研究生植物生理学实验教案
植物生理实验设计教案
植物生理实验设计教案一、引言植物生理实验对于深入理解植物生长和发育过程以及适应环境的机制非常重要。
在本教案中,我们将设计一套植物生理实验,旨在帮助学生掌握实验设计的基本原则,并了解与植物生理研究相关的关键概念和方法。
二、实验目标通过本次实验,学生将能够:1.了解植物光合作用和呼吸作用的基本原理;2.掌握测量光合速率和呼吸速率的方法;3.分析不同环境因素对光合速率和呼吸速率的影响。
三、材料与方法3.1 实验材料- 绿豆种子- 高亮度LED灯或日之光灯- 红外线传感器或氧气电极(用于测量呼吸作用)- 温度计- 培养皿、试管等容器3.2 实验步骤步骤一:准备工作1.将绿豆种子置于湿润纸巾中,在28℃温室条件下孵化48小时。
2.为每组设置相同数量和大小且发芽良好的绿豆苗。
步骤二:测量光合速率1.在白天,将绿豆苗放置于明亮环境下。
2.使用红外线传感器或氧气电极测量植物产生的氧气含量,以确定光合速率。
步骤三:测量呼吸速率1.在黑暗条件下,将绿豆苗放置于容器中,并覆盖密封。
2.使用红外线传感器或氧气电极测量容器中的氧含量变化,以确定呼吸速率。
步骤四:控制实验条件1.对比不同光照强度、温度等因素对光合作用和呼吸作用的影响。
2.通过改变以上因素,并重复上述步骤二和三来收集数据和分析结果。
四、实验原理4.1 光合作用:植物通过叶绿体进行光合作用,利用光能转化为化学能(ATP)和还原力(NADPH),并产生有机物质。
其中主要反应是类肌球蛋白组织I(PSI)和II (PSII)之间的非循环相连反应链。
4.2 呼吸作用:植物通过线粒体进行呼吸作用,将有机物质氧化为二氧化碳和水,并释放能量(ATP)。
其中主要反应是在线粒体内部通过三脱酸核苷酸电子传递链完成的。
五、预期结果与讨论根据光合速率和呼吸速率的测量结果,我们可以得出以下结论:1. 光照强度对光合速率影响显著。
随着光照强度的增加,植物的光合速率也会增加。
然而,在某一临界点之后,进一步增加光照强度将不再对光合速率产生明显影响。
植物生理学教案(2024)
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植物的生殖生理与种子形成
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植物的生殖方式及特点
有性生殖
通过精子和卵细胞的结合形成合 子,再发育成新个体。有性生殖 具有遗传多样性,有利于植物适
应环境变化。
无性生殖
通过营养器官(如根、茎、叶) 的分裂、出芽或孢子等方式繁殖 新个体。无性生殖繁殖速度快,
能保持母本的优良性状。
研究方法
植物生理学的研究方法包括实验观察、生理生化分析、分子生物学技术、生物信息学分析等多 种手段,以揭示植物生命活动的本质和规律。
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植物生理学在农业生产中的应用
01 作物育种
通过了解植物生理机制,可以指导作物育种工作 ,选育出高产、优质、抗逆性强的新品种。
02 栽培技术
根据植物生理学原理,可以制定合理的栽培技术 措施,如合理施肥、灌溉、病虫害防治等,提高 作物产量和品质。
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植物生长调控技术及其在农业生产中的应用
调控技术
通过外源施加生长物质或其类似物、改变环境条件等手段,调控植物生长发育 过程。
农业生产应用
提高作物产量和品质,改善植物生长环境适应性,促进作物早熟和增产等。例 如,利用赤霉素促进杂交水稻制种产量的提高,利用乙烯利促进棉花叶片脱落 和采收等。
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1. 光照强度
直接影响光反应速率,光 照越强,光合作用速率越 快。
3. 二氧化碳浓度
是光合作用的原料之一, 浓度高低直接影响光合作 用的速率。
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2. 温度
影响酶的活性,适宜的温 度有利于光合作用的进行 。
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呼吸作用的概念、类型及生理意义
• 概念:呼吸作用是指植物体内的有机物在细胞内经过一系列的 氧化分解,最终生成二氧化碳或其他产物,并且释放出能量的 过程。
植物生理学实验技术教学设计
植物生理学实验技术教学设计简介植物生理学是研究植物生命过程的科学,其研究的主要内容涉及植物的生长、发育、代谢、形态、生殖、环境适应等方面。
在植物生理学的教学中,实验是非常重要的环节之一,通过实验可以让学生深入理解生理现象和生理过程,提高学生的动手能力和实际应用能力。
本文将介绍植物生理学实验技术教学设计的相关内容,包括实验内容、教学目的、实验流程和实验结果等。
实验内容实验一:植物的生长与发育规律实验教学目的通过对植物生长发育规律的研究,掌握植物的生长发育过程,了解植物生长规律,提高学生的实验操作能力。
实验材料鸡冠菊种子、土壤、光蒸馏水、培养皿、草木灰实验步骤1.准备工作:将培养皿洗净,加入草木灰和土壤,混匀后均匀铺在培养皿底部,浇入适量的光蒸馏水。
2.将鸡冠菊种子放在培养皿中,将其放置在适当的光照下,观察和摄影记录植物的生长过程。
3.实验结束后,观察和测量植物的生长高度和重量,分析和总结实验结果。
实验结果通过本次实验,可以深入了解植物的生长发育规律,并掌握实验操作技能。
实验二:植物的代谢实验教学目的通过研究植物的代谢过程,掌握植物的营养生理过程,了解植物维持生命的物质基础,提高学生的实验操作技能。
实验材料萝卜、活性炭、硫酸铁实验步骤1.准备工作:将萝卜切成薄片,用活性炭吸附其中的氢气,再用硫酸铁测定其中铁离子的含量。
2.将萝卜薄片放入活性炭中,观察和记录在不同时间内样品中酒精的浓度变化。
3.实验结束后,观察和测量植物的代谢产物含量,分析和总结实验结果。
实验结果通过本次实验,可以深入了解植物的代谢过程,掌握实验操作技能。
实验流程以下是本次实验的流程图:流程图流程图总结植物生理学实验技术教学是植物生理学教学中非常重要的一环。
通过实验可以深入了解生理现象和生理过程,同时也可以提高学生的动手能力和实际应用能力。
本文介绍了植物生长与发育规律实验和植物代谢实验的教学设计,其中包括实验材料、教学目的、实验步骤和实验结果等。
植物生理学教案植物体内有机物的运输
植物生理学教案——植物体内有机物的运输教学目标:1. 了解植物体内有机物的运输途径和机制;2. 掌握植物体内有机物的运输方式和过程;3. 能够运用所学知识解释生活中有关植物体内有机物运输的现象。
教学重点:1. 植物体内有机物的运输途径;2. 植物体内有机物的运输机制。
教学难点:1. 植物体内有机物的运输过程;2. 生活现象与植物体内有机物运输的联系。
第一章:植物体内有机物的运输概述1.1 植物体内有机物的运输定义1.2 植物体内有机物的运输重要性1.3 植物体内有机物的运输研究意义第二章:植物体内有机物的运输途径2.1 木质部运输途径2.2 韧皮部运输途径2.3 细胞间隙运输途径第三章:植物体内有机物的运输机制3.1 被动运输机制3.2 主动运输机制3.3 协助扩散运输机制第四章:植物体内有机物的运输过程4.1 合成与储存过程4.2 加载与卸载过程4.3 运输与分配过程第五章:生活现象与植物体内有机物运输的联系5.1 植物生长与有机物运输5.2 果实成熟与有机物运输5.3 植物抗逆与有机物运输教学方法:1. 采用多媒体课件进行教学,直观展示植物体内有机物的运输过程;2. 结合生活实例,引导学生理解植物体内有机物运输的重要性;3. 开展课堂讨论,激发学生对植物体内有机物运输的兴趣和探究欲望。
教学评价:1. 课堂提问:检查学生对植物体内有机物运输的基本概念的理解;2. 课后作业:巩固学生对植物体内有机物运输的知识;3. 课程论文:培养学生运用所学知识分析生活现象的能力。
第六章:植物体内有机物的运输实例分析6.1 实例一:筛管与韧皮部的有机物运输6.2 实例二:木质部中的水分与无机盐运输6.3 实例三:顶端优势与有机物运输第七章:环境因素对植物体内有机物运输的影响7.1 温度对植物体内有机物运输的影响7.2 光照对植物体内有机物运输的影响7.3 水分对植物体内有机物运输的影响第八章:植物体内有机物运输与农业生产8.1 有机物运输与作物产量8.2 有机物运输与作物品质8.3 有机物运输与农业施肥第九章:植物体内有机物运输的科研方法9.1 实验设计:如何研究植物体内有机物运输9.2 观察方法:显微镜观察植物体内有机物运输9.3 测定技术:有机物运输的定量分析第十章:植物体内有机物运输的前沿领域10.1 植物体内有机物运输的分子机制10.2 植物体内有机物运输的基因调控10.3 植物体内有机物运输的生物技术应用教学方法:1. 结合具体实例,分析植物体内有机物运输的实际情况;2. 通过讨论和实验,探究环境因素对植物体内有机物运输的影响;3. 联系农业生产,了解植物体内有机物运输在实际生产中的应用;4. 利用科研方法,培养学生对植物体内有机物运输研究的兴趣;5. 关注前沿领域,引导学生了解植物体内有机物运输的最新发展。
植物生理学 教案
植物生理学教案教案标题:植物生理学教学目标:1. 了解植物生理学的基本概念和重要性。
2. 掌握植物的生长和发育过程以及与环境因素的关系。
3. 理解植物的营养需求和光合作用过程。
教学重点:1. 植物的生长和发育过程。
2. 植物对环境因素的反应和适应能力。
3. 植物的营养需求和光合作用的原理。
教学准备:1. 教学资料:教科书、课件、多媒体设备等。
2. 实验设备:显微镜、植物生长箱等。
3. 实验材料:植物样本、培养基等。
教学过程:一、导入(5分钟)利用引人入胜的故事或实例,向学生介绍植物生理学的重要性和应用领域。
二、知识讲解(15分钟)1. 植物的生长和发育过程:种子萌发、幼苗生长、成株发育等。
2. 植物对环境因素的反应和适应能力:光、温度、水分、土壤矿质等。
3. 植物的营养需求和光合作用的原理:养分吸收、运输和利用过程。
三、实验演示(20分钟)1. 示范种子萌发实验:使用显微镜观察种子的发育过程。
2. 示范温度对植物生长的影响实验:设置不同温度条件下的植物生长箱,观察植物的生长情况。
3. 示范养分供应对光合作用的影响实验:在不同营养培养基上培养植物,观察光合作用的效果。
四、讨论与总结(10分钟)与学生进行讨论,回答他们对实验中观察到的现象和原理的疑问。
总结重点概念和实验结果。
五、拓展延伸(10分钟)引导学生思考和探究植物生理学在农业、园艺、药学等领域的应用,展示相关案例或实践经验。
六、作业布置(5分钟)要求学生完成相关阅读和实验报告,以巩固所学内容并培养科学思维能力。
教学反思:教学过程中应注意实验的设计和操作,确保实验过程的安全和有效性。
同时,适时调整教学方法,激发学生的兴趣和参与度。
《植物生理学实验技术》课程教案
理解和掌握。
教学手段
利用多媒体课件、实验视频等辅 助教学手段,提高教学效果和学
生的学习兴趣。
实验课程安排与注意事项
实验课程安排
根据教学大纲和实验条件,合理安排实验项目和实验时间,确保学生能够充分 掌握各项实验技术。
实验结果与分析
根据实验结果,分析光照强度对叶片光合作用速率的影响,并探讨其 原因。
植物呼吸作用强度测定实验
实验目的 实验原理 实验步骤 实验结果与分析
了解植物呼吸作用的原理,掌握呼吸作用强度测定的方法。
植物呼吸作用是植物体吸收氧气并分解有机物的过程,通过测 定单位时间内植物体消耗氧气的量,可以计算呼吸作用强度。
鼓励实验人员参加自救互救技 能培训,提高自救互救能力, 减少事故损失。
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CATALOGUE
课程考核与成绩评定
平时成绩评定标准及比例分配
课堂表现
根据学生的出勤率、课堂参与度、实验操作规范性等方面 进行评价,占总评成绩的20%。
实验报告
每次实验后要求学生提交实验报告,包括实验目的、原理 、步骤、结果分析和讨论等,占总评成绩的30%。
鼓励实验室采用环保型实验 材料和方法,减少废弃物产 生和对环境的影响。
应急情况下自救互救技能培训
实验室应制定应急预案,明确 应急组织、通讯联络、现场处
置等方面要求。
定期组织实验人员进行火灾、 化学品泄漏等应急演练,提高
实验人员的应急处置能力。
实验室应配备急救箱、灭火器 等应急器材,并确保实验人员 了解其使用方法和注意事项。
光合作用
植物利用光能将二氧化碳和水转化为 葡萄糖和氧气,同时储存能量。
植物生理学实验教案
植物生理学实验教案实验指导书:候书林主编. 植物生理学实验指导.科学出版社,2004 实验一、植物组织渗透势测定-质壁分离法实验二、植物组织水势测定-小液流法实验三、叶绿体色素的提取与分离及理化性质鉴定实验四、叶绿素a,b 含量测定实验五、植物体内几种呼吸酶的测定实验六、植物叶面积测定实验七、植物根系对离子的选择性吸收实验八、叶片光合速率的测定及光合仪的使用实验九、种子活力的快速测定实验十、植物组织可溶性糖含量的测定实验十一、低温对植物的伤害实验十二、丙二醛含量的测定实验一、植物组织渗透势测定-质壁分离法[原理]将植物组织置于对其无毒害的一系列不同浓度的溶液里处理一定时间,然后镜检发生质壁分离的细胞数,通常视野中有50%的细胞发生质壁分离时定为初始质壁分离,细胞初始质壁分离时压力势为零,因而可把引起细胞初始质壁分离的外界溶液称之为等渗溶液,其溶液具有的渗透势即为细胞的渗透势。
由于很难正好找到引起50%细胞发生质壁分离的浓度。
因此通常用插值法求得等渗溶液浓度,代入公式即可计算渗透势。
[器材与试剂]器材:显微镜,载玻片,盖玻片,镊子,刀片,培养皿(或具塞试管),记号笔,滴管。
试剂:蔗糖。
[方法与步骤]1. 配制0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7mol蔗糖/L水的质量摩尔浓度,贮6个试剂瓶中,必要时配制溶液浓度的相差可≤0.05mol蔗糖/L水。
2. 取6套干净清洁的小培养皿,用记号笔编号,将配制好的不同浓度的蔗糖溶液按顺序倒入各个培养皿中使成一薄层,盖好皿盖。
3. 将带有色素的植物组织或叶片(可选用有色素的洋葱鳞片的外表皮,紫鸭跖草,蚕豆,小麦,玉米等叶的表皮)撕取表皮迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中,每个培养皿中放材料3个左右,使其完全浸没,浸泡20-40分钟。
4. 到时后,取出表皮,放在载玻片上,滴一滴相同浓度的蔗糖,盖上盖玻片,在显微镜下观察质壁分离的细胞数和细胞总数,直接或间接(插值法)地找出引起50%细胞发生质壁分离的外界溶液浓度,即为细胞渗透浓度值。
《植物生理学》备课备课教案
《植物生理学》备课教案一、教学目标:1. 知识与技能:(1)理解植物细胞的基本结构和功能;(2)掌握植物的光合作用和呼吸作用的原理及应用;(3)了解植物生长发育的过程和调控机制。
2. 过程与方法:(1)通过观察植物细胞切片,认识植物细胞的结构;(2)利用实验方法探究植物的光合作用和呼吸作用;(3)观察植物生长发育过程,分析其调控机制。
3. 情感态度价值观:培养学生对植物生理学的兴趣,提高学生关注生态环境、珍惜资源的意识。
二、教学重点与难点:1. 教学重点:(1)植物细胞的基本结构和功能;(2)植物的光合作用和呼吸作用的原理及应用;(3)植物生长发育的过程和调控机制。
2. 教学难点:(1)植物细胞结构与功能的对应关系;(2)光合作用和呼吸作用过程中的物质变化;(3)植物生长发育的分子调控机制。
三、教学方法与手段:1. 教学方法:(1)讲授法:讲解植物细胞结构、光合作用和呼吸作用的原理;(2)实验法:进行植物光合作用和呼吸作用的实验;(3)观察法:观察植物生长发育过程;(4)讨论法:分组讨论植物生长发育的调控机制。
2. 教学手段:(1)多媒体课件:展示植物细胞结构、光合作用和呼吸作用的过程;(2)实验器材:进行光合作用和呼吸作用的实验;(3)观察植物生长发育的实物材料。
四、教学过程:1. 导入:通过展示植物王国的图片,引导学生关注植物的生长发育过程,激发学习兴趣。
2. 植物细胞结构与功能:(1)讲解植物细胞的基本结构,如细胞壁、细胞膜、细胞质、细胞核等;(2)分析植物细胞各结构的功能及对应关系。
3. 光合作用和呼吸作用:(1)讲解光合作用的原理及应用,如绿色植物的光合作用、蓝藻的光合作用等;(2)讲解呼吸作用的原理及应用,如植物的呼吸作用、微生物的呼吸作用等;(3)分析光合作用和呼吸作用之间的关系。
4. 植物生长发育:(1)讲解植物生长发育的过程,如种子萌发、植株生长、开花结果等;(2)分析植物生长发育的调控机制,如激素调节、基因调控等。
2024版植物生理学课程教案
02
植物体内的水分运 输
通过木质部导管和韧皮部筛管进 行长距离运输,短距离运输则依 靠细胞间的胞间连丝。
03
植物的蒸腾作用
叶片气孔开放,水分以气态形式 从植物体内散失到大气中,是植 物水分散失的主要途径。
植物的水分平衡与渗透调节
植物的水分平衡
吸收
运输
矿质元素在植物体内通过木质部和韧皮部进行长距离 运输,以满足不同器官和组织的需求。
植物通过根系从土壤中吸收矿质元素,吸收过 程受土壤环境、根系发育和元素形态等因素影 响。
利用
植物将吸收的矿质元素用于合成各种有机物质, 如蛋白质、核酸、酶等,以维持正常的生命活 动。
合理施肥的原理与技术
施肥原理
通过喷洒乙烯或脱落酸,促进 或延缓果实成熟。
促进种子萌发
用赤霉素处理种子,打破休眠, 提高发芽率。
提高抗逆性
用脱落酸处理植物,提高抗旱、 抗寒能力。
增产增收
合理使用植物激素,可提高作 物产量和品质,增加经济效益。
THANKS
感谢观看
二氧化碳与五碳糖(RuBP)结合,形 成六碳中间产物。
糖的生成
六碳中间产物经过一系列酶促反应, 最终生成葡萄糖等有机物质。
光合作用的影响因素及其调控
光照强度
光照强度直接影响光 合作用的速率,过弱 或过强的光照都会抑 制光合作用。
温度
温度影响光合作用相 关酶的活性,适宜的 温度有利于光合作用 的进行。
植物通过吸水、运输和蒸腾等过 程维持体内水分的动态平衡,保 证正常生理活动的进行。
植物的渗透调节机制
植物对水分胁迫的响应
通过合成和积累有机溶质(如脯 氨酸、甜菜碱等)和无机离子 (如K+、Cl-等)降低细胞渗透势, 提高吸水能力。
(精)植物生理学实验讲义
植物生理学实验讲义目录目录 (I)实验一植物材料的无土培养及缺素症状观察(3学时) (1)实验二植物组织水势的测定(小液流法)(3学时) (2)实验三缺磷、缺铁对植物叶片中叶绿素含量影响(叶绿体色素的提取、分离及定量测定)及光合速率的测定(3学时) (3)实验四:缺素培养对叶片质膜透性及过氧化物酶活性的影响(电导率的测定&愈创木酚法测定POD酶活性)(3学时) (5)Part Ⅰ缺素培养对叶片过氧化物酶活性的影响 (5)Part Ⅱ缺素培养对叶片质膜透性的影响 (6)实验五:设计性实验:逆境胁迫下植物的适应机制研究(6学时) (7)PartⅠ蒽酮法测定可溶性糖 (7)Part Ⅱ植物体内可溶性蛋白质含量的测定(考马斯亮蓝法) (9)Part Ⅲ植物组织中丙二醛含量的测定 (11)实验一植物材料的无土培养及缺素症状观察(3学时)【实验原理】只要满足植物正常生长发育的要求(光、温、水、气、必需元素),植物可以在水中或砂中生长。
把必需矿质元素配制成培养液培养植物称溶液培养,而把培养液加于洁净的石英砂中培养植物则称砂基培养。
由于培养液中元素的种类和数量可以人为控制,因此当要了解某种元素是否为植物必需时,只要有意识地配制缺乏该种元素的培养液,根据植物在该培养液中所表现出来的症状,便可了解该元素的作用以及对植物生长发育的必要性。
【器材与试剂】器材:,贮液塑料桶(10个),量筒,移液管,石英砂或蛭石适量,水培设备4个移液器,酸度计,电子天平,数码相机。
试剂:硝酸钙,硝酸钾,硫酸镁,磷酸二氢钾,硝酸钠,氯化镁,硫酸钠,磷酸二氢钠,氯化钙,氯化钾,EDTA-Na2,FeSO4,CuSO4,HBO3,KI,MnCl2,ZnCl2,Na2MoO4。
HCl,NaOH,Na2ClO4或CaClO4以上试剂均需分析纯。
【方法与步骤】1.准备工作1)幼苗准备:实验用种子用漂白粉溶液灭菌半小时,用灭菌水洗几次,然后放在干净的湿石英砂中发芽,加以蒸馏水培养长至一定高度(5cm左右)。
植物生理研究技术教学设计
植物生理研究技术教学设计前言植物生理学是研究植物生命过程的一门基础学科,涉及植物的各种生理现象、生理机制和生理生态学等方面。
在现代农业、林业和生物技术等领域中,植物生理学的研究和应用越来越重要。
本文将重点探讨植物生理研究技术的教学设计。
教学目标本教学设计旨在使学生掌握以下知识和技能:1.理解植物生理学的基本概念和研究方法;2.熟悉植物生理研究中的一些常用仪器和设备;3.掌握植物生理实验操作技能;4.培养实验设计和数据分析的能力;5.培养团队合作和沟通能力。
教学内容和方法教学内容本教学设计将按照以下内容顺序进行:1.植物生理学基本概念和研究方法;2.植物生理实验室常用仪器和设备;3.植物生理实验操作技能;4.实验设计和数据分析;5.团队合作和沟通技能。
教学方法本教学设计将采用以下教学方法:1.讲授:通过讲授基本概念、原理和方法,培养学生的理论知识和实验技能;2.实验操作:通过引导学生亲自进行植物生理实验操作,增强学生的实践能力;3.课堂讨论:安排学生进行实验数据分析和结果解释,并通过课堂讨论加深学生的理解和沟通技能;4.小组合作:安排学生进行小组合作,进行实验设计和结果展示,增强学生的团队合作能力。
教学流程第一讲:植物生理学基本概念和研究方法1.植物生理学的基本概念和研究领域;2.植物生理实验方法的分类和概述;3.实验中的样品处理和数据处理方法。
第二讲:植物生理实验室常用仪器和设备1.植物生理实验室中常用的仪器和设备选型;2.仪器的使用方法和维护。
第三讲:植物生理实验操作技能1.实验前的样品准备和处理;2.环境条件调节和监测;3.实验过程中的仪器操作和数据记录。
第四讲:实验设计和数据分析1.实验设计的基本原则和方法;2.数据分析的基本手段和流程。
第五讲:团队合作和沟通技能1.小组合作的分工与协作;2.实验结果的展示和讨论;3.小组演示和总结报告。
教学效果评估本教学设计的效果将通过以下方式进行评估:1.学生实验实践能力的提升程度;2.学生分析和解释实验数据的能力;3.小组合作和沟通能力的表现;4.期末考核成绩和总结报告质量。
植物生理学实验(考研复试专用)
植物生理学实验讲义吴恩岐内蒙古师范大学生命科学与技术学院2007.4实验1 植物组织水势的测定(小液流法)一、目的学会用小液流法测定植物组织的水势二、材料用具及仪器药品花生叶片、试管、移液管(10ml, 0.1ml)、吸球、镊子、小方块、钻孔器、牙签、玻棒、蔗糖、次甲基蓝三、原理当把植物组织或细胞放在溶液中时,两者便会发生水分交换。
如果植物组织(或细胞)的水势低于溶液的水势,组织(或细胞)则吸水,使外溶液浓度增大,比重也增大;若植物组织(或细胞)的水势高于溶液的水势时,组织(或细胞)则失水,使溶液的浓度变小,比重也变小;如果植物组织(或细胞)的水势与溶液的水势相等时,外溶液的浓度不变,其比重也不变,若把浸过组织的溶液慢慢滴回同一浓度而未浸过组织或细胞的溶液中。
比重小的液流便往上浮,比重大的则往下沉。
如果小液流停止不动,则说明溶液的浓度未有发生改变。
此溶液的渗透势(水势)即等于所测组织(或细胞)的水势。
根据溶液的浓度,可以用公式(ψs=-CiRT), 计算出溶液的渗透势(ψw so1=ψs so1)ψs表示渗透势。
R表示气体常数:0.0083 MPa·l/mol·K。
T表示绝对温度,即273+实验时(℃)i表示解离系数。
四、方法步骤1.将1mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.1、0.2、0.3、 0 4、0.5、0.6mol/L的蔗糖溶液各10ml,分别注入6支大试管中,摇匀。
2.从上述的大试管中各取2ml溶液,分别放到另6支小试管中,各试管塞上软木塞。
3.用钻孔器钻取叶圆片(花生叶、菠菜均可),依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片40片(钻孔器的直径为6mm),叶圆片要全部浸在溶液中,塞上塞子,每隔5分钟摇动一次。
4.30分钟后,用牙签取次甲基蓝结晶少许,分别投入小试管中,摇匀。
5.用0.1ml的移液管从小试管中吸取溶液约0.1ml,然后将之插之相对应浓度的大试管中的中部,慢慢放出蓝色液,并观察记录小液流的流向,从中找出小液流停止不动的该溶液的浓度(每一浓度配备0.1ml移液管一支)。
植物生理实验设计教案
植物生理实验设计教案1.实验目的:探究植物生理过程中的一些基本原理和机制,加深对植物生理学的理解,培养学生的实验设计和操作能力。
2.实验内容:2.1光合作用速率的测定2.2呼吸速率的测定2.3水分蒸腾速率的测定2.4叶片光合色素的分析2.5酶活性的测定2.6激素对种子萌发的影响2.7pH值对酶活性的影响3.实验设计:3.1光合作用速率的测定材料:仙人掌叶片、架子、烧瓶、温度计、草绿素提取液步骤:1)在室内清洁的光线条件下获取仙人掌叶片,放置于烧瓶中;2)把烧瓶悬挂在架子上,将草绿素提取液放入烧瓶中;3)观察烧瓶中气泡的数量和大小,测量温度,记录数据;4)改变光照的强度和时间,观察气泡的变化。
3.2呼吸速率的测定材料:豆苗、封闭室、酒精灯、计时器步骤:1)在室内清洁的环境下,准备豆苗;2)在封闭室中放入豆苗,盖上盖子;3)在封闭室内放置酒精灯,进行燃烧,同时计时;4)观察封闭室内空气的变化,记录时间。
3.3水分蒸腾速率的测定材料:其他维管植物叶片、测量器、烧杯、电子天平步骤:1)准备其他维管植物叶片,称量叶片的质量;2)放置于烧杯中,测量烧杯的质量;3)将烧杯放入测量器中,记录初始质量,放置一段时间后,再次记录质量;4)根据质量的变化计算水分蒸腾速率。
3.4叶片光合色素的分析材料:维管植物叶片、70%酒精、束丝菌素、手套、玻璃管、流动相步骤:1)收集维管植物叶片,将叶片放入70%酒精中,研磨成均匀的浆状物;2)将浆状物过滤,得到植物的粗提液;3)将提取液注入试管中,配制出不同浓度的标准曲线;4)通过吸光度计测定不同浓度下的吸光度,绘制标准曲线;5)测定待测样品的吸光度,根据标准曲线计算叶片光合色素的含量。
3.5酶活性的测定材料:酶提取液、底物液、探针、试管、试管夹步骤:1)准备酶提取液和底物液,并测定其初始浓度;2)将酶提取液和底物液混合,放入试管中;3)使用探针测定试管中的浓度变化,记录时间和数据;4)计算酶的活性。
植物生理学实验2
五. 实验课内容和具体安排
实验理论。(书面作业:谈谈小液流法和质壁分离法测定植 物组织水势的区别,并就小液流法测定植物组织水势写一份 实验报告)(第1周) 2. 植物组织培养,研究植物细胞脱分化、再分化与激素的关 系。如果自定植物材料,培养基配制要自己提出方案,并有 切实可行的参考文献为依据,并且自己准备实验材料。从愈 伤组织诱导到最后组培苗生根移栽要有详细记录、照片为重 要依据,最后(约2个月)提供完整实验报告(第2、3周) 3. 乙烯对植物生长效应的观察(三重反应,用拟南芥和绿豆) (第3周) 4. 叶绿体色素的提取、分离和理化性质分析;(要求自己采集 实验材料) (第5周) 5. 现代农业设施参观(孙桥),考察后从植物生理的某个角度 写一观后考察报告。(时间待定) 6. 探究性实验 1.
三. 植物生理学研究的基本思路
1. 根据研究的目标确定研究内容,根据内 容选择研究方法; 2. 多数生物学问题的研究包括:形态,生 理生化水平变化,内源调节物变化,基 因表达和蛋白质调控水平变化; 3. 要注意研究内容(或所选择的研究指 标)和研究目标的相关性
四. 实验课的开展形式植物生理学
1. 以书面作业,自学方式理解和掌握实验原理; 2. 教师讲解,学生动手操作 3. 以学生为主体,以组为单位选择研究目标,设计 研究方案,在教师指导下完成
3. 光合作用
光合作用是植物生理学中的核心知识,从知识结构上包括两部分, 一是光合作用的机理,二是环境条件和光合作用效率的关系,前者 是后者的基础。反应光合作用效率大小的常用指标包括: ①光合器官的结构和光合色素:叶绿体的超微结构、片层结构往往 反应其功能(C3, C4超微结构的不同); 色素是光能吸收、传导和 转化的重要物质基础,色素的含量、比例变化往往和光合效率、环 境条件有着一定的对应关系,往往是分析的重要指标; ②光合作用强度:底物CO2的消耗或产物O2的增加,或光合碳同化 产物的变化多种方法,其中红外线CO2测定是相对较准确的方法; ③反映光合磷酸化能力的 叶绿体偶联因子腺苷三磷酸酶(ATPase)活 力; ④碳同化过程中的酶活力等。
植物生理学教案植物体内有机物的运输
植物生理学教案——植物体内有机物的运输教学目标:1. 理解植物体内有机物的运输过程及机制。
2. 掌握植物体内有机物运输的主要途径和影响因素。
3. 能够分析实际问题,运用所学知识解决植物体内有机物运输相关问题。
教学重点:1. 植物体内有机物的运输途径。
2. 影响植物体内有机物运输的因素。
教学难点:1. 植物体内有机物运输的分子机制。
2. 在实际生产中应用植物体内有机物运输知识解决实际问题。
教学准备:1. 教材或教学资源。
2. 投影仪或白板。
3. 教学PPT或幻灯片。
教学过程:一、导入(5分钟)1. 引导学生回顾植物体内物质的运输方式。
2. 提问:同学们认为植物体内有机物是如何运输的?二、植物体内有机物的运输途径(15分钟)1. 讲解植物体内有机物的运输途径。
2. 介绍韧皮部、木质部等运输组织的功能和结构。
3. 强调筛管、伴胞等在有机物运输中的作用。
三、影响植物体内有机物运输的因素(15分钟)1. 讲解影响植物体内有机物运输的因素。
2. 分析温度、光照、水分等环境因素对有机物运输的影响。
3. 探讨植物生长调节剂、矿质元素等内因对有机物运输的作用。
四、植物体内有机物运输的分子机制(15分钟)1. 讲解植物体内有机物运输的分子机制。
2. 介绍载体蛋白、通道蛋白等在有机物运输中的功能。
3. 讨论基因调控在有机物运输中的作用。
五、实际问题分析与讨论(10分钟)1. 提出实际问题,如:如何提高作物产量?2. 引导学生运用所学知识分析问题,提出解决方案。
3. 讨论解决方案的可行性和效果。
教学总结:1. 总结本节课的主要内容和知识点。
2. 强调植物体内有机物运输在农业生产中的应用价值。
3. 提醒学生注意实际问题与理论知识的结合。
教学延伸:1. 深入了解植物体内有机物运输的研究进展。
2. 探究其他植物生理学领域的知识。
教学反思:1. 检查教学目标的达成情况。
2. 评估教学方法和教学效果。
3. 针对学生的反馈,调整教学策略。
植物生理学实验教学教案
● 03
第3章 植物呼吸作用实验
植物呼吸速率测定实验
实验目的
测定植物在不同 条件下的呼吸速
率
结果分析
不同温度、湿度 等条件下呼吸速
率的差异
实验步骤
制备试剂、采集 样品、测定数据
乙醇发酵实验
乙醇发酵实验旨在研 究植物细胞在缺氧条 件下的代谢途径。通 过设计不同条件下的 发酵实验组,分析乙 醇产量与细胞代谢途 径的关系。实验结果 将深入理解植物生理 代谢的机制。
加强实验结果的应用能力
03、Leabharlann 创新思维培养鼓励学生思考实验的各种可能性
培养学生创新思维
04、
教师培训与支持
提供教师实验教学培训 支持教师实验教学的创新
植物生理学实验教学的发展方向
资源整合共 享
推动实验教学资 源整合共享
课程内容创 新
不断创新实验教 学的课程内容
技术设备更 新
促进实验教学技 术设备更新
植物组织中激素含量的测定结果
03、
植物激素信号转导实验
转基植物中激素信号传递路径的分析
04、
● 05
第5章 植物生理实验技术
植物组织培养技术实验
01 取材
采集植物材料用于培养
02 接种
将植物材料接种到培养基上
03 培养
提供适当的生长条件促进植物生长
植物细胞融合技术实验
01、 实验设计
选择不同植物种类进行细胞融合
03、
02、 结果分析
研究细胞融合后植株的性状和遗传机制
04、
植物互作实验
实验方法
构建植物种间竞 争实验
结果分析
探讨植物物质交 换、竞争机制及
演化意义
《植物生理学》备课备课教案
《植物生理学》备课教案一、教学目标1. 知识与技能:使学生掌握植物生理学的基本概念、原理和知识,能够运用所学知识分析和解决实际问题。
2. 过程与方法:通过观察、实验、讨论等方法,培养学生的实践操作能力和团队协作能力。
3. 情感态度价值观:激发学生对植物生理学的兴趣,培养学生热爱科学、探索真理的精神。
二、教学内容第一章:植物生理学概述1. 植物生理学的定义和研究方法2. 植物体的结构与功能第二章:植物细胞的生理1. 植物细胞的基本结构与功能2. 植物细胞的代谢第三章:植物的光合作用1. 光合作用的发现和发展2. 光合作用的过程和机制第四章:植物的呼吸作用1. 呼吸作用的定义和意义2. 呼吸作用的过程和类型第五章:植物的水分代谢1. 植物细胞的水分平衡2. 植物的吸水与失水三、教学重点与难点1. 教学重点:植物生理学的基本概念、原理和知识;光合作用、呼吸作用和水分代谢的过程和机制。
2. 教学难点:光合作用、呼吸作用和水分代谢的详细过程和机制。
四、教学方法1. 讲授法:讲解植物生理学的基本概念、原理和知识。
2. 实验法:进行光合作用、呼吸作用和水分代谢的实验,观察并分析实验结果。
3. 讨论法:分组讨论实验现象,引导学生运用所学知识分析和解决问题。
五、教学评价1. 课堂评价:通过提问、回答问题、实验操作等方式,评价学生的学习情况。
2. 作业评价:布置相关作业,评价学生对知识的理解和运用能力。
3. 期末考试:设置期末考试,全面检测学生的学习效果。
六、教学计划第1周:植物生理学概述第2周:植物细胞的生理第3周:植物的光合作用第4周:植物的呼吸作用第5周:植物的水分代谢七、教学资源1. 教材:《植物生理学》2. 实验器材:显微镜、植物材料、实验仪器等3. 多媒体课件:制作相关的课件,用于辅助教学八、教学活动1. 课堂讲授:讲解植物生理学的基本概念、原理和知识,引导学生掌握光合作用、呼吸作用和水分代谢的过程和机制。
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研究生植物生理学实验教案教师:***农学院生物技术系实验一 植物抗氧化酶活性的测定植物抗氧化酶包括超氧化物歧化酶(SOD )、过氧化氢酶(CAT )、过氧化物酶(POD )等。
它们普遍存在于植物的各种组织中,可以通过催化植物体内的活性氧,防止发生氧化反应。
所以抗氧化酶活性与植物的代谢强度及逆境适应能力有密切关系,经常被用来衡量植物的抗性强弱和衰老程度。
一、超氧化物岐化酶活性测定超氧物歧化酶(SOD )普遍存在于动、植物体内,是一种清除超氧阴离子自由基(•2O )的酶,它催化下列反应:2反应产物H 2O 2可被过氧化氢酶进一步分解或被过氧化物酶利用。
因此SOD 有保护生物体免受活性氧伤害的能力。
已知此酶活力与植物抗逆性及衰老有密切关系,故成为植物逆境生理学的重要研究对象。
【原理】本实验依据超氧物歧化酶抑制氮蓝四唑(NBT )在光下的还原作用来确定酶活性大小。
在有可氧化物质存在下,核黄素可被光还原,被还原的核黄素在有氧条件下极易再氧化而产生•2O ,•2O 可将氮蓝四唑还原为蓝色的甲。
后者在560nm 处有最大吸收,而SOD 可清除•2O 从而抑制了甲的形成。
于是光还原反应后,反应液蓝色愈深,说明酶活性愈低,反之酶活性愈高。
一个酶活性单位定义为将NBT 的还原抑制到对照一半(50%)时所需的酶量,据此可以计算出酶活性大小。
【仪器与用具】高速台式离心机;分光光度计;微量进样器;荧光灯(反应试管处光照强度为4000lx );试管数支;黑色硬纸套。
【试剂】1.50mmol/L 磷酸缓冲液(pH7.8)。
2.提取介质50mmol/L pH7.8磷酸缓冲液(内含1%聚乙烯吡咯烷酮)。
3.130mmol/L 甲硫氨酸(Met )溶液:称取1.939 9g Met 用磷酸缓冲液定容至100ml 。
4.750μmol/L 氮蓝四唑(NBT )溶液:称取61.33mg NBT 用磷酸缓冲液定容至100ml ,现配先用,避光保存。
5.100μmol/L EDTA-Na 2溶液:取37.21mg EDTA-Na 2用磷酸缓冲液定容至1 000ml 。
6.20μmol/L 核黄素溶液:取7.53mg 核黄素定容至1 000ml 避光保存。
【材料与方法】1.酶液提取:取一定部位的植物叶片(视需要定,去叶脉)0.5g 于预冷的研钵中,加1ml 磷酸缓冲液在冰浴下研磨成浆,倒入5ml 离心管中,用提取介质冲洗研钵2~3次,最后加缓冲液使终体积为5ml 。
于10 000r/min 下离心10min ,上清液即为SOD 粗提液。
2.显色反应:取试管(要求透明度好)7支,3支为样品测定管,3支为对照管,另外1支作为空白,按表1加入各溶液。
混匀后将空白管置暗处,其他各管于4000lx 日光灯下反应20min (要求各管受光情况一致,反应室的温度高时时间可适当缩短,温度低时时间可适当延长;温度范围30-37度)。
【结果处理】SOD 活性测定与计算 至反应结束后,以不照光的作空白,分别测定其他各管560nm 波长下的吸光度值,已知SOD 活性单位以抑制NBT 光化还原的50%为一个酶活性单位表222SOD 2O O H H 2O +++−−→−•22CAT 22O O H 2O H 2+−−→−示。
按下式计算SOD 活性: SOD 总活性(U ·g -1FW )=式中 SOD 总活性以每克鲜重酶单位表示;A 0—照光对照管的吸光度值; A S —样品管的吸光度值; V T —样液总体积(ml ); V 1—测定时样品用量(ml ); FW —样重(g );表1-1 各溶液加入量试 剂(酶) 测定管用量(ml)空白和对照管用量(ml )0.05mol/L 磷酸缓冲液130mmol/L Met 溶液 750μmol/L NBT 溶液 100μmol/L EDTA-Na 2液 20μmol/L 核黄素 酶液 蒸馏水 总体积1.5 0.3 0.3 0.3 0.3 0.05 0.25 3.01.5 0.3 0.3 0.3 0.3加缓冲液0.050.25 3.0【注意事项】1. 显色反应过程中要随时观察光下对照管的颜色变化,当A 0达到0.6-0.8时终止反应。
2. 当光下对照管反应颜色达到要求的程度时,测定管(加酶液)未显色或颜色过淡,说明酶对NBT 的光还原抑制作用过强,应对酶液进行适当稀释后再显色,以能抑制显色反应的50%为最佳。
3. 植物组织中的酚类物质对测定干扰,对酚类含量高的材料提取酶液时刻加入聚乙烯吡咯烷酮(PVPP )消除之 【思考题】1.在SOD 测定中为什么设照光对照管和暗中空白管? 2.影响本实验准确性的主要因素是什么?应如何克服?二、过氧化氢酶活性的测定(采用滴定法)【原理】H 2O 2在240nm 波长下有强烈吸收,过氧化氢酶能分解过氧化氢,使反应溶液吸光度(A 240)随反应时间而降低。
根据测量吸光率的变化速度即可测出过氧化氢酶的活性。
【仪器与用具】紫外分光光度计;离心机;研钵;250ml 容量瓶;0.5ml 刻度吸管;2ml 刻度吸管;10ml 试管;恒温水浴锅; 【试剂】1. 0.2mol /L pH7.8磷酸缓冲液(内含1%聚乙烯吡咯烷酮);2. 0.l mol /L H 2O 2 :市售30% H 2O 2 大约等于17.6mol/L ,取30% H 2O 2 溶液5.68ml ,稀释至1000ml 。
(用0.1mol /L 高锰酸钾标定)。
【材料与方法】1.酶液提取:称取剪碎的植物样品1.0g 置研钵中,加入2~3ml 4℃下预冷的pH7.8磷酸缓冲液和少量石英砂研磨成匀浆后,转入10ml 刻度试管中,并用缓冲液冲洗研钵2~3次,合并冲洗液,并定容到刻度,摇匀。
取部分提取液在4 000r/min 下离心15min ,上清液1005.0)(V FW A V A A T S ⨯⨯⨯⨯-即为过氧化氢酶粗提液。
2.测定:取10ml 试管4支,其中3支为样品测定管,1支为对照管,按表2顺序加入试剂。
25℃预热后,逐管加入0.3ml 0.1mol /L 的H 2O 2,每加完一管立即记时,并迅速倒入石英比色杯中(可在比色杯中直接加H 2O 2),240nm 下测定吸光度(蒸馏水调零),每隔lmin 读数1次,共测4min ,待3支管全部测定完后,按下式计算酶活性。
【结果处理】以lmin 内A 240减少0.1为1个酶活单位(U )。
过氧化氢酶活性(U /gFW/min )=FWt V VrA ⨯⨯⨯⨯∆12401.03)(321240S S S SO A A A A A ++-=∆式中A so —加入煮死酶液的对照管吸光值; A sl , A s2, A s3—样品管吸光度值; Vt —粗酶提取液总体积(ml);V 1—测定用粗酶液体积(ml); FW —样品鲜重(g):0.1—A 240每下降0.1为1个酶活单位(u ): t —加过氧化氢到最后一次读数时间(min)。
【注意事项】 1. 所用KMnO 4溶液及H 2O 2溶液临用前要经过重新标定。
2. 凡在240nm 下有强吸收的物质对本实验有干扰。
【思考题】1.影响过氧化氢酶活性测定的因素有哪些? 2.过氧化氢酶与哪些生化过程有关?三、过氧化物酶活性的测定过氧化物酶(POD )通过催化酚类物质与H 2O 2反应生成醌类来清除植物体内的H 2O 2。
过氧化物酶还与生长素、NADH 、NADPH 的氧化有关,在植物代谢中起着重要作用。
【原理】愈创木酚(邻甲氧基苯酚)可作为过氧化物酶的底物,与H 2O 2反应生成茶褐色产物。
该物质在470nm 处有最大吸收峰,故可利用分光光度计测定过氧化物酶的活性。
【仪器与用具】紫外分光光度计;离心机;研钵;5ml 量筒;25ml 容量瓶;微量进样器;秒表。
【试剂】1. 100 mmol /L PH6.0磷酸缓冲液。
2. 反应混合液:100 mmol /L PH6.0磷酸缓冲液50ml 于烧杯中,加入愈创木酚28μL,于磁力搅拌器上加热搅拌,直至愈创木酚溶解,待溶液冷却后,加入30%过氧化氢19μL,混合均匀,保存于冰箱中。
【材料与方法】1.酶液的提取称取剪碎的植物样品2.0g置研钵中,加适量的磷酸缓冲液和少量石英砂研磨成匀浆后,将匀浆全部转入离心管中,以4000g离心10min,上清液转入25ml容量瓶。
沉淀用5ml磷酸缓冲液再提取两次,上清液并入容量瓶,定容至25ml,低温下保存备用。
(酶浓度太高,样品数可少至1g)2.过氧化物酶活性的测定取两个光径1cm比色杯,于1个比色杯中加入反应混合液3ml和磷酸缓冲液1ml,作为较零对照;另一个比色杯中加入反应混合液3ml和粗酶液1ml(如酶活力过高可适当稀释),立即开启秒表记录时间,于470nm进行比色测定,每隔1min记录一次吸光度值,共记录5min,然后以每分钟内A470变化0.01为1个酶活性单位。
【结果处理】以lmin内A470变化0.01为1个酶活单位(U)。
过氧化物酶活性(U/gFW/min)=△A470V/0.01WV t t式中△A470反应时间内吸光度的变化;V—为酶提取液总量(ml);V t—为反应系统中加入的酶液量(ml);W—样品重(g):t—反应时间(min)。
【思考题】1.在此实验者A470反应时间如何掌握?2.使用愈创木酚溶液时要注意什么?为什么?实验二植物渗透调节能力的测定一、游离脯氨酸含量的测定植物在正常条件下,游离脯氨酸含量很低,但遇到干旱、低温、盐碱等逆境时,游离脯氨酸便会大量积累,并且积累指数与植物的抗逆性有关。
因此,脯氨酸可作为植物抗逆性的一项生化指标。
【原理】采用磺基水杨酸提取植物体内的游离脯氨酸,不仅大大减小了其他氨基酸的干扰,快速简便,而且不受样品状态(干或鲜样)限制。
在酸性条件下,脯氨酸与茚三酮反应生成稳定的红色缩合物,用甲苯萃取后,此缩合物在波长520nm处有一最大吸收峰。
脯氨酸浓度的高低在一定范围内与其消光度成正比。
【仪器与用具】分光光度计;水浴锅;漏斗;20ml大试管;20ml具塞刻度试管;5~10ml注射器或滴管。
【试剂】1.3%磺基水杨酸水溶液;甲苯。
2.2.5%酸性茚三酮显色液:冰乙酸和6mol/L磷酸以3∶2混合,作为溶剂进行配制,可加热至70℃使其溶解,贮于棕色瓶中(此液在4℃下2~3日有效)。
3.脯氨酸标准溶液:称取25mg脯氨酸,蒸馏水溶解后定容至250ml,其浓度为100μg/ml。
再取此液10ml用蒸馏水稀释至100ml,即成10μg/ml的脯氨酸标准液。
【材料与方法】1.标准曲线制作:(1)取7支具塞刻度试管按表2-1加入各试剂。