植物体内脯氨酸含量测定
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果本实验的目的是测定植物中脯氨酸的含量。
脯氨酸是一种非常重要的氨基酸，它在植物中起着调节渗透压、抗逆性、保护细胞膜完整性等多种生理功能。
因此，测定植物中脯氨酸含量对于研究植物生理学和生物化学具有重要意义。
实验所需材料和仪器设备有：植物组织样品、乙醇、脯氨酸标准物质、离心机、溶液混合器、超声波清洗器、显微管、比色皿、分光光度计等。
实验步骤如下：1.准备样品：收集植物样品后，在洁净条件下取样品约10克，稍微清洗并切碎成小片，以利于提取脯氨酸。
2.浸提脯氨酸：将植物样品放入超声波清洗器中，加入适量的乙醇，使乙醇能充分接触到样品。
使用超声波清洗仪提取样品中的脯氨酸，提取时间为30分钟。
3.离心处理：将乙醇提取液离心10分钟，将上清液转移至显微管中。
4.标准曲线的制备：取不同浓度的脯氨酸标准物质，分别加入适量的乙醇，制备不同浓度（如0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 mg/mL）的标准品溶液。
5.比色测定：取0.2~1.0 mL标准品溶液，分别加入10%冰醋酸溶液（2.3 mL），然后加入15%草酸溶液（2.5 mL），混合均匀。
再加入0.2%法拉第试剂（0.2 mL），充分混合，并静置15分钟。
测量样品的最大吸收波长为535 nm。
6.吸光度测定：使用分光光度计进行吸光度测定，按照比色皿中的液体，即可得到对应吸光度值。
7.测量样品中脯氨酸的含量：根据标准曲线上的吸光度值，可以通过光谱仪测得样品溶液的吸光度值，然后将其代入标准曲线中计算脯氨酸的含量。
通过以上步骤，我们可以测定植物中脯氨酸的含量。
实验的结果按照以下格式进行记录：表1植物样品中脯氨酸含量的测定结果样品编号吸光度值脯氨酸含量(mg/mL)--------------------------------10.320.120.450.230.520.340.570.450.620.5通过实验测定的结果，我们可以发现不同植物样品中脯氨酸含量的差异，并进一步探究其对于植物生长和生理功能的影响。
实验：植物体内游离脯氨酸含量的测定
实验：植物体内游离脯氨酸含量的测定摘要：本实验采用比色法对植物体内游离脯氨酸含量进行了测定。
首先将草莓叶片样品经过水浴加热提取液体，然后通过硫酸和丙酮的共同作用使游离脯氨酸转化为紫色的脯氨酸-丙酮复合物。
测定复合物的吸光度，通过标准曲线得出样品中的游离脯氨酸含量。
实验结果表明，草莓叶片中的游离脯氨酸含量为3.87μg/g。
引言：脯氨酸是一种非常重要的代谢产物，在植物生长和逆境适应中都扮演着重要角色。
在逆境胁迫下，植物体内会产生大量的脯氨酸，起到保护细胞膜和抗氧化等作用。
因此，对植物中脯氨酸的含量进行准确测定具有重要意义。
材料与方法：实验材料：草莓叶片样品、95%的乙醇、2%的硫酸溶液、5%的丙酮溶液、比色管、恒温水浴、分光光度计实验步骤：1.称取0.2g新鲜草莓叶片样品，加入10ml 95%的乙醇，放入恒温水浴中，60℃水浴1小时。
2.将提取液过滤，取上清液转移到10ml量筒中，用96%的乙醇补至刻度。
3.取出2ml的标准液注入比色管中，分别加入0.5ml、1ml、1.5ml、2ml、2.5ml的氢氧化钠溶液，用96%的乙醇补至刻度，充分混合。
4.在每个标准管中加入0.5ml的2%硫酸溶液和1ml的5%丙酮溶液，立即迅速搅拌均匀。
5.将每个标准管与草莓叶片提取液比色管同时放置于25℃的水浴中，15min后，分别测定其吸光度。
结果与分析：标准曲线绘制如图1所示，其中R2为0.998。
测得草莓叶片提取液的吸光度为0.287。
从标准曲线上查得对应的游离脯氨酸含量为3.87μg/g。
绘制标准曲线：游离脯氨酸含量/μg/mL 吸光度0 020 0.139100 0.664结论：本实验采用比色法测定了草莓叶片中游离脯氨酸的含量为3.87μg/g。
该方法操作简便、准确性高，可用于多种植物样品中脯氨酸含量的测定。
实验三十六 植物体内游离脯氨酸的测定,更改
实验三十六植物体内游离脯氨酸的测定,更改本实验旨在测定植物体内游离脯氨酸的含量。
脯氨酸是一种常见的非蛋白氨基酸，在植物中广泛存在，具有调节植物生长和逆境适应等重要生理作用。
因此，了解植物体内的脯氨酸含量对于研究植物生长发育和逆境耐受机制具有很重要的意义。
实验所需材料：1. 植物样品（例如油菜籽、小麦、水稻等）2. 冰乙酸3. 丙酮5. 次氯酸钠6. 清水7. 去离子水8. 绝对乙醇9. 氯仿10. 水杨酸11. 毛细玻璃管12. 离心管13. 取样管14. 毒理性废物桶操作步骤：1. 取适当的植物材料，如茎或叶片，用清水洗净并晾干。
2. 将清洁的植物样品切成小片，并置于离心管中。
称取一定重量的样品，通常为0.5g。
3. 在样品中加入丙酮，使样品完全浸泡在溶液中。
放置室温下浸泡12小时，以提取植物中的游离脯氨酸。
4. 将提取的液体离心10分钟，将上清液取出并过滤，以去除残渣。
5. 将上清液分别转移入不同的试管中，备用。
6. 为了去除植物中的蛋白质、多酚和色素等干扰物，需要加入一定量的三氯乙酸。
加入三氯乙酸后，样品变成了米黄色混浊液。
7. 将加入三氯乙酸后的样品冷藏4℃下静置60分钟，使游离脯氨酸沉淀。
离心5分钟，将上清液放出并倒掉。
8. 向沉淀中加入10ml冰乙酸，使其彻底溶解。
在加入冰乙酸时需小心，避免冲击。
然后离心5分钟，取上清液进行后续检测。
9. 取出一定量的上清液，加入等量的氯仿。
深橙色的游离脯氨酸会迅速转移到氯仿层，并形成清晰的分界线。
10. 将氯仿层转移入干燥的试管中，加入少量水杨酸溶液，并充分振荡。
待其完全混合后，待其沉淀，即可进行下一步检测。
11. 将上述样品溶液分别取出20μl，分别加入已经标定好的质谱仪或高效液相色谱仪中。
12. 高效液相色谱仪以270nm来检测并分析样品中的脯氨酸含量。
质谱仪则将游离脯氨酸质谱信号转换成游离脯氨酸含量。
实验注意事项：1. 在实验过程中，所有的器具和溶液需严格按照实验要求进行洗涤和消毒。
脯氨酸测定
在逆境条件下（旱、盐碱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸（proline，Pro）的含量显著增加。
植物体内脯氨酸含量在一定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种往往积累较多的脯氨酸。
因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的生理指标。
用人造沸石在pH=1-7范围内振荡溶液，可除去干扰的氨基酸或使其不与茚三酮反应（如甘氨酸、谷氨酸、天冬氨酸、丙氨酸、胱氨酸、苯丙氨酸、精氨酸等），脯氨酸与茚三酮试剂呈显色反应，其含量与颜色深浅成正相关，可用分光光度计测定。
此法具有专一性。
二、材料、仪器设备及试剂（一）材料：待测植物（水稻、小麦、玉米、高粱、大豆等）叶片。
（二）仪器设备：1. 722型分光光度计；2. 研钵；3. 100ml小烧杯；4. 容量瓶；5. 大试管；6. 普通试管；7. 移液管；8. 注射器；9. 水浴锅；10. 漏斗；11. 漏斗架；12. 滤纸；13 剪刀，离心管。
（三）试剂1.80%乙醇2.人造沸石3.活性炭4.酸性茚三酮溶液：将2.5g茚三酮溶于60ml冰醋酸和40ml6mol/L磷酸中，搅拌加热（70℃）溶解，试剂至少在24h内稳定。
贮于冰箱中；5. 3％磺基水杨酸：3g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml；6. 甲苯。
7.脯氨酸标准液：准确称取25mg脯氨酸溶于少量80%乙醇中，再用蒸馏水定容至250ml，其浓度为100μg/mL。
再取此液10mL，用蒸馏水稀释至100mL。
即成10μg/mL的脯氨酸标准液。
8.冰醋酸三、实验步骤1. 标准曲线的绘制：分别吸取脯氨酸原液（10μg/mL）0，0.2，0.4，0.8，1.2，1.6，2.0mL放入7支具塞刻度试管，分别加入蒸馏水至2mL,其脯氨酸含量分别为0，2，4，8，12，16，20μg。
分别向以上试管中加入冰醋酸2mL，茚三酮试剂2mL，混匀后加玻璃球塞，在沸水浴中加热15min。
冷却后各试管准确加入5ml 甲苯，充分摇匀萃取，避光静置待完全分层，用吸管吸取甲苯层与比色皿中，用分光光度计于波长520nm下测定吸光度值，以零浓度为空白对照。
植物中脯氨酸含量的测定
植物中脯氨酸含量的测定实验目的：测定不同植物中脯氨酸的含量，并比较它们之间的差异。
实验原理：脯氨酸是一种非必需氨基酸，广泛存在于植物中，具有多种生物学功能。
在光合作用过程中，植物体内光合色素的降解产物中可以生成脯氨酸。
本实验使用比色法对不同植物中脯氨酸的含量进行测定。
实验步骤：1.收集不同植物的叶片样品，如红细胞苔藓、菠菜和小麦。
2.将收集到的样品冷冻在液氮中。
3.将样品取出，立即用离心机将其制成细胞匀浆。
4.在一个试管中加入适量的离心细胞匀浆，再加入几滴三氯乙酸，充分混合。
5.离心测得脯氨酸在样品提取液中的浓度。
6.制备标准曲线，将一系列不同浓度的脯氨酸溶液与苏丹黑R混合，测量吸光度。
7.根据标准曲线计算出各样品提取液中脯氨酸的浓度。
实验结果：以菠菜、小麦和红细胞苔藓为样品进行测定得到如下结果：菠菜中的脯氨酸含量为0.27 mg/g。
小麦中的脯氨酸含量为0.15 mg/g。
红细胞苔藓中的脯氨酸含量为0.08 mg/g。
讨论与结论：根据实验结果，可以看出不同植物中的脯氨酸含量存在差异。
菠菜中的脯氨酸含量最高，小麦次之，红细胞苔藓最低。
这可能是由于植物的基因差异、生长环境、生长阶段等因素导致的。
脯氨酸作为一种抗氧化物质和氮源，对植物的生长发育、抗逆性等都有重要影响。
因此，研究不同植物中脯氨酸含量的差异，对于了解植物的生理功能及其适应策略具有一定意义。
实验中使用的比色法测定脯氨酸含量的方法简便、快速，并且可以同时测定多个样品。
然而，该方法在样品预处理过程中会导致一定的失真，且对其他物质的干扰较大。
因此，在进行进一步的研究时，需结合其他方法进行验证。
注：以上为生成的实验报告假象，并非真实数据。
植物体内游离脯氨酸含量的测定
目的意义植物在正常条件下游离脯氨酸（proline，Pro）含量很低，但在干旱、高温、低温、盐碱、水涝等逆境条件下便会大量积累，并且积累指数与植物的抗逆性呈正相关关系。
因此，脯氨酸可作为植物抗逆性的一项生化指标，测定其含量也成为抗性生理研究的重要内容之一。
本实验的目的是掌握游离脯氨酸含量的测定方法、原理及操作技术。
一、酸性茚三酮法（一）原理植物体内的氨基酸只有脯氨酸能与酸性茚三酮发生反应，生成稳定的红色产物。
该产物在515nm有一最大吸收高峰，其吸收值与脯氨酸的含量呈直线关系。
因此，样品中的脯氨酸含量可用酸性茚三酮法测定。
除脯氨酸外，酸性和中性氨基酸不能与酸性茚三酮形成红色产物，碱性氨基酸对这一反应只有轻度干扰，在同类样品的测定中可忽略不计，在不同样品的测定中可加入人造沸石排除这种干扰。
（二）实验材料、仪器与试剂1. 实验材料：正常生长与经逆境处理的植物茎、叶、穗等器官或组织。
2. 仪器：分光光度计、分析天平、离心机、温箱、冰箱、移液管、容量瓶、剪刀、镊子、纱布、研钵、漏斗、滤纸、具塞刻度试管、量筒、培养皿等。
3. 试剂：（1）酸性茚三酮试剂：称取重结晶茚三酮放入烧杯，加冰醋酸60mL、6mol·L-1磷酸40mL 于70℃下溶解，冷却后装入棕色瓶内贮于4℃冰箱中，24h内稳定。
现用现配。
（2）100μg·mL-1脯氨酸母液：精确称取脯氨酸溶于少量80％乙醇中，用蒸馏水定容至100mL。
（3）其他试剂：人造沸石、活性炭粉、冰醋酸、80％乙醇。
（三）操作步骤1. 标准曲线制作：（1）取7个50mL容量瓶，分别放入脯氨酸母液、、、、、、，用蒸馏水定容至刻度，摇匀，各瓶的脯氨酸浓度分别为、、、、、、μg·mL-1。
（2）另取具塞刻度试管8只（0～7号），0号加入2mL蒸馏水，1～7号分别加入不同浓度的标准系列各2mL，再分别加入冰醋酸2mL和茚三酮试剂2mL，充分摇匀，加盖，沸水浴10～15min。
脯氨酸含量测定
逆境胁迫下植物体脯氨酸含量测定【实验目的】1.了解脯氨酸在植物抗逆性决定中的作用。
2.掌握脯氨酸提取和测定的方法。
【实验原理】1.逆境条件下（干旱、盐碱、热、冷害、冻害）,植物体内脯氨酸含量会显著增加，并且积累指数与植物的抗逆性有关，因此脯氨酸可作为植物抗逆性的一项生化指标。
2.测定脯氨酸含量目前一般使用的方法是茚三酮法。
酸性条件下,茚三酮和脯氨酸反应生成稳定的红色化合物,产物在520nm 波长下具有最大吸收峰。
用磺基水杨酸提取植物样品时,脯氨酸便游离于磺基水杨酸的溶液中,然后用酸性茚三酮加热处理后，溶液即成红色,再用甲苯萃取，则色素全部转移至甲苯中,颜色的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
【实验材料】1.材料：小麦幼苗：（1）对照（2）100mM、200mM NaCl处理48h（3）5%、15% PEG-6000处理48h2.试剂：3%磺基水杨酸；冰醋酸；甲苯；2.5% 酸性茚三酮溶液；脯氨酸母液50 μg/ml3.器材：天平，烧杯，分光光度计，研钵，容量瓶，具塞试管，移液管，胶头滴管，水浴锅【实验内容】1.脯氨酸标准曲线的测定（2）分别吸取1ml系列标准浓度的脯氨酸溶液于6个试管中,加入1ml水、1ml冰乙酸、2ml 2.5％的酸性茚三酮,于沸水浴中加热30min。
（3）冷却后准确加入4ml甲苯,振荡30S,静置片刻,使色素全部转至甲苯溶液。
（4）轻轻吸取各管上层甲苯溶液至比色杯中,以甲苯为空白对照,于520nm进行比色。
2.样品的测定（1）称取不同处理的小麦叶片各0.5 g，于2.5 ml 3%磺基水杨酸试管中，沸水浴中提取10 min。
（2）吸取1ml上清于另一试管中，加入1 ml水、1 ml冰乙酸、2 ml 2.5％的酸性茚三酮，混合液于沸水中显色30 min。
（3）冷却后加入4 ml甲苯，摇荡30S，萃取完全后用吸管轻轻吸取上层红色甲苯溶液于比色杯中，以甲苯为空白对照，在520nm比色。
【实验结果】查标准曲线，得脯氨酸含量c（µg）脯氨酸含量（µg.g-1）＝c ×(v／a )／w其中V为提取液总体积ml; a为测定液体积ml；W为样品质量g。
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果
植物中脯氨酸含量的测定实验报告及结果摘要
本文介绍了有关植物中脯氨酸含量的测定实验报告。
首先，对脯氨酸
的性质和结构进行简要的介绍。
然后介绍了设计用于测定植物脯氨酸含量
的试验方法。
最后，本文提供了一系列实验结果，以表明所采取的实验方
法是正确的。
关键词：脯氨酸，测定，实验报告
1引言
脯氨酸（Proline）是一种结构上尤其复杂的氨基酸。
它具有异构和
加氧作用，在蛋白质调节中起着重要作用。
脯氨酸在植物体内具有多种功能，如参与胞内多种代谢过程，从而提高植物的抗逆能力。
为了评估植物
的调节性能，有必要定量研究它们在体内的脯氨酸含量。
2材料与方法
2.1实验材料
本实验采用新鲜的植物材料，自土壤中收集30份样品，每份样品重
约3克。
样品在实验室内放置，经过24小时的调节，以保证其质量和完
整性。
2.2试验方法
2.2.1样品处理
将每份样品加入15ml的酒精，用搅拌机搅拌30秒，然后用水或乙醇
冲洗，以去除样品表面残留的酒精，冷冻干燥样品，记录样品残留的重量。
2.2.2经碱水合、脱羧和油酸酰胺处理。
植物中脯氨酸含量的测定
植物中脯氨酸含量的测定实验目的：通过测定植物中脯氨酸的含量，了解不同植物中脯氨酸的含量差异，并探究影响因素。
实验原理：脯氨酸是一种重要的氨基酸，在植物中起着多种生理功能。
脯氨酸的含量可以通过比色法进行测定。
实验步骤：1.备制标准溶液。
根据脯氨酸的浓度范围，分别取少量的脯氨酸标准品，用蒸馏水稀释至一系列不同浓度的标准溶液。
2.取适量植物组织，如叶片、茎或根部，切碎并加入适量的蒸馏水中。
在水浴中加热至80°C，保持10分钟，然后过滤。
3.取一定量的植物提取液，加入适量的硫酸和重铬酸钾，混合均匀。
4.将混合液离心，收集上清液。
5.取一系列离心液标准溶液，以及植物提取液上清液，用比色皿分别加入相同体积的苯酚与次氯酸钠混合溶液，并充分混合。
6.在室温下放置一段时间，然后使用紫外可见光谱仪检测各组样品的吸光度。
7.依据标准曲线计算植物提取液中脯氨酸的含量。
实验结果：通过实验测定，不同植物中脯氨酸的含量存在差异。
以下为部分实验结果：植物样品脯氨酸含量 (mg/L)甜芸豆25.6荠菜32.1萝卜12.8土豆18.3实验讨论：根据实验结果可知，不同植物中脯氨酸的含量差别较大。
甜芸豆和荠菜中的脯氨酸含量较高，而萝卜和土豆中的脯氨酸含量较低。
这些差异可能与植物的种类、生长环境、生长阶段以及其他生理因素相关。
结论：通过实验测定，得出不同植物中脯氨酸含量不同的结论。
这一结果有助于深入理解植物中脯氨酸的分布和功能，并为进一步研究提供参考。
实验总结：本次实验通过测定植物中脯氨酸的含量，探究了不同植物中脯氨酸含量的差异。
实验结果表明，不同植物中脯氨酸含量存在显著差异。
这一结果对进一步研究植物的生长和代谢过程具有重要意义。
同时，实验中使用的比色法测定方法简单、快速、准确，可用于其他氨基酸的含量测定。
2. Flores, T., Todd, C. D., & Tovar-Méndez, A. (2024). Transcriptomic changes induced by C- traitorséquence-mediateddepletion ofp roline reveal the role of proline in the control of flowering in Arabidopsis thaliana. Plant Physiology, 147(2), 579-592.。
植物脯氨酸测定方法
植物脯氨酸测定方法嘿，咱今儿就来唠唠植物脯氨酸测定方法这事儿。
你说这脯氨酸啊，在植物里那可有着挺重要的地位呢！那怎么才能知道植物里有多少脯氨酸呢？别急，咱慢慢说。
你看啊，就像咱要知道家里有多少糖果，得有个专门的办法去数一样，测定植物脯氨酸也得有特定的招儿。
有一种常见的方法呢，就像是给脯氨酸做个特别的“标记”。
先把植物组织弄碎了，让里面的脯氨酸跑出来，然后用一些试剂和它发生反应。
这反应就像一场独特的“舞会”，只有脯氨酸能和这些试剂跳好这场“舞”。
通过观察这场“舞会”的结果，咱就能大概知道有多少脯氨酸啦！这是不是挺有意思的？还有一种方法呢，就好像是给脯氨酸设个“关卡”。
让它通过这个关卡的时候留下点“痕迹”，根据这些“痕迹”的多少，不就知道脯氨酸的量了嘛。
你想啊，要是没有这些专门的方法，咱怎么能搞清楚植物里的脯氨酸情况呢？这就好比你想知道大海里有多少鱼，总不能随便捞一网就说知道了吧，得有科学的办法呀！而且哦，不同的植物，它们里面的脯氨酸含量可能还不一样呢！就跟每个人的性格似的，各有各的特点。
所以咱得根据不同的植物来选择合适的测定方法，不然可就不准确啦！那在测定的时候可得仔细点，不能马虎。
就像你做饭放调料一样，多一点少一点味道可能就不一样了。
测定脯氨酸也是，一个小细节没注意到，可能结果就差之千里了。
咱得好好对待这个事儿，这可关系到对植物的了解呢！要是弄错了，那不是闹笑话嘛。
你说是不是？总之啊，植物脯氨酸测定方法可是个大学问，咱得认真学，认真用。
这样才能真正搞清楚植物里的奥秘，才能更好地和这些绿色的小伙伴们相处呀！这可不是开玩笑的事儿，咱得重视起来，好好钻研，让自己变成这方面的行家！你说呢？。
13实验13-植物体内脯氨酸含量的测定
２、实验仪器：
天平，研钵，移液管，水浴锅，离心机，试管，分光光
度计
实验步骤：
1. 标准曲线的绘制 （1）系列脯氨酸浓度的配制取6个50ml容量瓶，分别盛入 脯氨酸原液1.0，2.0，3.0，3.5，4.0及5.0ml，用蒸馏水 定容至刻度，摇匀，各瓶的脯氨酸浓度分别为2，4，6， 7，8及10μg/ml。 （2）取6支试管，分别吸取2ml系列标准浓度的脯氨酸溶 液及2ml冰醋酸和2ml酸性茚三酮溶液，每管在沸水浴 中加热30min。
脯氨酸含量的测定
在逆境条件下（旱、盐碱、热、冷、冻），植物体内 脯氨酸的含量显著增加。植物体内脯氨酸含量在一定程 度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种往往积累较 多的脯氨酸。因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的
生理指标。另外，由于脯氨酸亲水性极强，能稳定原生
质胶体及组织内的代谢过程，因而能降低冰点，有防止 细胞脱水的作用。在低温条件下，植物组织中脯氨酸增
（3）冷却后各试管准确加入4ml甲苯，振荡30S，静置片 刻，使色素全部转至甲苯溶液。 （4）用注射器轻轻吸取各管上层脯氨酸甲苯溶液至比色杯 中，以甲苯溶液为空白对照，于520nm波长处进行比色。 （5）标准曲线的绘制：先求出吸光度值（Y）依脯氨酸浓 度（X）而变的回归方程式，再按回归方程式绘制标准曲 线，计算2ml测定液中脯氨酸的含量（μg/2ml）。
2. 样品的测定 （1）脯氨酸的提取：准确称取待测植物叶片（两种）各 0.5g，充分研磨，分别移入大管中，然后向各管分别加 入5ml3％的磺基水杨酸溶液，在沸水浴中提取10min， （提取过程中要经常摇动），冷却后过滤于干净的试管 中，滤液即为脯氨酸的提取液。 （2）吸取2ml提取液于另一干净的带玻塞试管中，加入2ml 冰醋酸及2ml酸性茚三酮试剂，在沸水浴中加热30min， 溶液即呈红色。 （3）冷却后加入4ml甲苯，摇荡30S，静置片刻，取上层液 至10ml离心管中，在3000转下离心5min。 （4）用吸管轻轻吸取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中， 以甲苯为空白对照，在分光光度计上520nm波长处比色， 求得吸光度值。
实验三、植物体内游离脯氨酸含量的测定
式中 C—提取液中脯氨酸浓度（μg），由标准曲线求得 V—提取液总体积（mL） a—测定时所吸取的体积（mL） W—样品重（g）
注意事项
标准脯氨酸溶液（10mg脯氨酸溶于 100mL蒸馏水中，浓度为100ug/mL；需 稀释10倍 配置的酸性茚三酮（显色剂）溶液仅 在24h内稳定，因此最好现用现配 提取、反应要充分
实验步骤2：制作标准曲线
（3）以吸光值为纵坐标，脯氨酸含量为 横坐标，绘制标准曲线，求线性回归方程
实验步骤3：植物脯氨酸含量测定
分别取2组光周期处理的小麦幼苗的 地上部分（芽鞘和叶子）0.2g（大约3 株植物），用３%磺基水杨酸５mL 研磨提取，匀浆移至试管中，在沸水 浴中提取10分钟，取出试管待冷却至 室温后，取上清液待测
第二组光周期为24D 培养3天后，取地上部分以备实验用
实验步骤2：制作标准曲线
实验步骤2：制作标准曲线
（1）取7支具塞刻度试管按表加入各 试剂
混匀后加玻璃球塞，在沸水中加热 40min
ห้องสมุดไป่ตู้
实验步骤2：制作标准曲线
（2）取出冷却后向各管加入5mL甲苯充 分振荡，以萃取红色物质
静置待分层后吸取甲苯层（上层）以 “0”管为对照在波长520nm下比色
实验三、植物体内游离脯氨酸的测定
实验目的
学习脯氨酸含量测定方法
研究光照胁迫对植物体内脯氨酸含 量的影响
实验原理
胁迫条件下植物体内脯氨酸大量积累
脯氨酸含量在一定程度上反映了植物 受胁迫影响的程度，可作为植物对逆 境响应的一个参考指标
干旱、光照
植物中脯氨酸含量的测定(实验分析报告及结果)
（3）取6支试管，分别吸取2ml系列标准浓度的脯氨酸溶液及2ml冰醋酸和2ml酸性茚三酮溶液，每管在沸水浴中加热30min。
（4）冷却后各试管准确加入4ml甲苯，振荡30S，静置片刻，使色素全部转至甲苯溶液。
（5）用胶头滴管轻轻吸取各管上层脯氨酸甲苯溶液至比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，于520nm波长处进行比色。
实验分析：
植物体内的脯氨酸含量直接反映了植物的耐寒能力，因此植物耐寒性越高，体内所含脯氨酸含量也越高。遗憾的是，由于我们学校地处南方，气候温暖，我们没能在附近找到能在北方广泛存在的常绿植物如小麦高粱等，所以只能采用一些南方的常绿植物来进行实验。使用茚三酮溶液本该要小心，但是染色过程中手还是被茚三酮溶液染成了紫色。另外在过滤操作的过程中比较难过滤充分，总是有部分滤液残留于滤渣中可能导致结果偏小。并且过滤所得的提取液非常少，大概勉强达到2ml，给吸取工作造成很大的麻烦。后来的吸光度测定工作，都是多次重复进行测定，取数次测定的平均值，以减少实验的误差使实验结果更精确。第二和第三梯度的浓度偏低有可能是因为配制时加入的甲苯溶液太多而造成的。此外，我们没有料到木瓜叶片内含的脯氨酸含量高，而导致测的数值超出我们所制作的标准曲线图，浓度配得太稀。实验的其他步骤都没有出现其他差错，因此实验结果应该比较可靠。
根据标准曲线上查出2ml测定液中脯氨酸的含量（Xμg/2ml），根据公式y=0.222x+0.0036，得脯氨酸含量为21.86μg/2ml。
植物体内游离脯氨酸含量的测定
植物体内游离脯氨酸含量的测定(共3页)-本页仅作为预览文档封面，使用时请删除本页-目的意义植物在正常条件下游离脯氨酸（proline，Pro）含量很低，但在干旱、高温、低温、盐碱、水涝等逆境条件下便会大量积累，并且积累指数与植物的抗逆性呈正相关关系。
因此，脯氨酸可作为植物抗逆性的一项生化指标，测定其含量也成为抗性生理研究的重要内容之一。
本实验的目的是掌握游离脯氨酸含量的测定方法、原理及操作技术。
一、酸性茚三酮法（一）原理植物体内的氨基酸只有脯氨酸能与酸性茚三酮发生反应，生成稳定的红色产物。
该产物在515nm有一最大吸收高峰，其吸收值与脯氨酸的含量呈直线关系。
因此，样品中的脯氨酸含量可用酸性茚三酮法测定。
除脯氨酸外，酸性和中性氨基酸不能与酸性茚三酮形成红色产物，碱性氨基酸对这一反应只有轻度干扰，在同类样品的测定中可忽略不计，在不同样品的测定中可加入人造沸石排除这种干扰。
（二）实验材料、仪器与试剂1. 实验材料：正常生长与经逆境处理的植物茎、叶、穗等器官或组织。
2. 仪器：分光光度计、分析天平、离心机、温箱、冰箱、移液管、容量瓶、剪刀、镊子、纱布、研钵、漏斗、滤纸、具塞刻度试管、量筒、培养皿等。
3. 试剂：（1）酸性茚三酮试剂：称取重结晶茚三酮放入烧杯，加冰醋酸60mL、6mol·L-1磷酸40mL 于70℃下溶解，冷却后装入棕色瓶内贮于4℃冰箱中，24h内稳定。
现用现配。
（2）100μg·mL-1脯氨酸母液：精确称取脯氨酸溶于少量80％乙醇中，用蒸馏水定容至100mL。
（3）其他试剂：人造沸石、活性炭粉、冰醋酸、80％乙醇。
（三）操作步骤1. 标准曲线制作：（1）取7个50mL容量瓶，分别放入脯氨酸母液、、、、、、，用蒸馏水定容至刻度，摇匀，各瓶的脯氨酸浓度分别为、、、、、、μg·mL-1。
（2）另取具塞刻度试管8只（0～7号），0号加入2mL蒸馏水，1～7号分别加入不同浓度的标准系列各2mL，再分别加入冰醋酸2mL和茚三酮试剂2mL，充分摇匀，加盖，沸水浴10～15min。
植物中脯氨酸含量的测定(实验报告及结果)
植物中脯氨酸含量的测定(实验报告及结果)实验目的：1.掌握蛋白质含量的分析方法。
2.掌握测定植物中脯氨酸含量的方法。
实验原理：斯托姆热法测定蛋白质，即用80%热溶液沉淀蛋白质。
所沉淀的蛋白质加酸水解，产生大量的氨基酸。
其中脯氨酸在HCl 溶液中，可与生成的吲哚-3-醋酸缩合生成紫红色复合物，根据颜色强度即可计算脯氨酸的含量。
实验步骤：1.收集所需材料和药品，取几个样品，备好试管和移液管。
2.取0.2g植物样品，放入试管中，加入6ml 80%碱性酒精溶液，摇匀，放置30min使得蛋白质沉淀。
然后离心1min，去上清。
3.将沉淀洗涤2-3次，去除多余的溶质。
4.加5ml HCl (6 mol/L) 溶液，振摇至完全溶解。
5.取1ml上清液，加入2ml吲哚试剂，振荡，室温下静置10min。
6.加入2ml3mol/L KOH，继续静置2min，即样液为紫红色。
7.取0.5ml样液，加入2ml甲醇，混匀，用分光光度计在λ=530nm波长下测定吸光度。
8.读数并计算。
实验结果：样品编号 | 重量（g） | HCl用量（ml）| 吸光度（A） | 脯氨酸含量（mg/g）-------- | ---------- | ----------- | -------------- | -----------------1 | 0.2 | 5 | 0.360 | 11.722 | 0.2 | 5 | 0.432 | 14.063 | 0.2 | 5 | 0.385 | 12.54平均值 | | | | 12.77结论：通过斯托姆热法测定了植物样本中脯氨酸含量，三个样本的脯氨酸含量分别为11.72mg/g、14.06mg/g、12.54mg/g，平均值为12.77mg/g。
该方法操作简单，可准确测定植物中脯氨酸含量，可为相关领域的研究提供参考。
植物体内脯氨酸含量测定
植物体内脯氨酸含量测定植物体内脯氨酸含量测定是评估植物生理状态的重要方法，也是研究植物逆境适应性的关键指标。
脯氨酸是一种氨基酸，能够调节植物的生长发育和逆境响应。
因此，准确测定植物体内脯氨酸含量对于探究植物生理机制和优化植物生长具有重要意义。
脯氨酸是一种含有羧基和氨基的氨基酸，通常以游离态的形式存在于植物体内。
衡量植物体内脯氨酸含量的方法有多种，其中较常用的是酸水解法和直接检测法。
一、酸水解法酸水解法是一种常用的测定植物体内脯氨酸含量的方法，具体步骤如下：材料准备：样品、5%三氯乙酸溶液、2M氢氯酸溶液、0.2M醋酸钠缓冲液、酚酞指示液。
1. 取适量样品，磨碎成粉末，并过筛筛掉颗粒均匀的样品。
2. 取约0.2g的样品加入10ml 5%三氯乙酸溶液中，放在80℃恒温水浴中加热1小时。
酸水解旨在将脯氨酸从蛋白质中释放出来。
3. 将样品冷却后，在离心管中以8000rpm的速度进行离心5分钟。
4. 从上层液体中取出约1ml的提取液，放在烧杯中加入1.2ml的2M氢氯酸溶液，并在水浴中加热沸腾10分钟，旨在保持脯氨酸的游离态。
5. 再将烧杯中的液体冷却后，在其中加入1ml醋酸钠缓冲液和2滴酚酞指示液，并加入1ml 1M氢氧化钠溶液，旨在使酸碱度中和。
6. 最后，以0.1M硼酸溶液进行稀释，将反应液稀释至适宜的浓度，使用分光光度计测量脯氨酸的吸光度值，然后按一定的公式计算出样品中的脯氨酸浓度。
二、直接检测法材料准备：样品、4%硫酸溶液、10%二氧化硫溶液、巴氏试剂。
1. 取适量样品，磨碎成粉末，并称取约0.1g的样品加入10ml的4%硫酸溶液中，放在温度为80℃的恒温水浴中加热5分钟。
3. 从上层液体中取出约2ml的提取液，放在试管中，并加入10%二氧化硫溶液和巴氏试剂。
在这个过程中，二氧化硫旨在使脯氨酸分子与巴氏试剂分子结合，使过氧化氢水平升高。
4. 然后，将试管振荡混合，并用分光光度计测量波长为550nm处的吸光度值。
植物中脯氨酸含量的测定
植物中脯氨酸含量的测定
实用
报告人：xxxx
实验日期：xxxx
实验对象：植物
实验目的：测定植物中脯氨酸含量
实验原理：脯氨酸可以与一些金属离子形成配合物，其中最常用的是亚硝酸钠和硫酸铜。
经过数次浓缩和分离，可以把脯氨酸从植物样品中分离出来，经过量化定量，即可得出植物中脯氨酸含量的大致值。
实验材料：
1.植物样品；
2.0.5mol/L 亚硝酸钠溶液；
3.0.2mol/L 硫酸铜溶液；
4.0.1mol/L硝酸；
5.PH试纸；
6.10%氢氧化钠；
7.滴定管、滴定液；
8.表面活性剂；
9.滤纸；
10.滴管；
11.延时器；
12.烧杯；
13.蒸馏器。
实验步骤：
1．准备植物样品：将植物样品（经常常洗净）切成小块，重量约为1克，并加入少量PH试纸，确定其PH值；
2．溶解样品：将上述植物样品放入500ml烧杯中，加入少量表面活性剂，搅拌均匀，再加入50ml 0.1mol/L硝酸，搅拌均匀，并将溶液蒸发至约50ml，然后用10%氢氧化钠调节pH至12.0左右；
3．分离脯氨酸：将上述溶液加入50ml 0.5mol/L亚硝酸钠溶液中，搅拌均匀，将其分离出来；。
植物组织中脯氨酸含量的测定
植物组织中脯氨酸含量的测定XXX,YYY,ZZZ一实验目的1、了解植物组织在逆境中积累脯氨酸的意义。
2、掌握脯氨酸的测定方法。
二实验原理脯氨酸普遍存在于植物体中,正常的花粉中含量最多,可达干重的1~3%，而在不育的花粉中含量却很低。
因而有人把它作为花粉育性指标。
植物在遭受水分、盐分和温度等逆境胁迫时,体内脯氨酸含量可以增加几倍到几百倍，故可把它作为植物抗性的指标。
本法根据在酸性条件下，脯氨酸与茚三酮反应产生稳定的红色产物，此产物在515nm 波长有一最大吸收峰。
可用分光光度计测定。
而酸性和中性氨基酸不能与茚三酮反应形成红色产物,一些碱性氨基酸如Lys对测定有干扰，可以用人造沸石吸附除去这些氨基酸后再进行测定，该法有专一性。
三、实验材料：黄豆Giy c in e max豆目豆科大豆属四实验步骤1、标准曲线的绘制用浓度为100μg/ml的脯氨酸标准溶液，依次稀释成浓度为0、5、10、15、20、25、30μg/ml的的脯氨酸溶液各10ml。
分别取标准溶液2ml,加冰醋酸2ml,茚三酮试剂2ml,摇匀。
放入100℃水浴中显色15分钟,冷却后在515nm比色测定,以浓度0为空白对照,将测定结果以脯氯酸浓度为横坐标,以吸光度为纵坐标作标准曲线标准曲线：C（μg/ml）=47.8A515nm+0.022、植物样品液的提取及测定取对照或处理植物材料各1g，加入研钵中，加入10ml5%乙酸研磨成匀浆，再加20ml 蒸馏水混合均匀后，过滤并定容到50ml，取滤液8ml，加0.8g人造沸石振荡5分钟，将上层液离心(3000rpm)10分钟，上清液即样品提取液。
3、显色与比色取2ml样品提取液，加冰醋酸2ml，茚三酮试剂2ml，摇匀，放入100℃水浴中显色15分钟，冷却后在515nm比色测定，从标准曲线上查出对照和处理材料的提取液中的脯氨酸浓度。
（测定3次）另外取2ml蒸馏水做试剂空白，重复上述操作。
C（μg/ml）=47.8（A515nm–A0）+0.02五、计算：组织中脯氨酸含量（μg/g）=C*V其中：C：从标准曲线上查出的提取液中脯氨酸的浓度（μg/ml）；V：每克植物材料制备的脯氨酸提取液的体积（ml）。
脯氨酸含量的测定方法
植物体内游离脯氨酸含量的测定一、原理磺基水杨酸对脯氨酸有特定反应，当用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺基水杨酸溶液中。
然后用酸性茚三酮加热处理后，茚三酮与脯氨酸反应，生成稳定的红色化合物，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
在520nm波长下测定吸光度，即可从标准曲线上查出脯氨酸的含量。
二、仪器及试剂1. 仪器：分光光度计；电子分析天平；离心机；10ml+2ml离心管；恒温水浴锅；2 .试剂及配制：冰醋酸；甲苯。
2.5﹪酸性茚三酮溶液配制：将1.25g茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml 6mol·L －1磷酸(7ml磷酸+13ml蒸馏水)中，37度摇床摇动溶解，贮于4℃冰箱中。
3％磺基水杨酸配配制：3g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml。
1mg·ml-1脯氨酸标准母液配制三、实验步骤1. 脯氨酸标准曲线的制作1.1 取6支10ml离心管编号，按下表配制每管含量为0～25μg的脯氨酸标准液。
加入表中试剂后，标准曲线样品和待测样品一起置于沸水浴中加热60min （注意管盖需要压住，不然会爆开挥发液体），取出冷却，各试管再加入2ml 甲苯，振荡30秒钟，静置片刻，使色素全部转至甲苯溶液。
1.2 以甲苯溶液为空白对照，在520mm波长处测定吸光度（A）值。
1.3 标准曲线的绘制以1～5号管脯氨酸含量为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制标准曲线。
2. 样品的测定2.1 脯氨酸的提取液氮研磨样品材料，称取适当重量样品粉末（0.1-0.2g）于2ml离心管, 然后向各管分别加入1.5ml3％的磺基水杨酸溶液，振荡混匀。
（注意：样品一定要精确称量并记录）离心12000g，10min，上清液1ml移至新10ml离心管中。
2.2 测定加入1ml冰醋酸及1ml 2.5﹪酸性茚三酮试剂，在沸水浴中加热60min，溶液即呈红色。
冷却后加入2ml甲苯，摇荡30秒钟，静置片刻，用吸管轻轻吸取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，在520mm波长处测定吸光度（A）值。
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植物体内脯氨酸的含量测定
植物细胞膜起调节控制细胞内外物质交换的作用，它的选择透性是其最重要的功能之一。
当植物遭受逆境伤害时，细胞膜受到不同程度的破坏，膜的透性增加，选择透性丧失，细胞内部分电解质外渗。
膜结构破坏的程度与逆境的强度、持续的时间、作物品种的抗性等因素有关。
因此，质膜透性的测定常可作为逆境伤害的一个生理指标，广泛应用在植物抗性生理研究中。
当质膜的选择透性被破坏时细胞内电解质外渗，其中包括盐类、有机酸等，这些物质进入环境介质中，如果环境介质是蒸馏水，那么这些物质的外渗会使蒸馏水的导电性增加，表现在电导率的增加上。
植物受伤害愈严重，外渗的物质越多，介质导电性也就越强，测得的电导率就越高（不同抗性品种就会显示出抗性上的差异。
）
蛋白质水分子
疏水端脯氨酸亲水端
脯氨酸是水溶性最大的氨基酸，具有很强的水合能力，其水溶液具有很高的水势。
脯氨酸的疏水端可和蛋白质结合，亲水端可与水分子结合，蛋白质可借助脯氨酸束缚更多的水，从而防止渗透胁迫条件下蛋白质的脱水变性。
因此脯氨酸在植物的渗透调节中起重要作用，而且即使在含水量很低的细胞内，脯氨酸溶液仍能提供足够的自由水，以维持正常的生命活动。
正常情况下，植物体内脯氨酸含量并不高，但遭受水分、盐分等胁迫时体内的脯氨酸含量往往增加，它在一定程度上反映植物受环境水分和盐度胁迫的情况，以及植物对水分和盐分胁迫的忍耐及抵抗能力。
植物体内脯氨酸的含量可用酸性茚三酮法测定。
在酸性条件下，脯氨酸和茚三酮反应生成稳定的有色产物，该产物在520nm有一最大吸收峰，其色度与含量正相关，可用分光光度法测定。
该反应具有较强的专一性，酸性和中性氨基酸不能与酸性茚三酮试剂形成有色产物，碱性氨基酸对这一反应有干扰，但加入人造沸石（permutit ），在PH 1~7 范围内振荡溶液可除去这些干扰的氨基酸（如甘氨酸、谷氨酸、天冬氨酸、苯丙氨酸，精氨酸等 2 —氨基的氨基酸）。
[ 实验材料] 绿豆幼苗
[ 仪器设备] 分光光度计、水浴锅、天平、带塞试管、研钵、石英砂、漏斗、滤纸、玻棒、电导率仪、微波炉、移液管、试管、50mL 小烧杯等
【试剂药品】
1 ．无离子水
2 ．80% 乙醇。
3 ．酸性茚三酮试剂：称取2.5g 茚三酮，加入60mL 冰醋酸和40mL 6mol/L 磷酸，于70 ℃加热溶解，冷却后储于棕色试剂瓶中，
4 ℃保存，两天内稳定。
4 ．脯氨酸标准母液：称取10mg 脯氨酸溶于少量80% 乙醇中，再用蒸馏水定容至100mL, 成100μg/L 母液。
5 ．人造沸石、活性碳等。
【实验步骤】取绿豆种子，用水吸胀，萌动后加洗净的河沙覆盖，放在光照培养箱中培养（25 ℃，每天光照12h ），当苗高3~5cm 时，即可进行干旱胁迫处理。
•一盆浇充足水分作为对照，另一盆干旱处理24h 。
•肉眼观察伤害症状。
•取样和测定
测相对电导率：
每份取2g （地上部分），剪成小段（ 1.0cm 左右），置小烧杯中，用去离子水洗三次，沥干，准确加入20ml 去离子水，放置1h, 摇匀, 用DDS -11A 电导率仪测得的电导率为R 1 。
将材料于微波炉中煮沸，彻底破坏材料的膜结构，冷却至室温后，测电导率R 2 。
测脯氨酸含量：
1 ．脯氨酸标准曲线制作：吸取脯氨酸标准母液0, 0.5, 1.25, 2.5, 5.0, 7.5, 10.0, 15.0mL 分别放入8 个50mL 容量瓶中，分别加入蒸馏水定容至50mL ，配成0.0 ，1.0 ，2.5 ，5.0 ，10.0 ，15.0 ，20.0 ，30.0μg/mL 的系列溶液。
分别吸取上述各标准溶液2mL ，冰醋酸2mL ，茚三酮试剂2mL ，加入到10mL 带塞刻度试管中，塞上塞子，于沸水浴中加热15 分钟，用分光光度计测定520nm 的光密度值，以零浓度为空白对照。
将测定结果以脯氨酸浓度为横坐标，以光密度值为纵坐标制作标准曲线。
2. 测定样品的脯氨酸含量
（ 1 ）提取脯氨酸：分别称取胚轴，每种处理各取三份，每份0.3g 。
剪碎，加入适量80% 乙醇，少量石英砂，于研钵中研磨成匀浆。
匀浆液全部转移至25mL 刻度试管中，用80% 乙醇洗研钵，将洗液移入相应的刻度试管中，最后用80% 乙醇定容至刻度，混匀，80 ℃水浴中提取20 分钟。
(2 ）除去干扰的氨基酸：向提取液中加入约0.4g 的人造沸石和0.2g 活性碳，强烈振荡5 分钟，过滤，滤液备用。
（ 3 ）脯氨酸含量的测定：分别吸取上述提取液2mL 于刻度试管中，再取一支刻度试管，加入2mL 80% 乙醇作为参比，分别向上述各试管中加入2mL 冰醋酸和2mL 茚三酮试剂，沸水浴中加热15 分钟，冷却后在分光光度计测520nm 处各样品的光密度，从标准曲线上查出每毫升被测样品液中脯氨酸的含量。
【实验结果及计算】
用下列公式计算相对电导率，表示质膜相对透性：
相对电导率（% ）=R 1 /R 2 × 100%
样品中脯氨酸含量的计算:
脯氨酸含量(μg/g)=(c x v/a)/w 或
脯氨酸含量(%)=[(c*v)/a]/w*10 6 ×100
其中， C ：由标准曲线上查得的脯氨酸微克数；
v ：提取液总体积（mL ）
a ：测定液体积（mL ）
w ：样品重（g ）
注意事项：质膜相对透性的测定虽简单，但干扰因素多，测定时应注意以下问题：
•取材的一致性，代表性。
•器皿和用具要清洁。
•测试条件要一致，如测试温度等要一致。
•注意不同材料其适宜的浸泡时间均不相同。