植物生理学实验-3
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告植物生理学实验实验报告摘要：本实验旨在探究植物的生理反应和适应机制。
通过观察植物在不同环境条件下的生长和生理指标的变化，我们可以更好地理解植物的生理过程和适应策略。
本实验采用了盆栽植物的生长观察和测量方法，结合实验室中的设备和技术手段，得出了一系列有关植物生理学的结论。
1. 引言植物生理学是研究植物生长、发育和适应环境的科学，它涉及植物的生理过程、代谢调节、信号传导等方面。
通过实验研究，我们可以揭示植物在不同环境条件下的生理反应和适应机制，为植物的生产和保护提供理论依据。
2. 材料与方法本实验选取了常见的盆栽植物作为实验对象，包括绿萝、仙人掌和吊兰。
为了模拟不同环境条件，我们设置了三组实验组：阳光组、阴影组和干旱组。
每组实验设置五个重复，以保证实验结果的可靠性。
3. 结果与讨论3.1 生长观察在阳光组中，绿萝的叶片呈现出深绿色，茂密且向阳生长；仙人掌的刺变得更加粗壮，颜色也更加鲜艳；吊兰的叶片展开较大，叶色浅绿。
而在阴影组中，绿萝的叶片变得较为苍白，茂密度下降；仙人掌的刺变得细长，颜色较为暗淡；吊兰的叶片展开较小，叶色深绿。
在干旱组中，绿萝的叶片开始出现萎蔫现象；仙人掌的刺变得干瘪，颜色变得暗淡；吊兰的叶片开始卷曲，叶色变黄。
3.2 生理指标测量我们通过测量叶片的光合速率、蒸腾速率和叶绿素含量等指标，来进一步了解植物在不同环境条件下的生理变化。
在阳光组中，绿萝的光合速率较高，蒸腾速率也较高；仙人掌的光合速率较低，蒸腾速率也较低；吊兰的光合速率和蒸腾速率处于中等水平。
而在阴影组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率下降明显；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
在干旱组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率急剧下降；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
叶绿素含量的测量结果与光合速率和蒸腾速率的变化趋势一致。
4. 结论通过本实验的观察和测量，我们可以得出以下结论：1) 植物在阳光充足的环境下生长更加茂盛，叶片颜色更加鲜艳。
植物生理学实验报告
首都师范大学生命科学学院实验报告课程名称植物生理学实验成绩姓名苗雪鹏班级 1班学号 1080800021 实验题目实验三植物体中N、P、K主要养分的速测【实验目的】1．了解植物体内N、P、K测定的意义和方法2．掌握如何测定植物体中N、P、K的实验技能【实验原理】植物体主要由C、H、O、N、P、K、Ca、Mg、S、Fe等十几种元素组成，除此以外还包括Ca、Zn、Mn、B、Mo，但需要量较少。
在通常条件下，植物利用太阳光能，从空气中获得C，从水中获得氢和氧，而N、P、K等元素则是来源土壤肥力。
在栽培过程中，能够知道植物的需要和土壤内N、P、K变动的情况，对考虑施肥措施是有帮助的，因此测定土壤及植物体内的N、P、K是很重要的。
硝态N测定：硝态N是硝酸的阴离子（NO3-），它是强氧化剂，所以鉴定N-离子几乎都用氧化反应，用二苯胺（C6H5）2NH的方法，这个方法的原理是在NO3-存在时二苯胺被硝酸氧化而显蓝色。
有效P和无机P测定：P与钼酸铵反应生成磷钼酸铵，然后以氧化亚锡作为还原剂时，使磷钼酸铵还原为“磷钼兰”（低价钼化合物混合物）溶液呈兰色。
此法能测土壤有效P，过磷酸钙中有效P和植物体内的无机磷。
速效K的测定：四苯硼钠〔NaB(C6H5)4〕与钾离子生成白色沉淀为四苯硼酸钾〔KB(C6H5)4〕【实验材料和试剂】在完全培养液、缺乏N、P、K、Fe的营养液中培养四周的玉米苗硝态氮试剂、磷试剂Ⅰ、磷试剂Ⅱ、K试剂、标准溶液1、5、10、20、40ppm【实验方法】1．植物组织浸提液制备将植物剪成小块，称取1g，迅速倒入已沸腾的蒸馏水（约10ml）烧杯中，用毛细玻璃棒经常搅动，小火煮十分钟，煮液倒入10ml容量瓶中，另加少量蒸馏水，继续小火煮植物材料5分钟，浸提液倒入上述容量瓶内，再以少量蒸馏水洗植物材料，使最后容量为10ml。
植物组织在计算含量时要乘以10，因每克鲜组织稀释了10倍。
2．硝态N测定在白瓷板的凹内分别滴入1、5、10、20、40ppm的混合标准液1滴，然后将待测液（植物浸提液）分别滴入其他凹内，最后每个凹内各加5滴二苯胺硫酸溶液，用毛细玻璃棒搅匀，3-5分钟，观察标准液与待测液蓝色变化，待测液的蓝色近似于某标准液的蓝色，就是待测液的硝态N含量。
植物生理学实验
实验一植物细胞渗透势的测定（质壁分离法）一、原理将植物组织放入一系列不同浓度的蔗糖溶液中，经过一段时间后，植物细胞与蔗糖溶液之间将达到平衡状态。
如果在某一溶液中细胞脱水达到平衡时刚好处于临界质壁分离状态，则细胞的压力势ψp将下降为零，此时细胞液的渗透势ψπ等于外液的渗透势ψπ′，即ψπ＝ψπ′。
此溶液称为该组织的等渗溶液，其浓度称为该组织的等渗浓度，即可计算出细胞液的渗透势。
实际上临界质壁分离状态镜下很难看到，一般以初始质壁分离作为判断等渗浓度的标准。
（细胞水势=渗+压+衬，其中渗=外渗=-iCRT）（注：内外浓度差不一定质壁分离，因为外高内低才会分离）二、器材、试剂与材料1、器材：显微镜，小培养皿（60mm），载盖玻片，温度计，试剂瓶，吸水纸等。
2、试剂：1mol/L蔗糖溶液，蔗糖系列标准溶液。
3、材料：洋葱。
三、操作步骤1、取干燥、洁净培养皿9套，顺序编号，顺序加入蔗糖系列标准溶液，呈一薄层，盖好皿盖。
（为什么？）2、用镊子撕取材料内表皮（0.5cm见方即可），吸去表面水分，迅速浸入上述培养皿中，每皿4—5片。
3、经20～30min（为什么等这么长时间？因为达渗透平衡）记录室温，同时从高浓度开始依次取出材料放于载片上，滴一滴同浓度的蔗糖溶液，盖上盖片，显微镜下观察。
若所有细胞都发生质壁分离现象，则取相邻低浓度的材料观察，并记录质壁分离的相对程度。
若有50％左右细胞发生初始质壁分离(即原生质体刚从细胞壁的角隅处分离)，则该浓度就是等渗浓度。
若两个相邻浓度的材料中，一个未发生质壁分离，另一个发生质壁分离数超过50％，则两浓度平均值即为等渗浓度。
4、由所得的等渗浓度和室温计算细胞液的渗透势：ψπ＝ψπ′＝－iCRT(MPa)，其中：ψπ——细胞的渗透势，MPa；ψπ′——供试溶液的渗透势，MPa；C——供试溶液的浓度，moL/L；R——气体常数，0.008314·L·MPa／(moL·K)；T——绝对温度，(273十t℃)K；i——等渗系数，蔗糖为1。
植物生理学实验报告
实验一植物组织水势的测定（小液流法）——2013.3.11 一、目的用小液流法（落滴法）测定植物组织的水势，由水势大致了解植物体内的水分状况二、原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，谁从水势高处流向低处。
植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境间的水分移动方向都由水势插决定。
三、材料与设备植物材料：阔叶树叶片（大叶女贞）实验器具：细滴管一支；试管及指形管各五支（带塞）；100mL烧杯一只；镊子、剪刀各一把；2mL、5mL移液管各一支；标签纸；钻孔器；木板试剂：1ml/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液四、操作步骤1.用短滴管吸取1,mol/L蔗糖液配制一系列浓度递增的蔗糖溶液（0.05,0.1,0.2,0.3,0.4mol/L）各10 ml，加入干燥刻度试管内，各管都加上塞子，充分混合，并编号。
用移液管从浓度各试管中吸取1ml注入第二指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
2.用钻孔器（取相同部位）钻取同大小叶片。
每支指形管中放入10片，加塞，放置20~30分钟（期间摇动2~3次），到时间后，加入2~3滴甲烯蓝溶液于指形管中，使其溶液呈蓝色，以区别原来的颜色。
3.用细长滴管从各指形管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入相同编号（原相同浓度）试管的中部，缓慢从细长滴管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，在无色透明背景上观察小液滴移动的方向。
如果有色液滴向上移动，说明细胞液中水分外流，试验比重比原来小；如果有色液向下移动，则说明细胞从溶液中吸收了水分，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动，向外扩散则说明两者的浓度相等或接近，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度，若找不到改浓度，取在下降上升转变时量浓度的均值。
五、作业1.记录小液流在试管内的移动方向2.按下列公式计算组长的水势：ψW（细胞水势）=ψs=-CRT式中：ψs——溶液的渗透势，以Mpa为单位R——气体常数，为0.008314Mpa*L/（mol*K）。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告摘要：本实验旨在通过一系列实验来研究植物的生理特性及其对外界环境的响应。
我们使用了单子叶植物蔗糖苦苣菜（Saccharum officinarum L.）作为研究对象，并分别对其光合作用、光反应及水分运输进行了分析。
通过实验结果，我们得出了一些重要结论，对于深入了解植物生理学及其应用具有重要的意义。
引言：植物生理学是研究植物如何在内外环境的调节下进行生长和发育的科学。
通过对植物的生理特性进行研究，我们可以更好地了解植物生活的基本规律。
因此，本实验旨在通过一系列实验来深入研究植物的生理学特性。
材料与方法：1. 实验材料：蔗糖苦苣菜植株、草状质量秤、光谱辐射计、叶绿素荧光仪、离心机等。
2. 实验步骤：- 实验一：光合作用a. 将蔗糖苦苣菜植株放置在恒温暗房内恢复一段时间。
b. 将光谱辐射计放在适当位置，记录光照强度和光质。
c. 将一片健康的叶片置于夹层式草状质量秤上，记录叶片重量。
d. 将叶片暴露在光源下，测量一定时间内的叶片重量。
e. 重复实验步骤c和d，以获得多组数据并进行统计分析。
- 实验二：光反应a. 将蔗糖苦苣菜叶片置于叶绿素荧光仪上，等待测量稳定。
b. 记录初始叶绿素荧光（F_o）值。
c. 迅速打开强光源，记录最大叶绿素荧光（F_m）值。
d. 计算有效光能利用率（Yield）和光化学淬灭（qP）等参数。
- 实验三：水分运输a. 随机选取两片蔗糖苦苣菜叶片，将其离枝并切割横截面。
b. 快速将一片叶片放置在自来水中，随即用另一片叶片封住叶脉。
c. 将样品放置在离心机上，启动离心机以模拟植物体内水分运输。
d. 一段时间后，观察叶片的水分状态，并记录数据。
结果与讨论：1. 实验一的结果显示，蔗糖苦苣菜的光合作用明显受到光照强度和光质的影响。
光照强度越高，光合速率越快。
同时，特定波长范围的光对光合作用的促进作用更为明显。
2. 实验二的结果表明，蔗糖苦苣菜的光反应能力非常高，有效光能利用率和光化学淬灭都表现出良好的性能。
本科课件-植物生理学实验(完整)
放蓝色液流时，不可震动小瓶。
12
根系活力的测定(TTC法)
植物生理生化教研室 曾汉来 2012.03.12
一、实验目的 • 理解植物根系活力的内涵 • 掌握TTC法测根系活力的原理与方法
提供合成所需能量; 合成氨基酸和植物激素 （ABA、CTK、GA等）
H2O 无机盐
硫酸，其他 操作相同。
加入1mol/L硫酸2ml
取出根吸 干水分
与3～4ml乙酸乙酯在研钵 内磨碎
查标准曲线， TTC还原量(mg)
空白试验作参比测 红色提取液移入试管且 485nm下吸光度 用乙酸乙酯定容到10ml
五、实验结果
TTC还原能力 （mg/g(根鲜重)/h）
＝
四氮唑还原量（mg） [根重（g）×时间(h)]
(5)手持测糖仪4 分别测定蔗糖原液浓度（C ）
四、结果计算 自由水的含量(%)=
植物组织中束缚水的含量(%) = 组织总含水量 － 组织中自由水含量
5
注意事项： 1. 清洗植物组织后应注意用
吸水纸擦干其表面的游离水分。 2. 植物组织与外部溶液之间
达到充分平衡。
6
实验01-2 植物组织水势的测定 （小液流法）
根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长 测定根系活力，为植物生长状况、营养供应研究提供依据。
二、验原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）的标准氧化电位为80mV的氧化还 原物质，获得H的能力强。溶于水为无色溶液，还原后即生成 红色而不溶于水的三苯基甲腙 （TTF）。
—
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，可用 分光光度法定量测定。
实验01-1 植物组织中自由水和束缚水 含量的测定
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告
《植物生理学实验实验报告》
实验目的：
本实验旨在探究植物生长过程中的生理学特性，通过实验观察和数据分析，了
解植物对外界环境的适应能力。
实验材料：
本次实验所需材料包括小麦种子、培养皿、水、土壤、温度计、光照计、湿度
计等。
实验步骤：
1. 将小麦种子放置于培养皿中，分别在不同的条件下进行实验观察。
其中包括
不同的温度、光照和湿度条件。
2. 记录每组实验条件下小麦种子的发芽率、生长速度、叶片颜色等生理学特征。
3. 对实验数据进行统计分析，比较不同条件下植物生长的差异，分析植物对外
界环境的适应能力。
实验结果：
经过实验观察和数据分析，我们发现在不同的温度、光照和湿度条件下，小麦
种子的生长状况存在显著差异。
在适宜的温度和湿度条件下，小麦种子的发芽
率和生长速度较高，叶片颜色也更加翠绿。
而在极端的温度和湿度条件下，小
麦种子的生长受到抑制，甚至出现枯萎现象。
实验结论：
通过本次实验，我们深刻认识到植物对外界环境的适应能力，以及不同环境条
件对植物生长的影响。
这不仅有助于我们更好地了解植物生理学特性，也为农
业生产和植物保护提供了重要的理论依据。
总结：
植物生理学实验是深入了解植物生长过程和生理特性的重要手段，通过实验观察和数据分析，我们可以更加全面地了解植物对外界环境的适应能力，为植物生长和保护提供科学依据。
希望本次实验能够对植物生理学研究和相关领域的发展起到一定的推动作用。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
实验3叶绿体色素的提取、分离及理化性质的测定
实验3叶绿体⾊素的提取、分离及理化性质的测定实验三叶绿体⾊素的提取、分离及理化性质的测定【实验原理】叶绿体⾊素⼜称光合⾊素，在⾼等植物中可分为叶绿素和类胡萝⼘素两⼤类，前者包括叶绿素a（蓝绿⾊）和叶绿素b（黄绿⾊），后们类囊体膜上的蛋者包括胡萝⼘素（橙⾊）和叶黄素（黄⾊），它与⽩质结合形成⾊素蛋⽩复合体，不溶于⽔，易溶于酯，因此可⽤丙酮、⼄醇、⽯油醚等有机溶剂进⾏提取。
叶绿体⾊素的分离有多种⽅法，本实验仅介绍纸层析法。
层析的基本原理：在分离过程中，由⼀种流动相（即⼀种液体或⽓体）带动着试样经过固定相（⼀种⽀持物，如纸）向外扩散，由于试样在两相中的溶解度不同和固定相对试样中不同成分的吸附程度有别，当⽤适当的溶剂推动时，混合物中各成分在两相间具有不同的分配系数，所以它们的移动速度不同，经过⼀定时间层析后，可使试样中的各种组分得到分离，在做纸层析时，由于纸对光合⾊素中各种⾊素分⼦的吸附程度不同，以及这些⾊素分⼦在溶剂四氯化碳（推进剂）中溶解度也有差异，以致溶剂带动⾊素分⼦向四周移动时，各种⾊素分⼦沿纸扩散的速度也就不同，使混合⾊素分离，出现不同颜⾊的环。
将提取的叶绿素溶液置于光下，在透射光呈绿⾊，在反射光下呈这现象称为荧光现象。
在反射光下叶绿素溶液之所以呈樱桃红⾊，种发态，激发态的叶樱桃红⾊，是因为叶绿⾊分⼦吸收光能后处于激状绿素分⼦很不稳定，当它回到基态时，将所获得的能量以辐射能的形式发射出红光量⼦。
叶绿素的化学性质很不稳定，容易受强光、⾼温等的破坏，特别是当叶绿素与蛋⽩质分离以后，破坏更快，⽽类胡萝⼘素则较稳定。
叶绿素中的镁可以被H＋所取代⽽成褐⾊的去镁叶绿素，后者遇铜后，其中的氢（H＋）⼜被铜（Cu2＋）取代，形成了铜代叶绿素，便由褐⾊转变成蓝绿⾊，铜代叶绿素很稳定，且⽐原来的绿⾊还要稳定些，在光下也不易被破坏。
设备试剂】【材料、与1. 材料新鲜的菠菜或⼩⽩菜等其他绿⾊植物叶⽚。
2. 设备电⼦天平、研钵、烧杯、量筒、培养⽫、刻度试管、试管夹、试管架、酒精灯、剪⼑、圆形滤纸、⼩漏⽃等。
植物生理学--实验三植物光合速率测定
进气 泵
流量 计
排气
叶室 样品IRGA（C2）
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三、材料与主要仪器
• 植物材料：小白菜或者甘蓝型油菜
• 仪器：CB-1101红外线CO2气体分析仪
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CB-1101
.
CB-1101操作面板及气路图
.
四、实验步骤
1、仪器组装及调零：，打开电源预热5 min→打开气泵 开关→用碱石灰管分别连接面板上的“OUT”和“IN”。 利用CO2调零调试仪器。 2、样品测定：将叶片正确放入叶室，并封闭叶室。 打 开开路开关→按下初测按钮→待数值稳定后按下测终按 钮→待数值稳定后按下完成按钮→记录测定结果【需要 记录起始CO2浓度C1、测定完成后CO2浓度C2，叶面温 度t，气体流速V】
.
五、原始记录
V， C1， C2， S ，t
S
V为气体流速，单位 L/min; C1，C2为测定启 始和反应完成后的CO2浓度，单位 μL/L；S为 光合测定的叶面积，单位为m2，本实验固定为 6.5×10-4 m2 ；P为气压，单位 bar；t为同化 室叶片表面温度，单位℃。
.Hale Waihona Puke 六、结果计算Pn(mmol
.
采用开放式气路系统：该系统用双气室IRGA,以
气泵为动力，将流经同化室前的空气（参比气）
泵入一个气室，流经同化室后的空气（样本气）
泵入另一个气室（分析气室），最后将气体排空， 由仪器指示参比气和样本气的CO2浓度差，根据 流量、同化室中叶片的面积，求出叶片的光合速
率。
参比室 参比IRGA (C1)
Ca=13.95A665—6.88A649 Cb=24.96A649—7.32A665
.
三、实验材料与仪器
植物生理学实验-实验三_电导率仪法测定离体植物叶片的抗逆性
实验三电导率仪法测定离体植物叶片的抗逆性一实验目的进一步认识细胞膜系统的结构和功能；掌握电导率仪法测定离体植物叶片抗逆性的原理与方法。
二实验原理植物抗逆性是指植物在长期系统发育中逐渐形成的对逆境的适应和抵抗能力。
在同样的逆境条件下，有些植物（或品种）不受害或受害很轻，有些植物则受害较重。
植物组织受到逆境伤害时，由于膜的功能受损或结构破坏而透性增大，细胞内各种水溶性物质不同程度的外渗，将植物组织浸入无离子水中，水的电导率将因电解质的外渗而加大，膜伤害越重，电解质外渗越多，电导率的增加也越大。
故可用电导率仪测定外液的电导率而得知伤害程度，从而反映植物的抗逆性强弱。
三实验材料植物离体叶片四设备与试剂电导率仪、真空泵（附真空干燥剂）、恒温水浴锅、水浴试管架、20ml具塞刻度试管、打孔器（或双面刀片）、10ml移液管（或定量加液器）、试管架、电炉、镊子、剪刀、搪瓷盘、记号笔、去离子水、滤纸、塑料纱网（约3cm2）。
五实验步骤（一）容器的洗涤电导率仪法对水和容器的洁净度要求严格，所用容器必须用去离子水彻底清洗干净，倒置于洗净而垫有洁净滤纸的搪瓷盘中备用。
水的电导率要求为1~2μS/cm。
为了检查试管是否洁净，可向试管中加入1~2ml电导率在1~2μS/cm的新制去离子水，用电导率仪测定是否仍维持原电导率。
（二）实验材料的处理分别在正常生长和逆境胁迫的植株上取同一叶位的功能叶若干片。
若没有逆境胁迫的植株，可取正常生长的植株叶片若干，分成2份，用纱布擦净表面灰尘。
将一份放在-20度左右的温度下冷冻20分（或置40度左右的恒温箱中处理30分）进行逆境胁迫处理。
另一份裹入潮湿的纱布中放置在室温下作对照。
（三）测定将处理组叶片与对照组叶片用离子水冲洗2次，再用洁净滤纸吸净表面水分。
用6~8mm 的打孔器避开主脉打取叶圆片（或切割成大小一致的叶块），每组叶片打取叶圆片60片，分装在3支洁净的刻度试管中，每管放20片。
在装有叶圆片的各试管中加入10ml的去离子水，并将大于试管口径的塑料纱网放入试管距离液面1cm处，以防止叶圆片在抽气时翻出试管。
植物生理学实验
植物生理学实验实验一植物组织中可溶性糖与淀粉的测定植物体内的碳素营养状况以及农产品的品质性状，常以可溶性糖和淀粉的含量作为重要指标，本实验学习几种定量测定可溶性糖和淀粉的方法。
一、苯酚法测定可溶性糖【原理】植物体内的可溶性糖主要是指能溶于水及乙醇的单糖和寡聚糖。
苯酚法测定可溶性糖的原理是：糖在浓硫酸作用下，脱水生成的糠醛或羟甲基糠醛能与苯酚缩合成一种橙红色化合物，在10～100Mg范围内其颜色深浅与糖的含量成正比，且在485nM波长下有最大吸收峰，故可用比色法在此波长下测定。
苯酚法可用于甲基化的糖、戊糖和多聚糖的测定，方法简单，灵敏度高，实验时基本不受蛋白质存在的影响，并且产生的颜色稳定时间在160Min以上。
【仪器与用具】分光光度计；电炉；铝锅；20Ml刻度试管；刻度吸管5Ml 1支，1Ml 2支；记号笔；吸水纸适量。
【试剂】90％苯酚溶液：称取90g苯酚(AR)，加蒸馏水10Ml溶解，在室温下可保存数月；9％苯酚溶液：取3Ml 90％苯酚溶液，加蒸馏水至30Ml，现配现用；浓硫酸(比重1 84)；1％蔗糖标准液：将分析纯蔗糖在80℃下烘至恒重，精确称取1 000g。
加少量水溶解，移入100Ml容量瓶中，加入0 5Ml浓硫酸，用蒸馏水定容至刻度；100μg／L蔗糖标准液：精确吸取1％蔗糖标准液1Ml加入100Ml容量瓶中，加水定容。
【方法】1.标准曲线的制作取20Ml刻度试管11支，从0～10分别编号，按表1－1加入溶液和水，然后按顺序向试管内加入1Ml 9％苯酚溶液，摇匀，再从管液正面以5～20s时间加入5Ml浓硫酸，摇匀。
比色液总体积为8Ml，在恒温下放置30Min，显色。
然后以空白为对照，在485nM 波长下比色测定，以糖含量为横坐标，光密度为纵坐标，绘制标准曲线，求出标准直线方程。
表1-1各试管加入溶液和水的量管号01~23~45~67~89~10100ug/L蔗糖液（ml）00.20.40.60.81.0水（ml)2.01.81.61.41.21.0蔗糖量（μg）0204060801002 可溶性糖的提取取新鲜植物叶片，擦净表面污物，剪碎混匀，称取0 10～0 30g，共3份，分别放入3支刻度试管中，加入5～10Ml蒸馏水，塑料薄膜封口，于沸水中提取30Min(提取2次)，提取液过滤入25Ml容量瓶中，反复冲洗试管及残渣，定容至刻度。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告
植物是我们周围不可或缺的重要生物，它们通过各种生理过程实现
生长、发育和适应环境。
为了更深入地了解植物的生理特点，我们进
行了一系列植物生理学实验。
以下是我们的实验报告：
实验一：光合作用速率与光照强度的关系
在这个实验中，我们收集了不同光照强度下植物的光合作用速率数据。
结果显示，随着光照强度的增加，植物的光合作用速率呈现出增
加的趋势。
这表明光照强度对植物光合作用的影响十分显著，光合作
用速率与光照强度呈正相关关系。
实验二：水分蒸腾速率与相对湿度的关系
在这个实验中，我们测量了不同相对湿度下植物的水分蒸腾速率。
结果显示，随着相对湿度的增加，植物的水分蒸腾速率逐渐降低。
这
表明植物的水分蒸腾速率受相对湿度的影响，相对湿度与水分蒸腾速
率呈负相关关系。
实验三：温度对植物呼吸速率的影响
在这个实验中，我们调节了不同温度下植物的呼吸速率。
结果显示，随着温度的升高，植物的呼吸速率也随之增加。
这表明植物的呼吸速
率受温度影响，呼吸速率与温度呈正相关关系。
通过以上实验，我们对植物的光合作用、水分蒸腾和呼吸等生理过
程有了更深入的了解。
这些实验为我们研究植物的生长发育及环境适
应性提供了重要的参考依据。
希望我们的实验结果能对今后的植物生理学研究有所启发和帮助。
植物生理学实验：实验三 呼吸强度的测定(小篮子法)
实验结果计算与分析
呼吸强度（CO2，mg/g.h）=
空白滴定值（mL）-正式滴定值(mL) 种子鲜重（克）×时间（小时）
注意事项
1. 注意不要让溶液沾到小篮子上 2. 塞紧瓶塞动作要快 3. 防止口中呼出的气体进入瓶内
作业
计算水稻种子萌发后的呼吸强度
logo植物生理学实验实验三呼吸强度的测定小篮子法实验原理植物进行呼吸时放出co计算一定的植物样品在单位时间内放出的co的数量即为该样品的呼吸速率
植物生理学实验 实验三 呼吸强度的测定（小篮子法）
LOGO
实验原理
植物进行呼吸时放出CO2，计算一定的植物样品在单位 时间内放Βιβλιοθήκη 的CO2的数量，即为该样品的呼吸速率。
升草酸相当于1mg CO2），酚酞指示液 ；凡士林。 材料：萌发的水稻种子。
实验步骤
1、装配“广口瓶呼吸测定装置”：取500ml广口瓶一个， 瓶口用橡皮塞塞紧，三孔分别插入盛放石灰的干燥管、 温度计和小橡皮塞。瓶塞下面挂一纱布小篮。
2、空白滴定：在瓶中准确加入Ba(OH)2溶液20mL，立即塞 紧橡皮塞（不带小篮子）。充分摇动瓶子2分钟，待瓶 中CO2全部被吸收后，拔出小橡皮塞加入酚酞2滴，把滴 定管插入孔中，用草酸溶液进行空白滴定，直至红色刚 刚消失为止。记录消耗的草酸量（mL)。
利用Ba(OH)2溶液吸收呼吸过程中释放的CO2，用草酸溶 液滴定碱液，从空白和样品消耗草酸溶液之差，可计算 出呼吸过程中释放的CO2量。
实验目的；实验材料、仪器设备与试剂
目的：掌握小篮子法测定呼吸强度的原理与方法。 仪器：广口瓶、橡皮瓶塞、温度计、酸式滴定管、干
燥棒、纱布（小篮子）。 试剂：0.05mol/L Ba(OH)2，1/44mol/L草酸溶液（每毫
植物生理学实验
泰山学院生物与酿酒工程学院植物生理学课程实验
淀粉染色观察：取幼芽长至3~5cm的萌发小麦种子，将其 胚乳汁液，涂在载玻片上，加一滴水盖上盖玻片，显微 镜观察淀粉粒形态，加1滴碘液染色，观察色情况；
刮取未萌发小麦胚乳淀粉，进行相同实验操作，并做 比较观察
泰山学院生物与酿酒工程学院植物生理学课程实验
[实验原理] 叶绿素对可见光谱吸收，叶绿素a最大吸收峰在663nm，
叶绿素b最大吸收峰在645nm，吸收曲线彼此又有重叠。根 据Lambert-Beer定律，最大吸收峰不同的两组分混合液， 它们的浓度C（mg/L）与光密度（OD）有如下关系：
Ca=12.7OD663-2.69OD645—（1） Cb=22.9OD645-4.68OD663—（2） CT=Ca+Cb=8.02OD663+20.21OD645—（3）
植物材料马铃薯
泰山学院生物与酿酒工程学院植物生理学课程实验
[操作步骤]
1、粗酶液的提取 称取植物材料0.5g，加20mmol/L KH2PO4 5mL，于研钵中研磨成匀浆，以4000r/min离 心10min，收集上清液保存在冷处，所得残渣再用 20mmol/L KH2PO45mL溶液提取一次，合并2次上清液。
泰山学院生物与酿酒工程学院植物生理学课程实验
叶绿体植物进行光合作用的器官,在制备的叶绿体悬浮溶 液中加入电子受体2，6-二氯靛酚（DCIP）后，光照时叶绿 体对水进行光解，并放氧气，同时电子受体DCIP被还原，溶 液颜色从蓝色变为无色。
[仪器与试剂] 1.仪器 分光光度计，天平，研钵，剪刀，移液管 2.试剂 80%丙酮，碳酸钙，2，6-二氯靛酚 3.材料 新鲜菠菜叶片
植物生理学实验报告
一、实验名称植物生理学实验：植物蒸腾作用的观察与测定二、实验目的1. 观察植物蒸腾作用的现象。
2. 测定植物叶片的蒸腾速率。
3. 了解影响植物蒸腾作用的因素。
三、实验原理植物蒸腾作用是指植物体内水分通过叶片气孔以水蒸气形式散发到大气中的过程。
蒸腾作用是植物体内水分循环的重要环节，对植物的生长发育和生态环境具有重要意义。
实验中，通过观察植物叶片气孔的开闭情况，测定叶片的蒸腾速率，分析影响蒸腾作用的因素。
四、实验材料与仪器1. 实验材料：新鲜植物叶片、剪刀、蒸馏水、滤纸、玻璃片、温度计、秒表、透明塑料袋。
2. 实验仪器：分析天平、蒸馏水器、温度计、秒表、量筒、透明塑料袋。
五、实验步骤1. 将新鲜植物叶片用剪刀剪成约1cm²的小块，用蒸馏水洗净，晾干。
2. 将叶片放入透明塑料袋中，密封袋口。
3. 用温度计测量叶片和塑料袋内的温度，记录初始温度。
4. 将塑料袋置于室温下，每隔一定时间（如5分钟）观察叶片气孔的开闭情况，记录气孔开闭次数。
5. 将叶片从塑料袋中取出，用分析天平称量叶片质量，记录初始质量。
6. 将叶片放入蒸馏水中浸泡，使其充分吸水。
7. 将吸水后的叶片重新放入塑料袋中，密封袋口。
8. 将塑料袋置于室温下，每隔一定时间（如5分钟）观察叶片气孔的开闭情况，记录气孔开闭次数。
9. 将叶片从塑料袋中取出，用分析天平称量叶片质量，记录吸水后的质量。
10. 计算叶片的蒸腾速率。
六、实验结果与分析1. 观察叶片气孔的开闭情况，发现叶片在室温下蒸腾作用明显，气孔开放次数较多；在蒸馏水中浸泡后，气孔开放次数明显减少。
2. 通过实验数据计算，得到不同条件下叶片的蒸腾速率。
3. 分析影响植物蒸腾作用的因素，如温度、光照、水分等。
七、实验结论1. 植物蒸腾作用是植物体内水分循环的重要环节，对植物的生长发育和生态环境具有重要意义。
2. 温度、光照、水分等因素对植物蒸腾作用有显著影响。
3. 本实验通过观察植物叶片气孔的开闭情况和测定叶片的蒸腾速率，验证了植物蒸腾作用的存在。
植物生理学实验三钾离子对气孔开度的影响
（可适当延长时间） 6. 分别在显微镜下再次观察气孔的开度。
结果分析与思考
1. 仔细观察和记录实验结果，并画出三组实验 中气孔开度的示意图（气孔开或闭）！
植物生理学实验三钾离子对气孔开 度的影响
背景知识
气孔运动：
在保卫细胞的调节作用下，气孔可以 运动-白天开放、晚上关闭。
引起气孔运动的主要原因是：
保卫细胞的吸水膨胀或失水收缩。 保卫细胞内侧细胞壁比较厚,外侧细胞 壁薄而有弹性。保卫细胞含水多时,膨 压高时,细胞向外凸出,气孔张开。 当细胞中水分减少,膨压降低时,细胞会 萎缩,保卫细胞内侧厚壁变直,互相挤靠, 气孔关闭.
2. 根据实验结果，解释三组实验存在差异的原 因。
3. 思考题：钾离子引起气孔张开的原理是什么？ 4. 思考题：试分析影响气孔开闭还有哪些原因？
目的：观察K+在气孔开张中的作用，加 深对“气孔运动---K+积累学说”的理解。
实验器材和试剂
植物材料: 芥蓝叶片
实验器材：显微镜、培养皿、温箱、镊子、载 玻片、盖玻片、吸水纸。
实验试剂： 2%硝酸钾、2%硝酸钠、蒸馏水。
实验步骤
1. 首先撕取芥蓝叶下表皮制作临时装片，观察气孔 开度。
2. 在三个培养皿中分别放入2%硝酸钾，2%硝酸纳 及蒸馏水各15 mL。
背景知识ห้องสมุดไป่ตู้
➢ 气孔运动受到保卫细胞的控制。保卫细胞的这种控 制是通过保卫细胞内水势的变化进而导致保卫细胞 吸水膨胀或失水来实现的。
➢ 引起保卫细胞水势变化的原因： 三种学说：淀粉-糖互变、 K+ 积累学说（K+ 吸收 学说）、苹果酸生成。
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实验报告
课程名称：植物生理学及实验实验类型：探索、综合或验证实验项目名称：
叶绿体色素的提取、分离、理化性质和叶绿素含量的测定学生姓名：专业：农业资源与环境学号：
同组学生姓名：
指导老师：
实验地点：实验日期：2019年10月9日
一、实验目的和要求
掌握植物中叶绿体色素的提取分离和性质鉴定、定量分析的原理和方法
二、实验内容和原理
以青菜为材料，提取和分离叶绿体色素并进行理化性质测定和叶绿素含量分析。
原理如下：
1.叶绿素和类胡萝卜素均不溶于水而溶于有机溶剂.常用95%的乙醇或80%的丙
酮提取。
2.皂化反应。
叶绿素是二羧酸酯，与强碱反应，形成绿色的可溶性叶绿素盐，就可与有机
溶剂中的类胡萝卜素分开。
装
订
线
3.取代反应。
在酸性或加温条件下，叶绿素卟啉环中的Mg2+可依次被H+和Cu2+取代形成褐色的去镁叶绿素和绿色的铜代叶绿素。
H+取代Mg2+, Cu2+ (Zn2+)取代H+。
4.叶绿素受光激发，可发出红色荧光，反射光下可见红色荧光。
透射光下呈绿色，反射光下呈红色。
5.光谱分析。
叶绿素吸收红光和兰紫光，红光区可用于定量分析，其中645和
663用于定量叶绿素a,b及总量，而652可直接用于总量分析。
三、主要仪器设备
1.天平（万分之一）、可扫描分光光度计（UV-1240）、离心机
2.研具、各种容（量）器、酒精灯等
四、操作方法与实验步骤
1.定性分析
a)称取鲜叶3-5g，并逐步加入乙醇15ml，磨成匀浆
取匀浆过滤，并倒入三角瓶中，同时观察荧光现象。
b)取三角瓶中约1ml溶液于小试管。
加KOH数片剧烈摇均，加石油醚
O 1ml分层后观察。
1ml和H
2
c)取代反应：加醋酸约
1ml，取1/2加醋酸铜粉加热。
观察颜色变化。
2.叶绿素和类胡萝卜素的吸收光谱测定：
a)取皂化反应的上层黄色石油醚溶液→稀释（470nm OD 0.5-1）
b)取下层绿色溶液（留1/3），反复用石油醚粹取,直到无类胡萝卜素,离
心得叶绿素(盐)→稀释（663nm OD 0.5-1）
c)两者在400-700nm处扫描光谱，分别测定类胡萝卜素和叶绿素的吸收
峰
3.叶绿素定量分析：
鲜叶0.1g，加1.9mlH
2
O，磨成匀浆，取2份0.2ml 加95%酒精4.8ml,摇匀，8000转离心5min,上清液在645，652，663测定OD，计算Chla,Chlb 和Chl总量的值。
五、实验数据记录和处理
1、定性分析：
观察荧光现象，透射光为绿色，反射光为红褐色光。
皂化反应(3ml) ：上层呈黄色，为类胡萝卜素，吸收蓝紫光。
下层呈绿色，为叶绿素，吸收红光和蓝紫光。
2、叶绿素和类胡萝卜素的吸收光谱测定：
图表4
图表1
图表3
图表2。