淋巴细胞分离实验
2--淋巴细胞分离技术及玫瑰花环试验
二、实验目的
了解血液中的各种细胞成分及特性。
掌握实验动物外周血中淋巴细胞的分离方法 掌握T、B淋巴细胞的区分方法及T淋巴细胞的计 数方法。
三、实验材料
1. 兔淋巴细胞分离液、 1%绵羊红细胞、 生理盐水、 pH6.4的PBS液、 Hank,s液、瑞氏染色液（I 液）、吉姆萨染色液（II液）、香柏油、二甲苯、 甲醇、 碘酊棉球、75%酒精棉球。 2. 50mL注射器，10ml玻璃离心管、50ml离心管、擦镜纸、 移液枪（枪头）、载玻片、巴氏吸管、镊子等。 3. 显微镜、离心机、
实验五
（一）淋巴细胞分离技术 （二）E玫瑰花环试验
一、实验原理
(一）淋巴细胞的分离：
兔淋巴细胞的方便来源是外周血，此次实验 采用的就是聚蔗糖溶液的密度梯度离心法。外周 血中各种细胞的密度不同，红细胞和多核白细胞 的比重密度较大，1.090左右，淋巴细胞和单核 细胞的密度为1.075～1.090。密度梯度离心法的 原理主要根据各类血细胞比重的差异，利用比重 介于某两类细胞之间的细胞分离液对血液离心， 使一定比重的血细胞依相应的密度梯度分布于不 同的独立带，从而达到分离的目的。
SRBC受体(Sheep red blood cell)
T细胞
SRBC
Erythocyte rosette test
红细胞玫瑰花环形成试验
T
B
T
erythrocyte antibody rosette formation test 红细胞抗体玫瑰花 环形成试验
erythrocyte antibody complement rosette formation test 红细胞抗体补体玫 瑰花环形成试验
四、实验步骤
小鼠外周血淋巴细胞分离实验报告
小鼠外周血淋巴细胞分离实验报告一、实验目的1. 了解淋巴细胞分离的意义和原理2. 掌握淋巴细胞分离的技术，为进行下一步生物实验奠定基础二、实验材料1.淋巴细胞分离液2.EDTA抗凝剂常用EDTA的钠盐或钾盐作为抗凝剂，能与血液中的钙离子结合成螯合物，而是钙离子失去凝血作用，从而阻止血液凝固3.PBS缓冲液PBS缓冲液一般作为溶剂，起溶解保护试剂的作用4.戊巴比妥钠溶液作用与苯巴比妥相同，为中时作用的巴比妥类催眠药，作用时间可维持3～6小时，显效较快。
用作催眠和麻醉前给药，亦可用于治疗癫痫和破伤风的痉挛。
5.其他实验材料：健康的小白鼠一只、注射器（1ml，10ml）1ml、20ul的枪以及相应的枪头、滴管、水平离心机、医用镊子、EP管（5ml，10ml）三、实验原理外周血中各种细胞的密度不同。
密度离心法的原理主要根据各类血细胞的比重差异，利用比重介于某两类细胞之间的细胞分离液对血液离心，使一定比重的血细胞依相应的密度梯度分布于不同的独立区带，从而达到分离的目的。
第一层为血浆层。
第二层为环状乳白色淋巴细胞层。
第三层为透明分离液层。
第四层为红细胞层图1 小鼠外周血离心前后示意图四、实验步骤1.给小鼠注射适量的戊巴比妥钠麻醉剂，使其麻醉2.用镊子用力拉扯掉麻醉完全小鼠的其中一只眼睛，将血液滴入事先已经加入100ulEDTA抗凝剂的5mlEP管中，取足1ml新鲜血液3.用滴管将抗凝后的血加入事先加入1mlPBS缓冲液的5ml的EP管中稀释(血液与PBS的比率为1:1)4.用滴管将稀释后的1ml新鲜血液沿试管壁缓缓（一定要慢）加到含有2ml淋巴细胞分离液(事先要恢复到室温)的10mlEP管中（稀释血液：分离液=1:1），沿管壁流下的稀释血液叠加在分离液之上，并与分离液形成明显的界面5.经水平式离心机离心（1500r/min）15分钟，小心取出试管6.用平口滴管小心吸取中层呈白絮状的淋巴细胞，用PBS溶液洗涤两次，每次离心1800r/min，离心10min7.弃上清液，加入4mlPBS待用图2 第一次离心后图片五、注意事项1.EDTA和淋巴细胞分离液使用前应预温至22℃2.在淋巴细胞分离过程中，应控制室温在22~25℃，过低或过高应延长或缩短离心时间六、实验思考第一次分离后淋巴细胞层存在红细胞，应该是抗凝剂储存时间久导致血液抗凝补充分的缘故。
提取淋巴细胞实验报告
一、实验目的本实验旨在学习淋巴细胞提取的方法，掌握淋巴细胞的分离、纯化和计数技术，为后续的淋巴细胞功能研究奠定基础。
二、实验原理淋巴细胞是免疫系统中的一种重要细胞，主要存在于血液和淋巴组织中。
本实验采用Ficoll分离液法，根据不同细胞密度的差异，将淋巴细胞从其他细胞中分离出来。
三、实验材料1. 实验动物：C57BL/6小鼠2. 仪器：离心机、移液器、加样器、离心管、无菌操作台、眼科剪、眼科镊、显微镜、计数板3. 试剂：Ficoll分离液、磷酸盐缓冲盐溶液（PBS）、淋巴细胞分离液、75%酒精、无菌生理盐水、10%甲醛固定液四、实验方法1. 小鼠免疫器官分离（1）将小鼠麻醉后，固定在手术台上；（2）用眼科剪剪开小鼠的腹部皮肤，暴露出腹腔；（3）用眼科镊取出小鼠的脾脏，放入装有PBS的无菌皿中；（4）用眼科剪将脾脏剪成小块，放入装有PBS的无菌皿中；（5）用无菌生理盐水冲洗脾脏，去除杂质；（6）将脾脏组织转移至新的无菌皿中，加入淋巴细胞分离液；（7）用移液器将淋巴细胞分离液和脾脏组织充分混合；（8）将混合液转移到离心管中，以1000rpm离心10分钟；（9）弃去上清液，保留沉淀物。
2. 淋巴细胞分离（1）将沉淀物加入适量的淋巴细胞分离液，轻轻混合；（2）将混合液转移到新的离心管中，以1000rpm离心10分钟；（3）弃去上清液，保留沉淀物。
3. 淋巴细胞计数（1）将沉淀物加入适量的PBS，轻轻混合；（2）将混合液转移到计数板上，在显微镜下观察；（3）按照计数板上的网格进行细胞计数。
4. 淋巴细胞纯度鉴定（1）将计数后的淋巴细胞加入适量的10%甲醛固定液，固定10分钟；（2）用PBS洗涤固定后的淋巴细胞，去除甲醛；（3）将淋巴细胞加入适量的细胞染色剂，染色30分钟；（4）用PBS洗涤染色后的淋巴细胞，去除染色剂；（5）将淋巴细胞转移到离心管中，以1000rpm离心5分钟；（6）弃去上清液，保留沉淀物；（7）将沉淀物加入适量的PBS，轻轻混合；（8）用移液器将混合液转移到计数板上，在显微镜下观察淋巴细胞形态，判断淋巴细胞纯度。
淋巴细胞分离的实验方法
肝脏免疫学实验室淋巴细胞分离技术肝脏淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后，剪开颈动脉处死，摘取肝脏。
2．将肝脏放在200目钢丝网上自边缘开始研磨，转至15ml离心管中。
3．650rpm×1min离心，将上层液体转至15ml离心管中。
4．1500prm×5min离心后弃上清，重复洗两次。
5．6ml 40% Percoll 溶液重悬沉淀，将3ml 70% Percoll溶液加于其底层，2000rpm×20min，升6降2。
6．吸取两层Percoll溶液之间的白细胞层至15ml离心管中，加满PBS后2000rpm×5min 离心收集细胞。
7．1ml PBS 重悬细胞后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
脾脏淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后剪开颈动脉处死，摘取脾脏。
2．用载玻片的粗糙面将脾脏一点一点磨碎，将收集的研磨悬液通过200目尼龙网过滤至15ml离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
3．8ml PBS重悬细胞沉淀，在底层加入3ml Ficoll , 2000rpm×20min，升6降2。
4．吸取两层溶液之间的白细胞层至15ml离心管，加满PBS后2000rpm×5min离心收集细胞。
5．6-8 ml PBS 重悬细胞后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
胸腺淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后，剪开颈动脉处死，摘取胸腺。
2．将胸腺放在200目钢丝网上研磨，将收集的研磨悬液通过尼龙网过滤至15ml离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
3．6-8ml PBS 重悬细胞沉淀，再次通过200目尼龙网过滤后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
淋巴结淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后脱臼处死，摘取淋巴结。
2．用载玻片的粗糙面将淋巴结磨碎，将收集的研磨悬液通过200目尼龙网过滤至15ml 离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
脾脏分离淋巴细胞
从小鼠脾脏中分离淋巴细胞
方法一:
１用注射器内芯或者研棒研磨过100目筛网，Hank’s液冲洗，收集分离的脾细胞悬液。
２另取无菌试管，先加入淋巴细胞分离液，然后将试管倾斜，略放平，吸取刚刚制备的细胞悬液缓慢的加入试管中，一般分离液和细胞悬液的体积比为１：２，要轻要慢，不要冲破了淋巴细胞分离液和细胞悬液的界面。
室温水平离心2000转/分钟，30分钟。
３离心后取出试管，可以看到不同的分层，一般上面是非细胞成分和细胞碎片，接下来是单个核细胞，再往下是红细胞等。
吸走上层非细胞层弃之，吸出单个核层在另外无菌试管中，因为淋巴细胞分离液对细胞有毒性作用，加入PBS离心洗两遍（1000转/分钟，10分钟）。
４倾倒上清，用RPMI-1640重悬细胞。
方法二：
用注射器内芯或者研棒研磨过100目筛网，Hank’s液冲洗，收集分离的脾细胞悬液，2000r/min离心3min，弃上清。
加红细胞裂解液8mL，混匀脾细胞，静置5-6min，待红细胞完全破碎，2000r/min离心3min，弃上清去除红细胞，Hank’s液洗1-2遍，用RPMI-1640（含10%胎牛血清）重悬细胞。
淋巴细胞分离实验报告
淋巴细胞分离实验报告淋巴细胞分离实验报告引言：淋巴细胞是免疫系统中的重要组成部分，具有免疫应答和免疫调节的功能。
淋巴细胞分离实验是研究淋巴细胞功能的重要手段之一。
本实验旨在通过离心法和梯度离心法分离和纯化淋巴细胞，并验证其纯度和活力。
实验材料：- 血液样本- PBS缓冲液- 淋巴细胞分离液- Ficoll梯度离心液- 离心管- 移液管- 显微镜- 细胞计数板- 无菌培养皿- 37℃恒温培养箱实验步骤：1. 血液预处理：将新鲜的血液样本加入无菌离心管中，加入等体积的PBS缓冲液，轻轻混合。
注意避免气泡的产生。
2. 离心分层：将离心管放入离心机中，以2000rpm的速度离心10分钟。
离心后，可观察到血液分为三个层次：上层为血浆，中层为白细胞和淋巴细胞，下层为红细胞。
3. 分离淋巴细胞：将中间层的白细胞和淋巴细胞转移至新的离心管中，加入等体积的PBS缓冲液。
轻轻混合后，以1000rpm的速度离心10分钟。
此步骤的目的是去除红细胞和血浆。
4. 梯度离心：将混合后的细胞悬液加入离心管中，并缓慢滴加Ficoll梯度离心液。
注意避免两种液体混合。
离心管中的液体应该形成明显的两层。
5. 离心分层：将离心管放入离心机中，以1500rpm的速度离心30分钟。
离心后，可观察到淋巴细胞在上层梯度液中形成一个白色的浑浊环。
6. 分离淋巴细胞：使用移液管将上层梯度液中的淋巴细胞转移至新的离心管中。
加入等体积的PBS缓冲液，轻轻混合。
以1000rpm的速度离心10分钟，去除梯度液。
7. 洗涤淋巴细胞：将淋巴细胞沉淀用PBS缓冲液洗涤三次，以去除梯度液和离心液中的残留物。
8. 细胞计数和活力检测：取适量的淋巴细胞悬液，用细胞计数板进行细胞计数，并观察细胞形态。
同时，使用显微镜观察细胞的活力和完整性。
结果与讨论：通过以上实验步骤，我们成功地分离和纯化了淋巴细胞。
在离心分层和梯度离心的过程中，红细胞和血浆被有效地去除，从而得到了较为纯净的淋巴细胞。
小鼠淋巴细胞的分离培养
小鼠淋巴细胞的分离培养
一、血液中淋巴细胞的分离：
1在1.5ML离心管中加入淋巴细胞分离液0.7ML；
2眼部采集小鼠的抗凝血，抗凝剂20%.。
3轻轻将血液加入淋巴细胞分离液的表面，立即以2000—2500转/分离心10MIN。
4小心吸取上层细胞，转移至另一1.5ML离心管中,再用HANK’S 悬浮至1.5ML，再离心，去上清，再悬浮，等待分型用。
二、鼠脾脏中淋巴细胞的分离：
1无菌采集鼠的脾脏，且灭菌注射器的弯针头轻轻扎取，尽可能使单个细胞分离，再分别用4层灭菌纱布过滤2次。
2将滤液小心加入淋巴细胞分离液中。
离心。
3 吸取上层淋巴细胞，HANK‘S液洗涤2次（尽可能去除淋巴
细胞分离液）。
4加入1640培养液进行培养。
、
*淋巴细胞分离液不低于全部液体的50%。
淋巴细胞分离的实验方法
肝脏免疫学实验室淋巴细胞分离技术肝脏淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后，剪开颈动脉处死，摘取肝脏。
2．将肝脏放在200目钢丝网上自边缘开始研磨，转至15ml离心管中。
3．650rpm×1min离心，将上层液体转至15ml离心管中。
4．1500prm×5min离心后弃上清，重复洗两次。
5．6ml 40% Percoll 溶液重悬沉淀，将3ml 70% Percoll溶液加于其底层，2000rpm×20min，升6降2。
6．吸取两层Percoll溶液之间的白细胞层至15ml离心管中，加满PBS后2000rpm×5min 离心收集细胞。
7．1ml PBS 重悬细胞后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
脾脏淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后剪开颈动脉处死，摘取脾脏。
2．用载玻片的粗糙面将脾脏一点一点磨碎，将收集的研磨悬液通过200目尼龙网过滤至15ml离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
3．8ml PBS重悬细胞沉淀，在底层加入3ml Ficoll , 2000rpm×20min，升6降2。
4．吸取两层溶液之间的白细胞层至15ml离心管，加满PBS后2000rpm×5min离心收集细胞。
5．6-8 ml PBS 重悬细胞后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
胸腺淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后，剪开颈动脉处死，摘取胸腺。
2．将胸腺放在200目钢丝网上研磨，将收集的研磨悬液通过尼龙网过滤至15ml离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
3．6-8ml PBS 重悬细胞沉淀，再次通过200目尼龙网过滤后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
淋巴结淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后脱臼处死，摘取淋巴结。
2．用载玻片的粗糙面将淋巴结磨碎，将收集的研磨悬液通过200目尼龙网过滤至15ml 离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
小鼠脾脏中分离淋巴细胞
从小鼠脾脏中分离淋巴细胞
１小鼠断颈处死，酒精浸泡５分钟，超净台内打开左侧腹部皮肤，小心分离皮下组织和腹部肌肉暴露出脾脏，提起，剪去周围结缔组织，放入有PBS的小瓶中。
无菌镊子夹碎，挤压脾脏，将获得的细胞悬液移入无菌试管中。
２另取无菌试管，先加入淋巴细胞分离液，然后将试管倾斜，略放平，吸取刚刚制备的细胞悬液缓慢的加入试管中，一般分离液和细胞悬液的体积比为１：２，要轻要慢，不要冲破了淋巴细胞分离液和细胞悬液的界面。
选用适合自己分离目的细胞的离心力和时间进行离心。
个人用1500转/分钟，20分钟。
３离心后取出试管，可以看到不同的分层，一般上面是非细胞成分和细胞碎片，接下来是单个核细胞，再往下是红细胞等。
吸走上层非细胞层弃之，吸出单个核层在另外无菌试管中，因为淋巴细胞分离液对细胞有毒性作用，加入PBS 离心洗两遍（PBS1000转/分钟，10分钟）。
４，洗好的细胞加入１６４０培养液和２０％的血清中重悬，缓慢加入已经制备好的尼龙毛柱子中，封好，放３７度孵育一小时。
一小时后取出，超净台内将柱子立起，针头下面放无菌试管（我们的柱子是用大号注射器做的），以HANKS液和血清先后缓慢冲洗，巨噬细胞贴在尼龙毛上不下来，B细胞也相对吸附冲洗下来的不多，所以冲洗来的大多是T细胞，纯度可打到８０％到９０％，再次冲洗并且用力挤压，这样得到的就是B细胞。
得到的细胞可以以１６４０加血清配制的培养液进一步培养或做它用。
但是淋巴细胞分离液得到的细胞只能算是粗分，如果实验要求高最好选用磁珠或流式分离。
外周血淋巴细胞分离
外周血淋巴细胞分离：外周血淋巴细胞分离是一种实验技术，用于分离外周血中的淋巴细胞。
淋巴细胞是免疫系统中的重要细胞，参与机体的免疫应答反应。
外周血淋巴细胞分离通常用于研究淋巴细胞的特性、功能和作用机制，以及用于诊断和监测某些疾病，如淋巴瘤、白血病、自身免疫性疾病等。
外周血淋巴细胞分离的原理是利用各种血细胞的密度不同，通过离心和分层液的分离作用，将淋巴细胞从其他血细胞中分离出来。
常用的分离方法包括密度梯度离心法和免疫磁珠分离法等。
实验五TB淋巴细胞的分离实验
２．从新鲜豚鼠血液分离单个核细胞。 从新鲜豚鼠血液分离单个核细胞。
①取豚鼠抗凝血2毫升，加3毫升Hanks液使之稀释。加于3毫升 淋巴细胞分层液液面之上（沿管壁轻轻加入，勿使两液相混）。 ②2000转/分离心30分钟，吸淋巴细胞层到另一试管中加5倍体积 的Hanks液洗1—2次，（1500转/分离心10分钟）弃上清即成。
将形成E—花环的细胞悬液，再用淋巴细胞分层液分 离，吸取界面云雾状的细胞，即为富含B淋巴细胞群。沉 淀于管底的E—花环，用Hanks液洗一次后，加双蒸水3毫 升处理3分钟，低渗裂解E—花环周围的RRBC，立即加 3.5%氯化钠溶液1毫升，使还原为等渗，低速离心沉淀，即 得富含T淋巴细胞群。
五、实验报告
写出T、B淋巴细胞分离的详细过程。 分析说明该实验过程中需注意的事项。
三、实验材料
新鲜豚鼠血 兔红细胞（RRBC） 溴花二氨基异硫氢化物（AET） 淋巴细胞分层液 其它Hanks液，含小牛血清的199培养液，无菌生 理盐水，3.5%氯化钠溶液，离心机等。
四、实验步骤
１．AET—RRBC制备 制备
溶液的制备：称取AET粉剂402毫克，溶于10毫升蒸馏水 ① AET溶液的制备 溶液的制备 中，使成为0.143M溶液，用4N NaOH溶液调pH9.0。该溶液必须新鲜 配制，不宜久存。 处理RRBC：取洗涤好压积的RRBC，按一份压积AET— ②AET处理 处理 RRBC加入4份新鲜配制的pH9.0的AET溶液充分混匀置37℃水浴15分 钟，每隔5分钟摇匀一次。取出加冷无菌生理盐水至离心管口（1—2 厘米）1800转/分离心5分钟。连续洗涤3—5次，每洗一次，必须充分 摇匀，以减少AET—RRBC粘附成团，并观察有无溶血。若有溶血现 象，则用含小牛血清的199培养基再洗一次，最后配成10%AET— RRBC悬液，置4℃保存，不得超过5天。 的配制：将预先配制并保存于4℃冰箱的10% ③1%AET—RRBC的配制 的配制 浓度的AET—RRBC，以含10%小牛血清的199培养液稀释至1%。
免疫学实验 淋巴细胞分离
6、弃上清，用1ml D-Hanks定容细胞，混匀。
7、用瑞氏染液染色，观察所分离细胞的形态和结 构，并画图。
瑞氏染色
• 吸取淋巴细胞涂片，待涂片干燥后，滴 加瑞氏染料3-5d，铺满玻片，0.51min后滴加等量的瑞氏染料缓冲液，用 洗耳球吹匀，使染料混合均匀，510min后用流水冲洗，待干后镜检。
3、每组取已加入2ml淋巴细胞分离液的试管1支， 将离心管倾斜45角，在距分层液界面上 1cm处将稀释血液沿试管壁缓慢加至分层液 上面，每管4ml，注意保持两者界面清晰， 勿使血液混入分层液内。
4、2500转/分离心20min，离心后，管内可分为 四层：上层为血浆、血液稀释液及绝大部分血 小板；下层为红细胞及粒细胞；中层为细胞分 层液；分层液与血浆交界部位混浊的灰白色层 即为淋巴细胞层。
4、离心时的温度对分离效果亦有影响，温度过 低，离心时间需适当延长，淋巴细胞丢失增多； 温度过高，增加红细胞凝聚，且影响淋巴细胞 活性。离心时最适温度为18-25℃。
思考题
密度梯度离心法分离外周血淋巴细胞的的 原理和方法？
实验材料与试剂
①肝素（100U/毫升）、D-Hanks液、 淋巴细胞分离液（ficoll）、瑞氏染液
②离心机、显微镜、试管，吸管等。
实验方法与步骤
1、采集兔静脉血，注入盛有肝素（20U/ml） 的搪瓷缸中，立即轻轻摇匀，使血液抗凝。
2、每组用吸管吸取2ml抗凝血，加入等体积即 2ml的室温D-Hanks液，使血液等倍稀释。
实验五 淋巴细胞分离、 E花环
实验目的
淋巴细胞分离实验报告
淋巴细胞分离实验报告淋巴细胞分离实验是一种常用于免疫学研究的技术。
该技术通过分离人或动物的淋巴组织，提取淋巴细胞，可以进行多种免疫学实验，如细胞增殖、细胞毒性等。
淋巴细胞分离技术最早是由Ficoll-Paque首创的。
本次实验中，我们基于Ficoll-Paque梯度离心分离技术，通过在人血液样本中离心沉淀淋巴细胞，进而提取出淋巴细胞。
实验步骤如下：首先，我们从志愿者的血液中提取出血浆和白细胞。
接着，我们添加PBS缓冲液，缓慢倒入Ficoll液，最后加入血浆和白细胞混匀后，将试管进行离心。
在离心的过程中，血液中的重质量分别在上下两个相邻稠度梯度之间分离开，从而使淋巴细胞与Ficoll液相互分离，最终沉淀到离心管梯度底部。
接下来，我们将离心管倾斜45度，使用洁净的滴管吸取淋巴细胞。
我们将沉淀的细胞用PBS缓冲液多次洗涤，去除残留的红细胞和粒细胞等杂质，从而得到较为纯净的淋巴细胞。
分离出的淋巴细胞可以用于多种免疫学实验，包括细胞东西分析、细胞毒性测定、细胞增殖、T细胞识别和细胞培养等。
由此可见，淋巴细胞分离技术是一种非常有用和重要的免疫学技术。
本次实验中，我们还可以从中总结一些技术经验。
例如，血浆和白细胞必须充分混合，并且Ficoll液需要缓慢倒入，以免对细胞造成伤害。
此外，在离心的过程中，需要保持离心时间、离心速度的一致性，同时在取样时要保持管子的倾斜角度不变，以确保淋巴细胞沉淀到尽量下面的梯度面上。
综上所述，淋巴细胞分离实验是一项十分重要的免疫学实验，能够提供纯净的淋巴细胞供科研家们进行相关实验。
同时，淋巴细胞分离技术在使用过程中要注意多方面的因素，保证实验结果的准确性和稳定性。
淋巴细胞分离计数实验报告
淋巴细胞分离计数实验报告一、实验目的本实验旨在通过淋巴细胞分离计数实验，了解淋巴细胞的分离过程和计数方法，并掌握相关技能。
二、实验原理1. 淋巴细胞的分离：通过梯度离心法将淋巴细胞与其他血液成分进行分离。
2. 细胞计数：使用显微镜和特殊计数板对淋巴细胞进行计数。
三、实验材料和设备1. 血液样品2. Ficoll-Paque液（用于梯度离心）3. 生理盐水4. 无菌注射器、针头5. 显微镜、计数板四、实验步骤1. 取适量血液样品加入无菌注射器中。
2. 将Ficoll-Paque液加入另一无菌注射器中。
3. 在针头上滴上生理盐水，避免空气进入。
4. 缓慢注入Ficoll-Paque液至血液样品上方。
注意不要将两种液体混合。
5. 离心20分钟，速度为400g。
此时，白色细胞会沉积到Ficoll-Paque层，红细胞会沉积到底部。
6. 用无菌注射器吸取上层白色细胞，转移到新的离心管中。
7. 加入适量生理盐水，混合均匀。
8. 离心10分钟，速度为200g。
此时，淋巴细胞会沉积到底部。
9. 弃去上层液体，用生理盐水洗涤淋巴细胞。
10. 在计数板上吸取适量淋巴细胞进行计数。
五、实验结果分析1. 淋巴细胞的分离效果：根据显微镜下观察到的细胞形态和数量来判断分离效果是否良好。
2. 细胞计数：根据计数板上的规则进行计数，并结合显微镜下观察到的图像来确定结果。
六、实验注意事项1. 操作过程要严格无菌，避免污染样品。
2. 离心过程中要注意速度和时间，以避免对样品产生影响。
3. 计数板要保持干燥和清洁。
七、实验结论通过本次淋巴细胞分离计数实验，我们成功地将淋巴细胞与其他血液成分进行了分离，并通过计数板对淋巴细胞进行了计数。
这些实验结果为我们进一步了解淋巴细胞的生物学特性和相关疾病提供了基础数据。
分离纯化t淋巴细胞的方法
分离纯化t淋巴细胞的方法分离纯化T淋巴细胞的方法T淋巴细胞是一类重要的免疫细胞，对于机体的免疫防御起着关键作用。
因此，对于T淋巴细胞的分离纯化技术也备受关注。
本文将介绍几种常用的T淋巴细胞分离纯化方法。
一、梯度离心法梯度离心法是将含有T淋巴细胞的血样加入到密度梯度液中，并进行高速离心分层，从而实现对T淋巴细胞的分离纯化。
常用密度梯度液包括Ficoll-Paque和Percoll等。
具体操作步骤如下：1. 准备含有T淋巴细胞的血样，并加入到密度梯度液中。
2. 进行高速离心分层，使得不同密度的免疫细胞沉积在不同位置。
3. 采集上清液中的T淋巴细胞并进行后续处理。
该方法优点是操作简单、可扩展性强，但缺点是需要大量血样，并且可能会影响到部分免疫细胞的活性。
二、磁珠分离法磁珠分离法是利用表面标记有特定抗体的磁珠，结合T淋巴细胞表面的特定抗原进行分离纯化。
该方法通常需要先对T淋巴细胞进行表面标记，例如利用CD3或CD4等抗体进行表面标记。
具体操作步骤如下：1. 对T淋巴细胞进行表面标记。
2. 加入含有特定抗体的磁珠，并进行充分混合。
3. 利用磁力将带有T淋巴细胞的磁珠集中到一侧，从而实现对T淋巴细胞的分离纯化。
该方法优点是对于其他免疫细胞不会产生影响，但缺点是需要进行表面标记，并且可能会影响到部分免疫细胞的活性。
三、流式细胞术流式细胞术是利用流式细胞仪对不同免疫细胞进行快速、高通量的检测和排序。
该方法通常需要先对T淋巴细胞进行表面标记，并通过流式仪对其进行检测和排序。
具体操作步骤如下：1. 对T淋巴细胞进行表面标记。
2. 加入含有特定抗体的荧光素，并进行充分混合。
3. 利用流式仪对不同荧光素标记的免疫细胞进行检测和排序，从而实现对T淋巴细胞的分离纯化。
该方法优点是快速、高通量，但缺点是需要昂贵的设备和专业技能，并且可能会影响到部分免疫细胞的活性。
总结以上三种方法都是常用的T淋巴细胞分离纯化技术，各有优缺点。
实验二：淋巴细胞分离实验
小鼠脾脏淋巴细胞的分离
小鼠脾脏淋巴细胞的分离
目的 原理 实验步骤 注意事项
目的
熟悉淋巴细胞和外周血单个核细胞 （PBMC）的分离方法
原理
脾脏各种血细胞的密度不尽相同， 利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作 密度梯度离心，使一定比重的细胞 群按相应密度梯度分项
1.取样计数前，应充分混匀细胞悬液 2.加样量不要溢出盖玻片，也不要过少或带
气泡 3.细胞压中线时，数上不数下，数左不数右 4.本法要求细胞密度不低于104细胞/ml 5.镜下计数时，细胞数过少或过多，说明稀
释不当，需重新制备细胞悬液、计数
试验报告要求
原理, 步骤, 结果, 讨论。
1.实验一获取的小鼠脾脏载玻片研磨 （研磨同时滴加1640培养液，保持细 胞活性）
2. 细胞混合液静置数分钟后吸管吸取， 沿倾斜的管壁缓缓加入淋巴细胞分层 液上方（Ficoll：血细胞=1：1）
实验步骤
3.2000r/min，离心15min
4.沿管壁周缘轻轻吸取淋巴细胞层移 入另一试管中
实验步骤
1、准备计数板： 2、制备细胞悬液：收集细胞，制成单个细胞
悬液 3、加样：用吸管轻轻吹打细胞悬液，取少许
细胞悬液，在计数板上盖玻片的一侧加微量细 胞悬液， 4、计数：在显微镜下，用10×物镜观察计数 板四角大方格中的细胞数
实验步骤
5、计算：将结果代入下式，得出细胞密度 细胞数/毫升原液 =（4大格细胞数之和/4）×104
实验步骤
5.加足量稀释液充分洗涤，1000 r/min 离心5min ，弃上清
6. 适量的培养基重悬细胞 ，计数
注意事项
1.在Ficoll上加入稀释外周血时，应缓慢 加，以免冲散界面
淋巴细胞分离.
淋巴细胞分离与计数淋巴细胞分离原理：外周血各种血细胞的密度不尽相同，利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作密度梯度离心，使一定比重的细胞群按相应密度梯度分布，从而将各种血细胞加以分离。
实验材料：淋巴细胞分离液肝素稀释液（生理盐水）RPMI1640粉末实验设备：1ml移液器、移液管、 5ml注射器、刻度吸管、EP管、离心机、显微镜操作流程：1. 在离心管中加入适量淋巴细胞分离液。
2. 无菌采集静脉血若干毫升,注入盛有肝素的无菌小瓶中，（每1ml全血加0.1ml 125-250U/ml肝素溶液),加盖后立即轻轻摇匀,使血液抗凝3. 稀释（外周血：稀释液=1：2 取肝素抗凝血与等量生理盐水充分混匀）4. 用刻度吸管沿倾斜的管壁，把稀释血缓慢叠加于分层液面上，注意保持清楚的界面（Ficoll：稀释血=1：2）5. 放入离心机1500r/min 离心20min（注:缓慢加速1-4档个3分钟）6. 用吸管插到云雾层，吸取单个核细胞。
置入另一离心管中，加入5倍以上体积的稀释液（生理盐水），1500rpm×10分钟离心，洗涤细胞。
7. 重复洗涤一次，1500rpm×10分钟离心。
8. 末次离心后，弃上清，加入含有10％小牛血清的RPMI1640，重悬细胞9. 计数细胞后再调整细胞置所需浓度.10. 取一滴细胞悬液与一滴0.2％台盼兰染液混合，于血球计数板上，计数四个大方格内的细胞总数。
单个核细胞浓度(细胞数／1毫升细胞悬液)＝4个大方格内细胞总数────────── × 10４×2(稀释倍数)411. 分离出的淋巴细胞置于培养瓶中二氧化碳培养箱培养。
注意事项:1. 每毫升外周血液大约可获1×106单个核细胞2. Ficoll应适量，外周血应充分稀释3. 温度直接影响到Ficoll的比重和分离效果4. 在Ficoll上加入稀释外周血时，应缓慢加，以免冲散界面5. 吸取单个核细胞层时，应避免吸出过多的上清液或分层液而导致血小板污染淋巴细胞计数：实验流程：1. 准备计数板：2. 制备细胞悬液：收集细胞，制成单个细胞悬液3. 加样：用吸管轻轻吹打细胞悬液，取少许细胞悬液，在计数板上盖玻片的一侧加微量细胞悬液，4. 计数：在显微镜下，用10×物镜观察计数板四角大方格中的细胞数5. 计算：将结果代入下式，得出细胞密度胞数/毫升原=（4大格细胞数之和/4）×104注意事项：1. 取样计数前，应充分混匀细胞悬液2. 加样量不要溢出盖玻片，也不要过少或带气泡3. 细胞压中线时，数上不数下，数左不数右4. 本法要求细胞密度不低于104细胞/ml5. 镜下计数时，细胞数过少或过多，说明稀释不当，需重新制备细胞悬液、计数。
淋巴细胞提取
淋巴细胞提取一实验目的：小鼠脾淋巴细胞提取二实验对象：B／C 小鼠三实验器材：1．试剂：淋巴细胞分离液、1640培养基2．器材：无菌培养皿、200目尼龙网（裁成90mm*90mm正方形，灭菌）、10mL玻璃注射器内活塞（灭菌）、不同规格的镊子、剪刀若干（灭菌）、细胞实验常用器材（离心管、移液管、加样枪、离心机）、75%乙醇、烧杯（无菌）、大头针、超净台四实验步骤：1、断头处死小鼠，浸入75%的乙醇中浸泡1-2分钟。
2、在超净台中小心剪开小鼠腹部外皮，用大头针固定，再剪开小鼠腹腔，用镊子摘下小鼠脾脏。
注意无菌操作。
3、参考图一，在35mm培养皿中放入4-5ml淋巴细胞分离液（使用前摇匀淋巴细胞分离液）。
用镊子固定尼龙网，然后用注射器活塞轻轻研磨小鼠脾脏，使得分散的单细胞透过尼龙网进入淋巴细胞分离液中。
（没研磨每一只脾脏话费的时间最好控制在5分钟之内，防止在研磨过程中液体挥发，使得密度与渗透压改变，影响分离效果）4、把悬有脾脏细胞的分离液立即转移到离心管中，离心前再覆盖上大约200μL的1640培养基。
5、800g离心30分钟，注意离心设置较慢的加速度和减速度（如果有十档，一般设置在第三档）。
离心结束后淋巴细胞会漂浮上来，在1640覆盖层下面聚集，细胞分层如图二所示6、析出淋巴细胞层，再加入10mL1640培养基，250g离心10分钟。
倾倒上清液，加入3-5mL Lympho-SpotTM无血清培养基重悬，细胞计数。
五、注意事项：①离心前在细胞悬液上面加盖一层1640培养基，既有利于漂浮上来的淋巴细胞的聚集，又有利于下一步的吸取操作。
覆盖层不必太厚，2Μl足矣。
②如果实验者一次实验要处理很多只小鼠，需要注意两点：其一，每研磨一只小鼠，立即把脾细胞悬液从培养皿转入离心管中，注意盖严管盖，切不可敞口放在超净台中。
否则，液体挥发，密度与渗透压都会改变，严重影响分离效果。
其二，在所有的小鼠脾脏处理完后，统一再加1640覆盖层。
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实验要求
华氏管中加入血样后，用记号笔作好 标记 实验完毕后，请清洗试管、吸管和计 数板
试验报告要求
试验内容 (原理、步骤), 结果 试验注意事项
免疫学实验一
外周血单个核细胞的分离
外周血单个核细胞的分离 原理 试剂和仪器 实验步骤 注意事项
原理
外周血各种血细胞的密度不尽相同， 利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作 密度梯度离心，使一定比重的细胞 群按相应密度梯度分布，从而将各 种血细胞加以分离。
原理
红细胞
1.093 1.092
淋巴细胞分层液（ Ficoll ，低温避光保 存），Hanks液，RPMI1640，PBS，小 牛 血 清 ， 华 氏 管 ， 50ml 离 心 管 ， 2ml （5ml）吸管，水平离心机
注意事项
1.每毫升外周血液大约可获1×106单个核细胞 2.Ficoll应适量，外周血应充分稀释 2.温度直接影响到Ficoll的比重和分离效果 3.在Ficoll上加入稀释外周血时，应缓慢加， 以免冲散界面 4. 吸取单个核细胞层时，应避免吸出过多的上 清液或分层液而导致血小板污染
实验步骤
5、计算：将结果代入下式，得出细胞密度 细胞数/毫升原液 =（4大格细胞数之和/4）×104
注意事项
1.取样计数前，应充分混匀细胞悬液 2.加样量不要溢出盖玻片，也不要过少或带 气泡 3.细胞压中线时，数上不数下，数左不数右 4.本法要求细胞密度不低于104细胞/ml 5.镜下计数时，细胞数过少或过多，说明稀 释不当，需重新制备细胞悬液、计数实验步骤 Nhomakorabea
3.20℃，1500r/min，离心30min
4.沿管壁周缘轻轻吸取PBMC层移入 另一试管中
实验步骤
5.加足量稀释液充分洗涤，1800 r/min 离心10min ，弃上清 6.重复洗涤一次，1400r/min离心10min， 弃上清 7.适量的培养基重悬细胞 ，计数
试剂和仪器
淋巴细胞 单核细胞
外周血
粒细胞
单个核细胞 (PBMC) 血小板
1.075~1.090 1.030~1.035
Ficoll：1.077±0.001
稀 释 外 周 血
稀释的血浆、 血小板
1500rpm, 20℃ , 30min
PBMC
Ficoll
Ficoll
红细胞 粒细胞
实验步骤
1.采血，稀释 （外周血：稀释液=1：2） 2.在离心管中加入Ficoll，沿倾斜的 管壁缓缓加入稀释的外周血 （Ficoll：稀释血=1：2）
细胞计数
试剂和仪器 实验步骤 注意事项
试剂和仪器
血球计数板，盖玻片，Hanks液， RPMI1640，2ml（5ml）吸管，华氏 管，移液尖，微量移液器，显微镜
实验步骤
1、准备计数板： 2 、制备细胞悬液：收集细胞，制成单个细胞 悬液 3 、加样：用吸管轻轻吹打细胞悬液，取少许 细胞悬液，在计数板上盖玻片的一侧加微量细 胞悬液， 4 、计数：在显微镜下，用 10×物镜观察计数 板四角大方格中的细胞数