微生物标本采集大全
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。
为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集1、采集方法(1)75%酒精清洁局部皮肤。
(2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm(直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
(3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。
(4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项(1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。
(2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
(3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。
(4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。
(5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
(6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。
(7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。
(8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。
二、骨髓的采集1、采集方法在病灶部位或髂前(后)上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml,注入血培养瓶内。
2、注意事项(1)骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞,因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。
临床微生物标本采集方法
一、采样前准备
1、当日术毕,按常规对手术间所有物表 及地面进行湿式清洁和擦拭。
2、检查净化空调系统运作是否正常,当 日完成手术间清洁后,调节空调系统处 于待机状态,次晨打开系统运行30min。 自净后采样。
二、采用平板沉降法 1、采样时间: 在净化空调开启30min进行采样,采样时洁净 手术室大门应保持关闭,以维持手术室正压 状态和洁净度。 2、采样护士准备: 在采样前应洗手(或手消毒)
采样时平板应从科室最靠内的房间放置, 依次向外布放,每个手术间也是从最靠 里的位置放置平板,最后放置最靠门的 采样点。采样点分布均匀,收取平板顺 序相反。
5、布点要求: 百级手术间,手术区(手术台两侧0.9m以内,两 端0.4m内)呈对角线,东南西北中5点,周边区 (距墙1m,每边2个)8点,共需13个培养皿;千 级手术间,手术区(手术台两侧0.6m以内,两端 0.4m以内)呈单角线3点,周边区(距1机,长边 2个,短边1个)6点,共需9个培养皿;万级手术 间:手术区(手术台4边,0.4m以内)呈对角线3点, 周边区(距离1m每边1个)4点,共需7个培养皿。 检测时可做一次空白对照和模拟操作。模拟操作 将一个对照皿打开后立即封盖,两个对照结果必 须为阴性,整个操作过程应符合无菌要求。
将用于革兰染色的标本置于无菌标本杯中
将用于培养的标本置于需氧运送培养基中, 密闭保存
分别标注患者及标本信息,30min内送检,否则置4℃冰 箱冷藏,24h内送检
四、使用中紫外线灯辐照度值测定法
方法:紫外线强度照射指示卡测定法
物品准备:标尺、紫外线强度照射指示卡
放好标尺,开启紫外线灯
开启紫外线灯5min后,将指示卡置于紫外线灯下垂直距离1m处, 有图案一面朝上
临床微生物标本采集方法
常见微生物标本的采集
常见微生物标本的采集、处理与检测标本采集的基本原则:尽早采集、根据可疑的病原体,选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。
容器应密封不易碎,标本不得污染容器的口和外壁。
1.血液标本正常人的血液是无菌的。
当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。
一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集;持续性菌血症可随时采集;间歇性菌血症,应预测其体温上升期进行采血。
一般在使用抗生素前采集2~3次;多部位采集,如两侧肘静脉或动、静脉同时采取;对于已使用抗生素而无法停止的患者,也应在下次用药前采取。
在感染局部的附近血管中采血,可提高阳性率。
采血量成人一般5~10ml,婴幼儿1~2ml。
采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养,培养基和血液标本量的比例应>10:1,将血液中的各类杀(抑)菌物质充分稀释。
需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等,常加入对氨基苯甲酸(PABA)50μg/ml中和磺胺类,青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类,硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。
加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠(sodium polyanethol sulfonate, SPS)可抑制血清中的抗菌物质,并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。
并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。
培养瓶每天观察一次。
如发现①培养瓶内液体浑浊;②血球层上面出现颗粒状的生长物,并且有自下而上的溶血;③有明显的凝块;④液体表面有菌膜,培养液清晰或浑浊等,表明有细菌生长。
直接进行涂片染色初步报告。
同时分别接种血平板、巧克力(色)平板,普通培养和5%CO2 35℃培养。
也可直接进行体外药敏试验。
无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d,接种血平板、巧克力(色)平板,分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。
为了提高检出的速度,在培养的第2~3d时应移种一次。
有厌氧菌感染时,同时注入需氧瓶和厌氧瓶,厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等;培养液中有刃天青,无氧时无色,有氧时呈红色。
临床微生物学检验的标本采集
临床微生物学检验的标本采集一、血液和骨髓细菌学检验标本的采集(一)适应症菌血症、败血症和感染性骨髓炎等感染菌的培养鉴定和药物敏感试验。
(二)病人准备1.凡怀疑菌血症和败血症的患者,采血培养时,应尽量在未使用抗菌素前采血,如已使用过抗菌素,应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血,或在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。
2.应在病人发热期或寒颤时采集(三)标本采集1.血培养瓶领取:凭医嘱和检验申请单到检验科细菌室领取。
按照实际情况选择相应类型的血培养瓶:如灰色瓶盖为普通成人培养瓶;粉红色盖为儿童需氧菌培养瓶;紫色盖为厌氧菌培养瓶。
2.将患者信息录入相应的血培养瓶条码中,并在作好病人姓名、科别、床号等标识。
2.采集方法:严格消毒病人采血部位和血培养瓶口,抽一定量血液或骨髓后,无菌注入血培养瓶内,轻轻摇匀。
3.标本量:成人每次采血5~10ml,小儿采血3~5ml,骨髓2~3ml,采血量足够则阳性率高,反之阳性率减低。
(四)注意事项1.抽血、抽骨髓和接种时,须严格注意无菌操作,避免污染杂菌。
2.从抽血、抽骨髓到接种入瓶,动作要快,防止血液凝固。
3.成人不明原因发热、怀疑血流细菌感染时宜在不同部位抽血2套,每套2瓶(需氧、厌氧各一瓶)。
4.怀疑伤寒、亚急性细菌性心内膜炎及布鲁氏菌病的病人等,一般一日抽血三次培养,必要时需追加次数。
(五)标本送检和保存1.标本采集后应及时送检,一般不超过1h送交细菌室。
2.送检过程中应注意防止培养瓶打破或其它潜在性污染可能。
二、痰液或下呼吸道分泌物细菌学检验标本的采集(一)适应症肺炎、肺气肿、支气管炎、鼻窦炎、肺结核等感染菌的培养鉴定、药物敏感试验和抗酸菌检查。
(二)病人准备1.尽量在未使用抗菌素前留取标本。
准备好无菌标本容器,贴上条码、标明标识。
2.住院病人应留取清晨起床第一口痰。
为减少正常菌群的污染,嘱患者早上起床后用清水或生理盐水漱口,不要刷牙,除去鼻咽分泌物。
(三)标本采集1.一般病人用力咳出气管深处或肺部痰液,留于无菌标本容器内。
临床微生物检验标本采集程序
临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则:1.1 严格的无菌操作,避免污染,避免来自寄生菌的污染,应当保证每份样本代表感染过程。1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术,采集样本。
1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。
1.4 要收集足够量的样本,量少可能导致假阴性结果。
1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本,如不能停用抗菌药物,应于下次抗菌药物应用前采集。
1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。
1.7 导尿留取样本时,不可从尿袋中采集样本。
引流液样本不能直接从引流袋放出,因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。
1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌(煮沸、高热、或高压灭菌),但不得用消毒剂或酸类处理。
1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位,如伤寒沙门菌的阳性检出率,发病的第1~2 周采集血液,第3~4 周采集大便和尿液,阳性率较高。
1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。
1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检,应置室温保存(但不得超过24 小时)。
禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。
1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时,样本不能放4℃条件保存,应在30min内送检,并注意保温。
1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时,应立即送检,因为这些细菌在自然环境中极易死亡。
1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检,应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水,以免导管干燥,病原微生物死亡。
1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检,如样本较小或不能在规定时间内送检,应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水,以免样本干燥,病原微生物死亡。
不可用纱布包裹组织样本。
2 常见临床微生物标本的采集方法。
2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目:血液及骨髓培养。
2.1.2 适应症病人出现以下临床表现:发热(38℃)或低温(36℃)、寒战、白细胞增多(白细胞数>10×109/L,特别有“核左移”时)、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。
临床微生物标本采集
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血培养采集的时间和频率
①采血培养应尽量在抗菌药物使用之前,在24h内采集2~3套 血培养,每套包括1个需氧瓶+厌氧瓶。因为研究已证实,2~3 套血培养足以检测所有的菌血症和真菌血症。
②入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者,连续3天,每天采 集2套,可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。
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【标本采集注意事项】
1 采集时间:应在急性期采样,以提高检出 率,应在抗生素应用前或停药一周后采集标本, 如不能停用抗生素,应于下次抗生素应用前采 集。
2 送检:应立即送检,室温条件下不能超过 2h。如不能立即送检,则保存于4℃冰箱待送 出。
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化脓和创伤标本的微生物检验
采集前先用复合碘消毒周围皮肤。 【标本采集注意事项】 1 采集时间:应在用药之前采取。
2 送检:应立即送检。
3标本运送过程中必须保证其安全,防止溢 出,避免细菌污染。
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血管导管的微生物检验
一、标本送检指征 病人携带中心静脉导管超过48h,出现以下情
8. 鼻咽拭子法:用无菌拭子经鼻轻轻插入 鼻咽部后部,慢慢旋转拭子5s,吸收分泌物, 然后取出。
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【标本采集注意事项】
1 采集时间: (1)以晨痰为好。多数病人清晨痰较多,易
于采集。且清晨痰含有的病理成分较多。会增 加培养的阳性率。 (2)最好在应用抗菌药物之前采集标本。 2 送检 采集后应立即送检,以防止某些细菌在外环 境中死亡,室温保存≤2h 。做真菌培养的标 本如不能及时送检,可放4℃保存,以免杂菌 生长。 标本运送过程中必须保证其安全,防止溢出,16
对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入 45℃10%NaCL水溶液,使痰液易于排出。对咳 痰少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,使13
临床常见标本的微生物检验
主要内容
➢ 1.临床常见标本的微生物检验
一、血、骨髓、静脉导管标本 二、痰及下呼吸道标本 三、尿液标本 四、大便标本 五、生殖道系统标本
六、化脓和创伤标本 七、穿刺液标本 八、眼、耳、鼻、咽拭子标本 九、组织标本
一、血、骨髓、静脉导管标 本
(一)血培养检测采血指征 临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的 患者
无菌生长,需要进行末次接种。
双相培养瓶
二.导管相关性血流感染的标本培养
导管相关性血流感染:
最常见的为血管内导管相关性血流感染(CRBSI),发生率与导管种 类、导管相关医疗操作的频率、患者病情等因素有关。
短期留置的血管内导管,皮肤定值菌通过皮下隧道移植到导管尖端, 随后引发感染;
长期留置的血管内导管,导管头被细菌污染,导管腔发生细菌定植, 引发感染;
三、 尿培养标本
尿路感染是指尿道内有大量微生物繁殖而引起的尿路 炎症。尿路感染并非是一种单一的疾病,而是一种临 床综合征。根据感染部位可分为上尿路感染(如肾盂 肾炎)及下尿路感染(如膀胱炎),男性还可出现前 列腺感染,不同部位同时感染也很常见。尿路感染是 人类最常见的感染之一,可发生于各个年龄段的人群, 好发于女性,男:女之比为1:10。
2.延迟送检或待处理标本应置于4 ℃冰箱保存(疑似肺炎 链球菌、流感嗜血杆菌等苛养菌的例外),但应在24小时 内处理;
3.对可疑烈性呼吸道传染病(SARS、炭疽、鼠疫等)的 标本,必须全过程注意生物安全;
4.经口腔部污染的标本均不可以做厌氧菌培养。
痰标本的处理
一.痰标本的革兰染色涂片检测:
其目的是判定标本是否适合做细菌培养,并初步判定有否病原菌, 病原菌的数量级类别,有助于初步报告、培养基选择和培养结果 的判定。
关于微生物检验标本采集和运送
•
6.采用专用无菌容器收集标本。容器须灭菌处理,防止渗
漏,但不得使用消毒剂。标本中不可添加防腐剂。
•
7.采样后应立即送检,最好在2h内。如不能及时送检,应将标
本置于适当的储存环境待送,但不超过24小时。对可疑淋病奈瑟菌
、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的
苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15~
• 3.选择正确的解剖部位,并以适当的技术、方法与 容器收集足量的标本。
• 4.采样时应严格执行无菌操作,将污染可能降至最 低。
• 5.收集真正感染的病灶处的标本,且避免邻近区域 常居菌群的污染。
•
• 注意事项:
• 采样时机
•
抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样
• 采样方法
•
采集无菌部位的标本应严格无菌操作,非无菌部位尽量减少正
关于微Байду номын сангаас物检验标本 采集和运送原则
内容
• 1.微生物标本及常见致病菌 • 2.微生物检验标本采集和运送原则 • 3.图片展示:现场指导和培训
微生物标本及常见致病菌
• 1.血液标本血液标本的细菌培养是诊断菌血症 或败血病的基本方法。
• 正常人的血液是无菌的、如从患者血液中检出细 菌一般应视为病原菌(排除采集标本或具他操作 过程污染),提示有菌血症或败血症,或心内膜 炎、心包炎、血源性骨髓炎。常见的病原菌主要 有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌(A、B群,肺 炎链球菌等)、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、 脑膜炎奈瑟菌、伤寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等 。
• 2.骨髓标本正常人的骨髓是无菌的。
• 若从患者骨髓中检出细菌(排除污染),提示细菌 性骨髓炎或菌血症、败血症。常见病原菌同血液
微生物标本采集及报告解读
采血套数与阳性率关系
采集血培养的时间
• 细菌入血、内毒素释放和体温上升示意图
最佳采血 时间窗口
细 内体 菌 毒温
素
时间
细菌入血后 体内的免疫系统开始清除细菌 细菌死亡 后释放出内毒素 内毒素刺激免疫系统释放细胞因子 细胞因子刺激下丘脑体温调节中枢 人体开始发热
血培养标本的采集方法
• 采血时的皮肤消毒推荐采用三步消毒法: • a)首先用70%乙醇擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上。 • b)然后用碘液或碘伏消毒皮肤,从穿刺点向外以
– 标本采集后立即常温或保温送检(不要冷藏)或 进行床旁接种;
– 脑脊液的量应大于1ml – 建议将脑脊液打入小儿血培养瓶中送检
化脓和创伤标本的采集
• 开放性伤口和已溃破的化脓灶 • 未溃破脓肿 • 烧伤伤口 • 脓疱或水疱
开放性的要弃去表层,取深部病变部位的标本 非开放性的消毒表面,抽取内部脓液或者疱液 烧伤创面病原菌分布不均一,从多个部位取标本
• U组:尿路感染 • 另外: • O组:其他,该组药物对临床由适应症,一般用于候选。 • Inv组:研究性,做研究用,未经FDA批准。
特殊菌株
1.从粪便中分离的沙门菌和志贺菌菌株,药 敏试验只常规试验氨苄西林、一种氟喹诺 酮类、和复方新诺明并报告,肠外分离的 沙门菌菌株,应试验和报告一种三代头孢 菌素,若有需要,才可以检测和报告氯霉 素。
常用试验药物的代表性
试验药物
菌名
可被推测的药物
苯唑西林 葡萄球菌 (常用头孢 西丁纸片)
四环素
所有(除葡萄球 菌和肠球菌外)
红霉素
G+球菌
所有β-内酰胺类 多西环素、米诺环素 罗红霉素、克拉霉素、阿奇霉素
克林霉素 所有 青霉素G 葡萄球菌
临床常见微生物标本采集手册
规范化标本采集是微生物检验分析前质量控制的重要内容微生物标本采集的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.收集真正感染的病灶处之样本,且不受邻近区域微生物的污染;3.收集样本时应执行严格的无菌操作技术,将污染情形降至最低;4.尽量在抗菌药物使用前采集标本5.采样后立即送检以保持微生物的生物活性,床旁接种可提高病原菌检出率6.使用无菌、密闭容器,但不得含有消毒剂、防腐剂7.送检标本应注明来源和检验目的一、血培养标本的采集1.血培养的临床指征:患者出现以下一种或同时具备几种临床表现时可作为血培养的重要指征:①发热(≥38 ℃)或低温(≤36 ℃),以间歇驰张型多见,革兰阴性杆菌,如大肠埃希菌引起的感染可见双峰热;②寒战;③白细胞增多(>10.0×109/ L,特别是有“核左移”时);④粒细胞减少(<1.0 ×109/ L);⑤血小板减少;⑥皮肤、黏膜出血,常见于溶血性链球菌感染的菌血症,伤寒病人第4-10天可出现玫瑰疹,斑疹伤寒第4-6天可出现暗红色斑丘血疹;⑦昏迷;⑧多器官衰竭;⑨血压降低;⑩呼吸加快(呼吸率>20/分或CO2分压<32mmHg);以及肝脾肿大;关节疼痛;C反应蛋白、内毒素、降钙素原升高等;2.血培养的采集时间①对怀疑菌血症、真菌血症的患者,在考虑使用抗菌药物之前,应立即采集血培养标本。
②研究表明细菌通常在寒战或发热前1h入血,此时为采血的最佳时机。
③发热后细菌很快会从血液中清除,超过发热峰值后,病原菌的检出率会随之降低。
3.血培养的采集部位①对怀疑菌血症、真菌血症的患者,应同时或短时间间隔(10分钟内)从不同部位(如双臂)采集2~3套血培养标本,做到“双瓶双侧”。
②推荐从外周静脉采集血液标本。
③不推荐动脉血,因其诊断价值没有比静脉血更大。
④不推荐静脉留置导管,因其常伴有高污染率。
如果必须从留置导管内采血,也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以助于对比和结果解释。
常见微生物标本采集方法
常见微生物标本采集方法一、基本原则1、发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查,二、三级医院微生物标本送检率不应低于70%。
2、尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3、标本采集时应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4、标本采集后应立即送至实验室。
床边接种可提高病原菌检出率。
5、以棉拭子采集的标本如咽拭、肛拭或伤口拭子,宜采用插入运送培养基送检。
6、混有正常菌群的标本如咳痰、尿液、伤口拭子,不可置肉汤培养基内送检。
7、盛标本容器须经灭菌处理,但不得使用消毒剂。
8、送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
二、常见感染标本采集与送检方法(一)、血液及骨髓1、通常采血部位为肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时,以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
2、采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养基前,应列换针头或过火消毒针头。
3、每次采血量成人5-10ml,婴幼儿1-2ml,培养基与血液之比以10∶1为宜,以稀释血液中的抗生素、抗体等杀菌物质。
4、怀疑菌血症庆尽早采血,体温上升阶段采血可提高阳性率,但要防止因等待而延误时机。
对已用抗菌药物而不能停药者,可在下次用药前采血。
5、对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人,在病灶或者髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓1 ml 作增菌培养。
(二)、尿液1、中段尿:女性采样前应先用肥皂水或0.1%高锰酸钾溶液冲洗外阴部及阴部及尿道口;男性翻转包皮冲洗,用0.1%新洁尔灭消毒尿道口,灭菌纱布擦干后,收集标本。
2、导尿管导尿采样可减少污染。
对留置导尿者,可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁,用联空针筒的细针斜穿管壁抽吸尿液;或拔去闭式引流的集尿袋,弃去导尿管前段尿液,留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。
不可从集尿袋的下端管口留取标本。
3、尿厌氧菌培养,或婴幼儿中段尿采集困难,或培养结果与病情不符时,可经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。
(完整版)微生物标本采集及保存要求
微生物标本采集及保存要求一、总则:用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检,检测后标本应妥善保存。
二、临床标本的采集(一)下呼吸道分泌物(痰液)令患者早上起床后用清水濑口,不要刷牙,立即从下部呼吸道咳出第一口痰,吐在无菌塑料痰盒中,及时送检。
(二)、尿液(中段尿)护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中,及时送检。
(三)、粪便:取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中,如为稀水便,可直接收集于玻璃管中,及时送检。
(四)、眼、耳、鼻、喉拭子:将棉拭子沾取少许无菌生理盐水(如沾取的太多,可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份),然后采取可疑部位的分泌物,倒悬于无菌试管内,及时送检。
(五)、脓液:用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液,要尽量多取一些,然后将棉拭置于无菌试管中,及时送检。
(六)、:1、凡怀疑菌血症和败血病的患者,采血培养时,应尽量在未使用抗菌素前采血,如已使用抗菌素,应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血,应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。
当然在病人发热或寒颤时采集也可。
2、成人每次采血5—10ml,小儿采血2—3ml;3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口,抽一定量血液后,无菌注入血培养瓶内,轻轻摇匀,4、从抽血到接种入瓶,动作要快,防止血液凝固,同时要及时送检。
(七)、穿刺液:胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液:严格无菌抽取后,注入含肝素抗凝的无菌试管中,轻轻颠倒试管10余次,使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的,或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。
(八)、胆汁:由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。
(九)、脑脊液:以无菌方法取脑脊液3-5ml,置无菌试管内,常温保存送检,如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内,及时送检。
(十)、生殖器官标本:阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集,收集于无菌试管内送检。
如疑为淋病奈瑟菌感染,做培养检查时,采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。
微生物标本采集及送检
• 无菌体液标本、组织、痰、BALF、尿液、脓液标本等: 宜同时选择标本直接涂片染色镜检和培养 • 怀疑隐球菌感染的脑脊液标本:宜同时选择墨汁染色、 隐球菌荚膜抗原检验和隐球菌培养 • 怀疑分支杆菌感染的标本:宜同时选择抗酸染色、分支 杆菌核酸检验 • 怀疑诺卡菌感染的标本:宜同时选择革兰染色、弱抗酸 染色和培养 • 怀疑侵袭性真菌感染的标本:宜同时选择真菌培养、真 菌涂片和真菌抗原检验;
•应在抗微生物药物治疗之前或在起始治疗后立即采集、疾病初发时采集首份 标本
•治疗中评估疗效、治疗后评估结局 •应避免感染部位周围以及感染部位附近皮肤或粘膜定植菌群的污染怀疑细菌、 真菌、厌氧菌感染:除了血液标本外,其他所有标本均宜进行革兰染色镜检 •无菌体液:无菌管送检,或注入一定量(最好10ml)到血培养瓶中增菌培养
•外科手术标本:应送液体或组织做涂片和培养,拭子标本仅用于特殊情况 •标本采集应符合生物安全规定
标本的转运与储存
注明患者年龄,可为病原体诊断提供线索;婴幼儿:可选择腰4-腰5或腰5-骶1椎 间隙穿刺进针,以免Βιβλιοθήκη 伤脊髓谢谢 !微生物室
微生物标本的采集与运送
3、怀疑霍乱时立即采集粪便送检。
4、粪便涂片镜检WBC ≥5个/HP
1、自然排便法:自然排便后,挑取脓血、黏液 便2-3g作常规性病原菌培养;液状粪便取絮状物23ml,直接放入无菌杯内送检。
2、直肠拭子法 难以获得粪便、排便困难者及幼儿用此法
大便要取脓血处, 志贺沙门需关注。
以上标本由专科医师采集,2小时内送检,室温保 存不超过24小时。
(一)标本采集
1、开放性伤口:先以无菌生理盐水或75%乙醇冲 洗擦去表面渗出物,用拭子采集深部伤口或溃疡基底 部分泌物,或剪取深部病损边缘组织。
烧伤创面,多部位取样。
2、封闭性脓肿:消毒脓肿局部皮肤或黏膜表 面后,用注射器穿刺抽取脓液3-10ml注入无菌试管 内送检。
尿液培养要计算, 清洗外阴留中段; 培养长出多种菌, 辨清污染重新送。
1、采集:采样前,应先清洁外阴及尿道口周围, 自然排尿,不间停,截留中段尿,置于无菌尿杯中, 一般留取10ml左右
2、运送:常温下2小时内送达微生物室,4℃保 存不超过24h
三、粪便标本的采集
1、腹泄、大便≥3次,粪便性状异常,如稀便、 水样便、脓血便、血便,可伴恶心、呕吐、食欲不 振、发热、腹痛及全身不适等。尽量在用药前采集
检验科 2017.9.5
在临床微生物检验工作中,标本的正确选择、 采集和运送是保证检验质量的重要环节,是实验室 工作准确和有效的基本前提。
早期、无菌、合格
标本
规范化采集 不符合要求 污染的标本
提供重要临床 感染信息 结果无意义
误导临床
无菌标本 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
有菌标本 痰液 咽拭子 尿液 粪便
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项微生物检验标本的采集直接影响微生物培养与鉴定结果,准确的结果可为临床诊疗提供指导,有助于科学用药、控制感染,进而延缓细菌耐药、监测医院感染、减少抗菌药物滥用,而正确采集微生物检验标本是最为关键、重要的一步。
为此,本文总结了微生物检验标本的正确采集方法和注意事项,下面让我们一起来了解一下。
一、采集血液标本应用75%酒精清洁局部皮肤,待皮肤干燥后应用1%--2%碘酊或者1%碘伏消毒穿刺点及周围皮肤,消毒范围至少需要3厘米,再次使用75%酒精脱碘后采集血液;对于碘过敏的患者,则采用75%酒精消毒30秒,自然干燥后再用75%酒精消毒60秒的消毒策略。
消毒后不可用手直接触摸穿刺部位,穿刺抽吸8--10毫升成人血液(婴幼儿及儿童患者采血量则不能超过总血量的1%),注入血培养瓶中并立刻颠倒混匀,以防血液凝固,但不可剧烈震动,以防标本溶血。
值得注意的是,血液标本作培养时需格外小心,皮肤表面含有较多微生物,消毒不规范则会污染血液,故应在采血前由内至外认真消毒;血液注入培养基之前不可更换针头,以防感染;采血前应用抗菌药物且无法停药者应在下次用药前采血,注意,不可在静脉穿刺处采集血液标本,除怀疑导管相关感染外亦不可经由静脉导管或动脉插管内抽血;采血量并不是越多越好,采血量太多,则会稀释培养液,营养成分不够;怀疑为菌血症的患者应尽早采血,避免延误最佳时机;怀疑为布鲁式病以及细菌性心内膜炎患者应选择肘动脉、股动脉穿刺采集血液,除发热期以外,均应多次采血,建议24小时内采集3--4次,且要增加采血量,以10毫升左右为宜。
二、采集痰液标本于清晨起床后使用凉白开多次漱口,去除口腔内的杂菌,并用力咳嗽,以咳出肺部深处的脓痰,吐入清洁、干燥的容器中送检。
如果患者痰液量比较少,可以应用25毫升45摄氏度3%--10%氯化钠溶液行雾化吸入,如果是患儿,则需要轻轻按压其胸骨上方的气管,在其咳痰后使用无菌棉棒采集痰液标本。
微生物标本采集方法及注意事项第一版
微生物标本采集方法及注意事项第一版20____微生物标本采集方法及注意事项微生物标本采集方法及留意事项微生物学检验标本的正确采集、运输及处理,与细菌的培育、鉴定结果有非常亲密的关系。
医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题,并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣扬和指导。
下面是我为大家带来的微生物标本采集方法及留意事项,。
一、粪便标本采集和处理(1)采集方法1.自然排便法:取簇新粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分,2~3g或 1~2 m1,盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(PH8.6)。
2. 直肠拭子法:难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采纳此法,将拭子前端用无菌甘油或生理盐水潮湿,然后插入____约 4~5cm(幼儿 2~3cm),轻轻在直肠内旋转。
擦取直肠表面粘液后取出,盛于无菌试管中或保存液中送检。
(2) 留意事项1.尽可能在抗生素运用之前采集标本。
2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆),粪便样本中不应混入尿液及其他异物,采集过程应尽量无菌操作。
3.不应用厕纸收集粪便。
4.对同一病人在同一天不宜重复送检。
5.宜在感染急性期(通常是5dd内)采集标本。
6.下列腹泻患者应连续3d送检标本--社区获得性腹泻(入院前或72h内出现症状)--医院腹泻(入院72h后出现症状),且至少有下列状况之一:大于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞10×109/L,特殊是在有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多时)4.粒细胞削减(成熟的多核白细胞<1×109/L)5. 血小板削减6.皮肤粘膜出血7.昏迷8.多器官衰竭(2)留意事项1.血液在正常状况下为无菌标本,应严格根据无菌操作,避开杂菌污染。
2.培育瓶分为需氧瓶和厌氧瓶两种。
每瓶须要 8~10ml。
儿童瓶为需氧瓶每瓶需血液1~3ml.3.血瓶接种依次:用注射器或针采血时,应先接种厌氧瓶;用蝶形针采血时,应先接种需氧瓶;采血量不够时先接种需氧瓶,剩余量再接种厌氧瓶。
微生物标本采集指南
鼻咽
用无菌拭子经鼻轻轻插入鼻咽后部,慢慢旋转拭子5秒,吸收分泌物
喉
用压舌板压舌,用无菌拭子从咽后、扁桃体和发炎区采样
喉拭子培养不能用于会厌发炎的病人
眼结膜
分别用(无菌盐水预湿)拭子绕每一个结膜取标本
采集完即接种培养基
直接接种BAP和巧克力平板
立即送检
常温
阴性:3天
阳性:随时报告危急期,最终报告及时发出。
亚急性心内膜炎:从不同部位采3套,间隔≥15min,如24h内为阴性,需再采3套。
注意事项同脑脊液
骨髓
注意彻底消毒,因许多微生物,尤其葡萄球菌通常存在皮肤表面或近表层处,易造成污染。
血培养专用瓶≥1ml
无
注意事项同脑脊液
脑脊液
注意彻底消毒,因许多微生物,尤其葡萄球菌通常存在皮肤表面或近表层处,易造成污染。
血培养专用瓶(血液:肉汤=1:5~10为宜)
成人:5~10ml/瓶
婴儿:
1~2 ml/瓶
≤2h
常温
禁止冷藏
阴性:5天
阳性:随时报告危急期,最终报告及时发出。
建议从不同部位采2~3套(一套为1瓶需氧瓶+1瓶厌氧瓶或2瓶需氧瓶)
急性脓毒血症:10min内从不同部位采2~3套;
急性心内膜炎:1~2h内从不同部位采3套;
最小量
痰、下呼吸道标本、肺泡灌洗液、支气管刷、气管抽吸物
用温开水清洗或漱口去除口腔表面细菌
指导病人从肺深部咳出痰液,采集到无菌容器内
无菌容器
>1ml
≤2h
常温
阴性:2天
阳性:及时发出。
1∕d
对于不能产生标本的病人,应该抽吸获得标本
最好的标本应≤10个鳞状细胞∕LPF,WBC≥25个/ LPF
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微生物标本采集大全日期:2015-12-17 20:44:38 来源:中华检验医学网点击:21 次正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。
为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集1、采集方法(1)75%酒精清洁局部皮肤。
(2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm(直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
(3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。
(4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项(1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。
(2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
(3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。
(4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。
(5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
(6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。
(7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。
(8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。
二、骨髓的采集1、采集方法在病灶部位或髂前(后)上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml,注入血培养瓶内。
2、注意事项(1)骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞,因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。
(2)用于怀疑细菌性骨髓炎病人。
三、静脉导管标本的采集1、采集方法(1)常规导管部位皮肤消毒。
(2)无菌方法从病人体内拔出静脉导管,剪下导管尖端5cm,放入无菌瓶中。
(3)立即(15min内)送检,避免标本干燥。
2、注意事项(1)剪下的导管立即接种血平皿,可提高阳性率。
(2)肉汤反复冲洗导管腔内,冲洗液做定量培养。
(3)有人将剪下的导管置肉汤增菌液或培养瓶中,此法不能区分导管感染菌与少量定植菌。
(4)卫生部在《医学感染诊断标准》(试行)(2001年1月3日施行)中规定:导管管尖培养其接种方法应取导管尖端5cm,在血平板表面往返滚动一次。
细菌≥15cfu/平板,即为阳性。
四、呼吸道1、痰标本(1)采集方法①清晨起床后用凉开水漱口多次,以除去口腔内大量杂菌,用力咳出肺深部的脓痰,置于清洁干燥容器中送检。
②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。
对于咯痰量少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。
③咳嗽无力或昏迷病人,可用吸痰管经鼻腔或口腔经气管腔内吸引痰液送检。
④气管切开者可以深入透气孔中取痰。
⑤可用支气管镜直接在病灶部位采集高浓度的病原菌。
⑥用无菌导管经鼻腔插入气管镜内,缓慢注入无菌蒸馏水5ml,取出导管。
留取患者在3h 内咳出的痰液,放入无菌容器中送检。
⑦胃内采痰法。
无自觉症状的结核病人。
有时可把痰误咽入胃内,因而可采用胃内溶物做结核菌培养,其阳性结果比咯痰高10%左右,该方法于晨起空腹时,把灭菌的胃管,从鼻腔送入胃内,用20ml注射器抽取胃液。
(2)注意事项①痰标本的采集以晨痰为准,此时患者痰量较多且含菌量也多。
②标本采集后立即送检,若不能及时送检者,可暂存2-8℃冰箱。
若晚1-2h接种,会失去苛氧菌,并使得革兰阴性菌过分生长。
③可接受的标本:痰;支气管灌洗液,支气管刷,支气管活检;肺吸出物和肺活检。
不能接受的标本:唾液;24h留的痰(结核杆菌培养除外);拭子。
④痰标本的质量评价:(用显微镜筛选)在低倍镜下,检查鳞状上皮细胞,至少10个视野,集中在有白细胞处,合格标本为白细胞与鳞状上皮细胞比例大于2:1。
2、鼻拭子(1)用湿的拭子(生理盐水);(2)需插两个鼻孔;(3)深入3.3cm左右,转动4-5次;(4)以上用于诊断金黄色葡萄球菌暴发时的鼻带菌者。
3、咽拭子、口腔拭子(1)采集方法(到细菌室取专用拭子)①患者清水漱口后,由检查者将其舌外拉,用棉拭子将咽后壁或悬雍垂的后侧反复擦拭数次;②化脓性扁桃体炎、口腔念珠菌病时,直接用棉拭子在病灶部位擦拭;③插入运送培养基中立即送检,防止干燥。
(2)注意事项①棉拭子应避免触及舌、口腔黏膜和唾液;②采集标本前数小时不可用消毒药物漱口或接触病灶局部。
五、胃肠道1、粪便(1)采集方法选取脓血、黏液粪便2-3g,液体粪便取絮状物1-2ml。
盛于灭菌瓶中或蜡纸盒中及时送检。
(2)注意事项①标本要采集新鲜的,陈旧标本影响阳性检出率;②切忌粪尿混合;③若要分离阿米巴,标本要立即送检并注意保温;④运送培养基可提高阳性率;⑤分离难辨梭菌时需选不成形或水样便;⑥霍乱弧菌、大肠杆菌Ο157感染的腹泻便则为水样便或血性便;⑦标本在病理早期或治疗前采集;⑧一般认为用抗菌药三天后,标本培养病原菌阴性。
2、肛拭子在无法获得粪便的情况下,可用经无菌甘油水或无菌生理盐水湿润的肛拭子插入肛门4-5cm(幼儿2-3cm)处,轻轻旋转擦取直肠表面黏液后取出,置运送培养基中送检。
六、泌尿道根据卫生部《医学感染诊断标准》(试行)通知,泌尿系统临床诊断为:患者出现尿频、尿急、尿痛等尿路刺激症状,或有下腹触痛、肾区叩痛、伴或不伴发热,并具有下列情况之一:(1)尿检白细胞男性≥5个/高倍视野,女性≥10个/高倍视野,插导尿管患者应结合尿培养;(2)临床已诊断为泌尿道感染,或抗菌治疗有效而认定的泌尿道感染。
1、中段尿(1)采集方法①女性采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液冲洗外阴,用手指江阴唇分开排尿,弃其前段尿,不终止排尿,留取中段尿10ml于灭菌容器内。
②男性用肥皂水清洗尿道口,或0.1%的碘伏溶液消毒尿道口,灭菌纱布擦干,上翻包皮,弃其前段尿,不终止排尿,留取中段尿10ml于灭菌容器内。
(2)注意事项①导尿虽然可以减少污染,但是多次重复导尿可以造成逆行性感染,因此近年来大多采用中段尿。
②女性病人最好采取膀胱截石位由护士采取标本,减少污染。
③采集标本以晨起第一次尿液为佳。
④采集标本后,若不能在1h内送检,暂放4℃冰箱,但不能超过8h。
若尿液标本在室温下放置超过2h,即使接种培养结果细菌数≥104 cfu/ml获103cfu/ml,也不能作为诊断依据,应重新留取标本送检。
⑤疑为尿道炎时可将最初3-4ml尿液收集在灭菌容器内。
该尿中即使有少数细菌,如反复检查为同一细菌,也应考虑为病原菌。
⑥儿童在多数情况下,仅冲洗外阴是不够的,故采集标本较为困难。
如果尿内细菌明显增多,可以高度怀疑为尿路感染,无菌则可否定。
⑦若细菌培养结果为两种或两种以上细菌,需考虑污染可能,建议重新留取标本送检。
⑧尿液中不得加入防腐剂,消毒剂否则影响阳性检出率。
2、膀胱穿刺采集法避免污染是很困难的,培养结果与病情不符时,或尿厌氧菌培养,或婴幼儿中段尿采集困难时,可以用耻骨上穿刺膀胱内采尿。
3、留置导尿者采集法拔去闭式引流的集尿袋,弃去导尿管前段尿液,留无污染的膀胱内尿液10ml送检。
不可从集尿袋下端留取标本。
七、脑脊液1、采集方法由临床医师以无菌方法收集脑脊液3-5ml(细菌1ml,真菌2ml抗酸杆菌2ml,病毒1ml)盛于无菌试管或小瓶中立即送检。
2、注意事项(1)采集标本后立即送检,因脑膜炎奈瑟菌离体后迅速自溶,肺炎链球菌及流感嗜血杆菌也易死亡;(2)疑为上述细菌感染时,应注意保温,不可置冰箱或低温保存。
八、胆汁1、十二指肠引流法在无菌操作下,将十二指肠导管吞咽至十二指肠乳头部(距齿65-70cm)时,收集A液(来自总胆管,为橙黄或金黄色),随之注入25%硫酸镁溶液40ml,经1-2min后再采取B 液(来自胆囊,为棕黄绿色),随后收取C液(来自肝胆管,为柠檬色),一般认为B液做细菌培养意义较大。
2、胆囊穿刺法胆囊造影术时,可同时采取胆汁。
3、手术采取法由总胆管、胆囊直接穿刺采取胆汁。
以上采集之标本应立即送检,否则置于4℃冰箱内,采集时需小心,避免被唾液、十二指肠液细菌污染。
九、穿刺液标本穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液。
1、采集方法由临床医师行穿刺术抽取。
胸腹水可收集5-10ml,心包液、关节液收集2-5ml,置于无菌含抗凝剂的试管或小瓶中,充分混匀后,立即送检。
抗凝剂10%EDTA二钠盐,标本与抗凝剂之比10:1。
2、注意事项⑴标本采集应在患者用药之前或停止用药1-2天后进行;⑵不能立即送检可置4℃冰箱保存;⑶疑为淋病性关节炎患者的关节液,采集后立即送检,或床旁培养为佳;⑷不能用棉拭子浸蘸标本送检。
十、脓汁及病灶分泌物1、伤口⑴表面伤口拭子采集方法及注意事项①仅限于皮肤与皮下组织,包括手术切口、褥疮溃疡、新生儿脐炎、婴儿脓疮病。
②用无菌生理盐水或75%的酒精擦去病灶表面渗液;③用无菌棉拭子抹去及较深部的脓汁分泌物或组织送检;④采集褥疮溃疡标本时应采集褥疮边缘的脓性分泌物,拭子放在运送培养基中立即送检,不要采集创口表面的渗液。
⑵伤口、脓肿、窦道、坏疽组织采集方法及注意事项①闭锁性脓肿用碘酒和酒精消毒皮肤后,用灭菌注射器穿刺抽取全部脓液送检,疑为厌氧菌感染时,排去针管内空气将针头插入灭菌橡胶塞内送检;②伤口处若有脓及渗出物要用无菌棉签深入各种窦道中擦拭,用小刀刮取,穿刺抽吸或手术切除获得深处伤口标本;③当创伤出血时,敷有药物在2h以内及烧伤在12h内均不应采集标本,此时获得阳性结果机会甚少。
④采集标本注意观察脓汁及分泌物性状、色泽、气味等。
可为培养鉴定提供依据。
⑶烧伤创面①烧伤创面需要脓性分泌物,焦痂迅速分离变棕黑、黑或紫罗兰色,烧伤边缘水肿。
患者发烧>38℃或低体温<36℃,合并低血压。
②用无菌生理盐水冲洗伤口创面。
③由于创面部位不同,细菌种类也不尽相同,要用灭菌棉拭子采集多个部位的炎症区送检。
④采集痂下变黑或变性的不健康区边缘或引流液等做定量培养及组织活检。
2、厌氧伤口拭子⑴厌氧专用棉棒或玻璃棒触及深部脓汁;⑵可用注射器抽吸,排去针管内空气将针头插入灭菌橡胶塞内送检;⑶立即送检,送检过程中必须保持在无氧条件;⑷不宜做厌氧菌培养的有痰、喉拭子、鼻咽拭子、齿龈拭子、直肠、阴道和宫颈拭子以及回肠、结肠造瘘术的流出物,胃、小肠及大肠内容物等。