动物实验大鼠解剖
解剖大鼠的实验报告
一、实验目的1. 掌握解剖学的基本方法与技能；2. 熟悉大鼠的解剖结构，了解其器官的形态和功能；3. 培养学生的观察能力和实验操作能力。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：成年雄性大鼠一只；2. 仪器：解剖盘、解剖剪、镊子、解剖刀、解剖针、解剖显微镜、解剖显微镜光源、解剖显微镜载物台、解剖显微镜镜头等；3. 药品：生理盐水、10%甲醛溶液、70%酒精、5%碘酊、5%氯化钠溶液等。
三、实验步骤1. 准备工作（1）将大鼠处死，解剖前应确保大鼠已死亡，以免造成实验者伤害。
（2）用生理盐水清洗大鼠体表，去除污物。
（3）将大鼠放在解剖盘上，用解剖剪沿背部正中线剪开皮肤，暴露肌肉和内脏。
2. 解剖顺序（1）从头至尾解剖：1）剪开颅骨，暴露大脑、小脑和脑干；2）剪开胸腔，暴露心脏、肺、气管、食管、胃、肝脏、脾脏、肾脏、肾上腺等器官；3）剪开腹腔，暴露小肠、大肠、胃、肝脏、脾脏、肾脏、肾上腺等器官；4）剪开盆腔，暴露生殖器官、膀胱、直肠等器官。
（2）器官解剖：1）大脑：观察大脑的形态、大小、重量，辨认大脑的各个叶和沟回；2）心脏：观察心脏的形态、大小、重量，辨认心脏的四个腔室；3）肺：观察肺的形态、大小、重量，辨认肺的叶和段；4）肝脏：观察肝脏的形态、大小、重量，辨认肝脏的叶和段；5）脾脏：观察脾脏的形态、大小、重量，辨认脾脏的叶和段；6）肾脏：观察肾脏的形态、大小、重量，辨认肾脏的皮质、髓质和肾盂；7）肾上腺：观察肾上腺的形态、大小、重量，辨认肾上腺的皮质和髓质；8）生殖器官：观察生殖器官的形态、大小、重量，辨认生殖器官的各个部分；9）膀胱：观察膀胱的形态、大小、重量，辨认膀胱的壁和腔；10）直肠：观察直肠的形态、大小、重量，辨认直肠的壁和腔。
3. 标本处理（1）将解剖好的器官用生理盐水清洗，去除血污和杂质；（2）将器官放入10%甲醛溶液中固定，浸泡24小时；（3）将固定好的器官取出，用70%酒精清洗，去除甲醛；（4）将清洗好的器官放入5%碘酊中染色，染色时间为30分钟；（5）将染色好的器官取出，用5%氯化钠溶液清洗，去除碘酊；（6）将清洗好的器官放入解剖显微镜下观察，拍照记录。
实验动物学实验报告大鼠,小鼠,小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作
实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄)三、实验步骤1、抓取与固定,标记2、去毛3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉6、处死:脊椎脱臼法7、解剖:雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)雌性:双角子宫、卵巢肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果1、抓取与固定标记:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。
并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml3、注射给药:腹腔注射:从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。
进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。
注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。
4、采血从眼角内侧0、5cm处进针眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。
5、麻醉:0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功6、处死:脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7、解剖:雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,甲状腺:紧贴环状软骨 ,另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
最新(大鼠)常用实验动物生物学特点及其在生物医学
10. 神经系统
大鼠的神经系统包括脑、脊髓、脑神经、 脊神经和内脏神经等。
11. 汗腺
大鼠皮肤缺少汗腺，汗腺仅分布于爪垫 上，主要通过尾巴散热。 12. 无扁桃体
初生仔鼠无毛、闭眼、耳孔闭合、6-7克
耳朵张开
开始长毛
被毛明显
8-10天下门齿长出
14-17天开眼
19天第一对臼齿长出
5.呼吸系统 左肺单叶，右肺分为上叶、中叶、下叶和后 叶4叶。
6.泌尿系统 大鼠有左、右肾，均呈蚕豆形，右肾比左肾高。
7.循环系统 心脏有4个腔， 心电图无S~T段（豚鼠以上较大动物有）
8.内分泌系统 甲状腺、肾上腺、脑垂体等内分泌器官比较独 立，容易摘除。
9.生殖系统 雌性大鼠为双子宫，呈“Y”型。雌鼠共有6 对乳腺 ，胸部和鼠蹊部各有3对。 雄性生殖器由睾丸、附睾、输精管、储精囊、凝 固腺、前列腺、尿道球腺和阴茎组成，阴茎有阴 茎软骨。凝固腺的分泌物在交配时可凝固于雌鼠 阴道和子宫内形成阴道栓，即在交配后10-12小 时阴道口有白色栓塞，这是受孕的标志。
7.营养、代谢性疾病研究
大鼠对营养物质缺乏敏感，可发生典型 缺乏症状，是营养学研究使用最多、最 早的实验动物。 维生素就是用大鼠研究而发现的。 常用于维生素或蛋白质缺乏及氨基酸和 钙、磷代谢的研究。
8.口腔医学研究
用变异链球菌接种于大鼠口腔，然后喂 给含蔗糖食物，大鼠牙齿上的珐琅质蛀 损似人的龋齿，可用来研究龋齿的防治 方法。
(大鼠)常用实验动物生物 学特点及其在生物医学
一、生物学特性和解剖生理学特点
（一）生物学特性 （二）解剖学特点
2.骨
由头骨、躯干骨和前后肢骨组成。
3.牙齿
齿式： ∣1.0.0.3 共有16个， ∣1.0.0.3
大鼠解剖方面的资料
1. 外观大鼠外观与小鼠相似,但个体较大。
一般成年大鼠体长不小于18-20cm。
尾上覆有短毛和环状角质鳞片，数量多于200片。
上下颌各有两个切齿和六个臼齿，共16颗牙齿。
齿式为（1003/1003）×2。
2. 大鼠骨骼约105-108块，大鼠的生长发育期长,长骨长期有骨骺存在，不骨化。
切齿终生不断生长，大鼠需不断啃咬磨牙以维持其长度恒定，故垫料中应有部分小木块供其啃咬。
3. 大鼠唾液腺包括腮腺、颌下腺和舌下腺。
分别位于下颌骨后缘至锁骨的腹外侧、下颌骨后缘和胸腔入口的腹侧、颌下腺口侧。
颈区肩胛部间沉积的脂肪组织呈腺体状，称为冬眠腺，在产热中起着重要作用。
4. 胃由前后两部分组成，前胃为无腺区，后胃为有腺区，前后两部分由一个界限嵴分开，食管通过界限嵴的一个褶进入胃小弯，此褶是大鼠不能呕吐的原因。
5. 肠道分为十二指肠、空肠、回肠、盲肠、结肠、直肠。
其中小肠最长，约114cm（102-126），盲肠较长，约6-8cm。
6. 肝脏呈紫红色，占体重的比例大，约为体重的1/25，由四叶组成（右侧叶、中叶、左叶和尾叶）。
肝脏的再生能力强,经部分肝切除术后仍可再生。
成年大鼠切除肝2/3，在一周内肝脏生长最快，三周内肝脏重量可恢复到接近正常。
大鼠无胆囊，各肝叶的胆管会合成胆总管，开口于十二指肠。
胰脏位于胃和十二指肠的弯曲处，呈淡粉色，形状不规则，似脂肪。
7. 心脏重量约占体重的1/30-1/20，由左心房、左心室、右心房、右心室组成。
左心室发出主动脉弓，由此分出无名动脉、左颈总动脉、左锁骨下动脉。
无名动脉又分出右颈总动脉和右锁骨下动脉。
主动脉弓到心脏背侧沿脊柱下行，形成背主动脉，背主动脉再分支到髂部和四肢。
8. 肺脏为海绵状，淡粉色,位于胸腔中部,分为左、右两部分。
左肺为一个大叶，右肺分为4叶（前叶、中叶、副叶、后叶）。
9. 肾脏呈暗红色、蚕豆状，位于腹腔背侧脊柱两侧。
每侧肾都和一条白色细长的输尿管相连，输尿管下接膀胱。
大鼠生物学特性和解剖生理特点
大鼠生物学特性和解剖生理特点1．大鼠性哺乳钢，啮齿目，鼠科，大鼠属动物。
2．繁殖快。
大鼠2月龄时性成熟，性周期4天左右，妊娠期20天（19～22天），哺乳期21天，每天产仔平均8只，为全年、多发情性动物。
3．喜啃咬、夜间活动、肉食，白天喜欢挤在一起休息，晚上活动大，吃食多，因此白天除实验必须抓取外，一般不要抓弄它。
食性广泛，喜吃各种煮熟的动物肉。
对光照较敏感。
4．性情较凶猛、抗病力强。
大鼠门齿较长，激恕、袭击抓捕时易咬手，尤其是哺乳期的母鼠更凶些，常会主动咬工作人员喂饲时伸入鼠笼的手。
对外环境适应性强，成年鼠很少患病。
一般情况下侵袭性不强，可在一笼内大批饲养，也不会咬人。
5．无胆囊：大鼠、鸽、鹿、马、驴、象等动物没有胆囊，它们的总胆肝管括约肌的阻力很少，肝分泌的胆汁通过总胆管进入十二指肠，受十二指肠端括约肌的控制。
6．不能呕吐：因此药理实验时应予注意。
7．垂体一肾上腺系统功能发达，应激反应灵敏。
行为表现多样，情绪敏感。
8．视觉、嗅觉较灵敏，做条件反射等实验反应良好，但对许多药物易产生耐药性。
9．大鼠血压和血管阻力对药物反应敏感，但对强心甙的作用较猫敏感性低671倍。
10．肝脏再生能力强，切除60～70%的肝叶仍有再生能力。
11．对营养、维生素、氨基酸缺乏敏感，可发生典型的缺乏症状。
体内可以合成维生素Ｃ。
12．对炎症反应灵敏。
它的眼角膜无血管。
13．生长发育期长，长骨长期有骨骺线存在，不骨化。
14．成年雌鼠在动情周期不同阶段，阴道粘膜可发生典型变化，采用阴道涂片法（Yaginal Smear Test）来观察性周期中阴道上皮细胞的变化，可推知性周期各个时期中卵巢、子宫状态与垂体激素的变动。
15．大鼠（包括小鼠）心电图中没有S-T段，甚至有的导联也不见T波，如有T波也是与S波紧挨着，或在R波降支上即开始，以致看不到等电线的S-T段。
但心电图其他成分稳定，重复性好。
豚鼠以上较大的动物均有明显的S-T段，在选择动物品种时应以注意。
大老鼠解剖实验报告
大老鼠解剖实验报告引言解剖实验是生物学实验中的重要一环，通过解剖动物可以深入了解其内部器官的组织结构和功能。
本次实验旨在通过解剖大老鼠，观察和探索其特征解剖结构，进一步了解大老鼠的生物学特性。
实验材料与方法材料- 大老鼠- 刀具- 实验台方法1. 将大老鼠放置在实验台上，保持其身体放松。
2. 用刀具小心地剪开大老鼠的皮肤，从胸部开始向腹部剖开。
3. 慢慢解剖并移除腹肌，保留器官的完整性。
4. 依次观察并记录大老鼠的器官，包括心脏、肺、肝脏、胃、肾脏等。
实验结果1. 心脏：大老鼠的心脏位于胸腔的前部，包裹在围绕心脏的透明薄膜中，被肺脏所遮盖。
心脏分为心房和心室，具有明显的血管与动脉。
2. 肺：大老鼠的肺部位于心脏的两侧，呈粉红色。
通过观察可以看到肺组织细密且有弹性，能够进行有效的气体交换。
3. 肝脏：大老鼠的肝脏位于腹腔的上部，呈褐色。
肝脏是人和动物体内最重要的器官之一，具有解毒、代谢和贮存营养物质等多种功能。
4. 胃：大老鼠的胃位于肝脏下方，通过食道与口腔相连。
胃可以分为贲门、体部和幽门三个区域，用于食物的储存和初步消化。
5. 肾脏：大老鼠的肾脏位于胸腔和腹腔的后部，颜色深红。
肾脏是身体的排泄器官，通过滤波、重吸收和分泌等过程维持体内水和电解质的平衡。
结论通过本次解剖实验，我们对大老鼠的内部器官有了更加直观的了解。
大老鼠的心脏、肺、肝脏、胃以及肾脏等器官在结构和功能上有着与人类相似的特点，但也存在一些差异。
通过观察和学习大老鼠的解剖结构，可以为进一步研究大老鼠的生态学、行为学和疾病模型提供基础。
参考文献（此处列出使用到的参考文献）致谢（此处致谢实验中的指导教师和实验室成员等）。
大鼠灌注固定取脑解剖取材
4.灌注多长时间？灌注液多少？
• 每个人的灌注液用量都不一样，灌注速度 也能没有很清楚的说法，灌注时间也不确 定。主要还是看灌注成功的标志。现将看 到的比较详细的处理方法列出。灌注速度， 大家比较公认的是先快后慢。
• 短期灌注：采用心脏穿刺快速灌注20 min,其中生理盐水灌注50~ 100mL,4 %多聚甲醛缓冲液灌注150 mL。
• 下面是夹闭腹主动脉: • 每只大鼠先快速推注生理盐水50 ml冲洗,继而灌注固定液(如4%
多聚甲醛等)50~80 ml,先快后慢,需10~15 min,在灌注固定液过程 中,颈部逐渐变硬;灌注结束后,开颅取出脑组织,置于固定液中后 固定24 h
5.体循环与肺循环的鉴别
• 体循环时大鼠肝脏变白现象出现较早,在灌 注多聚甲醛后,四肢会出现明显的抽搐现象, 尾巴和四肢明显僵硬。若灌流针误插入右 心室,会导致灌流液沿肺循环途径灌流,这时 肝脏变白出现的较慢,四肢的抽搐现象没有 体循环明显,且鼻腔中有时会有灌流液流出。 因肺循环会影响组织器官的灌流效果,因此 进针时要准确,避免肺循环的发生。一旦出 现肺循环指征,应及时调整进针角度。
• 尤其是要做电镜时更明显。有的标记蛋白 要求较高，固定不好就难以染好。
3.用4%多聚甲醛固定但保存了2周才做石蜡切 片，对免疫组化有无影响？
固定时间过长蛋白多肽链都交连在一起了,抗原性就 很弱了，很可能没有阳性结果,抗原修复时一般的修复很 难把抗原性恢复. 可能会有影响，但不会太大。固定时间 长，抗原修复时间也要长一些。
从小脑处将脑组织向上推起，用小 剪刀剪断脑神经
注意事项 • 1.多聚甲醛气味刺激，配置时做好自我保护。 • 2.暴露心脏这一步骤，容易损伤肺、心脏或者肝脏，“夹持剑
突并向上提拉，用弯剪在膈肌与胸骨柄相连处剪一小口，造成 人工气胸”，人工气胸后，肺萎缩，胸腔里的空间增大，提拉 剑突后，不容易损伤肺、心及肝脏，出血少。
大鼠膝关节结构-概述说明以及解释
大鼠膝关节结构-概述说明以及解释1.引言1.1 概述大鼠是一种常见的实验动物，在医学研究中具有广泛的应用价值。
膝关节作为大鼠身体重要的关节之一，在动物模型研究中也扮演着重要的角色。
了解大鼠膝关节的结构和功能特点，对于深入研究相关疾病的发生机制和治疗方法具有重要的意义。
本文将从大鼠膝关节的解剖结构、功能特点以及相关疾病与治疗等方面进行探讨，旨在为读者提供一份全面且系统的了解大鼠膝关节的基础知识，为未来的研究和应用奠定基础。
1.2 文章结构文章结构部分将主要介绍本文的组织形式和内容安排。
本文将首先介绍大鼠膝关节的解剖结构，包括关节的各组成部分和其功能。
随后将探讨大鼠膝关节的功能特点，包括其在生理活动中的作用和特殊性。
最后，将介绍大鼠膝关节可能出现的疾病，以及常见的治疗方法。
通过这些内容的阐述，读者将对大鼠膝关节的结构、功能和疾病有一个全面的了解。
1.3 目的本文旨在深入探讨大鼠膝关节的结构和功能特点，探讨大鼠膝关节常见疾病及治疗方法，旨在为读者提供全面了解大鼠膝关节的知识。
通过对大鼠膝关节的解剖学结构和生理功能的详细介绍，有助于研究人员更好地了解大鼠的生物学特征和行为习性，为相关研究提供参考和借鉴。
同时，深入了解大鼠膝关节的疾病和治疗方法，有助于提高大鼠的健康水平，为大鼠模型的研究和应用提供支持和指导。
希望本文能够为读者提供有益的知识和启发，引起对大鼠膝关节及相关领域的更多关注和研究。
2.正文2.1 大鼠膝关节解剖结构大鼠膝关节是由多个骨骼、软骨、肌肉、韧带和滑囊等组成的复杂结构。
在解剖上，大鼠膝关节由股骨、胫骨和髌骨组成。
股骨上端的半月板与髌骨下端相互配合，形成能够顺畅运动的关节面。
胫骨上端与股骨形成髌股骨关节，髌骨通过髌韧带与胫骨连接，起到增加稳定性的作用。
在大鼠膝关节中，韧带的作用尤为重要。
关节囊内有前、后交叉韧带，它们起到维持骨头位置、稳定关节和限制关节活动范围的作用。
此外，滑囊的存在也对膝关节的正常功能发挥起到重要作用，它在关节内活动时起到减少摩擦和吸收冲击的作用。
大鼠解剖实验报告
一、实验目的1. 掌握大鼠的解剖结构。
2. 了解大鼠各器官的形态、位置和功能。
3. 培养实验操作技能，提高对实验动物解剖的熟练程度。
二、实验材料1. 大鼠1只（成年雄性）2. 解剖刀、解剖剪、镊子、解剖盘、解剖图谱、解剖记录表三、实验步骤1. 麻醉与固定- 将大鼠用乙醚麻醉，待其呼吸平稳后固定于解剖盘上。
2. 皮肤切开- 从大鼠的颈部开始，沿腹中线切开皮肤，直达耻骨联合处。
3. 腹腔暴露- 用解剖剪剪开腹壁肌肉，暴露腹腔。
4. 内脏观察- 观察腹腔内的主要器官，包括肝脏、胃、脾、肾脏、大肠、小肠、膀胱等。
- 逐一分离并观察各器官的形态、位置和功能。
5. 胸腔暴露- 在大鼠的颈部，沿胸骨中线切开皮肤，暴露胸腔。
- 观察胸腔内的主要器官，包括心脏、肺、食管、气管等。
6. 神经系统观察- 在大鼠的颈部，沿颈椎中线切开皮肤，暴露颈椎和脊髓。
- 观察脊髓的形态、位置和功能。
7. 肌肉系统观察- 观察大鼠的肌肉系统，包括头颈肌、躯干肌、四肢肌等。
8. 骨骼系统观察- 观察大鼠的骨骼系统，包括颅骨、脊柱、肋骨、四肢骨等。
9. 生殖系统观察- 观察大鼠的生殖系统，包括睾丸、附睾、前列腺、卵巢、输卵管等。
10. 结扎血管- 在观察完各器官后，用线结扎大鼠的颈动脉和颈静脉，使血液回流至心脏。
11. 心脏采血- 用注射器抽取大鼠心脏血液，进行相关实验。
12. 解剖结束- 解剖结束后，将大鼠解剖部位依次缝合，并清理实验场地。
四、实验结果1. 腹腔器官- 肝脏：呈红褐色，位于腹腔右上角，具有分泌胆汁、代谢等功能。
- 胃：位于腹腔左上方，分为贲门、胃底、胃体和幽门。
- 脾：呈暗红色，位于腹腔左上方，具有过滤血液、产生白细胞等功能。
- 肾脏：呈红褐色，位于腹腔左右两侧，具有排泄废物、调节水电解质平衡等功能。
- 大肠：位于腹腔下方，分为盲肠、结肠、直肠等部分，具有吸收水分、形成粪便等功能。
- 小肠：位于腹腔中部，分为十二指肠、空肠、回肠等部分，具有消化、吸收营养物质等功能。
实验动物学实验报告(大鼠,小鼠),小鼠的基本实验操作,大鼠的基本实验操作
实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血（眶后静脉丛，摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。
二、实验动物：昆明小鼠2只（1雌1雄)三、实验步骤1、抓取和固定,标记2、去毛3、给药：消化道、腹腔注射、尾静脉注射4、取血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉6、处死:脊椎脱臼法7、解剖：雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺（在膀胱下方，胶质状，透明）雌性:双角子宫、卵巢肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺四、实验结果1、抓取和固定标记：抓取：抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面.并标记：2、灌胃法：左手抓取小鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，进针2/3后灌生理盐水0.5ml3、注射给药：腹腔注射：从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°.进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可注射药物尾静脉注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0.5ml生理盐水。
注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血.4、采血从眼角内侧0。
5cm处进针眼球摘除法：左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除，头朝下，眼眶内血迅速流出。
5、麻醉:0.5％氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重22g，按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功6、处死:脊椎脱臼法：按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死7、解剖：雄性：寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺雌性：双角子宫、卵巢 3。
7.2 肾上腺：米粒大小胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状 3。
7。
4 ，胆囊：芝麻大小，浅绿色,半透明,甲状腺：紧贴环状软骨，另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。
大鼠内耳的解剖结构与内耳膜迷路获取技术
大鼠内耳的解剖结构与内耳膜迷路获取技术掌握内耳膜迷路取材技术，是开展内耳病理学研究和组织化学研究以及分子生物学研究的必备手段，以下是搜集的一篇探究大鼠内耳解剖结构的，欢迎阅读查看。
大鼠作为动物模型，被广泛地应用于内耳研究中，包括化学制剂和重金属的耳毒性研究，噪声、冲击波的损害性试验，以及各种原因所致听力损失的治疗研究等。
尽管各种实验的内容和目的不同，但都不可避免地需要观察和评估大鼠内耳的病理改变或者需要取出内耳膜迷路结合分子生物学检查方法评判某些特定基因或特殊蛋白质的变化。
因此，了解大鼠内耳结构、掌握大鼠内耳膜迷路取材技术是开展内耳研究的最基本训练科目之一。
本文重点介绍大鼠内耳的解剖结构及大鼠内耳膜迷路取材技术，以期与同道交流，并为初学者提供参考经验。
大鼠内耳位于颞骨内，其骨性外壳被称为骨迷路(BonyLabyrinth)(图1A)，内部包裹与骨迷路形状相似的悬浮于外淋巴液中的膜迷路(MembranousLaby?rinth)(图1B)。
内耳可分为前部的耳蜗(Cochlea)和后部的前庭(Vestibule)两部分。
1.1耳蜗大鼠骨性耳蜗是一个中空盘旋2.2周的螺旋形骨管，其中心的蜗轴(modiolus)在大鼠正常头位时指向前下方。
为描述方便，我们暂且规定蜗尖朝上。
蜗轴上呈螺旋状发出的骨性螺旋板(osseousspirallami?na)自蜗底向顶部盘旋，向外与耳蜗基底膜(basilarmembrane)相接。
在骨性螺旋板下方的蜗轴内部有一个类似螺旋式盘旋的骨管，称为蜗轴螺旋管(Rothenthal'sCanal)，其内为螺旋神经节(spiralgan?glion)，包括神经元(SpiralGanglionNeurons,SGNs)、胶质细胞、耳蜗传入和传出神经纤维等(图1C)。
SGNs可分为Ⅰ型和Ⅱ型。
其中Ⅰ型SGNs约占传入神经元总数的90-95%,Ⅱ型SGNs约占传入神经元总数的5-10%[1,2].两类传入神经纤维和传出神经纤维仅在穿出疆孔之前有施万细胞包裹，进入基底膜耳蜗螺旋器(Cortiorgan)的传入和传出神经纤维均裸露不再有髓鞘包裹。
大鼠骨骼解剖实验报告
实验题目：大鼠骨骼解剖实验实验日期：2023年X月X日一、实验目的和要求1. 熟悉大鼠骨骼系统的组成和结构。
2. 掌握大鼠骨骼的解剖方法和步骤。
3. 了解大鼠骨骼的形态、功能和相互关系。
4. 培养实验操作技能和观察分析能力。
二、实验材料和用具1. 实验大鼠（白化品系，雄性，约6个月龄）1只。
2. 解剖器械：解剖剪、解剖镊、解剖刀、解剖针、解剖盘等。
3. 实验用品：生理盐水、消毒液、棉签、纱布等。
4. 实验记录表格。
三、实验内容1. 实验前准备- 将实验大鼠置于解剖盘中，用棉签蘸取消毒液对大鼠进行全身消毒。
- 在大鼠背部进行编号，以便后续记录。
2. 大鼠骨骼解剖- 头部解剖：沿大鼠背部中线切开皮肤，暴露头骨。
用解剖剪剪开颅骨，观察大脑、颅神经、血管等结构。
- 躯干解剖：沿大鼠背部中线切开皮肤，暴露脊柱、胸骨、肋骨等。
观察脊柱的弯曲形态，胸骨和肋骨的连接方式。
- 四肢解剖：将大鼠四肢分别进行解剖。
观察四肢骨骼的形态、位置和相互关系，如肱骨、桡骨、尺骨、股骨、胫骨、腓骨等。
- 骨盆解剖：沿大鼠腹部中线切开皮肤，暴露骨盆。
观察骨盆的形态、大小和骨盆内的器官。
3. 骨骼肌解剖- 在大鼠背部和四肢分别进行骨骼肌解剖。
观察骨骼肌的附着点、形态和分布，如背阔肌、股四头肌、肱二头肌等。
四、观察步骤1. 观察头部骨骼：观察颅骨的形状、大小、厚度，颅神经和血管的走向。
2. 观察躯干骨骼：观察脊柱的弯曲形态、胸骨和肋骨的连接方式，脊柱的椎骨形态和大小。
3. 观察四肢骨骼：观察四肢骨骼的形态、位置和相互关系，如肱骨、桡骨、尺骨、股骨、胫骨、腓骨等。
4. 观察骨盆骨骼：观察骨盆的形态、大小和骨盆内的器官。
5. 观察骨骼肌：观察骨骼肌的附着点、形态和分布。
五、实验结果1. 大鼠颅骨为扁圆形，厚度适中，颅神经和血管走向清晰。
2. 躯干骨骼包括脊柱、胸骨、肋骨等，脊柱呈"S"形弯曲，胸骨和肋骨连接紧密。
3. 四肢骨骼包括肱骨、桡骨、尺骨、股骨、胫骨、腓骨等，骨骼形态规则，位置明确。
大鼠解刨实验报告
一、实验目的1. 掌握大鼠解剖的基本方法和步骤；2. 了解大鼠的内部器官结构和功能；3. 提高动物实验操作技能。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：健康大鼠1只；2. 仪器：解剖剪、解剖刀、解剖镊、解剖盘、解剖针、解剖镜、注射器、生理盐水、酒精、碘伏、消毒棉球等；3. 器官：心脏、肝脏、脾脏、肾脏、肺脏、胃、小肠、大肠、胰腺、卵巢（雄性大鼠为睾丸）、神经系统等。
三、实验步骤1. 解剖准备（1）将大鼠固定在解剖盘上，确保大鼠头部朝向实验者；（2）用酒精棉球对大鼠体表进行消毒，然后用碘伏消毒棉球对解剖部位进行消毒；（3）在鼠的颈部做一纵向切口，剪断皮肤、肌肉、筋膜，暴露颈部血管；（4）用解剖剪剪断气管，使大鼠呼吸停止。
2. 解剖过程（1）心脏：剪开胸腔，暴露心脏，观察心脏的结构，记录心脏的形状、大小、颜色等；（2）肝脏：将肝脏从腹腔中取出，观察肝脏的形状、大小、颜色等；（3）脾脏：将脾脏从腹腔中取出，观察脾脏的形状、大小、颜色等；（4）肾脏：将肾脏从腹腔中取出，观察肾脏的形状、大小、颜色等；（5）肺脏：将肺脏从胸腔中取出，观察肺脏的形状、大小、颜色等；（6）胃：将胃从腹腔中取出，观察胃的形状、大小、颜色等；（7）小肠：将小肠从腹腔中取出，观察小肠的形状、大小、颜色等；（8）大肠：将大肠从腹腔中取出，观察大肠的形状、大小、颜色等；（9）胰腺：将胰腺从腹腔中取出，观察胰腺的形状、大小、颜色等；（10）卵巢（或睾丸）：将卵巢（或睾丸）从腹腔中取出，观察卵巢（或睾丸）的形状、大小、颜色等；（11）神经系统：将神经系统从头部取出，观察脑、脊髓、神经等结构。
3. 实验结束（1）将解剖过的器官进行分类整理，以便后续观察和实验；（2）对解剖部位进行消毒，防止感染；（3）将解剖器材清洗干净，归位。
四、实验结果与分析1. 心脏：大鼠心脏呈圆锥形，颜色鲜红，心房和心室明显，瓣膜完整；2. 肝脏：大鼠肝脏呈红褐色，质地柔软，表面光滑；3. 脾脏：大鼠脾脏呈暗红色，质地柔软，表面光滑；4. 肾脏：大鼠肾脏呈红褐色，质地坚硬，表面光滑；5. 肺脏：大鼠肺脏呈粉红色，质地柔软，表面有肺泡；6. 胃：大鼠胃呈灰白色，质地柔软，表面有皱褶；7. 小肠：大鼠小肠呈淡红色，质地柔软，表面有皱褶；8. 大肠：大鼠大肠呈暗红色，质地柔软，表面有皱褶；9. 胰腺：大鼠胰腺呈粉红色，质地柔软，表面有腺泡；10. 卵巢（或睾丸）：大鼠卵巢（或睾丸）呈粉红色，质地柔软，表面有卵泡（或精子）。
大鼠解剖的实验报告
大鼠解剖的实验报告大鼠解剖的实验报告一、引言大鼠（Rattus norvegicus）是一种常见的实验动物，在生物学研究中具有重要的地位。
解剖大鼠可以帮助我们深入了解其解剖结构和生理功能，为进一步的实验研究提供基础数据。
本实验旨在通过解剖大鼠，了解其主要器官和组织的构造。
二、材料与方法1. 实验材料：已处死的大鼠、解剖工具（手术刀、镊子、剪刀等）。
2. 实验方法：a. 将大鼠放置在解剖台上，保持其背部向上。
b. 用手术刀从胸部切口开始，沿着腹部中线向下切开皮肤和腹膜。
c. 将腹膜小心地剪开，暴露腹腔内的器官。
d. 依次解剖心脏、肺、肝脏、胃、肾脏等主要器官，并观察其结构和位置。
e. 完成解剖后，清理工作台，将大鼠遗体妥善处理。
三、结果与讨论1. 心脏：大鼠心脏位于胸腔中，呈锥形。
心脏主要由心房和心室组成，其中心室较为粗壮。
心脏的主要功能是泵血，将氧和营养物质输送到全身各个组织和器官。
2. 肺：大鼠的肺位于胸腔中，左右各一。
肺的主要功能是进行气体交换，吸入氧气，排出二氧化碳。
肺组织松软，呈粉红色。
3. 肝脏：大鼠的肝脏位于腹腔中，呈红褐色。
肝脏是人体最大的内脏器官，具有多种重要功能，如合成胆汁、代谢物质、解毒等。
肝脏表面有许多小叶，内部有肝细胞和血管组织。
4. 胃：大鼠的胃位于腹腔中，位于肝脏下方。
胃是消化系统的一部分，主要用于储存和消化食物。
胃壁具有多层结构，内部有褶皱和腺体。
5. 肾脏：大鼠的肾脏位于腹腔中，左右各一。
肾脏是排泄系统的重要器官，主要负责排除体内废物和调节体内水平衡。
肾脏由肾单位组成，包括肾小球、肾小管等结构。
通过解剖大鼠，我们可以清晰地观察到这些器官的结构和位置，进一步了解其功能和相互关系。
大鼠作为实验动物，其解剖结构与人类相似，因此可以作为研究人类生理和疾病的模型。
通过对大鼠解剖的研究，我们可以更好地理解人体解剖学的基本原理。
此外，大鼠解剖还可以帮助我们学习解剖学的基本技能和操作方法。
大鼠灌注固定取脑,解剖取材
主讲：陈爽 2017.9.12
用途
1.用于常规HE染色，免疫组化分析。 2.冰冻切片可以不做脑组织固定。
3.不可用于western blot和PCR。
4.如果观察脑组织的缺血、损伤或其它病变时，不作灌注 固定，而是在取出脑组织后作固定，将大大影响效果。
原理 心脏灌流术能够快速冲净血液并在动物 死 亡前进行组织的前固定,避免了组织的自 溶 现象,是脑组织切片观察的常用方法。多 聚 甲醛使组织蛋白发生交联，以保持蛋白 的 原位和表面结构不变，从而能使其对应 的抗体，准确检测其表达的位置和量。
固定时间过长蛋白多肽链都交连在一起了,抗原性就 很弱了，很可能没有阳性结果,抗原修复时一般的修复很 难把抗原性恢复. 可能会有影响，但不会太大。固定时间 长，抗原修复时间也要长一些。
4.灌注多长时间？灌注液多少？
• 每个人的灌注液用量都不一样，灌注速度 也能没有很清楚的说法，灌注时间也不确 定。主要还是看灌注成功的标志。现将看 到的比较详细的处理方法列出。灌注速度， 大家比较公认的是先快后慢。
• 短期灌注：采用心脏穿刺快速灌注20 min,其中生理盐水灌注50~ 100mL,4 %多聚甲醛缓冲液灌注150 mL。
• 长期灌注：灌注时间延长到1 h,其中生理盐水灌注200mL,4 %多 聚甲醛缓冲液灌注400 mL。
• 短期灌注组脑组织结构保留基本良好,与长期灌注组相比稍差,研 究皮层和海马结构损伤基本可以满足;长期灌注组结构保留最好, 但是耗时长、固定液用量大,致使试验进度慢等缺点不容忽视。, 对皮层和海马缺血再灌注损伤研究选择短期灌注取脑尚可满足 需要,深部脑白质及核团缺血再灌注损伤研究还是要用长期灌注 固定取脑法,或者在取脑后立即根据实验取材要求将脑切成块再 浸泡入固定液充分固定。 • 下面是夹闭腹主动脉: • 每只大鼠先快速推注生理盐水50 ml冲洗,继而灌注固定液(如4% 多聚甲醛等)50~80 ml,先快后慢,需10~15 min,在灌注固定液过程 中,颈部逐渐变硬;灌注结束后,开颅取出脑组织,置于固定液中后 固定24 h
实验三 实验动物的大体解剖和主要脏器腺体识别
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7.脏器称重
内脏重量和体重之比（某个脏器湿重与单位体重 的比值，常以每100g体重计）称脏器指数，脏器 指数常能反映实验动物总的营养状态和内脏的病 变情况，不同龄期动物的脏器指数有一定的规律， 如接触处由物质使某个脏器受到损害，脏器指数 将发生变化。常用实验动物脏器包括肝、脾、肾、 心、肺、脑、甲状腺、肾上腺、脑垂体、眼球、 睾丸、胰、胸腺。
抽腹水时注意不可速度太快，腹水多时不要一 次大量抽出，以免因腹压突然下降导致动物出现循 环功能障碍等问题。
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五、唾液的采集
1. 直接抽吸法
在急性实验中，可用吸管直接插入动物口腔或 唾液腺导管抽吸唾液。此法非常简单，但从口腔抽 吸唾液会有杂质混入。
2. 制备腮腺瘘法
在慢性实验中，收集狗的唾液，要用外科手术 方法将腮腺导管开口移向体外，即以腮腺导管开口 为中心，切成一直径约2~3cm的圆形粘膜片，将 此粘膜片与周围组织分开，穿过皮肤切口引到颊外， 将带有导管开口的粘膜片与周围的皮肤缝合，腮腺 分泌的唾液就流出颊外。这种方法可以收集到比较 纯净的唾液。
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4. 压迫膀胱采集尿液
实验人员用手在实验动物下腹部加压，手法 既轻柔又有力。当增加的压力使实验动物膀胱括 约肌松弛时，尿液会自动流出，即行收集。
5. 穿刺膀胱采集尿液
实验动物麻醉固定后，剪去下腹部耻骨联合之 上，腹正中线两侧的被毛，消毒后用注射针头接 注射器穿刺。取直角进针，针头穿过皮肤后稍微 改变角度，以避免穿刺后漏尿，然后刺向膀胱方 向，边缓慢进针边回抽直到抽到尿液为止。
在慢性实验中，收集胃液多用胃瘘法，如全胃 瘘法、巴氏小胃瘘法、海氏小胃瘘法等。制备小胃 是将动物的胃分离出一小部分，缝合起来形成小胃， 主胃与小胃互不相通，主胃进行正常消化，从小胃 可收集到纯净的胃液。应用该法，可以待动物恢复 健康后，在动物清醒状态下反复采集胃液。
大小鼠解剖生理特点
妊娠（天） 16 20 21 31 63 63 68
致畸敏感期（妊娠天数） 4～14 5～15 6～15 6～18 5～12 8～28 11～20
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Ⅲ. 生理学特点
• 2. 生殖生理 （1）性成熟早，繁殖力强，生命周期短
– 小鼠雌性35-50日龄,雄性45-60日龄即可性成熟；雌性65-75日龄,雄 性70-80日龄可达体成熟,可交配。大鼠雌性70-75日龄,雄性45-60日 龄即可性成熟；90日龄可达体成熟,可交配。
• 繁殖力和抗病力低下
– 维生素,尤其是VA, VE, VK,核黄素和硫胺素缺乏
• 引起不育、皮肤病及出血
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Table 5.1 Biologic and reproductive data for mice
Adult body weight: Male
20-40 g
Female
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• 发情期确定：灭菌盐水灌洗阴道，甲基蓝染色可 显示角化表皮细胞。
• 可判断动物排卵日期，明确胚胎妊娠日期。
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角质化细胞：动情期； 粘液：动情间期； 核20上21/1皮/12 细胞：动情前期； 核细胞与白细胞： 动情后2期5
（2）单配或多配系统 （3）交配可通过雌性阴栓来确定
– 19对常染色体, 1对XY性染色体
• 大鼠的染色体数目为 21对.
– 20 对常染色体, 1对XY性染色体
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Ⅱ. 行为学特点
• 1. 群居动物，信息素传递机制
– 适于小群，单笼饲养体重下降,子代日增重降低