，确保麻醉深度适宜。
（2）观察动物的反应，如是否有躁动、呕吐、抽搐等，及时调整麻醉深度。
（3）保持动物呼吸道通畅，防止窒息。
（4）注意动物体温变化，必要时给予保暖措施。
（5）观察麻醉恢复情况，及时处理可能出现的并发症。
四、实验结果与分析1. 麻醉前，动物的精神状态良好，呼吸、心跳、血压、体温等生命体征正常。
2. 静脉注射氯胺酮后，动物表现为兴奋、肌肉松弛，随后进入睡眠状态。
注射硫酸阿托品后，动物出现口干、心率加快等反应。
注射硫酸镁后，动物出现肌肉松弛、呼吸抑制等反应。
注射普鲁卡因后，动物表现为疼痛反应，随后进入睡眠状态。
3. 在麻醉过程中，动物的生命体征稳定，呼吸、心跳、血压、体温等指标在正常范围内。
动物无躁动、呕吐、抽搐等不良反应。
实验动物的麻醉方法知识
实验动物的麻醉方法知识Document serial number【KK89K-LLS98YT-SS8CB-SSUT-SST108】实验动物的麻醉方法麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。
（二）常用全身麻醉剂：1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。
因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重0.1mg）。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
并施行必要的人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
小鼠麻醉方法
小鼠麻醉方法小鼠是实验动物，在做研究的时候有时候会需要对它进行麻醉操作。
小鼠麻醉的方法有很多种，其中包括吸入麻醉、液体麻醉、药物注射麻醉等等。
而不同的麻醉方法也有不同的适用条件和优缺点，研究者在选择使用哪种方法时应该根据实验要求来选择最适合的麻醉方法。
首先，小鼠可以通过吸入麻醉来实现麻醉效果。
通过吸入麻醉，小鼠可以进入很快的深度睡眠，而且可以很容易地通过控制呼吸气体浓度来控制小鼠的睡眠状态。
但是，使用吸入麻醉的同时也有一些局限性，比如要求使用高度洁净的实验环境，以防止小鼠在麻醉中呼吸到灰尘等有害物质。
其次，小鼠还可以通过液体麻醉来实现麻醉效果。
液体麻醉一般是用药物稀释溶液，通过腹腔注射的方式给小鼠注射药物，快速的就可以让小鼠进入深度睡眠状态。
液体麻醉的优点是可以自由控制麻醉时间和程度，以及可以做到比较安全、快速。
但是液体麻醉也有一些局限，比如注射量不能太多，以免引起小鼠的回避反应等。
最后，小鼠也可以通过药物注射麻醉来实现麻醉效果。
这种方式的麻醉一般是直接注射某种药物，例如异丙酚或咪唑啉，快速的就可以将小鼠投入深度睡眠状态。
药物注射麻醉有一个明显的优点，就是操作方便，而且可以自由控制麻醉时间，同时又不容易引起小鼠的抵触反应。
但是药物注射麻醉也有一些缺点，比如一般只能达到轻度麻醉效果，而且不能太长时间使用，以免有药物残留的风险。
总的来说，小鼠麻醉的方法有多种，具体的使用方法应该根据实验的要求和实验条件，以及需要达到的麻醉效果，来选择最合适的麻醉方法。
此外，无论使用何种方法，都应该遵守专业的安全规范，以避免意外发生。
小鼠在动物实验中扮演了至关重要的角色，研究人员在进行小鼠麻醉操作时，应该采取合理的麻醉方法，以保证小鼠得到良好的保护，并且要注意遵守安全操作规范，以确保实验得到有效的结果。
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实验动物的麻醉方法
麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药
（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成
0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物
神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。
（二）常用全身麻醉剂：
1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。
因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重0.1mg）。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
并施行必要的人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2. 苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
通常在实验前半至一小时用药。
使用剂量及方法：大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。
3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长，一次给药的有效时间可延续2-4小时，所以十分适合一般使用要求。
给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。
用时配成1～3%生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。
静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重，腹腔注射40～45mg/kg体重，大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。
但动物个体间差异颇大。
用于兔、鼠死亡率较高；用于大等较大动物，亦需要辅助呼吸和其他复苏措施，且完全苏醒需要6～8小时。
镇痛效果差，恢复时间长，尤其是为延长麻醉额外加量后更易发生。
近来使用日趋减少。
4. 巴比妥钠使用剂量及方法：狗静脉注射225mg/kg体重；兔腹腔注射200mg/kg体重；大鼠皮下注射200mg/kg体重，大鼠腹腔注射 40-50mg/kg体重。
5. 氨基甲酸乙酯（乌拉坦）此药是比较温和的麻醉药，安全度大。
多数实验动物都可使用，更适合于小动物。
一般用作基础麻醉，如使用全部过程都用此麻醉时，动物保温尤为重要。
使用时常配成20～25％生理盐水溶液，大鼠腹腔注射1～1.5g/kg体重。
宜用于鼠类。
作用温和持久，有效麻醉时间可长达6～10小时，对十深度外科麻醉，呼吸及循环均无明显抑制。
但此药本身有致癌作用，不能用作与肿瘤有关的实验。
工作人员亦应小心，禁止长期接触。
使用此药的动物，用后即作为有害废弃物，严格按照规定深埋或作其他无害处理。
6. 水合氯醛用5％溶液；犬静脉注射100mg/kg，腹腔注射150mg/kg，兔和鼠用后常有肌肉紧张，宜与乌拉坦合用；临用前将两药等量混合，用60℃等渗盐水配制成5％～10％注射液，按1～2m1/kg静脉注射。
麻醉持续时间长，深度较浅，苏醒期常有激惹现象。
一般只用于不要求存活的刺激较轻的手术。
以上麻醉药种类虽较多，但各种动物使用的种类多有所侧重。
如做慢性实验的动物常用乙醚吸入麻醉（用吗啡和阿托品作基础麻醉）；急性动物实验对狗、猫和大鼠常用戊巴比妥钠麻醉；对家兔和青蛙、蟾蜍常用氨基甲酸乙酯；对大鼠和小鼠常用硫喷妥钠或氨基甲酸乙酯麻醉。
二、全身麻醉方法
麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射，产生中枢神经系统抑制，呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。
其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关，当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后，动物逐渐清醒，不留后遗症。
1. 吸入麻醉法麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生麻醉者，称吸入麻醉，常用乙醚作麻醉药。
吸入法对多数动物有良好的麻醉效果，其优点是易于调节麻醉的深度和较快的终止麻醉，缺点是中、小型动物较适用，对大型动物如狗的吸入麻醉操作复杂，通常不用。
具体方法是：使用乙醚麻醉兔及大小鼠时，可将动物放入玻璃麻醉箱内，把装有浸润乙醚棉球的小烧杯放入麻醉箱，然后观察动物。
开始动物自主活动，不久动物出现异常兴奋，不停地挣扎，随后排出大小便。
渐渐地动物由兴奋转为抑制，倒下不动，呼吸变慢。
如动物四肢紧张度明显减低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，则表示动物已进入麻醉，可行手术和操作。
在实验过程中应随时观察动物的变化，必要时把乙醚烧杯放在动物鼻部，以维持麻醉的时间与深度。
2. 注射麻醉法常用的麻醉药有戊巴比妥钠、氨基甲酸乙酯等。
大、小鼠常采用腹腔注射法进行全身麻醉。
狗、兔等动物既可腹腔注射给药，也可静脉注射给药。
在麻醉兴奋期出现时，动物挣扎不安，为防止注射针滑脱，常用吸入麻醉法进行诱导，待动物安静后再行腹腔或静脉穿刺给药麻醉。
在注射麻醉药物时，先用麻醉药总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，如已达到所需麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过深抑制延脑呼吸中枢导致动物死亡。
三、使用全身麻醉剂的注意事项
给动物施行麻醉术时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法，特别是较贵重的大型动物。
1. 麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同，而且体重与所需剂量的关系也并不是绝对成正比的。
一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小，在使用麻醉剂过程中，随时检查动物的反应情况，尤其是采用静脉注射，绝不可将按体重计算出的用量匆忙进行注射。
2. 动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。
3. 静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
4. 作慢性实验时，在寒冷冬季，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
四、肌肉松弛药物
对常用实验动物，配合全身麻醉使用肌肉松弛药，以利于在较浅麻醉下进行手术和气管插管及控制呼吸。
但兔及鼠对肌松药比较敏感，用后长时间不能恢复自主呼吸，必须使用时，应推备好术后监护。
实验外科最常用的肌松药为琥珀胆碱，犬静注0.3mg/kg，可获得15～20分钟的满意肌肉松弛；兔用0.5mg/kg；猫则常需要1mg/kg，潘库溴铵犬、猫皆用
0.06mg/kg，兔用0.1mg/kg。
加拉碘铵，犬、猫、兔皆用1mg/kg。
箭毒碱及其他肌松药也都可用，但箭毒碱促使组胺释放，犬对之十分敏感，用后常导致血压明显下降。