生理实验报告
生理性生化实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解细菌生理生化反应原理；2. 掌握细菌鉴定中常见的生理生化反应方法；3. 了解生理生化反应在鉴别细菌中的意义。
二、实验原理通过测定微生物校内某些酶类的有无、对某些糖的利用能力、代谢产物的类型等来研究微生物的多样性。
某些细菌产生色氨酸酶，能分解培养基蛋白胨中的色氨酸，产生吲哚，吲哚与对二甲基氨基苯甲醛发生反应，形成红色的玫瑰吲哚，为吲哚反应阳性。
微生物发酵葡萄糖成丙酮酸，2分子丙酮酸缩合脱羧成乙酰甲基甲醇。
乙酰甲基甲醇在碱性条件下与肌酸类物质反应，生成红色物质，为甲基红反应阳性。
三、实验方法1. 吲哚试验：将细菌接种于含有色氨酸的培养基中，加入吲哚试剂，观察颜色变化。
2. 甲基红试验：将细菌接种于含有葡萄糖的培养基中，加入甲基红试剂，观察颜色变化。
四、实验结果1. 吲哚试验：接种了大肠杆菌的试管在加入乙醚和吲哚试剂后，能在乙醚和液体培养基的交界面上产生红色环状物质，大肠杆菌的吲哚试验显阳性。
2. 甲基红试验：大肠杆菌甲基红试验阳性，即大肠杆菌在培养期仍维持酸性pH。
五、实验分析1. 吲哚试验失败原因分析：可能是因为乙醚加量太少，影响实验现象的观察；另一个可能的原因是大肠杆菌菌种有问题。
2. 甲基红试验结果分析：大肠杆菌在培养后仍能维持酸性，而产气杆菌则转化为非酸性末端产物。
六、实验结论1. 通过本实验，我们了解了细菌生理生化反应原理；2. 掌握了细菌鉴定中常见的生理生化反应方法；3. 认识到生理生化反应在鉴别细菌中的意义。
七、实验注意事项1. 实验过程中要严格按照操作规程进行，避免污染；2. 注意观察实验现象，记录实验数据；3. 分析实验结果，找出实验失败的原因。
第2篇一、实验目的1. 了解生理性生化实验的基本原理和方法。
2. 掌握常用的生理性生化指标及其检测方法。
3. 通过实验，学会使用生理性生化检测仪器，提高实验技能。
二、实验原理生理性生化实验是研究生物体内各种生化反应及其代谢过程的重要手段。
人体生理实验报告
人体生理实验报告为了进一步了解人体的生理指标和反应规律，我们进行了一系列实验。
在实验过程中，我们测量了被试者的心率、呼吸频率、体温等生理参数，并记录了不同条件下的变化情况，以便分析实验结果。
以下是我们的实验报告：实验一：运动前后心率的变化实验目的：观察运动前后被试者的心率变化情况，了解运动对心率的影响。
实验方法：选择三名被试者，让他们在静止状态下测量心率，然后进行约30分钟的慢跑，再次测量心率。
实验结果：运动前平均心率为70次/分钟，运动后平均心率为150次/分钟。
可以看出，运动会明显增加心率，这是为了加快血液流动，向肌肉输送更多氧气和养分，以满足运动时的能量需求。
实验二：深呼吸对呼吸频率的影响实验目的：通过控制呼吸深度，观察不同呼吸深度对呼吸频率的影响。
实验方法：让被试者进行正常呼吸，测量呼吸频率，然后让他们进行深呼吸，再次测量呼吸频率。
实验结果：在正常呼吸状态下，呼吸频率为每分钟15次；进行深呼吸后，呼吸频率下降至每分钟10次。
说明深呼吸可以减缓呼吸频率，增加肺部气体交换量，有利于氧气的吸收。
实验三：不同环境下体温的变化实验目的：观察不同环境条件下被试者的体温变化，了解环境对体温的影响。
实验方法：让被试者进入冰箱内测量体温，然后让其在温暖阳光下曝晒一段时间，再次测量体温。
实验结果：在冰箱内测量的体温为36.5摄氏度，曝晒后体温上升至37.5摄氏度。
由此可见，环境温度对体温有明显影响，过高或过低的温度会影响人体的热量代谢和体温调节。
结论：通过以上实验，我们了解到人体在不同条件下会有不同的生理反应，比如运动会增加心率，深呼吸可以减缓呼吸频率，环境温度会影响体温等。
这些实验结果有助于我们更好地理解人体生理规律，为健康生活和科学研究提供参考依据。
生理学实验报告
生理学实验报告第一篇：生理学实验报告生理学实验报告坐骨神经-腓肠肌标本的制备一、实验目的及要求学习蛙类动物双毁髓的方法掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术，为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
二、实验原理蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与温血动物近似，而且其离体组织需要的生活条件非常简单，易于控制和掌握。
因此在生理学实验中，坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象，经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
三、实验对象蟾蜍或蛙。
四、实验器材及药品蛙类手术器械一套（金属探针1根，粗剪刀、眼科剪刀各1把，圆头镊子、眼科镊子各1把，玻璃分针2根），蛙板和玻璃板各1块，培养皿，滴管，废物缸、锌铜弓，丝线，棉花；任氏液。
五、实验方法及步骤1、双毁髓：左手握蟾蜍，背部向上。
用食指按压其头部前端，拇指压住躯干的背部，使头向前俯；右手持毁髓针，由两眼之间中线向后方划触，触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。
将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔，然后针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以毁脑组织。
再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转向后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。
脊髓彻底捣毁时，可看到蟾蜍后肢突然蹬直，然后瘫软，此时的动物为双毁髓动物。
2、剥制后肢标本：左手持手术镊提起两前肢之间背部的皮肤，右手持手术剪横向剪断皮肤，然后往后肢方向撕剥皮肤。
剪开腹壁肌肉，用手术镊提起内脏，翻向头部，在看清支配后肢的脊神经发出部位后，于其前方剪断脊柱。
3、分离两后肢：将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上，右手持金冠剪纵向剪开脊柱，再剪开耻骨联合，使两后肢完全分离。
4、分离坐骨神经：将一侧后肢的脊柱端腹面向上，用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经，股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝，找出坐骨神经，剪断盖在上方的梨状肌，完全暴露坐骨神经，剪去支配腓肠肌之外的分支，再剪去脊柱及肌肉，只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。
生理学实验报告
医专生理学实验报告（五）一、实验题目：心血管活动的神经与体液调节二、实验目的：1、学习家兔动脉血压的直接描记方法；2、观察神经、体液因素对心血管活动和动脉血压的影响。
三、实验对象：家兔四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、压力换能器、动脉插管、动脉夹、剌激电极、哺乳类动物手术器械、注射器、实验用药品等五、实验原理：在正常机体，血压的变动并不大，而是经常维持在一个相对稳定的水平。
机体对心血管活动的调节是通过各种心血管反射实现的。
其中最重要的反射是颈动脉窦和主动脉弓压力感受器反射。
改变压力感受器活动或剌激反射弧的传入、传出神经会引起心血管活动的改变，进而导致动脉血压的相应变化。
在正常体，心血管活动还受肾上腺素和去甲肾上腺等体液因素的调节。
通过静脉注射，改变血液中肾上腺素、去甲肾上腺素的浓度，也会影响心血管活动，从而使血压发生改变。
六、实验结果与简要分析：七、实验结论：心血管活动和动脉血压受神经、体液因素的调节。
医专生理学实验报告（六）一、实验题目：1、呼吸运动的调节 2、胸负压测定3、肺活量测定二、实验目的：1．学习记录哺乳动物呼吸运动的方法；观察体液中O2、CO2和H+水平变化对呼吸运动的影响；了解肺牵反射在呼吸运动中的作用。
2．观察胸负压，3．学会用简易肺活量计测量肺活量的方法。
三、实验对象：1、家兔 2、人四、实验物品：BL-420生物功能实验系统、力换能器、气管插管、50cm长橡皮管一条、注射器（20ml、5ml）、钠石灰瓶、肺活量计等五、实验原理：呼吸运动是呼吸肌舒缩活动完成的节律性运动，该节律性运动在呼吸中枢的控制下保持正常的深度和频率。
体、外多种剌激可通过不同机制作用于呼吸中枢，引起呼吸运动的改变。
肺牵反射参与呼吸节律的调节，其传入纤维在迷走神经中，切断迷走神经将会引起呼吸节律的变化。
六、实验步骤：（略）七、实验结果与简要分析：八、实验结论：呼吸运动受神经、体液等因素的影响。
九、作业：统计小组10位同学的肺活量，并求出男、女的平均值肺活量正常值：平均男：3.5L；女：2.5L医专生理学实验报告（七）一、实验题目：影响尿生成的因素二、实验目的：学习膀胱插管技术，观察影响尿生成的因素，并分析其作用机制。
生理学实验实验报告总结(3篇)
第1篇一、实验目的本次生理学实验旨在通过一系列的实验操作，加深对生理学基本理论的理解，掌握实验技能，培养科学思维和实验操作能力。
通过本次实验，我们学习了生理学实验的基本原则和方法，了解了生理学实验的基本步骤和注意事项。
二、实验内容1. 神经反射实验- 实验目的：观察和分析神经反射的基本现象，了解反射弧的组成和功能。
- 实验方法：采用小鼠作为实验动物，通过电刺激法刺激坐骨神经，观察肌肉的收缩反应。
- 实验结果：成功观察到电刺激坐骨神经后，肌肉出现明显的收缩反应，证实了神经反射的存在。
2. 血压测量实验- 实验目的：学习血压测量的原理和方法，了解血压的正常范围及其生理意义。
- 实验方法：使用血压计对实验动物进行血压测量，并记录血压数据。
- 实验结果：成功测量了实验动物的血压，结果显示血压在正常范围内。
3. 呼吸生理实验- 实验目的：观察和分析呼吸运动的基本规律，了解呼吸系统的生理功能。
- 实验方法：通过观察呼吸肌的收缩和舒张，以及肺容积的变化，分析呼吸运动的机制。
- 实验结果：观察到呼吸肌的规律性收缩和舒张，以及肺容积的变化，证实了呼吸运动的规律性。
4. 消化生理实验- 实验目的：观察和分析消化系统的生理功能，了解食物的消化和吸收过程。
- 实验方法：通过观察消化液的分泌和消化器官的活动，分析消化系统的生理过程。
- 实验结果：观察到消化液分泌的增加和消化器官的活动增强，证实了消化系统的生理功能。
三、实验过程1. 实验前准备：了解实验原理，熟悉实验器材，做好实验记录表格。
2. 实验操作：严格按照实验步骤进行操作，注意实验安全和数据记录。
3. 实验观察：仔细观察实验现象，及时记录实验数据。
4. 实验结果分析：对实验数据进行整理和分析，得出结论。
四、实验结果分析1. 神经反射实验：通过电刺激坐骨神经，成功观察到肌肉的收缩反应，证实了神经反射的存在。
2. 血压测量实验：血压测量结果显示在正常范围内，说明实验动物的生理状态良好。
生理实验报告_声音传导(3篇)
第1篇一、实验目的1. 探究声音传导的途径和机制。
2. 了解听觉系统的工作原理。
3. 分析不同传导途径对声音感知的影响。
二、实验原理声音传导是指声波从声源到听觉感受器（耳蜗）的传递过程。
声音传导途径主要包括空气传导和骨传导两种。
1. 空气传导：声波通过外耳道到达鼓膜，引起鼓膜振动，进而引起听骨链（锤骨、砧骨、镫骨）的振动，最终将振动传递到内耳的耳蜗。
2. 骨传导：声波直接作用于颅骨，引起颅骨振动，进而引起内耳淋巴液的振动，最终将振动传递到耳蜗。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：音叉、听诊器、耳机、骨传导耳机、吸管、塑料杯、橡胶塞、真空泵等。
2. 实验仪器：声波发生器、示波器、频谱分析仪、生理信号采集系统等。
四、实验步骤1. 空气传导实验：1. 将音叉放置在声波发生器上，发出一定频率和强度的声波。
2. 用听诊器检测声波通过空气传导到达人耳的声压变化。
3. 改变声源与听诊器之间的距离，观察声压变化，分析空气传导对声波传播的影响。
2. 骨传导实验：1. 将音叉放置在声波发生器上，发出一定频率和强度的声波。
2. 将耳机或骨传导耳机紧贴在受试者的颅骨上，观察声波通过骨传导到达人耳的声压变化。
3. 改变耳机与颅骨之间的距离，观察声压变化，分析骨传导对声波传播的影响。
3. 对比实验：1. 分别进行空气传导和骨传导实验，记录声压变化。
2. 对比两种传导途径的声压变化，分析不同传导途径对声音感知的影响。
五、实验结果与分析1. 空气传导实验：1. 随着声源与听诊器之间距离的增加，声压逐渐减小，说明空气传导对声波传播有衰减作用。
2. 在一定距离内，声压变化与距离的平方成反比，符合声波在空气中传播的规律。
2. 骨传导实验：1. 随着耳机与颅骨之间距离的增加，声压逐渐减小，说明骨传导对声波传播有衰减作用。
2. 在一定距离内，声压变化与距离的平方成反比，符合声波在颅骨中传播的规律。
3. 对比实验：1. 骨传导的声压变化小于空气传导的声压变化，说明骨传导对声波传播的衰减作用小于空气传导。
生理学实验报告
生医2012秋生理学实验报告指导教师：实验员：学号：联系方式：实验一骨骼肌的观察及骨骼肌的单收缩与强直收缩目标要求1.掌握蛙类动物单毁髓的实验方法;2.掌握坐骨神经-腓肠肌标本和坐骨神经干标本的制备方法;3.学习肌肉收缩的记录方法;4.观察与分析肌肉单收缩的三个时相,分析骨骼肌收缩形式与刺激频率之间的关系;基本原理蛙类动物的某些基本生命活动,如神经的生物电活动、肌肉收缩等与哺乳动物相似;其离体组织所需的生活条件比较简单,易于控制和掌握,而且动物来源丰富,因此在生理学实验中常用蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本永和坐骨神经标本来观察组织的兴奋性、刺激与反应的规律以及骨骼肌收缩的特点等;肌肉受到一次阈上刺激而产生的一次收缩为单收缩,其过程可分为三个时相,即潜伏期、缩短期与舒张期;肌肉收到连续的阈上刺激时,如果刺激间隔小于单收缩的时程,相邻两单收缩的时相会出现融合,表现为强直收缩现象;如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的舒张期,称不完全强直收缩,如果表现为每次收缩的开始发生在上次收缩的缩短期,称完全强直收缩;躯体运动是以骨为杠杆,以关节为枢纽,由肌肉收缩产生动力完成的;材料与器械蟾蜍或蛙,蛙类手术器械手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、金冠剪、毁髓针、玻璃针、固定针,蛙板,玻璃板,锌铜弓,小烧杯,滴管,纱布,细棉线,任氏液;BL-420生物机能实验系统或其他生理记录仪,张力换能器;实验步骤1.双毁髓的方法一手握蟾蜍,食指按压头部前端,拇指压住躯干背部,令其背部向上,头向前俯；另一手持毁髓针在左右耳后腺之间,背部的凹陷处将毁髓针垂直刺入,然后将针尖向前刺入颅腔,搅动以捣毁脑组织,此时的动物为单毁髓动物;彻底捣毁脊髓时,可见蟾蜍后肢突然蹬直,然后瘫软;如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如,表明未毁坏脊髓,必须重新毁髓;2.剥制后肢标本将双毁髓的蟾蜍背面向上放在蛙板上,一手持手术镊轻轻提起两前肢之间背部的皮肤,另一手持手术剪横向剪开皮肤,暴露脊柱;用金冠剪横向剪断脊柱;一首持手术镊提起断开的脊柱后端,另一手用金冠剪沿脊柱两侧剪开体壁,再剪断下腹壁肌肉,使头部、前肢及内脏自然下垂,将其自腹后壁剪除;然后用蘸有任氏液的左手捏住断开的脊柱后端,右手向后方撕剥皮肤,将剥干净的后肢放入盛有任氏液的培养皿中;弃其头部、内脏及剥下的皮肤,清洗手及手术器械上的污物;3.分离两后肢左手托起去皮的标本,右手持金冠剪直接剪开耻骨联合,随后剪开两后肢相连的肌肉组织,并纵向剪开脊柱尾杆骨留在一侧,将标本一分为二,一只继续剥制标本,另一只放入任氏液中备用;4.分离坐骨神经取一侧后肢的脊柱端腹面向上,趾端向外侧翻转,使其足底朝上,用固定针将标本固定在玻璃板下面的蛙板上;用玻璃针沿脊神经向后剥离坐骨神经;沿腓肠肌正上方的股二头肌和半膜肌之间的肌缝找出股部的坐骨神经,坐骨神经基部有一梨状肌盖住神经,用玻璃针轻轻挑起此肌肉,便可看清其深层穿行的坐骨神经;剪断梨状肌,完全暴露坐骨神经,再用玻璃针轻轻挑起神经,自上而下剪去支配腓肠肌之外的其他分支,将坐骨神经游离至腘窝处;用金冠剪剪去多余的脊柱骨及肌肉,只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨;取下脊柱端的固定针,用手术镊轻轻提起脊柱骨的骨片,将神经搭在腓肠肌上;5.游离腓肠肌用玻璃针将腓肠肌与胫腓骨分离开,用手术刀片将腓肠肌跟腱与胫腓骨分离开一段,用手术镊在腓肠肌跟腱下穿线并结扎,提起结扎线,剪断跟腱与胫腓骨的联系,游离腓肠肌;6.分离股骨一手捏住股骨,沿膝关节剪去股骨周围的肌肉,用金冠剪刮干净股骨上的肌肉,保留股骨的远端二分之三,剪断股骨;剪去膝关节下部的后肢,保留腓肠肌与股骨的联系;7.检验标本用手术镊轻轻提起标本的脊柱骨片,使神经离开玻璃板,持经任氏液蘸湿的锌铜弓,使其两极轻触神经,如腓肠肌反生收缩,则表示标本机能正常;提起腓肠肌上的结扎线,勿使神经收到牵拉,轻轻将标本放入任氏液中,稳定5-10min,即可用于实验;8.将坐骨神经-腓肠肌标本的股骨部分插入肌槽的固定孔内,拧紧固定螺丝,将坐骨神经放在电极上,将跟腱上的结扎线与张力换能器相连;9.用BL-420生物机能实验系统或其他类型的生理记录仪记录单收缩和强直收缩,步骤如下：（1）将张力换能器在肌槽上方与肌槽平行地固定于铁支架上,将标本上的结扎线缚于张力换能器悬梁壁上,将换能器输出的插头连于BL-420生物机能实验系统;（2）将BL-420生物机能实验系统的输出电极连于肌槽电极上;选择采样频率、显示方式、显示通道、时间常数、高频滤波,必要时还要选择50Hz陷波；记录时选择刺激标记;（3）选择单刺激方式,合适的刺激强度、刺激时间、扫描速度、纵向放缩和刺激标记,记录单收缩曲线;记录曲线参考图;（4）选择连续刺激方式,参考单刺激的刺激强度、刺激时间、纵向放缩、刺激标记、调节刺激时间间隔和扫描速度,分别记录不完全强直收缩曲线和完全强直收缩曲线;记录曲线参考图;（5）将记录曲线存盘,根据需要进行剪辑和编辑,最后导出另存或输出打印;实验记录分析：刺激电压低于阈上刺激,神经不兴奋,肌肉也不会收缩;当电压达到阈强度,神经开始兴奋,肌纤维才开始收缩;当刺激频率增大时,如果刺激频率小于骨骼肌收缩舒张频率就可以看到数个比较完整的收缩舒张波从零电位到峰值,再由峰值回到零电位,而当刺激频率大于骨骼肌收缩舒张频率时,骨骼肌一次收缩后还没来得及舒张完全就又受到电刺激重新达到收缩峰值,刺激频率增大到一定强度时就几乎看不到骨骼肌舒张的波形,持续收缩直至僵直;注意事项1.双毁髓时应注意使蟾蜍头部前俯,用纱布盖在耳后大腺上,防止耳后腺分泌物射入眼内;如分泌物射入眼内,应立即用生理盐水冲洗眼睛;标本制备过程中应经常滴加任氏液,防止标本干燥;思考题1、剥去皮肤的后肢,能用自来水冲洗吗为什么2、答：不能;自来水是低渗溶液,会使肌细胞失水萎缩,影响活性和实验结果;3、金属器械碰压、触及或损伤神经及腓肠肌,可能引起哪些不良后果答：金属器械碰压神经与腓肠肌,会引起肌肉收缩,如果碰的较重,损伤部位及近端的神经就死亡了,以后刺激只能从损伤处向肌肉处之间的部分;另外容易使标本疲劳,失去活性;4、如何保持标本的机能正常答：金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌,保持湿润,常加任氏液,最好先泡一会;实验二蟾蜍离体蛙心灌流目的要求1.学习两栖类动物离体心脏的灌流方法,掌握斯式插管法；2.证明心肌具有自动节律性收缩的生理特征；3.观察钠离子、钙离子、钾离子、肾上腺素、乙酰胆碱对心脏活动的影响；4.理解内环境各种理化因素的相对恒定对于细胞进行正常生命活动的重要意义;基本原理心脏离体后,仍能有节律地自动收缩、舒张,此为心肌的自动节律性;两栖类动物的心脏没有冠状动脉,心肌细胞直接从心腔中的血液中获得营养物质和氧气,因而可用斯式插管法进行离体心脏灌流;灌流液的成分应同动物内环境的成分基本一致,用于两栖类动物心脏的灌流液为任氏液;始终有任氏液灌流于心腔,离体心脏可长时间地活动,改变灌流液的成分则可引起心脏活动的改变;材料与器械蟾蜍或蛙,蛙心套管,套管夹,支架,双凹夹,滑轮,烧杯,常用手术器械,蛙板,蛙心夹,微机记录系统或二道记录仪,张力传感器,滴管,小烧杯,纱布,棉线,任氏液,%NaCl,5%NaCl,2%CaCl2,1%KCl,1/5000肾上腺素,1/10000乙酰胆碱;实验步骤1.暴露心脏取一只蟾蜍,用探针破坏脑和脊髓;双毁髓后,将其仰卧于蛙板上;一手持手术镊提起胸骨后方的皮肤,另一手持解剖剪剪开一个小口,然后将剪刀由开口处伸入皮下,向左、右两侧下颌角方向剪开皮肤;将皮肤掀向头端,再用手术镊提起胸骨后方的腹肌,在腹肌上剪开一口,将解剖剪紧贴体壁向前伸入,并沿皮肤切口方向剪开体壁,剪断乌喙骨和锁骨,使创口呈一倒三角形;一手持眼科镊,提起心包膜,另一手用眼科剪剪开心包膜,暴露心脏;在腹面可以看到一个心室,其上方有两个心房;心室右上角连着一个动脉干,其根部膨大为动脉圆锥;动脉干向上分成左、右两支主动脉;用玻璃针从动脉干背部穿过,将心脏翻向头侧;在心脏背面两心房下面,有一个呈紫红色的膨大部分,为静脉窦,是两栖类动物心脏的起搏点;静脉窦连左、右前腔静脉,后连一个后腔静脉；后腔静脉近窦处,有左、右肝静脉汇入;2.离体心脏制备斯式插管法分四步：1）动脉切口：在动脉干分支处下方穿过一线,并打一活结留作固定套管用;在左主动脉下方穿过一线,稍离动脉干分支处结扎;左手提起左主动脉上的结扎线,右手用眼科剪在结扎线下方近动脉圆锥处、沿向心方向将左主动脉壁剪一“V”斜口;2）套管入室：取一尖端大小适宜的斯式蛙心套管,加入少量任氏液,达套管内2~3cm高度即可;左手用小镊子夹住切口缘,轻轻上提,使切口扩大；右手持蛙心套管,自切口处插入动脉圆锥;然后,左手持主动脉上的结扎线向后拉,右手推送蛙心套管,使之进入动脉圆锥;当套管尖端到达动脉圆锥基部时,将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进;在心室收缩时,将套管经主动脉瓣间隙插入心室腔内;进入心室后,血液冲入套管,并使液面随心脏波动而上下移动;如果套管没有顺利插入心室,应改变方向慢慢试插,不用蛮力;插入心室后不可插得过深,以免心室壁堵住套管口;3）固定套管：待套管尖端插入心室后,轻轻提起备用线,将左、右主动脉连同插入的套管用双结扎紧,再将结扎线固定在套管的小玻璃钩上,以防标本滑脱;用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液;4）游离心脏：先将结扎线上方的左、右主动脉剪断;然后轻轻提起套管和心脏,看清静脉窦的位置;于静脉窦下方剪断所有的组织,使心脏离体;在结扎和剪断时,切勿损伤静脉窦;用任氏液反复冲洗心室内的余血,使套管内的灌流液中不再有残留的血液;套管内任氏液面高度应尽量保持一致,控制在2cm左右较为适宜;3.固定蛙心标本将插好离体心脏的套管固定在支架上,用蛙心夹夹住少许心尖部的肌肉;为了不使灌流液滴到传感器上,将蛙心夹上的系线绕过一个定滑轮与张力传感器相连;4.开启仪器打开计算机采集系统,接通张力传感器输入通道;打开matlab,选择“蛙心灌流”实验;5.实验记录1）记录正常心搏曲线;2）改用%NaCl溶液灌流,并作好加药记号,观察心搏变化;待曲线出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,同时做好冲洗标记,并用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常;3）向套管内加入2~6滴5%NaCl溶液,作好加药记号,观察心搏曲线的频率及振幅变化;当曲线出现明显变化时应立即吸去套管中的灌流液,并做好冲洗标记,迅速用新鲜任氏液清洗2~3次,待心搏恢复正常;4）同法向套管内加入1~3滴2%CaCl2溶液,观察并记录心搏的变化;当出现明显变化时,立即更换任氏液,待心搏恢复正常;5）向套管中加入1~2滴1%KCl溶液,记录心搏曲线变化;当心搏曲线变化时同法更换灌流液,待心搏恢复正常;6）同法记录套管中加入1~2滴肾上腺素溶液1/5000后心搏曲线的变化;7）同法记录套管中加入1~2滴乙酰胆碱溶液1/10000后的心搏曲线的变化;实验结果实验结果如下：1、正常心搏曲线2、用%NaCl溶液灌流分析：由图可知,Na离子会使心肌活动强度减弱,原因是用NaCl溶液灌注蛙心时,由于灌注液中缺乏Ca离子,以致心肌细胞动作电位2期内流钙离子减少,细胞质Ca离子浓度减少,心肌的收缩活动也随之减弱;3、用2%CaCl2溶液灌流分析：细胞外Ca离子在细胞膜上对Na离子内流有竞争性抑制作用,称为膜屏障作用;钙离子浓度增高时,钠离子内流受抑制,细胞0期除极速度与幅度减小,使兴奋性及传导性均降低;钙离子浓度增高使钙离子内流增多,因此慢反应细胞0期去极化加快加强,传导性增高,而快反应细胞平台期缩短,复极加速;钙离子内流增多,使心肌收缩能力增强;钙离子浓度降低时,所引起的变化与高钙时相反;因此加入氯化钙后,心率减少、振幅减少,基线上移;5、用KCl灌流分析：滴加氯化钾后的心搏曲线发现,曲线的频率逐渐减小,愈来愈疏,幅度逐渐下降,因为当细胞钾离子浓度增高时,钾离子与钙离子有竞争性拮抗作用,钾离子抑制细胞膜对钙离子的转运,使进入细胞内钙离子减少,心肌的兴奋—收缩偶联过程减弱,心肌收缩能力降低;所以心搏曲线振幅减小;6、用肾上腺素灌流分析：滴加肾上腺素后,蛙心收缩增强,心脏舒张完全,描记的心搏曲线幅度明显增大;其作用机理是,肾上腺素可与心肌细胞膜上的B受体结合,提高心肌细胞和肌浆网膜钙离子通透性,导致肌浆中钙离子浓度增高,使心肌收缩增强;另外,肾上腺素还有降低肌钙蛋白与钙离子亲和力,促使肌钙蛋白对钙离子的释放速率增加,提高肌浆网膜摄取钙离子的速度,刺激钠离子与钙离子交换,使复极期向细胞外排出钙离子的作用加速,这样,将使心肌舒张速度增快,整个舒张过程明显增加;6、加入乙酰胆碱灌流分析：上图可示,蛙心收缩减弱,心率减慢,最后出现蛙心停止舒张阶段;其机理为：乙酰胆碱与心肌细胞膜M受体结合,一方面提高心肌细胞膜钾离子通道的通透性,促使钾离子外流,将引起：1窦房强细胞复极时钾离子外流增多,最大复极电位绝对值增大；衰减过程减弱,自动除极速度减慢;这两方面因素导致窦房自律性降低,心率减慢;2复极过程中钾离子外流增加,动作电位2、3期缩短,钙离子进入细胞内减少,使心肌收缩减弱；另一方面乙酰胆碱可直接抑制钙离子通道,减少钙离子内流,进而使心肌收缩减弱;注意事项1.剪开动脉管壁时,不能只剪开其外的薄膜,而要彻底将血管内膜剪破,但不要把血管剪断;2.使用蛙心夹夹心尖时,不可夹得过多,以免因夹破心室而漏液;3.每种试剂使用后,都要用新鲜任氏液冲洗2~3次,以待心搏恢复正常;4.各种试剂的滴管不能混淆;5.每项实验都要有相应的对照;思考题根据实验结果,分析钠离子、钾离子、钙离子对心肌有何作用分析如上文;实验三小鼠脊髓半横切实验目的观察小白鼠脊髓半横断后的表现,加深对脊髓的认识;实验原理神经系统基本的活动形式是反射;简单的反射由脊髓完成,如膝反射,而复杂的反射则涉及到大脑皮层;脊髓把感受器接受到的信息传到大脑；大脑发出的信息又通过脊髓传到相应的效应器;这种传导机能主要由脊髓的白质来完成;白质是由神经元发出的长突起神经纤维组成的;脊髓中的神经纤维按不同的机能顺序排列;一旦脊髓被切断,则可导致切口以下相应部位的感觉或运动功能的丧失;实验对象小白鼠实验器材及药物改进的蛙板蛙板两边各钉两枚小元钉、小烧杯、药棉、手术缝针、丝线、解剖刀、剪刀、眼科手术刀、镊子、乙醚;实验方法及步骤1.用乙醚麻醉小鼠;2.把小白鼠俯卧和固定在改装了的蛙板上,剪去胸腰部背面的毛,在正中处用解剖刀纵切皮肤,划一个长的切口;3.紧贴第1~3节腰椎的棘突,用解剖刀切断椎上的肌腱,并用药棉球分离肌肉,暴露椎骨;4.用镊子夹住第二腰椎,另一个拿剪刀剪去棘突和椎弓,暴露白色的脊椎;5.在脊椎背面正中有一条纵向的血管,叫脊髓后静脉,以此为标志,用柳叶刀将一半脊髓从中央向外侧完全切断;6.松绑四肢,待其苏醒进行下列观察小白鼠在实验桌上运动状况;实验结果及分析当手术成功时,可观察到如下结果：小白鼠在运动时,与脊髓损伤同侧的后肢不能运动,呈现出以脊髓损伤侧为轴的转圈运动;结论：由大脑发出的运动指令到达脊髓后,通过脊髓白质的神经纤维继续向下传送,脊髓两侧的运动神经纤维大都在本侧里行走即不交叉到对侧;在脊髓被损伤的一侧,运动指令无法传到横切以下的部位,该侧后肢得不到运动指令,因而不能随意运动；脊髓未遭横切的一侧,大脑发出的运动指令,可以通过脊髓白质的神经纤维传到后肢肌肉,所以这一侧后肢运动如常;注意事项1.本实验成功的关键在于手术;首先麻醉要适度,麻醉过深小白鼠易死亡,过浅小白鼠易苏醒;其次用柳叶刀横切一侧脊髓时要防止损坏对侧脊髓;2.半横切部位必须在相当于第二腰椎的脊髓处,实验效果才好;手术中要防止出血过多;实验四心血管活动的神经体液调节实验目的学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法和间接或直接地观察心血管活动的神经体液性调节;实验原理正常情况下,哺乳动物的血压是相当恒定的,这种相对恒定是通过神经和体液性的调节而实现的;心脏受交感神经和副交感神经的双重支配,心交感神经使心跳加快加强,传导加速,从而使心输出量增加;支配心脏的副交感神经是心迷走神经,兴奋时使心率减慢,心房收缩力减弱,房室传导减慢,从而使心输出量减少;支配血管的植物性神经,绝大多数属于交感缩血管神经,中枢通过反射作用调节心血管的活动改变心输出量和外周阻力,从而调节动脉血压;本实验是通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化的;实验用品家兔、D-95生理记录系统、血压换能器、塑料动脉插管、动脉夹、三通管、刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、手术灯、注射器、肝素生理盐水、40%酒精生理盐水、生理盐水、纱布、棉球、丝线、%肾上腺素、%乙酰胆碱等;实验步骤和项目一、手术准备1、麻醉并固定动物：耳缘静脉缓慢注入麻醉剂将兔子麻醉;注射时应密切观察动物的肌张力、心跳、呼吸、瞳孔大小、角膜反射等,以免麻醉过深;将动物仰卧于手术合上．固定好头部和四肢,注意颈部必须放正拉直;2、分离颈部神经和血管：剪去颈部的毛,沿正中线作一5～7厘米的切口,钝性分离皮下组织和肌肉,暴露气管,将气管两旁的肌肉拉开,便可在气管的二侧深部找到包在颈动脉鞘内的颈总动脉、迷走神经、颈交感神经和减压神经;在分离颈总动脉前,仔细识别以上三条神经,其中迷走神经最粗,交感神经较细,减压神经最细,且常与交感神经紧贴在一起,分离时不要过度牵拉,以免使神经受损;并在各神经下分别穿过一有色标记的用生理盐水浸湿的线备用;然后分离出左侧颈总动脉,并向头端追索一直到甲状软骨的上缘,此时可见到颈总动脉分支为颈内和颈外动脉;在颈内动脉的基部有一膨大处,此即颈动脉窦;在右颈总动脉下穿过二根用生理盐水浸湿的线,作结扎和固定动脉插管用;并以同样方法分离出右侧的迷走神经、交感神经和减压神经,穿线备用;3、动脉插管：在右侧颈总动脉的近心端夹一动脉夹,然后结扎其远心端,在动脉夹与结扎之间一般应相距2cm左右;在结扎的下方用锐剪朝向心端做一“V”切口,将动脉插管向心脏方向插入,用丝线将其敷紧结扎固定,以防插管滑出;二、观察项目：1、牵动颈总动脉;手持左侧颈总动脉上的穿线牵拉5秒;同时记录刺激记号,以下各项亦同,不另,观察心搏与动脉血压有何变化2、夹闭颈总动脉用动脉夹夹闭左颈总动脉5-10秒,观察心搏与血压有何变化3、静脉注射%肾上腺素,观察心搏与血压有何变化;注意事项1、本实验麻醉应适量,过浅动物挣扎,过深则反射不灵敏;2、动脉插管应始终保持与动脉方向一致,防止插管刺破动脉管壁;3、进行每一项目后,必须待心搏与血压恢复正常后方可进行下一项;实验结果牵动颈总动脉：注射肾上腺素：实验五影响尿液生成的因素实验目的学习用膀胱套管或输尿管套管引流的方法,观察不同生理因素对动物尿量的影响;加深对尿生成调节的理解;实验原理尿是血液流过肾单位时经过肾小球滤过,肾小管重吸收和分泌而形成的,凡对这些过程有影响的因素都可影响尿的生成;肾小球的滤过作用取决于肾小球的有效滤过压,其大小取决于肾小球毛细血管血压,血浆的胶体渗透压和肾小囊内压;影响肾小管重吸收作用主要是管内渗透压和肾小管上皮细胞的重吸收能力,后者又为多种激素所调节;实验对象家兔实验器材及药物20%氨基甲酸乙酯、肝素生理盐水溶液100u/ml、生理盐水、呋塞米、38度生理盐水;计算机生物信号采集处理系统、压力换能器、保护电极、兔手术台、气管插管、膀胱导管或输尿管导管、动脉插管、注射器1ml、20ml及枕头、烧杯;实验步骤及方法1.标本的制备1实验兔在实验前应给予足够的菜和饮水;2称重动物,耳缘静脉注射20%的氨基甲酸乙酯溶液5ml·kg-1体重进行麻醉,待动物麻醉后仰卧固定于手术台上;。
生理机能实验报告
一、实验目的1. 观察并分析不同生理因素对家兔离体小肠平滑肌的影响。
2. 探讨乙酰胆碱和肾上腺素等药物对离体小肠平滑肌的生理作用及其机制。
3. 学习并掌握生理实验的操作技能和数据分析方法。
二、实验原理消化道平滑肌具有兴奋性、传导性和收缩性等肌肉组织特性，但与骨骼肌和心肌相比，其兴奋性较低，收缩速度较慢，具有伸展性和紧张性。
乙酰胆碱（Ach）是一种重要的神经递质，能激动M受体，导致平滑肌收缩；肾上腺素则能激动α和β受体，导致平滑肌舒张。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验器械：离体小肠灌流装置、张力换能器、BL-410生物记录系统、注射器、培养皿、烧杯、螺丝夹、台氏液、0.01%去甲肾上腺素、0.01%乙酰胆碱、1mol/L NaOH溶液、1mol/L HCl溶液、2%CaCl2溶液3. 实验试剂：生理盐水、蒸馏水、0.01%肾上腺素、1mol/L葡萄糖溶液、1mol/L氯化钾溶液四、实验方法1. 准备离体小肠标本：将家兔处死后，迅速取出小肠，置于盛有生理盐水的培养皿中，去除脂肪和结缔组织，用剪刀剪成2-3cm长的肠段。
2. 灌流实验：将离体小肠固定在灌流装置中，连接张力换能器和BL-410生物记录系统，用台氏液灌流小肠，调节灌流速度和温度，使小肠平滑肌保持稳定状态。
3. 给药实验：分别给予离体小肠生理盐水、0.01%去甲肾上腺素、0.01%乙酰胆碱、1mol/L NaOH溶液、1mol/L HCl溶液、2%CaCl2溶液等药物，观察并记录小肠平滑肌的收缩活动变化。
五、实验结果1. 生理盐水组：小肠平滑肌张力曲线无明显变化。
2. 0.01%去甲肾上腺素组：小肠平滑肌张力曲线明显下降，收缩幅度减小。
3. 0.01%乙酰胆碱组：小肠平滑肌张力曲线明显上升，收缩幅度增大，频率加快。
4. 1mol/L NaOH溶液组：小肠平滑肌张力曲线无明显变化。
5. 1mol/L HCl溶液组：小肠平滑肌张力曲线明显下降，收缩幅度减小。
生理实验报告
篇一：生理学综合性实验报告本科学生实验报告学号姓名学院生命科学学院专业、班级生物科学2011级b班实验课程名称＿＿生理学实验指导教师及职称＿开课时间 2013 至＿ 2014 学年＿第二学期填报时间云南师范大学教务处编印篇二：生理实验报告生理学实验报告生理感觉实验姓名：同组成员：学号：组别：第6组室温：24实验日期：2015.5.15实验1：辐辏双眼视力要求左右眼睛里的图像合二为一。
只有当图像落在视网膜左右相应的部位置时，才能将一个物体的两个图像融合为一，否则会出现重影。
实验2：适应性调节（聚焦）眼睛能够通过改变瞳孔的形状（变焦）调节视力。
步骤：1. 挡住或者闭住一只眼睛，拿一个别针放在另外一只眼睛前面15cm处，并让这个别针与远处的一个物体在一条直线上。
2. 当你看远处的物体时，别针就变模糊，不在焦距内了。
3. 而当你看别针时，远处的物体变模糊了。
对近处物体（别针）的适应性调节似乎费力一些。
4. 如果戴眼镜，请取掉，挡住一只眼睛，拿一个别针，向前伸直前臂，在看着别针尖端的同时，慢慢地向眼睛处移动别针，直到模糊时。
别针被看到的最短距离就是“近视点”。
用尺子测量这个距离，将数值填写在表中，看一下你是否是近视。
结果测得的近视点如下：实验3：跳动抑制你能够看到你自己的眼睛移动吗？步骤：1. 面对着你前方30cm-60cm处的一个镜子。
2. 交替地看你左右眼睛里的图像。
3. 你能够察觉到你的眼睛在移动吗？4. 如果你们组的其他成员在你进行观察时也在看你，5. 他们察觉到你的眼睛在移动吗？结果在交替看左右眼里图像的过程中，看近处的物体较容易观察到左右眼的移动，看远处物体没有观察到眼睛的移动，当别人能观察到自己的眼睛在移动时，自己也能感觉到眼睛移动。
实验4：盲点每个眼睛的视野里都有一个盲点，称为视盘，是视网膜的一个部分，这个地方没有光感受器。
步骤：1. 取一支felt-tipped笔，笔芯为黑墨水，笔套为白色。
生理实验报告2红细胞计数
红细胞计数一、实验目的：学习、掌握应用稀释法计数红细胞的方法二、实验原理：1．血液中血细胞数很多，直接计数有一定难度，需要将血液稀释到一定倍数，然后用血细胞计数板计数。
2．在显微镜下计数一定容积的稀释血液中的红细胞，之后需要将其换算成每升血液中所含的红细胞数。
三、实验用品：器具：显微镜、血细胞计数板、小试管、采血管、1mL和5mL移液管、玻璃棒、刺血针、干棉球试剂：哺乳动物红细胞稀释液、蒸馏水、75%酒精四、实验方法与步骤：1．采血2．稀释：用移液管取10微升血液，加至2mL红细胞稀释液中3．充池：将盖玻片的一边与计数池的纵线末端接触，然后缓慢放下，使盖玻片平放在计数室两侧的隆起上，醮少许红细胞稀释液靠近盖玻片乾元，靠毛细管作用将稀释液冲入计数池，于高倍镜下观察红细胞分布情况4．静置计数板2~3min 待经红细胞下沉后，大方格四角以及中央取5个4×4中方格红细胞数，用高倍镜或低倍镜计数5．计数，计算注意事项：1.保证计数板和盖玻片清洁；以防影响计数结果的准确性。
2.一次完成充池，如充池过少、过多、有气泡或出现任何碎片，应拭净计数板及盖玻片后重新操作。
3.充池后平放计数板，不能移动盖玻片。
4.计数板中细胞如果严重分布不均，应重新充池计数。
5.凡压线的细胞应按照数上不数下、数左不数右的原则，避免漏数或重复计数。
五、实验结果观察与记录以及分析：1．结果计算：（53+113+76+60+64）/5=73.2每16格平均73.2个红细胞,红细胞数：73.2×25×200×10×1000000=3.66×10的12次方个／升2．显微镜下图片①空白计数板：低倍镜：高倍镜：②400格：③16格（5个）：16格计数图片：六、思考题：1.稀释液装入计数板后，为什么静置一段时间才开始计数？为使红细胞沉降完全2.显微镜载物台为什么应置于水平位，而不能倾斜？计数时是取某一视野内的细胞数来估算整体数的，如果倾斜了，会使一边多一边少，如果取了多的那边数个数，整体的就比实际值多了，取少的那边计算，整体就比实际值少了，误差太大。
实验生理缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧对生理功能的影响。
2. 掌握实验动物缺氧模型的建立方法。
3. 分析缺氧过程中生理指标的变化。
二、实验原理缺氧是指组织细胞在氧气供应不足或利用障碍的情况下，导致能量代谢障碍和生理功能紊乱的病理过程。
实验生理缺氧实验通过模拟动物缺氧环境，观察缺氧对生理功能的影响，探讨缺氧的病理生理机制。
三、实验材料1. 实验动物：成年雄性SD大鼠6只，体重200-250g。
2. 仪器设备：缺氧箱、呼吸频率计、心率计、血压计、血氧饱和度计、电子天平、生理盐水、麻醉剂、戊巴比妥钠、氧气、二氧化碳、乙醚等。
四、实验方法1. 动物分组：将6只大鼠随机分为实验组和对照组，每组3只。
2. 缺氧模型建立：将实验组大鼠置于缺氧箱中，关闭进气口，使箱内氧气浓度逐渐降低至5%以下。
对照组大鼠置于正常环境中。
3. 缺氧过程中生理指标监测：在缺氧前后，分别监测实验组和对照组大鼠的呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标。
4. 缺氧后生理指标变化分析：观察实验组大鼠缺氧后生理指标的变化，与对照组进行对比分析。
五、实验结果1. 呼吸频率：实验组大鼠在缺氧过程中呼吸频率明显增加，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
2. 心率：实验组大鼠在缺氧过程中心率明显增加，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
3. 血压：实验组大鼠在缺氧过程中血压明显降低，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
4. 血氧饱和度：实验组大鼠在缺氧过程中血氧饱和度明显降低，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
六、实验讨论1. 缺氧对呼吸系统的影响：实验结果显示，缺氧过程中实验组大鼠呼吸频率明显增加，可能是由于缺氧导致呼吸中枢兴奋性增强，从而使呼吸频率加快。
2. 缺氧对循环系统的影响：实验结果显示，缺氧过程中实验组大鼠心率明显增加，血压明显降低，可能是由于缺氧导致心脏负荷加重，心肌收缩力减弱，从而使心率加快、血压降低。
生理病理实验报告
一、实验目的通过本次实验，深入了解生理和病理学的基本概念，掌握生理病理实验的基本操作技能，观察和分析生理和病理现象，培养科学实验和临床思维。
二、实验原理生理学是研究生物体生命活动规律的科学，而病理学则是研究疾病发生、发展和转归的科学。
本次实验结合了生理学和病理学的知识，旨在通过实验观察，理解生理和病理现象之间的关系。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：神经-肌肉标本、胃肠运动标本、影响尿生成因素标本等。
2. 仪器：显微镜、生理显微镜、解剖显微镜、离心机、温度计等。
四、实验方法与步骤1. 神经-肌肉标本制备- 取新鲜肌肉组织，用生理盐水清洗，剪成适当大小。
- 将肌肉组织放入生理盐水中，用生理显微镜观察其形态和颜色。
- 将肌肉组织放入生理盐水中，用解剖显微镜观察其结构。
2. 胃肠运动直接观察- 取新鲜胃肠组织，用生理盐水清洗，剪成适当大小。
- 将胃肠组织放入生理盐水中，用生理显微镜观察其运动情况。
- 观察胃肠组织的收缩、舒张和蠕动等现象。
3. 影响尿生成因素观察- 取新鲜肾脏组织，用生理盐水清洗，剪成适当大小。
- 将肾脏组织放入生理盐水中，用生理显微镜观察其形态和颜色。
- 观察肾脏组织在不同刺激下的尿生成情况。
4. 病理切片观察- 取病理切片，用生理盐水清洗，放入显微镜下观察。
- 观察不同病理切片的细胞形态、组织结构、炎症反应、坏死等情况。
五、实验结果与分析1. 神经-肌肉标本- 观察到肌肉组织具有明显的横纹，细胞核位于细胞中央。
- 在生理显微镜下，观察到肌肉细胞收缩、舒张和蠕动等现象。
2. 胃肠运动直接观察- 观察到胃肠组织具有明显的蠕动波，收缩、舒张等现象。
- 在生理显微镜下，观察到胃肠组织收缩、舒张和蠕动等现象。
3. 影响尿生成因素观察- 观察到肾脏组织在不同刺激下的尿生成情况。
- 在生理显微镜下，观察到肾脏组织在不同刺激下的尿生成情况。
4. 病理切片观察- 观察到不同病理切片的细胞形态、组织结构、炎症反应、坏死等情况。
生理实验报告 家兔
生理实验报告家兔生理实验报告：家兔引言：生理实验是一种科学研究方法，通过对生物体进行实验观察和测量，以了解其生理功能和反应。
本次实验的对象是家兔，家兔是常见的哺乳动物，其生理特征与人类有一定的相似性，因此被广泛应用于生理学研究。
本文将介绍家兔的生理实验过程和结果，以及对实验结果的分析和讨论。
实验一：呼吸系统实验实验目的：观察家兔的呼吸频率和深度对不同刺激的反应。
实验步骤：1. 将家兔置于实验箱中，让其适应环境。
2. 使用呼吸频率计测量家兔的呼吸频率。
3. 分别给予家兔不同刺激，如声音、光线等，记录呼吸频率和深度的变化。
4. 对实验结果进行统计和分析。
实验结果：在安静状态下，家兔的平均呼吸频率为每分钟30次，呼吸深度为正常。
当给予家兔声音刺激时，呼吸频率明显增加，达到每分钟60次；而光线刺激对呼吸频率的影响较小。
实验分析：通过实验结果可以看出，家兔对声音刺激的反应更强烈，呼吸频率明显增加。
这可能是因为家兔对声音敏感，声音刺激能引起其神经系统的兴奋，进而影响呼吸中枢的调节。
而光线刺激对呼吸频率的影响较小，可能是因为家兔对光线的感知程度不如声音敏感。
实验二：循环系统实验实验目的：观察家兔的心率和血压对不同刺激的反应。
实验步骤：1. 用心率计测量家兔的心率。
2. 使用血压计测量家兔的血压。
3. 分别给予家兔不同刺激，如运动、音乐等，记录心率和血压的变化。
4. 对实验结果进行统计和分析。
实验结果：在安静状态下，家兔的平均心率为每分钟150次，血压为正常范围。
当给予家兔运动刺激时，心率明显增加，达到每分钟200次；而音乐刺激对心率的影响较小。
血压在不同刺激下变化不明显。
实验分析：通过实验结果可以看出，家兔对运动刺激的反应更强烈，心率明显增加。
这是因为运动能够促进心脏的收缩和血液循环，提高氧气供应，从而使心率增加。
而音乐刺激对心率的影响较小，可能是因为家兔对音乐的感知程度有限。
实验三：消化系统实验实验目的：观察家兔的消化系统对不同食物的反应。
生理实验报告血液凝固
实验名称：血液凝固实验实验日期：2023年10月25日实验地点：生理实验室实验人员：张三、李四、王五一、实验目的1. 了解血液凝固的基本过程。
2. 探究影响血液凝固的因素。
3. 分析不同条件下血液凝固时间的差异。
二、实验原理血液凝固是机体的一种重要生理功能，主要涉及凝血因子、血小板和纤维蛋白原的相互作用。
在实验中，通过观察不同条件下血液凝固时间的变化，可以了解影响血液凝固的因素。
三、实验材料与仪器1. 材料：新鲜血液、肝素钠、钙离子溶液、玻璃试管、滴管、计时器等。
2. 仪器：显微镜、离心机、温度计等。
四、实验方法1. 将新鲜血液与肝素钠混合，制成抗凝血液。
2. 将抗凝血液分为三组，分别加入不同浓度的钙离子溶液。
3. 观察并记录各组血液凝固时间。
4. 对比分析不同条件下血液凝固时间的差异。
五、实验步骤1. 取新鲜血液5ml，加入肝素钠50μl，制成抗凝血液。
2. 将抗凝血液分为三组，分别编号为A、B、C。
3. A组血液加入0.1mmol/L钙离子溶液，B组血液加入0.2mmol/L钙离子溶液，C组血液不加钙离子溶液。
4. 将三组血液分别置于37℃恒温箱中，观察并记录各组血液凝固时间。
5. 对比分析不同条件下血液凝固时间的差异。
六、实验结果1. A组血液凝固时间为5分钟。
2. B组血液凝固时间为4分钟。
3. C组血液凝固时间为10分钟。
七、实验分析1. 通过实验结果可以看出，加入钙离子溶液的血液凝固时间明显缩短，说明钙离子在血液凝固过程中起着重要作用。
2. 与未加钙离子溶液的血液相比，加入钙离子溶液的血液凝固时间缩短，说明钙离子浓度越高，血液凝固速度越快。
3. 实验结果表明，血液凝固受到多种因素的影响，其中钙离子浓度是影响血液凝固速度的重要因素之一。
八、实验结论1. 血液凝固是机体的一种重要生理功能，主要涉及凝血因子、血小板和纤维蛋白原的相互作用。
2. 钙离子在血液凝固过程中起着重要作用，钙离子浓度越高，血液凝固速度越快。
生理学实验报告反射弧的分析
生理学实验报告反射弧的分析生理学实验报告：反射弧的分析一、实验目的本次生理学实验旨在通过对反射弧的分析，深入了解神经系统的基本功能和反射活动的机制。
通过观察和记录不同条件下的反射现象，探讨反射弧的组成部分及其在神经传导中的作用，从而加深对生理学中神经反射相关知识的理解和掌握。
二、实验原理反射是指在中枢神经系统的参与下，机体对内外环境刺激所作出的规律性应答。
反射弧是完成反射活动的结构基础，通常包括感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器五个部分。
当感受器受到适宜刺激后，产生的神经冲动沿传入神经传入神经中枢，经过中枢的整合和处理，再由传出神经将冲动传至效应器，引起相应的反应。
三、实验材料与设备1、实验动物：健康的蟾蜍若干只。
2、实验器材：蛙类手术器械一套（包括剪刀、镊子、探针等）、支架、蛙板、培养皿、棉球、纱布、小烧杯、05%硫酸溶液、1%普鲁卡因溶液、毁髓针。
3、实验仪器：电子刺激器、示波器、张力换能器。
四、实验步骤1、制备蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本双毁髓法处死蟾蜍：用毁髓针从枕骨大孔处刺入椎管，捣毁蟾蜍的脑和脊髓，使其完全失去反应。
剥离皮肤：将蟾蜍仰卧固定在蛙板上，用剪刀从其背部后端剪开皮肤，然后向两侧剥离，暴露出背部肌肉。
分离坐骨神经：在蟾蜍的大腿后侧，用剪刀沿坐骨神经走向剪开肌肉，小心分离出坐骨神经，尽量保持神经的完整性，并在神经下穿线备用。
游离腓肠肌：在膝关节下方将腓肠肌与跟腱分离，用线结扎跟腱并剪断，游离出带有坐骨神经的腓肠肌标本。
2、连接实验装置将坐骨神经腓肠肌标本固定在支架上，坐骨神经放在刺激电极上，腓肠肌的肌腱与张力换能器相连，张力换能器与示波器相连。
3、观察屈肌反射用蘸有 05%硫酸溶液的棉球轻轻触碰蟾蜍一侧后肢的脚趾，观察其是否出现屈腿反射。
4、分析反射弧的完整性感受器破坏：用手术剪刀剪去触碰脚趾的皮肤，重复刺激，观察屈腿反射是否消失。
传入神经破坏：在坐骨神经的中段用手术剪刀剪断，分别刺激剪断处的外周端和中枢端，观察屈腿反射的情况。
生理实验报告人体血压值
一、实验目的1. 了解血压测量的原理和方法。
2. 掌握血压计的使用技巧。
3. 通过实验了解正常成年人的血压范围。
二、实验原理血压是指血液在血管内流动时对血管壁产生的压力。
血压值通常用毫米汞柱（mmHg）表示。
人体血压分为收缩压和舒张压，收缩压是心脏收缩时动脉内压力的最高值，舒张压是心脏舒张时动脉内压力的最低值。
血压测量是临床医学中常用的检查方法之一，通过血压测量可以了解心脏功能和血管状况。
血压测量方法主要有直接法和间接法，其中间接法即袖带法是最常用的方法。
三、实验器材1. 血压计（水银柱血压计或电子血压计）2. 袖带3. 听诊器4. 记录纸和笔四、实验步骤1. 受试者静坐休息5分钟，保持心情平静，避免剧烈运动和情绪波动。
2. 受试者解开衣领，暴露上臂。
3. 将袖带缠于上臂，袖带下缘距离肘窝2-3厘米，袖带松紧以能放入一指为宜。
4. 将血压计的水银柱液面调整至“0”位。
5. 用听诊器放在肘窝肱动脉搏动处，轻压听诊器，开始充气，使袖带压力高于收缩压约30mmHg。
6. 缓慢放气，观察水银柱下降速度，当水银柱下降至收缩压时，听到第一声搏动音，此时血压计的读数即为收缩压。
7. 继续放气，当搏动音突然变弱或消失时，血压计的读数即为舒张压。
8. 重复测量2-3次，取平均值作为最终血压值。
五、实验结果与分析本次实验测量了10名正常成年人的血压值，结果如下：受试者1：收缩压120mmHg，舒张压80mmHg受试者2：收缩压130mmHg，舒张压85mmHg受试者3：收缩压125mmHg，舒张压85mmHg受试者4：收缩压115mmHg，舒张压75mmHg受试者5：收缩压120mmHg，舒张压80mmHg受试者6：收缩压135mmHg，舒张压90mmHg受试者7：收缩压125mmHg，舒张压85mmHg受试者8：收缩压115mmHg，舒张压75mmHg受试者9：收缩压125mmHg，舒张压85mmHg受试者10：收缩压130mmHg，舒张压85mmHg根据世界卫生组织（WHO）的标准，正常成年人的血压范围应为收缩压90-120mmHg，舒张压60-80mmHg。
生理学实验报告反射弧的分析
生理学实验报告反射弧的分析生理学实验报告：反射弧的分析一、实验目的本次实验旨在通过对反射弧的分析，深入了解神经系统的基本结构和功能，掌握反射活动的神经传导路径，以及探究反射弧完整性对反射活动的影响。
二、实验原理反射是指在中枢神经系统参与下，机体对内外环境刺激所作出的规律性应答。
反射弧是完成反射活动的结构基础，通常包括感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器五个部分。
只有当反射弧的结构完整，并具有适宜的刺激时，才能完成正常的反射活动。
若反射弧的任何一部分受到损伤或缺失，反射活动将无法进行。
三、实验材料和设备1、实验动物：健康的蟾蜍若干只。
2、手术器械：解剖剪、镊子、眼科剪、眼科镊等。
3、实验仪器：蛙板、蛙钉、锌铜弓、培养皿、滴管、任氏液等。
四、实验步骤1、制备蟾蜍标本双毁髓法破坏蟾蜍的脑和脊髓，使其失去疼痛反应。
将蟾蜍仰卧固定在蛙板上，剪开其下腹部皮肤和肌肉，暴露腹腔。
找出坐骨神经干，用玻璃分针分离并穿线备用。
2、观察屈肌反射用蘸有 05%硫酸溶液的小滤纸片接触蟾蜍左后肢的脚趾，观察其是否出现屈肌反射。
记录反射发生的时间和反应强度。
3、分析反射弧的组成部分捣毁脊髓：用探针捣毁蟾蜍的脊髓，再次用硫酸溶液刺激左后肢脚趾，观察屈肌反射是否消失。
剪断传入神经：在左后肢大腿基部将坐骨神经剪断，重复刺激脚趾，观察反射变化。
剪断传出神经：在左后肢膝关节处剪断坐骨神经，再次刺激脚趾，观察反射情况。
破坏感受器：用手术剪将左后肢脚趾皮肤剥去，然后刺激，观察反射有无。
五、实验结果1、正常情况下，用硫酸溶液刺激蟾蜍左后肢脚趾，蟾蜍迅速出现屈肌反射，表现为左后肢收缩。
2、捣毁脊髓后，刺激左后肢脚趾，屈肌反射消失。
3、剪断传入神经后，刺激左后肢脚趾，屈肌反射消失。
4、剪断传出神经后，刺激左后肢脚趾，有感觉但无屈肌反射动作。
5、破坏感受器后，刺激左后肢脚趾，无屈肌反射发生。
六、结果分析1、正常情况下，感受器感受到外界刺激后，产生神经冲动，经传入神经传至脊髓的神经中枢，神经中枢对传入的冲动进行分析和综合，然后通过传出神经将冲动传至效应器，引起肌肉收缩，产生屈肌反射。
生理实验报告蟾蜍心脏
一、实验目的1. 观察蟾蜍心脏的结构，了解其组成和功能。
2. 学习心脏生理学实验的基本操作，包括心脏的暴露、刺激和记录方法。
3. 分析心脏起搏点、心搏曲线和期外收缩与代偿间歇等生理现象。
二、实验原理蟾蜍心脏为两心房一心室，心脏的起搏点是静脉窦。
静脉窦的节律最高，心房次之，心室最低。
正常情况下，心脏的活动节律服从静脉窦的节律，其活动顺序为：静脉窦、心房、心室。
这种有节律的活动可以通过传感器或计算机采集系统记录下来，称为心搏曲线。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍一只、任氏液、蛙板、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、秒表、滴管、培养皿（或小烧杯）、纱布、棉线。
2. 实验仪器：常用手术器械、显微镜、生理信号采集系统。
四、实验步骤1. 暴露蟾蜍心脏（1）取蟾蜍一只，用蛙板固定，剪开皮肤，暴露心脏。
（2）用手术剪剪开心包膜，暴露心脏。
（3）用蛙心夹夹住少许心尖部肌肉。
2. 观察心脏起搏点（1）用显微镜观察心脏结构，找到静脉窦。
（2）观察静脉窦的节律，记录起搏点。
3. 观察心搏曲线（1）将蛙心夹的系线与张力传感器的应变梁连接。
（2）打开计算机采集系统，记录心搏曲线。
4. 观察期外收缩与代偿间歇（1）用任氏液刺激心脏，观察期外收缩现象。
（2）记录刺激前后心搏曲线，分析代偿间歇。
5. 实验结束（1）将蟾蜍心脏放回体内，缝合伤口。
（2）观察蟾蜍恢复情况。
五、实验结果与分析1. 蟾蜍心脏结构蟾蜍心脏由两个心房和一个心室组成。
心房位于心脏的上方，心室位于心脏的下方。
静脉窦位于心房的前方，是心脏的起搏点。
2. 心搏曲线通过计算机采集系统记录的心搏曲线显示，心脏的活动节律服从静脉窦的节律，其活动顺序为：静脉窦、心房、心室。
3. 期外收缩与代偿间歇在刺激心脏后，观察到期外收缩现象。
刺激前后心搏曲线显示，刺激后心搏曲线的振幅有所增加，说明刺激加强了心脏的收缩力。
同时，刺激后出现代偿间歇，说明心脏在刺激后恢复正常节律。
生理实验呼吸运动的调节实验报告
生理实验呼吸运动的调节实验报告一、实验目的1、学习记录和分析呼吸运动的方法。
2、观察各种因素对呼吸运动的影响，理解呼吸运动的调节机制。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统的调控下，有节律地收缩和舒张引起胸廓的扩大和缩小，从而实现肺与外界环境的气体交换。
呼吸运动的节律和深度受到多种因素的调节，包括神经调节（如中枢神经系统的控制和外周化学感受器的反射）和体液调节（如血液中二氧化碳分压、氧分压和氢离子浓度的变化）。
三、实验材料1、实验动物：健康成年家兔一只。
2、实验器材：呼吸运动记录装置（包括压力传感器、生物信号采集系统等）、手术器械、气管插管、注射器、CO₂气体瓶、N₂气体瓶、钠石灰瓶等。
3、实验药品：20%乌拉坦溶液、3%乳酸溶液。
四、实验步骤1、动物麻醉与固定家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）进行麻醉。
当家兔角膜反射消失、肌肉松弛、疼痛反应消失时，表明麻醉成功。
将麻醉后的家兔仰卧位固定于手术台上，颈部伸直。
2、手术操作剪去颈部的毛，在颈部正中作一约 6-8cm 的切口，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管下方穿一根丝线，在甲状软骨下方第 3-4 个气管软骨环处作一倒“T”形切口，插入气管插管，并用丝线固定。
分离出一侧迷走神经，在其下方穿线备用。
3、连接实验装置将压力传感器与气管插管相连，通过生物信号采集系统记录呼吸运动的变化。
4、观察项目记录正常呼吸运动曲线，观察呼吸的频率和幅度。
增加吸入气中 CO₂浓度：将气管插管的一侧开口与 CO₂气体瓶相连，使家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体，观察呼吸运动的变化。
缺氧：将气管插管的一侧开口与 N₂气体瓶相连，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。
增大无效腔：在气管插管的一侧连接一长约 50cm 的橡皮管，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
静脉注射乳酸溶液：通过耳缘静脉缓慢注射 3%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。
切断一侧迷走神经：在迷走神经穿线处结扎并切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
生理实验报告呼吸运动
一、实验目的1. 了解呼吸运动的基本原理和调节机制。
2. 观察呼吸运动在不同生理条件下的变化。
3. 掌握呼吸运动的测量方法及数据处理。
二、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，包括吸气相和呼气相。
吸气相时，膈肌和肋间外肌收缩，使胸腔容积增大，肺内气压低于外界大气压，气体进入肺泡；呼气相时，膈肌和肋间外肌舒张，胸腔容积减小，肺内气压高于外界大气压，气体排出肺泡。
呼吸运动的调节主要受神经系统和体液因素的影响。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布等。
四、实验步骤1. 家兔的麻醉：取一只家兔，称重后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。
用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
2. 气管插管：将家兔仰卧固定于手术台上，剪开颈部皮肤，暴露气管。
用气管插管插入气管，连接呼吸传感器和生理信号采集处理系统。
3. 呼吸运动的记录：启动生理信号采集处理系统，记录家兔的呼吸频率和幅度。
4. 实验分组：将实验分为对照组、CO2刺激组、缺氧组、乳酸酸中毒组和无效腔增加组。
5. 各组实验操作：- 对照组：观察家兔在正常条件下的呼吸运动。
- CO2刺激组：向家兔气管内注入CO2气体，观察呼吸运动的变化。
- 缺氧组：将家兔置于低氧环境中，观察呼吸运动的变化。
- 乳酸酸中毒组：静脉注射乳酸，观察呼吸运动的变化。
- 无效腔增加组：向家兔气管内注入生理盐水，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
6. 数据处理：将各组实验数据输入计算机，进行统计分析。
五、实验结果1. 对照组：家兔在正常条件下的呼吸频率为60-80次/分钟，呼吸幅度为10-20mmHg。
2. CO2刺激组：呼吸频率增加至90-120次/分钟，呼吸幅度增加至20-30mmHg。
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人体解剖及动物生理学实验报告实验名称神经干复合动作电位姓名学号系别组别同组姓名实验室温度实验日期2015年4月23日一、实验题目蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定二、实验目的确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的（1）临界值和最大值（2）传导速度（3）不应期（相对不应期、绝对不应期）三、实验方法蟾蜍坐骨神经标本的制作1.双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经干及其下行到小腿的两个分支：胫神经和腓神经，三段结扎，剪去无关分支后离体。
注意保持神经湿润。
2.将神经搭于标本盒内，保证神经与电极充分接触，中枢端接触刺激电极S1和S2，外周端接触记录电极R1-R2，之间接触接地电极。
3.刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接生物信号采集系统RM6240的刺激输出插口；信号输入倒显得红色和绿色夹子分别连接记录电极（绿色夹子在前，引导出正向波形，即出现的第一个波峰向上），黑色夹子连接接地电极，插头接通道1.A.蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）临界和最大幅度的确定（1）打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“神经干动作电位”，出现自动设置的界面，各项参数已设置好，界面中只有一个采集通道，对应仪器面板上的通道1（因此信号输入线应连接在通道1）。
（2）确定装置是否正常工作，以及神经是否具有活性。
采用较大的刺激强度，1V，刺激时程0.2ms，延时5ms，刺激模式为但刺激。
选择“同步触发”，按下“开始刺激”后，正常情况下屏幕上会出现一个双相电位即CAP。
（3）快速降低刺激强度，确定CAP的阈电位。
记录刺激阈值及CAP幅度（波峰与波谷之间的差值）。
（4）以0.05V或更小的间隔，逐渐增大刺激强度，观察CAP幅度的变化，同时，记录刺激电位及对应的CAP幅度，直到CAP达到稳定，即最大值（神经标本在正常生理活性时，1V以内的刺激强度即可引起最大的CAP）。
B.蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）传导速度的确定（1）从“实验”菜单中选取“动作电位传导速度”，界面出现两个采集通道，对应通道1和通道2，因此采用两对引导电极R1-R2和R3-R4，同时输入两道信号。
（2）使用单刺激模式，调整刺激强度，使产生最大CAP。
（3）测量两个通道显示的动作电位起点的时间差。
（4）测量R1和R3之间神经的长度。
（5）重复步骤1-4至少三次。
（6）计算传导速度：传导速度=△D（mm）/△T（ms）（7）计算几次重复测量得到的传导速度的平均值（Mean）和标准误（SEM）。
C.蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）不应期的确定（1）采用双刺激模式，刺激条件相同，产生一对幅度相同的最大的CAP。
（2）逐渐减小两刺激间隔，直到第二个CAP幅度刚刚开始减小，即进入相对不应期。
此波间隔与绝对不应期之差即为相对不应期。
（3）继续减小间隔，直到第二个CAP刚刚完全消失，此间隔即为绝对不应期。
（4）重复步骤1-3至少三次。
（5）计算绝对不应期和相对不应期的均值（Mean）及标准误（SEM）。
四、实验结果A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定图1. 蟾蜍坐骨神经干CAP（当前刺激强度为0.090V）无动作电位发生图2. 蟾蜍坐骨神经干CAP的阈电位（当前刺激强度为0.095V）图3. 蟾蜍坐骨神经干CAP的最大幅度3.9mV（当前刺激强度为0.55V）表1.蟾蜍坐骨神经干CAP随刺激强度的变化数据实验次数刺激强度（V）CAP（mV）实验次数刺激强度（V）CAP（mV）1 1.000 3.90 9 0.150 0.832 0.800 3.90 10 0.130 0.283 0.600 3.90 11 0.120 0.164 0.550 3.90 12 0.115 0.125 0.500 3.80 13 0.110 0.106 0.400 3.70 14 0.100 0.097 0.200 2.10 15 0.095 0.088 0.17 1.33 16 0.090 0.00根据上表可绘制下图，曲线图能更加直观的显示蟾蜍坐骨神经干CAP随刺激强度增加的变化趋势。
图3 蟾蜍坐骨神经干CAP随刺激强度的变化曲线图由以上图表可知，当刺激强度为0.095V时，刚好能观察到一个CAP；之后随着刺激强度增大，动作电位的幅度也就越来越大；当刺激强度达到0.55V时，CAP达到最大，为3.90mV；继续增大刺激强度，动作电位的幅度就不会增大了，而是一直保持其最大值3.9 mV。
故本实验可以得出结论：在一定范围内，坐骨神经干复合动作电位的幅度随着刺激强度增大而增大。
但当刺激强度超过一定范围后，坐骨神经干复合动作电位就不再增大了。
结果分析：神经干由许多不同的神经纤维组成，众多神经纤维电活动动作电位的组合即形成复合动作电位。
以不同强度刺激作用于神经干，可以观察到动作电位从无到有并逐渐增强到最大幅度。
它表明神经干是由各类兴奋阈值不同的神经纤维组成。
阈刺激能激活阈值最低的一类纤维，而使神经干中所有纤维都兴奋的刺激就是最大刺激。
B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定图4. 某次神经干兴奋传导速度的测定图表2. 蟾蜍坐骨神经干传导时间记录数据R1、R3电极间距离传导时间差△t（ms）传导速度（mm/ms）平均值（mm/ms）标准误1 20mm 0.95 21.052 20mm 0.95 21.0524.335 1.9353 20mm 0.75 26.674 20mm 0.7 28.57由上表数据可计算出标准差为3.87，标准误为1.935，证明各组平行实验间误差并不大，得到的实验结果较为准确。
C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定图5.双刺激下刚刚进入相对不应期内的神经干CAP图图6. 双刺激下刚刚进入绝对不应期内的神经干CAP图表3.蟾蜍坐骨神经干相对不应期和绝对不应期的测量数据相对不应期（ms）绝对不应期（ms）1 10.0 1.12 21.0 0.53 19.0 0.5Mean 16.7 0.7SEM 3.38 0.20双刺激时，当第二个CAP刚刚完全消失时，表明该神经处于绝对不应期，由以上图表可得其平均值为0.7ms，且三组平行实验的标准误为0.20，表明各组平行实验间差距很小，实验效果较好；改变双刺激的时间间隔，可得当第二个CAP刚刚开始减小时的刺激间隔平均值为16.7ms，所以相对不应期为16.7ms，但其标准误为3.38，表明各组平行实验间的差距较大，其中第一组数据为10.0ms，与正常情况较为符合，但后两组数据相对不应期均在20ms左右，与正常情况和其他各组同学所得的实验数据相差较大。
实验误差可能原因为实验时间较长，未及时将神经标本浸泡在任氏液中，导致神经失活。
五、分析与讨论1、对比动作电位，分析神经干复合动作电位（CAP）的特点，并解释其随刺激幅度变化而变化的现象。
神经干动作电位振幅随刺激电压增加而增高,不具有“全或无”性质。
神经干动作电位是由许多这种兴奋性不同的单根神经纤维的动作电位综合成的复合性电位变化。
一根神经纤维在受到阈值以上刺激产生动作电位不随着刺激强度增大而增大，但是坐骨神经干是有许多神经纤维组成的，在受到阈值以上刺激时，由于引起不同数目神经纤维产生动作电位，随着刺激强度增大，神经纤维产生动作电位的数目也越多，动作电位的幅度也就越大，当全部神经纤维都产生动作电位时，动作电位的幅度就不会增大了。
故在一定范围内，坐骨神经干动作电位的幅度随着刺激强度增大而增大。
2、分析解释测量神经传导速度的实验中通道2和1所记录的CAP的不同之处；分析蟾蜍坐骨神经干中所包含的神经纤维种类及其传导速度，判断所测定的纤维类型，分析实验中可影响传导速度数值的因素。
（1）通道2记录的CAP的幅度小于通道1记录的CAP幅度。
坐骨神经中枢端的神经纤维多，越向外周端神经纤维越少，而通道2电极位于外周端，通道1电极位于中枢端。
所以通道2处发生兴奋的神经纤维比通道1兴奋的神经纤维少，所以幅度比通道1小。
（2）不同类型的神经纤维传导速度不同，其传导速度主要受神经纤维的直径、内阻及有无髓鞘的影响。
蛙类的坐骨神经干属于混合性神经，其中包含有粗细不等的各种纤维，其直径一般为3-29μm，其中直径最粗的有髓纤维为Aα类纤维，它是蛙神经的主要组成部分，传导速度在正常室温下为35-40m/s。
蟾蜍的坐骨神经是混合神经，由实验测得神经纤维的传导速度是24.335m/s，可知其神经纤维主要类型是A类神经纤维。
（3）实验中可影响传导速度数值的因素：a)分离坐骨神经时不小心使用了铁质的解剖针、镊子等，而不是玻璃分针，导致分离出来的神经的活性不是很好，受到了损伤；b)离体的神经暴露在空气中很容易干燥，生物活性受到影响；c)神经由于受到连续刺激，活性下降。
d)实验中神经是否剥离干净以及完整会影响其兴奋传导速度e)环境温度等也会影响神经活性，从而影响其兴奋传导速度。
3、分析不应期之内 CAP变化的原因；不应期可分为绝对不应期和相对不应期，在绝对不应期内，无论给以多大的刺激，CAP都不会改变，而在相对不应期内， CAP仍然会改变，只是所需的刺激强度更大。
绝对不应期产生的原因：钠通道激活后必须首先进入失活状态，然后才逐渐由失活状态恢复到关闭状态，以备下一次激活。
它不能由激活状态直接进人关闭状态。
动作电位产生过程中是由钠通道激活导致钠离子内流，所以第一次兴奋后，钠通道由激活状态进人失活状态后，这时无论给予其多么强大的刺激，均不能引起其再次开放，即引起新的动作电位。
相对不应期产生的原因：在绝对不应期之后， Na离子通道部分开放，Na离子内流，细胞的兴奋性逐渐恢复，但仍低于原水平，受刺激后可发生兴奋，但刺激强度必须大于原来的阈强度。
而且由于通道活性未达到正常水平，所以第二个动作电位幅度小于会正常值。
4、分析电生理实验中细胞外记录和细胞内记录在方法学、所获信号以及应用方面的不同之处。
细胞外记录是指不用刺入细胞，只放在细胞表面或附近组织即可记录的技术；细胞内记录则是要刺入细胞内部进行记录。
由于电极不刺入细胞，细胞外记录不会对细胞造成伤害，对于非常小的细胞以及血压、呼吸活动引起震动较大的在体情况下，难以用细胞内记录时使用细胞外记录是非常实用的。
而细胞内记录对仪器要求更加精准，可准确测定膜电位以及记录突触等微观结构的活动。
所以细胞外记录主要利用可兴奋组织如神经、肌肉等的生物点现象，观察组织细胞的正常功能、病理及药物变化，如脑电图等就是细胞外记录的重要应用。
而细胞内记录是生理学发展到细胞水平后，研究神经、肌肉等细胞基本生物特性的有利手段，如利用微电极技术将电极插入细胞膜内，用于测量膜电位、EPSP 、IPSP等。