实验动物的固定方法
试验动物保定方法
一、实验动物的捉拿、固定及给药方法1.小白鼠：右手抓住鼠尾，放在台上或鼠笼盖铁丝网下，然后用左手拇指沿其背部向前抓住其颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住其尾固定在手上。
另一抓法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾尖，后用手掌及小指夹住其尾巴，再以拇指及食指捉住其颈部皮肤。
前一方法易学，另一方法稍难，但便于快速捉拿给药。
小鼠灌胃（PO）法：将小鼠固定后，右手持装有灌胃器的注射器，自口角外插入口腔，沿上颚插入食道。
如遇阻力，可将注射器拔出再插，以免穿破食道或误入气管，造成动物死亡。
灌胃容量一般为0.1～0.2ml/10g，不超过0.5ml/只。
小鼠皮下注射法：两人合作，一人一手抓住小白鼠头部皮肤，另一手抓住鼠尾。
另一人注射药物。
注射部位在背部皮下组织。
如一人操作时，左手抓鼠尾，让鼠爬在铁丝笼上，右手将抽好药液的注射器针头插入背部皮下组织。
如一人操作时，左手抓鼠尾，让鼠爬在铁丝笼上，右手将抽好的药液的注射器针头插入背部皮下将药注入。
注射量不超过0.5ml/只。
小鼠腹腔注射法：左手持鼠，右手持注射器从下腹左或右侧（避开膀胱）朝头部方向刺入，宜先刺入皮下，经2～3mm再刺入腹腔，此时针头与腹壁的角度约45度。
针尖插入不宜太深或太近上腹部，避免刺破内脏，注射量一般为0.1～0.25ml/只。
小鼠尾静脉注射法：将小鼠置于固定器内，使其尾巴露出，用70%酒精擦尾部，或将鼠尾浸入50℃热水中。
待尾部静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。
注射容量不超过0.5ml/只。
2.兔：用手抓起它脊背近后颈处皮肤，抓的面积越大其持重点越分散。
如家兔肥大，应再以另一手托住它的臀部，将持重点承托于手上。
将兔作仰卧位，一手仍抓住颈部皮肤，另一手顺其腹部抚摸至膝关节，压住关节。
另一人用绳带捆绑四肢，使兔腹部向上，固定在兔手术台上。
头部则用兔头固定夹固定。
兔灌胃法：二人合作，一人固定家兔于两膝之间，一手固定兔头，使头部后仰，另一手将开口器插入兔口，并向后翻转数次，使兔舌伸直并压在开口器下面。
药理学实验
药理学实验精确操纵动物缉捕固定的方法，能够防止动物过度挣扎或受毁伤而阻碍实验不雅察后果，并可幸免实验者被咬伤，从而包管实验顺利进行。
下面介绍药理学实验课中常用的几种动物的缉捕固定方法。
1、小鼠小鼠性格温柔，一样可不能主动咬人，但抓取时动作也要轻缓。
抓取时先将小鼠放在粗拙物（如鼠笼）上面，用右手提起鼠尾，将小鼠轻轻向后拉，如许可使小鼠前肢抓住粗拙面不动，用左手拇指和食指捏住鼠头皮肤和双耳，其余三指和掌心夹住其背部皮肤及尾部，如许小鼠便可被完全固定在左手中（图1），现在右手可作打针或其它实验操作，也可将小鼠固定在特制的固定器中。
图1 小鼠的缉捕方法图2 大年夜鼠的缉捕方法2、大年夜鼠缉捕固定的方法全然上与小鼠雷同。
因为大年夜鼠比小鼠牙尖性猛，不易用突击的方法抓取，缉捕时较难一些，为防大年夜鼠在惊骇或激愤时咬伤手指，实验者应带上棉手套或帆布手套，先用右手将鼠尾提起，放在粗拙物上，向后轻拉鼠尾，使其不动，再用左手拇、食指捏住头颈部皮肤，其余三指和手掌固定鼠体，使其头、颈、腹呈一向线（图2），这时右手可作打针，若需进行手术，则应对大年夜鼠进行麻醉后固定于手术台上。
如需尾静脉取血或打针，可将大年夜鼠放入固定盒内或用小黑布袋装大年夜鼠，使其只露尾巴。
3、豚鼠豚鼠怯弱易惊，性格平和，不咬人，抓取幼小豚鼠时，只需用双手捧起来，对体型较大年夜或怀孕的豚鼠，先用手掌灵敏扣住鼠背，抓住其肩胛上方，以拇指和食指环握颈部，另一只手托住其臀部（图3）。
图3 豚鼠的缉捕方法4、家兔家兔比较驯服，一样可不能咬人，但脚爪较尖，应幸免抓伤。
抓取时轻轻将兔提起，另一手托其臀部，使其躯干的重量大年夜部分集中在该手上，然后按实验须要将兔固定成各类姿势（图4）。
留意抓兔时不要单提两耳，因为兔耳不克不及遭受全身重量，易造成苦楚悲伤而引起挣扎，是以单提兔耳，缉捕四肢，提抓腰部和背部差不多上不精确的抓法。
图4 家兔的缉捕与固定图5 蟾蜍的缉捕与固定5、青蛙和蟾蜍用左手握住动物，以食指和中指夹住一侧前肢，大年夜拇指压住另一前肢，用右手协助，将两后肢拉直，左手无名指和小指将其压住固定（图5）。
动物实验中的基本技术和方法
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小香猪
第四节 实验动物血液和尿液的采集
一． 动物血液的采集方法 实验动物血液的采集方法有很多。
（一） 按采血部位不同可分为： 眼部采血、耳部采血、心脏采血、大血管采
血及尾部采血等。
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（二）按采血使用的手段不同可分为： 鼠尾刺血、剪尾采血、眼眶静脉丛采血、
心脏采血、断头采血、颈静（动）脉采血、腹主 动（静）脉采血、耳缘剪口采血、耳静脉采血、 后肢外侧小隐静脉、前肢内侧皮下头静脉采血、 翼下采血等。
二、 尿液采集 （一）、 代谢笼采集 代谢笼的特点是能
将动物排泄的大小便分开，达到采集尿液的 目的。此法常用于大鼠、小鼠、豚鼠、兔等 中小型动物的尿液采集。 （二）、导尿法采集 在动物的尿道或输尿 管内插一根塑料导管采集尿液。此法适用于 兔、犬、猫等。
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二、尿液的采集 实验动物的尿液常用代谢笼采集，也可通过其他装置来采集。 （一）用代谢笼采集尿液 代谢笼用于收集实验动物自然排出的尿液，是一种特别设计的为采集实验动物各种排 泄物的密封式饲养笼，有的代谢笼除可收集尿液外，又可收集粪便和动物呼出的CO2 。 一般简单的代谢笼主要用来收集尿液。防在代谢笼内饲养的实验动物，可通过其特殊 装置收集尿液。 （二）导尿法收集尿液 施行导尿术，较适宜于犬、猴等大动物。一般不需要麻醉，导尿时将实验动物仰卧固 定，用甘油润滑导尿管。对雄性动物，操作员用一只手握住阴茎，另一只手将阴茎包 皮向下，暴露龟头，使尿道口张开，将导尿管缓慢插入，导尿管推进到尿道膜部时有 抵抗感，此时注意动作轻柔，继续向膀胱推进导尿管，即有尿液流出。雌性动物尿道 外口在阴道前庭，导尿时于阴道前庭腹侧将导尿管插入阴道外口，其后操作同雄性动 物导尿术。 用导尿法导尿可采集到没有污染的尿液。如果严格执行无菌操作，可收集到无菌尿液。 （
实验一 实验动物的抓取与固定及性别鉴定
急性试验中犬的固定方法：将已麻醉的犬嘴 上的绷带解绷，把犬放在实验台上，先固定头部 后固定四肢。
头部固定：用特制的犬头固定器。犬头固定 器为一圆铁圈，圈的中央横有两根铁条，上面的 一根略弯曲，与棒螺丝相连，下面一根平直。固 定时先将犬舌拉出，将犬嘴伸入铁圈，再将平直 铁条横贯在上、下颌间，然后向下旋转棒螺丝， 使弯形铁条压在犬的鼻梁上，将铁柄固定在试验 台的铁柱上。
（3）蛇 公蛇的尾巴较细长，母蛇较粗短。 轻压尾巴基部，公蛇的半生殖器會跑出來。
4 两栖动物
婚垫 雄蟾
雄蟾 雌蟾
5 鱼类 许多鱼从外形上不易区分其雌雄，但可通过
繁殖期的颜色不同及第二性征加以区分。 如麦穗鱼平时体侧呈灰黄色，到了生殖期雄
性变成暗黑。 雄性马口鱼一到生殖季节，体色变为红蓝条
子相间。
时破损。
白色家兔趾小基本呈红色，尖端呈白色。 一岁家兔红色与白色长度相等； 一岁以下，红多于白； 一岁以上，白多于红。
还可根据趾爪的长度与弯曲度来区别。 青年兔趾爪较短，直平，隐在脚毛中，随年 龄的增长，趾爪露出于脚毛之外，而且爪尖钩曲。 另外，家兔皮薄而紧，眼神明亮，行动活泼 的为青年兔； 皮厚而松，眼神颓废，行动迟缓的为老年兔。
泽，眼神呆滞，行动迟缓。 年轻豚鼠牙齿短白，爪短软，眼睛圆亮，行
动敏捷，被毛有光泽，且紧贴身体。
同日龄豚鼠，雌性体重略高于雄性。与大鼠 一样，其体重受多种因素的制约。实验对年龄要 求比较严格时，必须由卡片记录提供准确年龄。
4 家兔 家兔的门齿和爪随年龄增长而增长，是年龄
鉴别的重要标志。 青年兔门齿洁白，短小，排列整齐； 老年兔门齿暗黄，厚而长，排列不整齐，有
6 猴的抓取与固定 （1）抓取方法 从笼内抓取猴时，饲养人员应以右手持短柄
第二章 动物实验的基本操作与技术
第二章动物实验的基本操作与技术动物实验方法是多种多样的，在医学的各个领域内都有其不同的应用，其中一些基本方法都是共同性的，如动物的选择、抓取、固定、麻醉、脱毛、给药、采血、采尿、急救、处死、尸检等，不管是从事何种课题的医学研究都要用这套基本方法，因此，动物实验基本方法，已成为医学科技工作者必须掌握的一项基本功。
第一节实验动物的抓取固定方法一、小鼠抓取固定方法小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤（见图2-1之一），将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可（图2-1之二）。
有经验者可直接用左手小指钩起鼠尾，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小鼠作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位（必要时先行麻醉），再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。
尾静脉注射时，可用小鼠尾静脉注射架固定（图2-2），先根据动物大小选择好合适的固定架，并打开鼠筒盖，手提鼠尾巴，让动物头对准鼠筒口并送入筒内，调节鼠筒长短合适后，露出尾巴，固定筒盖即可进行尾静脉注射或尾静脉采血等操作。
图2-1 小鼠的抓取固定方法图2-2 小鼠尾静脉注射方法二、大鼠的抓取固定方法大鼠的抓取方法基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指。
抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。
如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。
也可伸开左手之虎口，敏捷地从后一把抓住。
若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活结缚腿，背卧位绑在大鼠固定板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒）。
实验动物的抓取和固定
实验动物的抓取和固定实验动物的抓取和固定在进行实验时，为了不损伤动物的健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，首先要限制动物的活动，使动物处于安静状态，工作人员必须掌握合理的抓取固定方法。
抓取动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解。
操作时要小心仔细、大胆敏捷、熟练准确、不能粗暴，不能恐吓动物，同时，要爱惜动物，使动物少受痛苦。
一、小鼠小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。
通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。
在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。
如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。
二、大鼠大鼠的门齿很长，在抓取方法不当而受到惊吓或激怒时易将操作者手指咬伤,所以,不要突然袭击式地去抓它，取用时应轻轻抓住其尾巴后提起，置于实验台上，用玻璃钟罩扣住或置于大鼠固定盒内，这样即可进行尾静脉取血或注射。
如要作腹腔注射或灌胃等操作时，实验者应戴上棉纱手套(有经验者也可不戴)，右手轻轻抓住大鼠的尾巴向后拉，但要避免抓其尖端，以防尾巴尖端皮肤脱落，左手抓紧鼠两耳和头颈部的皮肤，并将大鼠固定在左手中，右手即可进行操作。
三、家兔家兔比较驯服，不会咬人，但脚爪较尖，应避免家兔在挣扎时抓伤皮肤。
常用的抓取方法是先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦它跑动。
然后一只手抓住兔的颈部皮毛，将兔提起，用另一只手托其臀，或用手抓住背部皮肤提起来，放在实验台上，即可进行采血、注射等操作。
因家兔耳大，故人们常误认为抓其耳可以提起，或有人用手挟住其腰背部提起均为不正确的操作。
在实验工作中常用兔耳作采血、静脉注射等用，所以家兔的两耳应尽量保持不受损伤。
家兔的固定方法有盒式固定和台式固定。
一、实验动物抓取与固定的原则[精品]
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一、实验动物抓取与固定的原则1．爱护动物的原则，避免抓取时对动物造成疼痛、不适、不安及其他应急反应。
2．选择最适合实验动物的固定方法的原则。
3．危险情况下，操作人员安全优先原则。
4．大胆、尽早固定的原则。
二、小鼠抓取与固定的操作程序1．用手抓取与固定的操作程序(1)用右手拇指和食指抓住尾部中央捏起来；(2)用手固定时把捏起来的小鼠放在笼子盖上，在动物向前挣的一瞬间，用左手的拇指和食指抓住颈背部到背中央的皮肤以固定其头部；(3)翻转抓住颈背部的左手，右手拉住小白鼠尾部再用左手的小指压住尾根部使小鼠整个呈一条直线。
2．固定器固定的操作程序(1)在无麻醉的情况下首先根据上述方法用左手将小鼠固定；(2)用乙醚麻醉时，可用长20～30CM的线绳分别捆住动物的四肢；(3)准备一个15～20cm的方木板，边缘楔入5个钉子；(4)把捆住四肢的线绳固定到固定台的钉子上固定，并且在头部上颚切齿的地方牵一根线绳以达到完全固定；(5)尾静脉给药时，可用专用的小鼠固定用容器，把小鼠放在里面只露出尾巴，再进行静脉注射。
3．特殊实验时的固定操作程序(1)进行手术或心脏采血时，应先行麻醉再操作；(2)进行解剖实验时，则必须先行无痛处死后再进行。
三、大鼠和沙鼠的抓取与固定操作程序1．用手抓取与固定的操作程序(1)左手食指按住动物的颈背部，拇指及其余3指放在胁部，食指和中指挟住左前肢，分开两前肢抓取动物，再用右手按住后肢固定。
(2)对受试动物进行给药时，用左手的拇指和食指抓住颈背部皮肤．其余3指抓住背部皮肤，小指和无名指挟住尾部牢牢固定。
(3)注意：4～5周龄以内的大鼠同小鼠一样抓住尾部提起来。
周龄较大的大鼠尾部皮肤因为容易被剥脱所以用左手从背部中央到胸部捏起来抓住。
2．固定器固定：同小鼠固定程序四、小鼠、大鼠和沙鼠性别鉴定的操作程序1．按照大鼠、小鼠和沙鼠的抓取与固定操作程序抓取动物；2．反转以上被抓取的动物，观察其外生殖器（阴蒂或阴茎）与肛门之间的距离；3．仔鼠性别判定以外生殖器（阴蒂或阴茎）与肛门之间的距离间隔短的是雌性，长的是雄性。
动物实验基本操作
动物实验基本操作一、实验动物的抓取与固定。
（一）小鼠。
1. 抓取。
- 用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙表面上。
当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指迅速捏住小鼠两耳后颈背部皮肤，无名指和小指夹住小鼠尾巴根部，将小鼠固定成头部略向上的姿势。
- 原因：捏住尾巴提起小鼠可以避免小鼠咬伤操作人员，将其放在粗糙表面上是利用小鼠的本能反应（向前挣扎），便于后续准确抓取其颈背部皮肤。
而固定成头部略向上的姿势有利于进行诸如灌胃、注射等操作，并且能防止小鼠咬伤操作人员脸部等部位。
2. 固定。
- 如需进一步固定，可将小鼠放在特制的小鼠固定器内，将其身体和四肢固定好。
也可以将小鼠固定在泡沫板上，用大头针固定其四肢（这种方法常用于解剖实验）。
- 原因：使用固定器可以确保小鼠在实验过程中保持稳定，减少因挣扎而影响实验操作的准确性，同时也能保障操作人员的安全。
对于解剖实验，在泡沫板上用大头针固定四肢可以充分暴露小鼠的身体结构，便于进行精细的解剖操作。
（二）大鼠。
1. 抓取。
- 先用右手抓住大鼠尾巴中部，将大鼠提起，放在粗糙平面上。
然后用左手戴防护手套（大鼠体型较大且可能会激烈挣扎，容易咬伤操作人员），从大鼠背部绕到其胸前，拇指和食指捏住大鼠两耳后颈背部皮肤，其余手指握住大鼠身体，将其提起固定。
- 原因：与小鼠抓取类似，先抓住尾巴提起是为了初步控制大鼠，放在粗糙平面上利用其向前挣扎的本能便于后续抓取。
戴防护手套是因为大鼠的咬合力较强，为了防止操作人员受伤。
2. 固定。
- 可将大鼠放入大鼠固定器中固定。
对于需要进行手术等操作的大鼠，也可将其麻醉后固定在手术台上，用绑带固定其四肢。
- 原因：固定器和手术台固定都能保证大鼠在实验过程中保持稳定，使实验操作能够顺利进行，尤其是在进行需要精细操作的手术时，稳定的固定是确保手术成功的关键因素之一。
二、实验动物的给药操作。
（一）口服给药。
1. 灌胃法（以小鼠为例）- 准备好灌胃针（一般为特制的金属针具）和相应的药物溶液。
动物保定技术实验报告
动物保定技术实验报告1. 引言动物保定是一种用于实验动物的活体固定技术，可用于进行各种生物学研究。
在实验过程中，通过保定技术可以将动物固定在特定位置，以确保实验的准确性和可重复性。
本实验旨在探究不同保定方法对动物活体实验的影响，并评估其优劣。
2. 实验材料和方法2.1 实验材料- 白鼠（实验动物）- 麻醉剂- 保定器材（包括保定架、肢体夹具等）2.2 实验方法1. 准备工作：- 准备实验动物，并确保其健康状态- 准备实验材料和器材，并确保其清洁程度2. 麻醉动物：- 根据实验需要使用适当的麻醉剂，按照剂量要求进行麻醉，确保动物处于无痛苦状态。
3. 选择合适的保定方法：- 对比不同的保定方法，例如使用绷带、肢体夹具等，选择适合实验需求的保定材料和方法。
4. 进行保定实验：- 将动物放置在保定器材中，固定各个肢体，以确保动物不会移动。
- 检查保定过程中动物的呼吸、血液循环等重要指标，确保动物的生命安全。
5. 实验操作：- 根据实验需求进行操作，例如采集样本、注射药物等。
6. 解除保定：- 实验结束后，谨慎地解除保定器材，确保动物不受伤害。
3. 结果讨论本实验中尝试了不同的保定方法，包括绷带和肢体夹具等。
通过观察和比较，我们得出以下结论：1. 绷带保定方法：这种方法简单易行，但对于大部分动物来说，绷带可能产生过多的压力，导致血液循环障碍以及肢体的创伤。
因此，在选择绷带时应确保其松紧适当。
2. 肢体夹具保定方法：这种方法可以更精确地固定动物的肢体，减少对周围组织的损伤。
使用肢体夹具时，应确保其不会过于紧凑，造成动物的不适。
综上所述，肢体夹具保定方法相对于绷带更适合进行动物实验。
然而，在选择保定方法时，需要根据实验动物的种类、实验目的以及动物福利的考虑进行选择。
4. 结论本实验探究了动物保定技术在实验中的应用，并比较了绷带和肢体夹具保定方法的优缺点。
通过实验结果，我们推荐使用肢体夹具保定方法，以确保动物的生命安全和实验的准确性。
动物实验基本操作技术
手术剪
用于剪线和剪开、 用于剪线和剪开、分离组 有直、 尖头、 织。有直、弯、尖头、圆 小之分， 头、大、小之分，根据不 同用途选用。 同用途选用。手术操作中 用于沿组织间隙进行分离 和剪断组织者称组织剪， 和剪断组织者称组织剪， 一般为弯形，尖端较钝圆； 一般为弯形，尖端较钝圆； 用于剪断缝扎线、 用于剪断缝扎线、引流物 或敷料等用品者称剪线剪， 或敷料等用品者称剪线剪， 为直形。 为直形。
• 成年小鼠插管深度一般 是：3cm • 小鼠灌胃量： • 0.1～0.25ml/10g体重
大鼠灌胃法
• 成年大鼠插管深度一般是： 5cm • 大鼠灌胃量： 1～2ml/100g体重
兔灌胃法 器械： • 灌胃管（特制胃管或导尿管） • 开口器（木质纺锤状）
兔灌胃法
操作方法： 1.固定：动物取直立或平卧体位，固定动物头 部。 直立位需2人合作，一人取坐位，将兔的躯 体和下肢夹在两腿之间，左手紧握双耳固 定头部，右手抓住前肢，将兔固定于竖立 体位。另一人将开口器横放于兔口中，让 动物咬住开口器，即可开始插入灌胃管。
安装： 先用持针器（ 安装 ： 先用持针器 （ 或直型 止血钳） 夹住刀片， 止血钳 ） 夹住刀片 ， 左手握 住刀柄， 住刀柄 ， 按刀片上的空隙对 准刀柄上的槽隙， 准刀柄上的槽隙 ， 顺势推入 即可。
手术刀握持方法
持弓式
持弓式：右手中指、 持弓式：右手中指、无名指
执笔式： 执笔式 ： 即 以 持 笔 的 手
眼科剪
主要用于剪血管或神经等柔软 组织，眼科剪也有直头与弯头之 分，正确的执剪姿势与手术剪相 同，即用拇指与无名指持剪，食 指置于手术剪上方。
手术刀
由刀片和刀柄组成，可分为大、 由刀片和刀柄组成 ， 可分为大 、 小号不同类型。 中、小号不同类型。 大号——切开皮肤； 切开皮肤； 大号 切开皮肤 中号——切割脏器组织； 切割脏器组织； 中号 切割脏器组织 小号——切割特殊部位。 切割特殊部位。 小号 切割特殊部位
试验动物的抓取固定方法
小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右 手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉， 在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠 的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把 后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿 即可。
1
2
（二）大鼠（Rat )的抓取固定方法 大鼠的抓取基本同小鼠
常用于神经、循环和呼吸方面的实验。
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猪(Pig)
常应用于皮肤烧伤、肿瘤 学、免疫学、心血管及糖 尿病、遗传性和营养性疾 病、移植、外科手术等方 面的研究
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13
二、实验动物编号标记方法 常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方 法。 1）染色法：给大、小鼠、豚鼠标记常用80~90%苦 味酸酒精饱和溶液或3.5~5%苦味酸溶液，其次为 0.5%中性红或碱性品红溶液；编号原则：先左后右， 从前到后。给兔、猫、狗标记常用2%硝酸银溶液， 其次为苦味酸溶液。
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2）烙印法：大、中型动物
3）针刺法：兔
4）挂牌法
5）穿耳孔法
6）断趾编号：小鼠 7）被毛剪号：大动物 8）笼子编号
4
1
7
2
5
8
3
9 6
40Leabharlann 107020 50 80
30
60 90
图3-2-8小鼠背部的编号方法
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三、动物（性二别）的动辨物别性及别年的龄辨判别断 （一）大、小鼠的性别鉴定
雄
雌
图3-2-7 小鼠性别的特征
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（二）兔的性别鉴定
Female slit：切开，缝
vulva：外阴
Flanked：两侧
Male Genital：生殖器
动物实验的常规操作
动物实验的一般操作实验过程中技术及生物材料的收集是否恰当，直接影响实验结果的质量。
因此，实验人员必须正确地掌握动物实验中的一般操作技术，包括动物的捉拿、固定、性别鉴定、标记、生物材料的收集、处死方法和解剖检查，这是保证实验工作成功的基本条件之一。
一、实验动物的捉拿固定实验动物的正确捉拿和固定，不但可以避免由于过强的刺激和动物的损伤而影响观测结果的正确性，而且还可防止被动物咬伤，从而保证实验的顺利进行。
常用的小鼠、大鼠及家兔的捉拿固定方法如下：（1）小鼠用右手抓住鼠尾，提出后立即放在铁丝笼或粗糙的板面上，而后右手将小鼠缓缓后拉，恰好与鼠要向前爬行的力相反而使其固定，此时可用左手的姆指和食指捏住小鼠耳后枕颈部皮肤即可提起，掌心向上而将鼠体置于掌心中，用无名指和小指将鼠尾压住。
此时小鼠即被固定好，可以进行各种实验操作。
操作熟练后，可采用左手一手抓取法，更为方便，右手可不必放下注射器等器具。
（2）大鼠捉取大鼠时，不宜突然袭击式地去抓它，这样手指容易被咬伤。
取用时，应轻轻抓住其尾巴后提起，置于实验台上，将其放入大鼠固定盒将鼠固定，这样可进行尾静脉取血或注射。
如要作腹腔注射或灌胃操作时，实验者应戴上帆布手套，右手轻轻抓住大鼠的尾巴向后拉，左手抓紧鼠二耳和头颈部的皮肤，并将鼠固定在左手中，右手即可进行操作。
（3）家兔家兔性情一般较温顺而胆小，捉拿动作要轻。
家兔二耳较长，但并不能承担全身重量，因此捕捉家兔不能抓其两耳，使它疼痛而挣扎。
从笼内捉兔时，先轻轻打开笼门，勿使受惊，随之将手伸入宠内，从头前阻拦它跑动，兔便匍伏不动，此时用右手把二耳轻轻地压于手心内，抓住颈部的被毛与皮，提起兔，然后用左手托住它的臂部，兔身的重量大部分落于左手上。
家兔的固定按实验要求而定，如在耳血管采血、注射、观察瞳孔及呼吸变化时，可将家兔装入能使头部露出的特制木箱。
做心脏抽血时，可将其仰卧固定在简易木质手术台上，头部用特制兔头夹固定，四肢用活结粗棉扁带缚在台边。
实验动物的固定方法
实验动物的固定方法
1.罩透明罩固定法：
该方法适用于小型动物，如小鼠和小鸟。
研究人员可以制作一个带有固定夹的透明罩，将动物的头部固定在罩内部，使其不能移动。
这种固定方法可以保持动物的自由呼吸和观察其行为活动。
2.槽式固定法：
该方法适用于较大的动物，如大鼠和猫。
槽式固定法通常利用机制臂和固定杠杆来实现。
具体操作是将动物的胸部或腹部放置在一个可移动的槽中，然后通过固定杠杆将槽固定在实验台上。
这种方法可以固定整个身体，保持动物的头部和四肢的自由活动。
3.束缚带固定法：
束缚带固定法适用于大型动物，如狗、大猴和猪等。
该方法使用束缚带将动物的四肢固定在实验台上，使其无法自由移动。
这种固定方法通常用于进行长时间的生理测量和记录。
4.神经脊固定法：
该方法适用于在实验过程中需要对动物的脑部进行定位的研究。
具体操作是使用支架将动物的头部稳定，然后使用螺钉将头部固定在支架上。
这样可以确保动物的脑部位置稳定，方便进行实验观察。
需要注意的是，在进行实验动物固定的过程中，对动物的伤害和不适应感应尽可能减到最低。
固定时间应根据不同实验的需要来确定，尽量避免过长时间的固定。
此外，研究人员在进行实验动物固定的同时，还需要给予动物充足的饮食和舒适的生活环境，确保其身体和心理的健康。
对于实验动物的固定方法的使用，必须严格遵守相关的伦理规定和法律法规，保障实验动物的福利和权益。
动物实验的基本技术方法
2、大鼠的抓取与固定 3、豚鼠的抓取与固定
•4 、 家 兔 的
抓 取 与 固 定
1、2、3均为不正确的抓取方法（1．可损伤两肾， 2．可造成皮下出血，3．可伤两耳），4、5为正确的抓 取方法。颈后部的皮厚可以抓，并用手托兔体。
兔的固定：一般采用台式和马蹄形。四肢用粗 棉绳活结绑住，拉直四肢，将绳绑在兔台四周 的固定木块上，头以固定夹固定或用一根粗棉 绳挑过兔门齿绑在兔台铁柱上；
于全身血容量的10％，短期的反复采血（间隔24h)， 每次采血量不宜超过全血量的1％，每周采血8％，其 血红蛋白需数周才能恢复至正常浓度。200g大鼠，按6 ％，全血容量12ml，单次采血1.2ml是安全的，反复采 血每次不宜超过0.12ml。
采血对机体的影响
血糖水平、皮质类固醇激素、催乳激素、肾上腺素、 生长激素、胰岛素、血管紧张肽酶原和血清酶类。
常用的编号标记溶液有： ①3％一5％苦味酸溶液，涂染成黄色； ②2％硝酸银溶液，涂染成咖啡色(涂后需光照10 min)； ③0.5％中性红或品红溶液，涂染成红色； ④煤焦油酒精溶液，涂染成黑色； ⑤龙胆紫溶液，涂染成紫色。 标记时用标记笔签蘸取上述溶液，在动物体表 不同部位涂上斑点，以示不同号码。
四、实验动物被毛的去除方法
动物的被毛常常因为会影响实验的操作和实验 结果的观察，因此实验中通常 去除或剪短动物 的被毛。去除被毛的方法有四种：剪毛、拔毛、 剃毛和脱毛。 1、剪毛法 一般将动物固定后，用弯头手术剪 紧贴手术者左手绷紧的动物皮肤，依次将所需 实验部位的被毛剪去。可先粗剪，然后再细剪， 不可用手提着动物剪被毛，这样易剪破皮肤。 剪下的毛集中放在一个容器内，不要遗留在手 术台周围，避免注射器等夹毛。
动物实验基本操作技术之一“实验动物抓取与固定”
动物实验基本操作技术之一“实验动物抓取与固定”实验动物的抓取与固定是进行动物实验时的基本操作技术之一，确保实验动物在实验过程中能够稳定地保持固定的姿势，以便进行各种操作和测量。
本文将详细介绍实验动物抓取与固定的基本方法和注意事项。
一、实验动物的选取在选择实验动物时，要综合考虑实验的目的、动物的特性以及实验操作难度等因素。
常见的实验动物有小鼠、大鼠、兔子、猪等。
根据研究的需要，可以选择体型适中、繁殖能力强、易于操作和维护的动物品种。
二、实验动物的准备在进行实验前，需要对实验动物进行一系列的准备工作，以确保实验的准确性和动物的安全性。
1.饲养环境：提供适宜的饲养环境，包括恒温、恒湿的饲养箱、适当的饲料和水源等。
2.麻醉或镇痛：根据实验的需要，可以对动物进行麻醉或镇痛处理，以减轻实验操作对动物的伤害和痛苦。
3.消毒处理：在进行操作前，需要对实验器械、操作台面等进行消毒处理，以防止交叉感染。
三、实验动物抓取的方法在进行实验动物抓取时，可以根据实验的需要选择不同的方法。
1.手持抓取法：适用于小鼠等小型动物，操作者可以用手直接抓住动物的尾部或颈部，保持动物的姿势。
这种方法简单方便，但不适用于进行需要长时间固定的实验。
3.麻醉固定法：适用于大鼠、兔子、猪等体型较大的动物，可以在进行一些需要比较复杂的操作时使用。
在进行麻醉固定时，需要注意选择适宜的麻醉方法和药物，以确保动物的安全。
四、实验动物固定的方法固定实验动物的目的是为了保持动物在实验过程中的稳定性，以便进行各种操作和测量。
常见的实验动物固定方法有以下几种：1.割裂固定法：适用于进行小鼠、大鼠等小型动物的实验。
可以将动物的四肢用绳子或胶布固定在特制的操作平台上，确保动物保持特定的姿势不动。
2.弹簧夹固定法：适用于小鼠、大鼠等小型动物的实验。
可以使用特制的弹簧夹将动物的四肢固定在操作台上，并通过调节夹子的松紧度来控制动物的运动范围。
3.麻醉固定法：适用于大鼠、兔子、猪等体型较大的动物。
湖北省动物实验操作方法
1、小鼠抓取固定辨认性别；抓取：首先用右手从笼盒内将小鼠尾中部或基部抓住（不可抓尾尖），并提起或放在左手上。
固定：固定方法：徒手固定：右手抓取小鼠尾，将小鼠放在笼盖（或表面粗糙的物体）上，轻轻向后拉鼠尾；然后在小鼠向前挣脱时，用左手拇指和食指抓住两耳和颈部皮肤，无名指、小指和手掌心夹住背部皮肤和尾部，并调整好动物在手中的姿势。
此法常用于灌胃以及肌肉、腹腔和皮下注射等实验。
性别：哺乳类动物性别依据动物的肛门与外生殖器（阴茎或阴道）之间的距离加以区分，雄性要比雌性的距离更长。
观察生殖器与肛门之间的距离，雌性较雄性近具沟；观察生殖突起，雄性较大、较圆，雌性较小具裂缝；仰卧观察乳头，雄性不明显，雌性明显。
2、大鼠抓取固定辨认性别；抓取：张开左手虎口，迅速将拇、食指插入大鼠的腋下，虎口向前，其余三指及掌心握住大鼠身体中段，并将其保持仰卧位，然后调整左手拇指位置，紧抵在下颌骨上（不可过紧，否则造成窒息），即可进行实验操作。
注意：抓取大鼠时，不能捉其尾尖，因为尾尖皮肤易于拉脱，也不能让大鼠悬在空中时间过长，否则会激怒大鼠翻转咬人。
徒手固定：用拇指、食指捏住大鼠耳朵颈部皮肤，余下三指紧捏住背部皮肤，置于掌心，调整好大鼠在手中的姿势即可。
此种固定方法常用做体重小的大鼠灌胃、腹腔注射、肌肉注射和皮下注射的实验操作。
性别：同上。
3、豚鼠抓取固定辨认性别；抓取：抓取幼年的豚鼠时，可用两手捧起来。
抓取较大的豚鼠时，先用手掌迅速扣住豚鼠背部，抓住其肩胛上方，以拇指、食指捏住颈部，其余手指握持住躯干，即可轻轻提起。
对怀孕或体重较大的豚鼠，应以左手托其臀部。
徒手固定：由助手用左手的食指和中指放在豚鼠颈背部两侧，拇指和无名指放在肋部，分别用手指挟住左右前肢，抓起来；然后反转左手，用右手的拇指和食指挟住右后肢，用中指和无名指挟住左后肢，使鼠体伸成一直线；也可坐下来用大腿夹住豚鼠的后肢，右手进行实验操作。
性别：同上。
4、家兔抓取固定辨认性别；抓取：抓取时，轻轻打开兔笼门，不要使兔受惊，然后用右手伸入笼内，从兔头前部把两耳轻轻压于手掌内，兔便卧伏不动，此时将颈背部被毛和皮肤一起抓住提起，并用左手托住兔腹部，使其体重主要落在这只手上。
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目录
1.目的 (2)
2.范围 (2)
3.引言、定义和缩略语 (2)
4.程序 (2)
4.1大鼠的捉持 (2)
4.2小鼠的捉持 (3)
4.3豚鼠的捉持 (3)
4.4兔的捉持 (3)
4.5犬的捉持 (4)
5.登记和归档 (5)
5.1登记 (5)
5.2归档 (5)
6.职责 (5)
7.培训 (5)
1. 目的
本条SOP的目的是建立并规范实验动物的捉持及固定方法，使操作程序标准化。
2. 范围
本条SOP适用于所有参加动物试验的操作人员。
3. 引言、定义和缩略语
实验动物的捉持分为：大鼠的捉持、小鼠的捉持、豚鼠的捉持、兔的捉持、犬的捉持。
4. 程序
4.1大鼠的捉持
1)包身法：操作者一只手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙表面上，向后
方轻拉鼠尾，使大鼠前肢固定在粗糙表面上，另一只手用拇指和另外4指从动物背部分别绕到动物的两侧腋下，将大鼠抓起（熟练者可不提鼠尾，直接将其抓住）。
2)提尾法：操作者用单手拇指和食指抓住动物尾根部提起。
（图1）
图1 提尾法图2 固头法
3)固头法：操作者用单手拇指和食指抓住大鼠颈背部皮毛，使其头部固
定。
（图2）
4)注意事项：不宜快速或突然抓取动物。
对于有症状的大鼠，抓取时注
意避开其伤痛部位，避免增加动物痛苦。
4.2小鼠的捉持
1)双手法：操作者一只手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙表面上，向后
方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙表面上（图4）。
迅速用另一只手的拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指及掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图3）（图5）。
图3小鼠双手捉持法图4小鼠单手捉持法图5 小鼠单手捉持法
2)单手法：小鼠置于笼盖上，先用食指和拇指抓住鼠尾后，手掌尺侧和
小指夹住鼠尾，然后拇指与食指捏住颈部皮肤（图5）
3)提尾法：用单手拇指和食指捉持尾根部。
此法适用于从小群体中或单
一个体中操作小鼠。
4)固头法：操作者一只手拇指和食指抓住动物尾部，另一只手拇指和食
指抓住动物颈背部皮毛，使动物头部被固定。
4.3豚鼠的捉持
豚鼠性情温和，不易咬人，用手轻轻握住身体即可抓起（图6）。
图6 豚鼠的捉持
4.4兔的捉持
操作者一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，
使兔呈蹲坐姿势（图7）。
切不可用手握持双耳提起兔子。
图7 兔的捉持
4.5犬的捉持
4.5.1器械固定法1
固定架组成：不锈钢支架、固定带、附件（滴流架、托盘）。
将固定架滑轮固定好后将犬放入支架中，将犬的头伸入头部固定器后调整头部固定器的位置，将头部固定；将前肢用固定带固定在前部支架上；后肢从支架的孔隙中自然穿出，用固定带将犬的躯干固定。
根据犬的大小调整支架，使犬处于比较舒适的位置。
此固定架可应用于采血、生理、给药等多项操作。
操作结束将固定带解开把犬从固定架中取出后将固定架清洗干净。
4.5.2器械固定法2
固定架组成：不锈钢支架、固定兜布。
将犬放入固定兜中，四肢从支架的固定兜中四肢的孔隙中自然穿出，使头部和身躯保留在固定兜中。
必要时，不锈钢支架下有犬的四肢固定铰链，可用于同时固定犬的四肢。
使犬拘束在固定兜中能够配合试验操作。
此固定架可应用于采血、生理、给药等多项操作。
操作结束将固定带解开把犬从固定架中取出后将固定架清洗干净。
4.5.3人工固定法1
操作者采取从犬后背部用双腿环抱住犬，手固定住犬的前肢或后肢，使犬拘束保持直立体位。
4.5.5人工固定法2
操作者将犬抱起，同时双手分别固定住犬的前后肢。
使犬在操作者怀中
呈直立状态，便于试验操作。
5. 登记和归档
5.1 登记
无。
5.2归档
无。
6. 职责
操作者职责：
•阅读本条SOP。
7. 培训
操作者：
•阅读本条SOP。