蜂蜜淀粉酶值实验教学改革与创新
同蜜源不同生产批次蜂蜜中淀粉酶活性分析
同蜜源不同生产批次蜂蜜中淀粉酶活性分析宗德琴;宋文菲;赵洪木;杨娟;梁铖【摘要】探讨同一蜜源生产的蜂蜜中淀粉酶活性与养蜂生产的关系.试验测定了2011年、2012年和2014年石榴花期不同批次生产的36个蜂蜜样品淀粉酶值,并进行比较分析.结果表明,石榴花期不同生产批次蜂蜜其淀粉酶值存在差异,第四批次蜜组酶值最高.第一批次蜜与第二批次蜜间差异显著(P =0.039)、与三、四批次蜜间差异极显著(P<0.01);二、三、四批次蜜组间酶值差异都达到极显著水平(P<0.01).结论,同蜜源生产的蜂蜜中淀粉酶活性受生产批次的影响,不同生产批次蜜样其淀粉酶活性有差异,随着生产批次的持续递增淀粉酶活性增强.【期刊名称】《蜜蜂杂志》【年(卷),期】2015(035)009【总页数】3页(P1-3)【关键词】蜂蜜;生产批次;淀粉酶【作者】宗德琴;宋文菲;赵洪木;杨娟;梁铖【作者单位】云南省农业科学院蚕桑蜜蜂研究所,云南蒙自661101;云南省农业科学院蚕桑蜜蜂研究所,云南蒙自661101;云南省农业科学院蚕桑蜜蜂研究所,云南蒙自661101;云南省农业科学院蚕桑蜜蜂研究所,云南蒙自661101;云南省农业科学院蚕桑蜜蜂研究所,云南蒙自661101【正文语种】中文【中图分类】S896.1淀粉酶是蜂蜜中一种重要的天然生物酶。
Hrassnigg等(2003)的研究表明,蜂蜜中的淀粉酶是工蜂咽下腺分泌,添加进去的。
淀粉酶能提高二糖的利用率,增加能量的供应,使工蜂能飞行更长的时间[1]。
蜂蜜中的淀粉酶活性,受到加工温度、储存时间、蜜源品种等因素的影响,因而不同品种的蜂蜜淀粉酶活性不同[2]。
同品种蜂蜜中的淀粉酶活性,随加工过程中温度升高过热或储存时间过长会降低,因此可以通过检测蜂蜜中的淀粉酶值来监控蜂蜜质量[3]。
随着工业耐高温淀粉酶的发明并添加到蜂蜜中,蜂蜜质量控制中淀粉酶活性检测指标似乎失去了它的重要性。
但是,研究表明可以利用加热蜂蜜,根据淀粉酶活性的变化,进行检测是否添加耐高温淀粉酶[4,5]。
影响蜂蜜淀粉酶活性的研究
影响蜂蜜淀粉酶活性的研究作者:孔新月来源:《科学导报·学术》2017年第08期摘要: 对蜂蜜淀粉酶活性进行检测,是蜂蜜常规检测内容之一。
对蜂蜜进行加工、运输、冲调过程中会影响到蜂蜜淀粉酶的活性。
为维持蜂蜜淀粉酶的活性,本文将从蜂蜜的溶解温度、溶解时间、储存条件等多方面对蜂蜜样品的淀粉酶活性进行检测,分析影响蜂蜜淀粉酶活性的因素。
关键词: 蜂蜜淀粉酶;活性研究;影响因素【中图分类号】S896.1【文献标识码】B【文章编号】2236-1879(2017)08-0266-02有关蜂蜜淀粉酶的研究资料显示,蜂蜜淀粉酶来源蜜蜂,并非来自花朵,是一种“动物源淀粉酶”,其活性较差,容易受外界条件影响,例如溶解温度、溶解时间、储藏条件、PH值、酶抑制剂等因素。
本文运用控制变量法,分别对溶解温度、溶解时间、储存条件、酸碱条件、+3价铁离子对蜂蜜淀粉酶的影响情况进行分析。
1材料与方法1.1材料。
蜂蜜样品(油菜花蜂蜜和枸杞蜂蜜);实验试剂为氨水、氯化铵、乙酸、无水乙酸钠、碘化钾、小碘、氯化钠、可溶性淀粉。
1.2实验方法。
将两种蜂蜜样品进行装瓶,各装35瓶,每瓶蜂蜜样品含量为50克,根据《蜂蜜中淀粉酶值的测定方法》换算蜂蜜样品中淀粉酶的活性,即1个小时内1克蜂蜜水解淀粉酶毫升数。
具体实验方法如下:1.2.1判断溶解温度对蜂蜜淀粉酶活性的实验方法。
溶解时间、储藏条件、PH值、酶抑制剂等影响因素不变的前提下,从蜂蜜两种样品中各取8瓶,将其分别放在10摄氏度、20摄氏度、30摄氏度、40摄氏度、50摄氏度、60摄氏度、70摄氏度、80摄氏度的水浴锅中,时间到后,同时对所有处理的蜂蜜进行冷却,然后对其蜂蜜样品中的淀粉酶进行检测。
1.2.2判断溶解时间对蜂蜜淀粉酶活性的实验方法。
溶解温度、储藏条件、PH值、酶抑制剂等影响因素不变的前提下,从两种蜂蜜样品中各取5瓶,将其放置在同一水浴锅中,分别预热15分钟、30分钟、60分钟、90分钟和120分钟,时间到达后立即将蜂蜜样品依次取出,并快速将其温度降到正常温度,对所有处理蜂蜜样品中的淀粉酶进行检测。
蜂蜜中掺伪鉴别检验方法论述
蜂蜜中掺伪鉴别检验方法论述姓名:叶泳班级:食安1201 学号:1201070522摘要:淀粉酶在真假蜂蜜鉴别中的应用天然蜂蜜中的淀粉酶来源于蜜蜂,而不是花粉或花蜜,说明天然蜂蜜中的淀粉酶是一种动物来源淀粉酶。
通常动物性酶的稳定性较差,其活性极易受到外界温度的影响,随着时间的延长,活性下降。
天然蜂蜜淀粉酶值和蛋白质含量在储存过程中有相似的变化规律,即低温时,淀粉酶值和蛋白质含量都基本保持不变,但是随着储存温度提高和储存时间延长,样品的淀粉酶值和蛋白质含量迅速降低。
一、淀粉酶在真假蜂蜜鉴别中的应用【1】天然蜂蜜中的淀粉酶来源于蜜蜂,而不是花粉或花蜜,说明天然蜂蜜中的淀粉酶是一种动物来源淀粉酶。
通常动物性酶的稳定性较差,其活性极易受到外界温度的影响,随着时间的延长,活性下降。
天然蜂蜜淀粉酶值和蛋白质含量在储存过程中有相似的变化规律,即低温时,淀粉酶值和蛋白质含量都基本保持不变,但是随着储存温度提高和储存时间延长,样品的淀粉酶值和蛋白质含量迅速降低。
在储存过程中,天然蜂蜜淀粉酶值的变化与其蛋白质的变化密切相关,蛋白质在储存过程中降解可能是天然蜂蜜淀粉酶值降低的直接原因。
与天然蜂蜜相反,掺假蜂蜜的淀粉酶值和蛋白质含量基本不受储存温度及时间的影响,这与假蜂蜜中添加的工业淀粉酶(诺维信耐温淀粉酶)的耐高温特性密切相关。
通过跟踪测定蜂蜜的淀粉酶值变化可以判断蜂蜜产品是否掺假,同时也可以判定天然蜂蜜产品的新鲜程度二、旋光法在检验蜂蜜中掺入糖类的应用【2】由于不同种类的蜂蜜都有相对稳定的旋光度,一般为左旋。
当掺入不同糖类后,蜂蜜的旋光度会发生变化,并随掺糖浓度的不同而有规律的变化,掺人蔗糖的蜂蜜,随着掺糖量的增加,其旋光度向右旋变化,掺入果糖或转化糖后,其变化趋势相反。
通过测定其旋光度,判定蜂蜜的真伪以及掺假的浓度,但是蜂蜜样品pH及测定温度均会影响测定值的准确性。
因此,测定过程中应控制合适的温度及pH,并使用醋酸铅作为澄清剂,沉淀蛋白质等大分子物质。
探索淀粉酶对淀粉和蔗糖的作用实验的改进
探索淀粉酶对淀粉和蔗糖的作用实验的改进一、原实验的主要内容及过程材料用具:质量分数为2%的新鲜淀粉酶(a-淀粉酶)溶液试管大烧杯量筒滴管温度计试管夹三角架石棉网酒精灯灯柴质量分数为3%的可溶性淀粉溶液,质量分数为3%的蔗糖溶液,斐林试剂,热水。
方法步骤:1、取两只洁净的试管,编上号,然后按照下表序号1至3的要求操作。
2、轻轻振动着两只试管,是试管的液体混合均匀,然后将两只试管的下半部浸到60摄氏度左右的热水中,保温5min3、取出试管,各加入2mL斐林试剂,4、将两只试管的下半部放进盛有热水的烧杯中,加热煮沸加1min。
实验现象:淀粉酶与可溶性淀粉混合液有颜色变化一近橙红色,与还原糖鉴定现象:砖红色沉淀不明显。
几乎无沉淀且放置一会儿颜色变黑。
此现象与还原糖鉴定现象有差异,且随后有不明原因的变黑给学生带来许多迷惑。
二、改进措施1、材料用新鲜的人唾液代替2%的新鲜淀粉酶(a一淀粉酶)溶液。
可在课堂上即取即用(采集学生的唾液)。
2、方法步骤2中将试管下半部浸到37摄氏度的温水中lmin3、步骤4改为将两只试管一起在酒精灯上均匀加热至沸腾后立即停止加热。
其他方面皆与原实验相同。
三、改进后的实验现象颜色反应变色明显且砖红色沉淀较多明显,长时间无颜色变化。
四、原实验与改进后试验的比较与分析1、现象比较与分析原试验使用的。
淀粉酶溶液本身带有较深的棕褐色,对本试验原试验还原糖生成的鉴定的颜色反映有一定的影响。
所以原实验的试验现象:变色并非典型的砖红色。
而人的唾液几乎是无色的可以克服。
淀粉酶这一缺点,而使本试验的颜色反应的颜色变化明显。
2、酶材料比较原实验用的酶是试验室里要准备的a-淀粉酶溶液与生活实际相对较远。
改进后使用酶直接来自学生的口腔,是直接来自于时间的是学生对本实验的结果信度大大的提高。
而且取用方便又可大大地降低教学成本和克服山区学校缺少试剂的不足。
3,过程比较原实验步骤2中反应要保温在60℃与环境温差较大,由于一般中学无恒温设备,需要不时地加热来维持恒温。
实验“淀粉酶对淀粉水解的作用”的改进和创新
结束后 ,由于本迪森试剂不容易形成沉淀的特点 , 笔
者发现 盛放 本迪 森试 剂 的试 管非 常容 易清洗 。 本迪 森 试剂 不用 现配 现用 和容 易清 洗 的特点 , 节省 学 生宝
贵 的时间 。
2 . 唾液提 前收 集 2
斐林试剂和本迪森试剂 , 二者都可用于鉴定可溶 性 还 原糖 , 两 种试 剂 的配 制 、 应 原理 及 使 用方 法 但 反 均有所不同, 教材只介绍了斐林试剂 的配制和使用方
很恶 心 的事情 。
2 实验 改进与创 新
实践 中,笔 者和本 校 的 生物 实 验 员老 师一 起 , 在
实验开始前几天配置了 2 0 L的本迪森试剂, 0 0 m 可用 于笔 者所 在学 校 l 4个班 级 的学 生分 组 实验 。如 果事
先配 置 的试剂 过多 , 以 留到下 一学 年使 用 。在 实验 可
本迪 森试 剂在 配制 过程 中 , 当把 硫 酸铜溶 液 倒人 由柠 檬酸 钠 和无水 硫 酸钠配 制 的溶液 中时 , 酸 铜与 硫
用 。从 学 生实验 的安 全考 虑 , 斐林试 剂使 用 的 A液 是
氧氧化钠 , 虽然浓度 比较低 , 但仍然有一定的腐蚀性 。 实验结束后 , 试管壁 卜 形成黏附物 , 主要成分是氢氧
硫 酸铜 86 , .5g加水 约 5 L 加热 溶 解 。待 二者 冷 却 0m , 至 室温 , 硫 酸铜 溶液 慢慢 倒 入前液 , 时搅 匀 , 将 随 并补
足水 量 至 5 0mL 0 。
氧化铜溶 液是 悬浊 液 , 较强 活性 . 有 反应现 象 明显 , 但
放 置 久容 易形 成沉 淀 , 很难 反应 。故应将 组 成试 剂 就 的 2种 溶 液分 别 配制 , 使用 时 再 加 以混 合 , 即现 配 现
食品进出口检验实验
实验一进出口蜂蜜中淀粉酶的测定一、蜂蜜中淀粉酶的测定1. 蜂蜜中淀粉酶值高低具有一定的营养价值意义。
人体肠胃中淀粉酶能使日常饮食中的淀粉类食品转换化为容意被吸收的葡萄糖等,如果蜂蜜中含有大量的淀粉酶类,那么人们饮用蜂蜜后,可以从中得到一定量的淀粉酶类,肠胃补充了淀粉酶类,有助于人体的消化和吸收。
2. 说明了蜂蜜的成熟度。
成熟的蜂蜜淀粉酶值含量高,未成熟的蜂蜜淀粉酶值含量低。
3. 反映了蜂蜜加工工艺的优劣。
一般蜂蜜中的淀粉酶,在蜂蜜加工过程中,水浴融化温度及浓缩温度超过65℃,30min时,部分淀粉酶被杀死,导致蜂蜜中淀粉酶值下降。
4. 检查产品的储藏时间。
一般蜂蜜中的淀粉酶值随着其储存时间的延长而消失,实践证明,在常温条件下储存蜂蜜中的淀粉酶值,经过一年半后,下降二分之一。
5.为衡量蜂蜜品质的重要指标。
我国出口蜂蜜的标准规定,淀粉酶值最低为8.3,蜂蜜中淀粉酶值的高低反映了蜂蜜质量的好坏,淀粉酶值含量高的蜂蜜,其营养价值高,受到消费者的欢迎。
二、方法:试管比色法(一)实验原理1. 淀粉酶能将淀粉水解为精糊、麦芽糖,最终分解为葡萄糖。
水解条件要求条件pH5.3,温度为40℃时淀粉酶作用活力最高,其反应式为:(C6H10O5)n + nH2O 淀粉酶nC6H12O6淀粉葡萄糖2. 淀粉与碘作用生成蓝色化合物,试样中淀粉酶含量的多少使溶液呈现不同的颜色。
3. 淀粉酶值系指1g蜂蜜中所含淀粉酶,在一定条件下可以转化1%淀粉溶液的体积(mL)。
(二) 试剂(1) NaOH溶液(0.05mol/L):称取2.0g氢氧化钠溶解于1000mL 经煮沸冷却后的水中.(2) NaCl溶液(0.1mol/L):称取0.59g氯化钠溶解于100mL水中.(3) CH3COOH溶液(0.02mol/L):吸取1.0mL冰醋酸,加入800mL水中.(4) 淀粉溶液(1.0%) :准确称取1.0g可溶性淀粉于烧杯中,加入少量水使成薄浆,加入60mL 煮沸蒸馏水,在搅拌下煮沸1~2min,使淀粉溶液呈透明,稍冷,用水将淀粉溶液移入200mL容量瓶中.冷却后用水稀解至刻度,摇匀。
蜂蜜淀粉酶值快速测定试剂盒的研制
钥& 张
旭&
文献标识码: ,
〔 〕 & 数 。 ( ) 酶值计算: &
酶值AB空白 CB样品 D ’ B空白 因数来自下式: ) ( + ’ E . % ) D ! D ’ % ’ @E ! @D ) E ’ % ’ A ’ 为测定时间 为样品稀释倍数 ) . % ) !为可溶性淀粉毫升数 ’ % ’ -为测定时的样品用量 为淀粉溶液浓度 ’ % ’ @ " 结果 & % ! 试剂盒的性能指标 (B 、 专业 & % ! % ! 准确性试验 用本试剂盒和标准方法 3 B 0 〔 〕 & ) 在同一仪器上进行平行成对比较试 标准和国标方法相同 验, 选择高、 中、 低不同水平酶值测定& )个试验样品。为获得 低酶值的试样, 对其中一份样品用标准方法进行)次测定, 在 种方法测定结果经统计学分 称样时通过折算得出平均值。 & 析, , 回归方程"A , 说明 & 种方法 !A ’ % " " +) ’ % " " ) #; ’ % & ’ . 的测定 结 果 相 关 性 很 好; 经 $ 检 验, ( ) $A! % + ) &"$ A ’ % ’ ) & , , 无显著性差异, 说明试剂盒的测定准确性很 & % ’ + %# ’ % ’ ) 好, 测定结果与标准方法一致。 进行批内重复试验, 包括 & % ! % & 精密度试验 用本试剂盒, 同时重复 (F ) 试验和隔日 (K ) 重复试验。同 > G H > ? ( I J ? 5 ( G 9 ( M 5 L L 其中 ! , 时重复试验检测 2 份样品, & 号样品测定 ! ’ 次, 2号 样品测定)次, 平均变异系数 0 ; 隔日重复试验也 N OA ! % ) ) @ 其中 ! , 选择2 份样品, & 号样品测定 ! ’ 次, 2 号样品测定 ) 次, 平均变异系数 0 。以上重复试验符合生化试 N OA& % ’ ’ @ 〔 〕 2 剂盒规律, 且在误差范围之内 。 & % ! % 2 均一性试验 对本试剂盒进行批内和批间均一性试 验。批内试验是从同一批试剂盒产品中随机抽取! 在同 ’套, 一条件下分别测定同一试样, 结果 + + ’ ? 6 下的吸光度变异系 数为! 测定的淀粉酶值变异系数为 ! 从 % ) # @, % & + @。另外, 月 日、 日、 日配制的 批试剂盒中各取一套, 分别 ) ! 2 ! . & 2 进行批间配对G检验, 其中批一、 批二 测定了! ’份蜂蜜样品, 间差$ 值为’ , ; 批二、 批三间 ( ) % + + "" $ A& % & + & %#’ % ’ ) ’ % ’ ) " , , 测定结果一致, 差$ 值为 ( ) ’ % & !. " $ A & % & + & %# ’ % ’ ) ’ % ’ ) " 说明试剂盒均一性很好。 用+ & % ! % - 灵敏性试验 在本试验中, + ’ ? 6 波长, ! P 6 光径 测定酶值为 & 比色杯, 空白管调零, 在’ = 恒温条件下, & % 2 的样 品, 其 + 分 钟 和 # 分 钟 的 吸 光 度 分 别 为’ 和 % & + ’" , ( ( ) , ’ % & ’ !" & 5 A ’ % & + ’" C ’ % & ’ !" E & & % 2D!D& A’ % ’ ’ !2 即为灵敏度值。 每 & % ! % ) 线性反应时间 用本试验盒按上述测定条件进行, 隔&分钟测定一次吸光度, 所用样品酶值为 & 。结果 (见 & % 2 表! , 图! ) 。 表! 反应时间与吸光度的变化关系
蜂蜜酶值快速检测的研究_标准参考比色板法
上将上述两法结合起来 ,扬长避短 ,经我们的试验证明 采用标准参考比色板法是可行和可信的 。 1 原理
蜂蜜中的淀粉酶在一定状态下酶解淀粉 ,一定时 间后剩余的淀粉与碘络合成有色化合物 ,颜色由蓝色 →蓝紫色 →红紫色 →黄色 ,吸光度在 660nm 波长下由 高到低 ,其中吸光度 0. 235 所对应颜色为红紫色 ,此时 从达到 0. 235 吸光度的时间得出相对应的酶植 。为 此 ,以 0. 235 吸光度的管作为标准管 (颜色为红紫色) , 结合碘目测法 ,只要记录到与标准管颜色一致所需的 时间 ,便可得到蜜样的淀粉酶的估测值 。 2 仪器与试剂
15
15. 5
15
-
-
-
20
12. 5
12
17
11. 5 38. 5
30
-
-
14. 5
-
-
40
-
-
18
-
-
表 1 表明 5~20g 蜜样中的酶浓度与反应速度基 本上 成 M 3 t = 常 数 的 关 系 , 与 AOAC 法 比 较 有 M0t0/ M1t1 = 1 ,淀 粉 酶 值 = 300M0/ M1t1 , 为 加 快 检 测 速 度 ,本 法 中 选 定 取 样 20. 0g , 则 酶 值 可 表 示 为 : 酶 值
样其他条件一致的情况下 ,分别称取不同量的蜜样 (M1) 进行酶浓度对酶解反应速度的影响试验 ,结果见 表 1。
表 1 不同酶浓度对反应速度的影响
蜜样 (g)
吸光度达 0. 235 所需时间 (min) 样1 样2 样3 样4 样5
蜂蜜中外源性耐高温α淀粉酶活性的测定
蜂蜜中外源性耐高温0【一淀粉酶活性的测定丁涛,费晓庆,沈崇钰,汤娟,吴斌,张睿,张晓燕,陈磊(江苏出入境检验检疫局食品实验室,江苏南京2l O001) 摘要:为了加强对蜂蜜品质的监管,采用分光光度法对我国蜂蜜中外源性耐高温小淀粉酶活性进行了研究。
基于来自国内各地区10种50个单一蜜种纯正蜂蜜,找出了酶解反应的条件和纯正蜂蜜自身甜淀粉酶选择性灭活的条件。
样本在70℃下30 nlin下选择性灭活后,在1.30 mol/L乙酸钠.乙酸缓冲溶液(pH5.3)中于40℃下测定样本的高温静淀粉酶活性。
采用本法在67个日常检测样本中检出23个样本含有高温口一淀粉酶。
由于纯正蜂蜜中不含有这种外源性高温心淀粉酶,通过选择性灭活后测定样本中耐高温小淀粉酶活性,可以有效鉴定在蜂蜜生产过程中是否掺入了外源性的糖浆。
关键词:蜂蜜;掺假;耐高温伍.淀粉酶活性;选择性灭活Dete加[1ination of the exogenous thermotable仅一arnylase actiVity1n nOneVD玳G rI幻,FEI Xiaoq in g,SH EN Chong”,吖蝌G Ju锄,、ⅣU BiIl,Zm~N Rui,ZHANG)(iaoy姐,C H E N L e ifz口60r口幻,y Q厂,'oDZ撕口,琏≯“勘缈腑f血印∞f如雄口万d(撕口r口,l砌P B“M珥Ⅳ口形f,咨2,0DDJ,凸加矽Abs缸狮t:111o rd e r to s慨gthcn the ho n ey quality s叩eⅣision in o I l r coun缸M a me出o d fo r the deteImjIna娃on of tl le ex og en ou s th锄os协blea-amy las e acti啊t)r in hon e y we re pr叩osed using spec仃ophotometricm em o d.B弱e o n50 叭tllemic hone y sa m pl es丘D m d i丘bre nt p舳ction a佗a s,m e se le cti ve in ac ti va ti ontechnol ogy w勰op盯a由ed undcr70℃for30 m i n.A f t e r m e se lec ti ve in∽矗vation for也e伽ldogeno璐弘柚聊勰e of跏th∞tic ho ne y s砌ples,the en2即喇c reac ti o n t0 detemline tlle th emlosta_ble泓amyl弱e acti vi哆w髂und盯t he co诎ion of40。
利用蜂蜜淀粉酶测定蜂蜜掺假技术研究
利用蜂蜜淀粉酶测定蜂蜜掺假技术研究作者:张黎丽来源:《中外食品工业》2013年第06期摘要:针对蜂蜜掺假问题,本文进行了对蜂蜜与耐高温淀粉酶中淀粉酶活性的测定与分析。
根据:本文所得实验结果显示:天然蜂蜜在低温条件下的酶值可以保持较长时间。
在高温条件下,随着蜂蜜存储的时间的增长,天然蜂蜜的淀粉酶值将会逐渐降低。
而假蜂蜜则不会发生这一现象,其淀粉酶将长期保持稳定。
通过分析天然蜂蜜与假蜂蜜的淀粉酶在一定温度下与时间的关系,可以发现两者的区别,从而辨别真假蜂蜜。
关键词:蜂蜜真假淀粉酶中图分类号:TS202 文献标识码:A 文章编号:1672-5336(2013)12-0019-02蜂蜜是蜜蜂将收集的植物花蜜与植物细胞渗出的蜜露或者昆虫排出的甘露混合蜜蜂唾腺的分泌物,经过一段时间的酿造最终存储在蜂巢之中的甜性物质。
蜂蜜是一种组成十分复杂的糖类饱和溶液。
通常新鲜成熟的蜂蜜为透明或者半透明的粘稠状液体。
在比较低的温度下存储一段时间之后,很多品种的蜂蜜都会呈现为半固态。
在利益驱动的作用下,近些年来很多蜜蜂养殖专业户以及厂家,通过向蜂蜜中掺入蔗糖、果糖以及各种糖浆制造掺假蜂蜜。
这类掺假蜂蜜都打着天然蜂蜜的假名号,在市场中通过欺骗消费者以赚取巨大利润。
在这种掺假蜂蜜充斥市场的情况下,我国天然蜂蜜的产品信誉受到了巨大的损伤。
根据近些年来查获的掺假蜂蜜的情况来看,这类掺假蜂蜜的感官指标以及部分理化指标非常接近天然蜂蜜。
甚至根据最新颁布的蜂蜜国家标准以及蜂蜜中碳-4植物糖含量测定方法稳定碳同位素比例法国家标准,也不能有效的分辨出掺假蜂蜜与天然蜂蜜。
根据多例检测案例表明,我国的国家标准在分辨蜂蜜真假的时候存在着一定的缺陷。
如何有效的、快速的、准确的识别真假蜂蜜成为相关研究领域的热点问题之一。
事实上,掺假蜂蜜大多数为了满足国家标准中对淀粉酶的活力指标,都是通过添加了大量的工业淀粉酶的方式。
但是由于工业淀粉酶与天然淀粉酶的性质具有明显的不同,本文认为可以利用工业淀粉酶与天然淀粉酶的性质的区别,来分辨出掺假蜂蜜与天然蜂蜜。
蜂蜜中ɑ-淀粉酶活力测定方法改进
蜂蜜是我们生活中常见的天然营养佳品,含有与人体血 清浓度相近的多种无机盐、维生素及铁、钙、铜、锰等等多 种有益人体健康的微量元素,具有滋养、润燥、解毒、美白 养颜、润肠通便等功效,对少年儿童咳嗽有一定治疗效果[1], 还有抗菌、改善新陈代谢、增强体质、提高人体免疫力、抑 制肿瘤等药理作用[1]。一些被利益驱使的商人通过在蜂蜜中 加入葡萄糖、果糖、高果玉米糖浆等价格低廉的甜味物质来 提高蜂蜜的产量[2]。目前也有许多种鉴别蜂蜜的方法,但是 都有一定缺陷[3]。真蜂蜜具有花蜜和蜜蜂的某些特殊成分[4], 掺假蜂蜜的这些特殊成分含量则降低。本文选择其中的ɑ- 淀粉酶作为研究对象,测定蜂蜜中ɑ-淀粉酶的活性,就能 准确辨别蜂蜜的真假。
表 1 淀粉溶液的标定结果
加水量(mL) 5 10 15 20 21 22 23
吸光度
2.386 1.973 1.457 0.834 0.797 0.783 0.768
由表 1 可知,加水 23mL 时吸光度在 0.760 士 0.02 之间, 所以在样品测定时稀释系数为 23mL。
淀粉溶液冷冻干燥后肉眼观察的形貌如图 1。由图 1 可 以看出,淀粉冷冻干燥后体积膨胀变大,相互连在一起,不 再呈现松散的颗粒状。
表 5 蜂蜜样品中淀粉酶测定随冷冻干燥淀粉存放时间的结果
蜂蜜样品中淀粉酶含量测定值
蜂蜜样品
(mL/(g·h))
平均值
标准 偏差
RSD (%)
一周 二周 三周 四周
1
26.14 26.34 25.88 26.57 26.23 0.29 1.1
2
22.55 22.03 23.11 22.65 22.59 0.44 2.0
一种蜂蜜中蔗糖转化酶酶值的检测方法[发明专利]
(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201911052429.4(22)申请日 2019.10.31(71)申请人 中国农业科学院蜜蜂研究所地址 100093 北京市海淀区香山北沟一号(72)发明人 孔令杰 张红城 乔江涛 (74)专利代理机构 北京高沃律师事务所 11569代理人 董大媛(51)Int.Cl.G01N 21/78(2006.01)G01N 21/31(2006.01)(54)发明名称一种蜂蜜中蔗糖转化酶酶值的检测方法(57)摘要本发明提供了一种蜂蜜中蔗糖转化酶酶值的检测方法,属于食品质量安全检测技术领域。
所述蔗糖转化酶酶值的检测方法包括以下步骤:(1)蜂蜜样品中酶液的提取;(2)酶液的显色反应;(3)蔗糖转化酶酶值计算。
所述检测方法是基于酶液催化蔗糖产生的还原糖溶液和3,5-二硝基水杨酸溶液共热后,3,5-二硝基水杨酸能够被还原成棕红色氨基化合物的原理建立的蜂蜜中蔗糖转化酶酶值实现。
本发明采用超滤的方法富集了蜂蜜中的酶,并去除了蜂蜜中还原糖的干扰,对反应中显色剂溶液用量,缓冲液pH值,反应温度,反应时间进行了优化,进而建立了一种评价蜂蜜中蔗糖转化酶酶值的检测方法,具有操作简单,准确高效等优点。
权利要求书2页 说明书8页 附图1页CN 110609033 A 2019.12.24C N 110609033A1.一种蜂蜜中蔗糖转化酶酶值的检测方法,其特征在于,包括以下步骤:1)将蜂蜜溶解后离心,得到澄清液和沉淀,将所述沉淀复溶,得到复溶液,将所述澄清液进行超滤,得到的浓缩液稀释后再次超滤,得到的再次超滤浓缩液与所述复溶液混合定容,得到酶液;所述溶解、复溶或稀释用溶液为pH值4.0~6.8的缓冲液;2)分别量取2mL所述酶液置于两支试管中,试管1为实验组,试管2为对照组,向试管2中加入1mL灭活液进行灭活,将试管1、试管2和蔗糖溶液在30~50℃条件下水浴10min,分别吸取蔗糖溶液2mL加至试管1和试管2中,在30~50℃条件下反应0.5~3.0h,向试管1中加入1mL所述灭活液终止反应;3)从试管1和试管2中吸取相同体积的反应液1~3mL分别移置两个具塞比色管后,分别加入显色剂溶液0.25~3.5mL,在沸水浴中反应5min,冷却,用水将各具塞比色管溶液定容至刻度,将得到的两个具塞比色管中溶液于540nm波长下测定吸光度OD值,用定容至所述刻度的不含所述反应液的显色剂溶液做空白调零;4)绘制还原糖标准曲线,按照公式(2)计算蔗糖转化酶酶值;式(2)中:5表示酶反应体系,单位为mL;2表示取2mL酶液参与反应;50表示酶液总体积,单位为mL;X表示蜂蜜样品质量,单位为g;1表示反应时间1h;所述试样中还原糖量的计算方法按照式(1)计算;式(1)中:Y表示反应液的体积,单位为mL;所述蔗糖转化酶酶值为在40℃、pH 6.0缓冲溶液实验条件下,1g蜂蜜中所含有的蔗糖转化酶1h能使蔗糖水解释放还原糖的毫克数。
蜂蜜淀粉酶在鉴别蜂蜜掺假中的应用研究
1.2.3 蜂蜜蛋白质精确测定 为了研究蜂蜜产品在储存过程中蛋白质的变化,本
研究采用特异的蛋白质沉淀法先将样品中的蛋白质沉淀 分离,然后再通过凯氏定氮法进行蛋白质含量测定。具 体方法是蛋白质的分离参照蜂蜜碳 -4 同位素鉴定国家标 准(GB/T18932.1-2002)[9]介绍的方法进行,即:准确称取 约 2g 样品于 10ml的离心管中,加入 0.8ml的蒸馏水混匀。 在一支 10ml 的量筒中加入 0.4ml 10% 钨酸钠溶液(pH4.7) 和0.4ml 0.335mol/L硫酸溶液(pH4.8),迅速混匀后将离心 管置于 80℃的水浴中保温 40min,每隔 5~10min 旋转离 心管 2 0 s ,直到有絮状物析出。取出离心管,加入一 定量的蒸馏水使离心管内的混合液达到离心管容量的2/3 左右,然后在转速 3500r/min 下离心 9min,去上清液, 再注入适量的蒸馏水充分洗涤沉淀物并在转速3500r/min 下离心 9 m i n ,去上清液,离心管中所剩的沉淀物即为 蛋白质样品。蛋白质样品经消化处理后按凯氏定氮法进 行测定。
表2 天然蜂蜜(天竺桂)贮存过程中淀粉酶值变化
单位:ml/g.h
贮存时间 (d) 0 10 20 30
淀粉酶值 (10℃) 11.26 11.25 11.25 11.24
淀粉酶值 (37℃) 11.26 9..80 4.10
蜂蜜酶值的两种测定方法
蜂蜜酶值的两种测定方法
陈人渺
【期刊名称】《生物学杂志》
【年(卷),期】1993(000)004
【摘要】蜂蜜中的酶颇为丰富,如转化酶、淀粉酶、磷酸酶及葡萄糖氧化酶等九十多种。
这些酶的来源,有的是蜜蜂采集的花蜜中固有的;有的是花粉中混合进入的;有的是在采集、酿造过程中由蜜蜂腺体分泌加入蜂蜜中的。
蜂蜜中两种最重要的酶是转化酶和淀粉酶。
其中淀粉酶易于测定,蜂蜜中的酶值通常就是淀粉酶值的简称。
酶作为蜂蜜酿造转化成熟的催化剂,在蜂巢里。
【总页数】2页(P27-28)
【作者】陈人渺
【作者单位】无
【正文语种】中文
【中图分类】TS207.3
【相关文献】
1.蜂蜜中微量铁的两种测定方法及比较 [J], 谭文华;陈圆
2.热加工(贮存)过程对蜂蜜中淀粉酶酶值的影响 [J], 曾哲灵;万冬满;叶贞雄;吴小禾
3.α—淀粉酶同工酶两种测定方法的比较 [J], 于嘉屏;王爱华
4.蜂蜜中ɑ-淀粉酶活力测定方法改进 [J], 陈雪洋;田珂雪
5.利用蜂蜜酶值的高低初探蜂蜜是否掺假 [J], 于殿君;郑永勋;时永清;韩苗苗;包雯琦
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
高中生物探索淀粉酶对淀粉和蔗糖的作用实验改进创新
探索淀粉酶对淀粉和蔗糖的作用——改进创新设计一、实验原理淀粉和蔗糖都是非还原糖。
它们在酶的催化作用下都能水解成还原糖。
还原糖能够与斐林试剂发生氧化还原反应,生成砖红色的氧化亚铜沉淀。
用淀粉酶分别催化淀粉和蔗糖的水解反应,再用斐林试剂鉴定溶液中有无还原糖,就可以看出淀粉酶是否只能催化特定的化学反应。
证明酶的专一性。
二、目的要求1.初步学会探索酶催化特定化学反应的方法;2.探索淀粉酶是否只能催化特定的化学反应。
三、材料用具研钵,试管,大烧杯,量筒,移液管,洗耳球,胶头滴管,温度计,解剖刀,解剖针,试管夹,三脚架,石棉网,酒精灯,火柴,水浴锅。
冰糖,土豆,淀粉,多酶片,斐林试剂,热水等。
四、实验步骤1、收集唾液后,取lml注入小烧杯中,加入2mL蒸馏水。
振荡小烧杯使之混合均匀,制成稀释的唾液,即淀粉酶溶液①;【改进:实验材料由书上所说化学试剂店出售的淀粉酶改为使用自己的唾液稀释液,因为唾液中含有唾液淀粉酶且取材方便,所以选择使用唾液淀粉酶溶液】2、取2-3粒多酶片,用刀片切成两半,再用针挑出多酶片内的酶粉于小烧杯中,加入20mL蒸馏水后用玻璃棒搅拌均匀,配成淀粉酶溶液②;【改进:把化学药剂店出售的淀粉酶改为一般药店都能买到的多酶片,因为多酶片内部主要成分有胰淀粉酶,且多酶片价格便宜取用也方便】3、把冰糖外层被氧化还原了的部分用水洗去后,称取3g研细放入1 00ml热水中配成蔗糖溶液;【注意:冰糖外层可能被氧化成还原糖,干扰实验结果,所以使用前一定要冲洗去冰糖的表层杂质】4、称取15g土豆剪成小块,研磨后将液体过滤到小烧杯中并加入热水配成100ml淀粉液①;【改进:把书上所说化学试剂店出售的淀粉改为使用土豆现制淀粉液,因为土豆淀粉含量高且更好买到】【注意:土豆在空气中易氧化变黑,淀粉变性或生成其他物质,影响实验结果,所以配置淀粉液时应迅速研磨和过滤,且现配现用】5、称取3g淀粉,先用少量蒸馏水调匀,再加入热水配成100ml淀粉液②;【改进:普通淀粉购买方便且普通淀粉也是可溶的】【注意:淀粉不溶于冷水,但开水会破坏淀粉结构,所以用淀粉制淀粉液时,先用少量蒸馏水混合成悬浊液,再加入热水配制成淀粉溶液,可保证淀粉绝大部分溶解】6、取8只洁净的试管,编上号,然后按下面要求进行操作:A:淀粉液① 2ml+淀粉酶溶液① 2mlB:淀粉液① 2ml+淀粉酶溶液② 2mlC:淀粉液② 2ml+淀粉酶溶液① 2mlD:淀粉液② 2ml+淀粉酶溶液② 2mlE:蔗糖溶液 2ml+淀粉酶溶液① 2mlF:蔗糖溶液 2ml+淀粉酶溶液② 2mlG:淀粉液① 2ml+蒸馏水 2mlH:淀粉液② 2ml+蒸馏水 2ml;【改进:增设了G、H对照组,以证明淀粉确实是为淀粉酶所分解】7、轻轻振荡几只试管,使试管的液体混合均匀,然后将试管的下半部浸到37℃左右的热水中,保温10min;【改进:书上所说60℃是针对化学试剂店的α-淀粉酶所言,但是我们所取的两种淀粉酶溶液中淀粉酶最适温度均为37℃左右。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
蜂蜜淀粉酶值实验教学改革与创新【摘要】蜂蜜淀粉酶值检测是控制蜂蜜产品质量和安全的重要指标之一。
为促动高校与社会食品检验方法的衔接,激发学生的学习热情,山东农业大学卫生检验教研组采用最新国标检测方法取代陈旧方法应用于蜂蜜淀粉酶值实验教学。
在实施的过程中,通过增加碘溶液预热管数保证淀粉酶酶促反应温度的一致性,采用全自动酶标仪替代分光光度计提升学生实验效率等改进措施,提升了实验数据和结果的精确度和准确性,改善了实验教学秩序,确保了国标检测方法法在蜂蜜淀粉酶值实验教学中的应用。
关键词:实验教学;国标法;蜂蜜淀粉酶值;改进蜂蜜的营养价值很高,口感独特,深受消费者欢迎1-2。
在蜂蜜所含有的一系列营养物质中,生物酶是其主要的生物活性物质,其中淀粉酶的含量最高,能够促动人体对食物的消化和营养物质的吸收3-4。
但当前市场上蜂蜜产品的质量参差不齐,真假难辨5-8。
而蜂蜜淀粉酶活性的检测是控制商品化蜂蜜产品质量和安全的重要指标之一9-10。
蜂蜜淀粉酶值的检测方法有试管比色法和分光光度计法,其中分光光度计法是最新的国家标准方法11-12。
紧跟时代的步伐,与时俱进是高校实验教学改革的灵魂,促动实验教学内容的革新对于学生掌握新概念、新知识、新技能,开阔视野和思路具有极为重要的意义。
为和社会衔接,学校对蜂蜜淀粉酶值检测的实验教学实行了一系列的改革,其中“国标进课堂”取代陈旧实验方法就是其中一项重要举措。
在改革的过程中发现实验教学不同于简单的实验验证,需要几十人同时实行,涉及到仪器、耗材、场地的共享使用,简单地照搬照抄国标方法并不能直接用于实验教学。
为使国标法更好地适合实验教学,山东农业大学动物科技学院卫生检验教研组对蜂蜜淀粉酶值检测的部分内容实行了改革和创新。
1实验方案的设计1.1材料1.1.1蜂蜜来源于山东泰安某养蜂场的新鲜百花蜜。
1.1.2试剂及配制碘化钾、碘、乙酸钠(CH3COONa3H2O)、可溶性淀粉、氯化钠、冰乙酸等均为国产分析纯。
按国标GB/T18932.16-2003要求12分别配制0.5molL-1氯化钠溶液、乙酸盐缓冲液、2%淀粉溶液、碘溶液等。
1.1.3仪器超纯水系统,Pall,USA;微量移液器,Eppendorf,Germany;电子恒温水浴锅,常州国立,中国;Elx808多功能全自动酶标仪,Biotek,USA;可拆分酶标板,江苏光明器材。
1.2方法1.2.1样品准备将采购的蜂蜜样品充分搅拌均匀,勿加热。
每组分装100g于烧杯中作为待检样品,标记后供淀粉酶值测定用,常温保存,勿冷藏。
1.2.2标定淀粉溶液三支试管分别装有10mL水和5mL淀粉溶液和10mL碘溶液,放入40℃水浴中预热15min。
然后将5mL淀粉溶液全部加入到10mL水的试管中混合均匀作为待检的样品混合液,从中吸取1mL混合液加入到10mL的碘溶液试管中,再加入一定体积的水稀释(先加入少量,需多次加入确定准确的水的体积)。
取200µL加入酶标板的检测孔中,以水作为空白参照,用多功能全自动酶标仪在660nm波长测定溶液的吸光度(原国标中是用分光光度计实行检测,需取2mL加入比色皿中待检),若吸光度值较高则继续加水实行检测,直到产生0.760±0.02的吸光度值。
记录多次加入的全部水的体积数,并以此作为检测样品溶液时的稀释系数。
淀粉溶液新配制后应重新实行标定。
1.2.3样品检测1.2.3.1全自动酶标仪的检测条件波长为660nm;阴性对照为水。
1.2.3.2样品处理称取精确至0.01g的蜂蜜样品5g,加入水15mL和乙酸盐缓冲液2.5mL,玻璃棒搅拌混匀后全部转移到提前加入氯化钠溶液1.5mL的25mL容量瓶中,加水定容,作为样品溶液待检。
1.2.3.3样品检测5mL淀粉溶液1支、10mL样品溶液1支和10mL碘溶液15支(原国标方法中碘溶液是1支),均提前放入40℃水浴中预热15min。
将5mL淀粉溶液全部转入样品溶液,然后充分混合开始计时。
5min时取样品混合溶液1mL加入到盛有10mL碘溶液的试管中,以标定淀粉溶液时确定的水的体积数稀释并混匀充分。
取200µL加入酶标板的检测孔中,以水作为空白参照,用多功能全自动酶标仪于660nm波长处测定待检样品吸光度(原国标方法中使用分光光度计实行检测,需取2mL待检液加入比色皿中,且比色皿要持续清洗,并漂洗)。
如吸光度值大于特定吸光度值0.235,则重新吸取样品混合液加入到另1支碘溶液中实行测定,每隔5min检测1次,直到吸光度值小于0.235为止。
1.2.4数据处理以吸光度值为纵坐标,检测时间为横坐标,在对数坐标纸上作图,连接各点成直线。
然后在直线上查出样品吸光度与0.235交叉点所对应的检测时间,结果按以下公式计算:X=300/t其中X为所测样品溶液的淀粉酶值,单位为毫升每克小时(mLg-1h-1);t为对应的检测时间,单位为分(min)。
2实验教学的实施2.1学生分组在实验开始前,指导教师提前1w实行实验布置,学生自由组合成2-3人的小组,小组内成员合理分工,并指定1人负责实验用品的领用、归还以及数据的统计、报送等。
由班长负责统计分组数及小组成员名单,并于实验开始前上报给指导教师,由实验教师审核成员组合及分工是否合理。
实验样品、耗材、器皿等均按小组编号分发。
2.2实验准备指导教师提前布置实验内容,制定实验目标和要求。
实验教师实行实验器材分组,并准备好备份。
然后学生以实验小组为单位,课前实行合理分工,查阅相关资料,熟悉实验器材,制定出具体的实验方案。
指导教师针对每个小组的实验方案提出指导性意见和建议。
2.3实验过程的改进国标方法“蜂蜜中淀粉酶值的测定方法分光光度法GB/T18932.16-2003”在用于本科实验教学时,因为参与实验人数多、实验场地拥挤、仪器数量有限等原因,在实验教学过程中出现了诸多问题,不能有效保障实验秩序的稳定和实验结果的有效性。
为有利于实验教学的顺利实行,卫生检验教研组对实验方法及仪器检测等实行了部分改进。
首先为减少误差,使实验中所用试剂准确保持在40℃,样品检测中除了提前将样品、淀粉溶液和碘溶液放在水浴中保温外,需准备15支10mL的碘溶液而不是1支。
原因是淀粉和样品混合液共有15mL,每次取1mL能够取15次,而碘溶液10mL只能使用1次,即使大瓶的碘溶液放在水浴中能保持在40℃,但分装用的试管没有预热仍会造成误差,从而影响实验结果。
预热15支碘溶液比原国标方法中仅预热1支碘溶液能更有效地保证实验结果精确度、科学性和有效性。
其次检测仪器使用多功能酶标仪替代分光光度计。
在样品检测过程中需要5min测定1次,若OD值变化较快,则需要1min测定1次,时间间隔比较短,不同小组之间不可能共用1台分光光度计。
以1个班10-15个小组计至少需要10-15台分光光度计,而当前实验室的条件最多只能提供4台,远远不能满足需要。
再加上更换、清洗比色皿以及校零的时间,误差在所难免。
而多功能酶标仪配合使用可拆分一次性酶标条,一个小组1条8个孔,自己做好标记,每次加样1孔,一台酶标仪可同时检测12个小组,且不用清洗,自动校零,大大提升了时间的精确性和结果的准确性。
2.4实验考核实验课程的考核以小组为单位实行,兼顾小组中个人的表现。
分别从文献查阅是否充分、实验方案设计是否合理、实验操作是否规范、实验结果判断是否合理以及实验卫生整洁水准等方面做出评价。
3实验教学效果3.1实验秩序该次实验教学经过对参与实验的学生提前分组,以小组为单位实行实验方案的设计和准备,然后独立完成实验操作以及数据的记录和整理计算,发现除个别组准备不充分,仪器操作不够熟练外,其余组都实行了充分的资料收集和器材准备,实验实行得有条不紊,井然有序。
完全不同于之前实验课中无准备、无目的性地照着板书上实验步骤呆板地称量加样、少数学生动手多数学生在实验室中转圈、依赖老师操作仪器等状况。
准备不充分的小组在看到别的小组实验进展顺利时明显感受到了压力,这将对以后的实验准备工作起到一定的督促作用。
3.2改进效果从蜂场采集的新鲜蜂蜜淀粉酶值一般在8-10之间,测定过程至少需要持续30-45min,5min测定一次则需要测定10-15次,国标中样品混合液能够待检15次,而碘溶液只有1支,测定过程中需要持续重装碘溶液,碘溶液的温度得不到保证,且学生需要持续在实验室中来回走动,造成秩序混乱。
温度是影响酶促反应的决定性因素,反应温度的差异将会直接导致酶促反应的快慢不一致,致使最终计算出的淀粉酶值出现误差。
改进后的国标法直接准备好15支碘溶液,需要测定时随取随用,既避免了实验过程中学生频繁找试管、洗试管、重装碘溶液的麻烦,保证了实验温度的一致性和实验结果的精确度,又使实验实行得井然有序,保障了实验秩序。
分光光度计一般只有4个比色皿槽,其中1个要加入空白对照,仅余下3个槽位能够放置待检样品,放置好后需要手动拉杆检测,检测样品少,且需要时间比较长。
另外比色皿需要即时清洗、再用待检液漂洗,在本实验中样品需要5min检测一次,就会显得手忙脚乱,导致实验结果出现不可避免的误差。
而全自动酶标仪具有连续波长,波长选择范围比较大,能够满足不同波长的需求。
可检测比色皿、24孔板、96孔板等。
实验中使用可拆分96孔酶标板,可同时检测96个样品,即使一个小组1条,也能够同时检测12个小组的样品。
且全自动酶标仪能够自动进样,然后实行扫描检测,只要提前在电脑上设计好板的布局,将酶标板放在检测台上,点击“检测”就能够了,检出结果会自动扣除空白或者阴性对照,一目了然。
既避免了实验过程中清洗比色皿更换样品的环节,又缩短了学生等待检测的时间,减少了实验误差,有效保障了实验数据和结果的准确性。
3.3考核结果鉴于本科实验教学中学生的独立性稍差,无法单独完成整个实验设计及具体操作,所以采用小组内团队合作的形式实行实验。
在考核时要兼顾到小组的整体成果和小组内个人的贡献和表现。
在对每个小组的实验过程实行考核时发现绝绝大多数小组对数据的记录、整理、计算等非常清晰,课后能够对实验过程和实验结果实行完整的总结汇报和准确的结果分析,甚至有的小组还配备了图片说明实验过程中随时间变化淀粉酶分解淀粉后剩余淀粉和碘溶液反应产生颜色的变化过程。
表明学生在实验过程中对出现的结果及数据变化实行了充分的思考和分析,这次实验教学的改进充分调动了学生的实践动手热情,也促动了高校对创新型人才的培养。
4结语“民以食为天,食以安为先”,国标进课堂实行蜂蜜的卫生检验,缩短了高校与社会之间的距离,激发了学生的学习热情。
而改进后的国标法应用于实验教学保障了实验结果的准确性,减少了误差。
同时高值精密仪器的使用也拓宽了学生的视野13,调动了学习的积极性,提升了实践动手水平,收到了超出预期的实验教学效果。