实验动物学实验报告
动物实验报告【范本模板】
实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法;4、掌握小鼠的基本采血技术；5、掌握小鼠的常用给药方法;6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置;二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器和小鼠固定板;眼科剪;眼科镊；解剖刀；1ml 注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料;葡萄糖液；2％水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中,把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。
幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌,远者为雄。
另外,雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。
3、小鼠的标记方法1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位.2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；3）染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法.固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干,再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。
取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血.这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查.2)眼眶后静脉丛取血当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。
实验动物学 实验报告
实验动物学实验报告实验动物学实验报告引言：实验动物学是一门研究动物在实验条件下的生理、行为和遗传等方面的学科。
通过对实验动物的观察和实验研究，我们可以更好地了解动物的生物学特性，推动科学研究的进展。
本篇文章将介绍实验动物学的背景和重要性，并通过实验报告的形式，展示一项关于实验动物行为观察的研究。
一、背景介绍实验动物学作为一门交叉学科，涉及生物学、心理学、医学等多个领域。
通过对实验动物的研究，我们可以更好地了解动物的生理特征、行为模式以及遗传机制。
实验动物学的研究成果不仅对人类健康和医学发展具有重要意义，还对生态学、环境保护等领域有着深远的影响。
二、实验目的本次实验的目的是观察小鼠在不同环境条件下的行为变化，以探究环境对小鼠行为的影响。
通过观察小鼠在不同环境中的活动、探索和社交行为，我们可以了解环境因素对小鼠行为的调节作用。
三、实验设计1. 实验动物选择我们选择了同一品种、同一年龄段的小鼠作为实验对象，以减少个体差异对实验结果的影响。
2. 实验环境设置我们设计了三种不同的实验环境：标准环境、贫乏环境和丰富环境。
标准环境为小鼠常见的饲养条件，包括饲料、水和床材。
贫乏环境中只提供基本的饲料和水，而丰富环境则在标准环境的基础上增加了游戏器具和障碍物等元素。
3. 实验过程我们将小鼠分别放置在三种环境中，并记录它们的行为表现。
观察指标包括活动时间、探索行为、社交行为等。
四、实验结果与分析在标准环境中，小鼠表现出正常的活动行为，包括进食、活动和休息。
在贫乏环境中，小鼠的活动范围受限，表现出较少的探索行为和社交行为。
而在丰富环境中，小鼠表现出更多的活动行为，包括玩耍、攀爬等，同时也表现出更多的探索和社交行为。
通过对实验结果的分析，我们可以得出结论：环境对小鼠的行为有着显著的影响。
贫乏环境对小鼠的行为产生抑制作用，而丰富环境则能够激发小鼠的活动性和探索欲望。
五、实验意义与展望本次实验结果表明，环境对动物行为的调节作用是显著的。
实验动物学实验报告(共篇)(一)
实验动物学实验报告(共篇)（一）引言概述：实验动物学是研究动物行为、生理和遗传的学科，通过对动物进行实验来获取科学数据和知识。
本实验报告旨在总结一系列实验结果，探讨实验动物学领域的重要问题，并对其应用前景进行展望。
正文：1. 实验动物的选择：- 考虑实验目的和动物特征选择合适的实验动物；- 常用实验动物包括小鼠、大鼠、兔子等，每种动物具有独特的优势和限制；- 实验动物品种的选择需根据实验要求和研究领域确定。
2. 实验动物的饲养与环境：- 提供适宜的饲养环境，包括饲料、水源和温度控制等；- 动物饲养条件对实验结果有重要影响，需保证实验动物的健康和福利；- 定期进行环境监测和清洁，确保实验动物处于良好的生活环境。
3. 实验动物行为测试：- 利用行为学测试评估实验动物的认知和学习能力；- 常用的行为测试方法包括自由探索、空间记忆和条件反射等；- 结合行为学数据，分析实验动物的行为模式和特征，进一步探讨动物行为学的机制。
4. 实验动物遗传学研究：- 利用遗传学方法，研究实验动物的基因表达和突变；- 应用转基因技术构建基因改造的实验动物模型；- 分析实验动物遗传变异与行为学表现的相关性，深入了解动物行为与遗传之间的关系。
5. 实验动物生理研究：- 通过生理学指标评估实验动物的生物学状态和健康状况；- 分析实验动物的生理参数变化，揭示动物的生理机制；- 在药物研究和疾病模型中应用实验动物，探索潜在的治疗策略。
总结：实验动物学是研究动物行为、生理和遗传的重要学科，通过对实验动物进行一系列实验，我们可以深入了解动物的行为模式、生理机制和遗传特征。
通过合理选择实验动物、提供适宜的饲养环境、进行行为学测试以及遗传和生理研究，我们能够推动实验动物学的发展，为人类和动物健康领域的进展提供有力支持。
实验报告动物学
一、实验目的1. 了解动物学的基本概念和分类；2. 学习动物学实验的基本操作方法；3. 培养观察、记录和分析实验结果的能力；4. 增强对动物学知识的兴趣和认识。
二、实验时间2022年X月X日三、实验地点实验室四、实验器材1. 动物标本；2. 显微镜；3. 生理盐水；4. 吸管；5. 实验记录本；6. 画图工具。
五、实验内容1. 观察动物标本，了解动物的基本结构；2. 学习显微镜的使用方法，观察动物细胞结构；3. 分析实验结果，总结动物学知识。
六、实验步骤1. 实验前准备（1）了解实验目的和内容；（2）熟悉实验器材和操作方法；（3）准备好实验记录本。
2. 观察动物标本（1）观察动物整体结构，了解其分类和特点；（2）观察动物器官，了解其功能。
3. 显微镜观察（1）将动物标本放入生理盐水中，保持标本湿润；（2）用吸管吸取少量生理盐水，滴在显微镜载物台上；（3）将动物标本放置在载物台上，调整焦距，观察细胞结构；（4）记录观察到的细胞结构特点。
4. 实验结果分析（1）总结动物学知识，分析实验结果；（2）绘制实验观察图。
七、实验结果1. 观察到的动物标本具有明显的分类和特点，如节肢动物、软体动物、鱼类等；2. 通过显微镜观察，发现动物细胞具有细胞膜、细胞质、细胞核等结构；3. 分析实验结果，了解到动物细胞的基本结构和功能。
八、实验结论1. 动物学是研究动物形态、结构、生理、生态和进化等问题的学科；2. 动物细胞具有细胞膜、细胞质、细胞核等基本结构，具有生命活动的基本功能；3. 通过本次实验，掌握了动物学实验的基本操作方法，提高了观察、记录和分析实验结果的能力。
九、实验心得1. 动物学实验使我更加深入地了解了动物的结构和功能，激发了对动物学知识的兴趣；2. 实验过程中，我学会了使用显微镜观察细胞结构，提高了实验技能；3. 通过分析实验结果，我明白了动物学知识的重要性，为今后的学习奠定了基础。
动物学科实验报告
实验名称：动物心脏功能实验实验目的：1. 了解动物心脏的结构和功能。
2. 学习心脏功能实验的基本操作和数据分析方法。
3. 通过实验验证心脏功能的相关理论知识。
实验时间：2023年X月X日实验地点：动物实验室实验材料：1. 实验动物：成年家兔1只2. 实验仪器：手术显微镜、手术器械、心脏功能测定仪、生理盐水、记录纸、笔等实验方法：1. 家兔麻醉：将家兔置于手术台上，采用吸入麻醉法进行麻醉。
2. 心脏暴露：沿家兔胸部正中线切开皮肤，暴露心脏。
3. 心脏连接：将心脏功能测定仪的电极连接到心脏表面，确保连接牢固。
4. 数据采集：开启心脏功能测定仪，记录心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据。
5. 心脏功能实验：分别进行心脏负荷实验、心脏缺血实验和心脏药物实验，观察心脏功能的变化。
实验步骤：1. 心脏负荷实验：向家兔体内注入生理盐水，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
2. 心脏缺血实验：阻断家兔心脏的冠状动脉血流，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
3. 心脏药物实验：向家兔体内注入心脏药物，观察心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据的变化。
实验结果：1. 心脏负荷实验：家兔心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据在注入生理盐水后无明显变化。
2. 心脏缺血实验：阻断家兔心脏的冠状动脉血流后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显降低。
3. 心脏药物实验：注入心脏药物后，家兔心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显升高。
实验分析：1. 心脏负荷实验：生理盐水对心脏功能无显著影响，说明心脏具有较好的耐受性。
2. 心脏缺血实验：阻断冠状动脉血流后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显降低，说明心脏在缺血状态下功能受到损害。
3. 心脏药物实验：注入心脏药物后，心脏搏动频率、收缩压、舒张压等数据明显升高，说明心脏药物具有改善心脏功能的作用。
实验结论：1. 心脏具有较好的耐受性，在正常生理状态下能够承受一定的负荷。
动物学实验报告
动物学实验报告
动物学实验是生物学领域的重要组成部分，通过实验可以更深入地了解动物的生理、行为和生态习性。
本次实验旨在观察动物的行为和生理特征，以及探讨动物与环境的相互关系。
实验对象为小白鼠和蜜蜂，我们将通过观察它们的行为和生理反应，来探究它们在不同环境条件下的适应能力。
首先，我们选取了一些小白鼠，将它们分别放置在两个不同的笼子中，一个笼子放置在明亮的环境中，另一个笼子放置在昏暗的环境中。
我们观察到，放置在明亮环境中的小白鼠表现出活跃、好奇的特点，它们不断地在笼子内探索、奔跑，展现出较高的活动性；而放置在昏暗环境中的小白鼠则显得比较懒散，行动迟缓，甚至出现了一些抑郁的迹象。
这说明小白鼠对于光线的需求是有所不同的，它们更喜欢明亮的环境，这也与它们在野外生存的习性相符。
接着，我们进行了一项关于蜜蜂的实验。
我们设置了两组蜜蜂，一组蜜蜂在花园中采食花蜜，而另一组蜜蜂则在温室中采食花蜜。
我们观察到，采食花蜜的蜜蜂在花园中表现出较为活跃的状态，它们飞来飞去，忙碌地采集花蜜；而在温室中采食花蜜的蜜蜂则显得比较迟缓，行动缓慢，甚至出现了一些停滞不前的情况。
这说明蜜蜂对于自然环境的需求是有所不同的，它们更适应于自然花园的环境，而在人工温室中则表现出适应能力较弱。
通过本次实验，我们深刻地认识到了动物对于环境的适应能力，不同的环境条件会对动物的行为和生理特征产生重要影响。
我们也意识到了保护自然环境的重要性，只有为动物提供适宜的生存环境，它们才能展现出最佳的生理和行为特征，实现生态平衡。
希望我们的实验成果能够为动物学研究提供一些有益的参考，也能够引起人们对于环境保护的更多关注和重视。
实验动物学实验报告鸡(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解鸡的生物学特性、生理功能及生长发育规律。
2. 掌握鸡的饲养管理技术，为实验动物学教学和科研提供基础。
二、实验材料1. 实验动物：鸡（品种、年龄、性别等）2. 实验器材：温度计、湿度计、饲料、饮水器、称重器、笼具等3. 实验试剂：消毒液、营养液等三、实验方法1. 观察鸡的外部形态结构，了解其生长发育规律。
（1）观察鸡的头部、颈部、胸部、腹部、尾部等部位，记录其形态、颜色、羽毛等特征。
（2）测量鸡的体长、体重、翼长等指标，了解其生长发育规律。
2. 观察鸡的生理功能。
（1）观察鸡的呼吸、心跳、排泄等生理现象。
（2）观察鸡的采食、饮水等行为。
3. 掌握鸡的饲养管理技术。
（1）了解鸡的饲料种类、营养成分、饲养方式等。
（2）观察鸡的饲养环境，包括温度、湿度、光照等。
（3）掌握鸡的消毒、防疫、疾病防治等技术。
四、实验结果与分析1. 鸡的形态结构（1）头部：鸡的头部呈椭圆形，有喙、眼、耳等器官。
（2）颈部：鸡的颈部细长，肌肉发达，有利于采食和呼吸。
（3）胸部：鸡的胸部宽大，有发达的胸肌，有利于飞行。
（4）腹部：鸡的腹部较宽，有利于消化和生殖。
（5）尾部：鸡的尾部较短，羽毛密实，有利于保温。
2. 鸡的生理功能（1）呼吸：鸡的呼吸以肺为主，气囊辅助呼吸。
（2）心跳：鸡的心脏四腔，心跳较快，有利于血液循环。
（3）排泄：鸡的排泄器官有肾脏、输尿管、泄殖腔等。
（4）采食：鸡的喙尖利，善于啄食。
（5）饮水：鸡的饮水需求较高，需保持充足的水源。
3. 鸡的饲养管理技术（1）饲料：鸡的饲料应富含蛋白质、碳水化合物、脂肪、维生素和矿物质等。
（2）饲养环境：鸡的饲养环境应保持适宜的温度、湿度、光照等，以利于其生长发育。
（3）消毒：定期对鸡舍、饲料、饮水等消毒，预防疾病传播。
（4）防疫：定期进行疫苗接种，预防疫病发生。
（5）疾病防治：发现病鸡应及时隔离治疗，防止疫情扩散。
五、实验总结本次实验通过对鸡的形态结构、生理功能及饲养管理技术的观察，使我们对鸡的生物学特性有了更深入的了解。
动物学教学实习实验报告
一、实验目的通过本次动物学教学实习，使学生了解和掌握动物学实验的基本操作方法，培养实验技能和科学思维，提高对动物学知识的实际应用能力。
二、实验时间2021年X月X日三、实验地点XX大学动物实验室四、实验材料1. 实验动物：小白鼠、家兔、金鱼等。
2. 实验器材：解剖显微镜、解剖刀、镊子、剪刀、酒精、生理盐水、固定液等。
3. 实验试剂：染色剂、试剂等。
五、实验内容1. 实验动物观察（1）观察小白鼠的外部形态、内部器官结构及功能。
（2）观察家兔的外部形态、内部器官结构及功能。
（3）观察金鱼的外部形态、内部器官结构及功能。
2. 动物解剖（1）小白鼠解剖：观察其消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统、生殖系统等器官的结构和功能。
（2）家兔解剖：观察其消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统、生殖系统等器官的结构和功能。
（3）金鱼解剖：观察其消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统、生殖系统等器官的结构和功能。
3. 实验动物生理实验（1）小白鼠的呼吸频率和心跳频率测定。
（2）家兔的血压测定。
（3）金鱼的游泳速度测定。
六、实验步骤1. 实验动物观察（1）将实验动物放置在解剖显微镜下，观察其外部形态，记录相关信息。
（2）将实验动物放置在解剖台上，用解剖刀、镊子、剪刀等器材进行解剖，观察内部器官结构，记录相关信息。
2. 动物解剖（1）小白鼠解剖：用解剖刀在小白鼠的背部切开皮肤，分离肌肉和内脏器官，观察消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统、生殖系统等器官的结构和功能。
（2）家兔解剖：用解剖刀在家兔的背部切开皮肤，分离肌肉和内脏器官，观察消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统、生殖系统等器官的结构和功能。
（3）金鱼解剖：用解剖刀在金鱼的腹部切开皮肤，分离肌肉和内脏器官，观察消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统、生殖系统等器官的结构和功能。
3. 实验动物生理实验（1）小白鼠的呼吸频率和心跳频率测定：用解剖显微镜观察小白鼠的呼吸和心跳，记录呼吸频率和心跳频率。
动物学实验报告(范文)(二)2024
动物学实验报告(范文)（二）引言概述：本文是关于动物学实验的实验报告，旨在对动物学实验的设计、操作、结果及论证等方面进行详细描述和分析。
通过该实验，我们旨在探究动物行为、生态环境与适应性之间的关系，并通过实验结果来验证相关理论。
正文：1. 实验设计- 选择实验动物：选取适合的实验动物，如小白鼠、果蝇等，以其生命周期短、繁殖快等特点，方便操作和观察。
- 确定实验目的：明确实验的目标和研究问题，如观察动物在不同环境条件下的行为差异，并推测其生态环境对其适应性的影响。
- 设计实验方案：制定实验步骤和操作流程，包括对实验动物的饲养和培育、实验条件的设定等。
2. 实验操作- 收集实验材料：准备实验所需的仪器、设备、实验动物等。
- 设定实验条件：根据实验目的，设定不同的环境条件，如温度、湿度、光照强度等。
- 观察记录：对实验动物的行为进行观察，并进行详细的记录，包括动物的活动范围、行为习性等。
- 实验数据的测量和分析：对实验数据进行测量和分析，如对动物的活动轨迹进行定量分析，通过图表等形式展示实验结果。
3. 实验结果- 行为差异比较：对不同环境条件下动物的行为进行比较，如活动范围、食物摄入量等。
- 结果统计与分析：对实验数据进行统计和分析，如计算平均值、方差等。
通过统计结果，验证实验假设，得出结论。
- 数据可视化：通过图表、图片等形式直观地展示实验结果，便于读者理解和分析。
4. 结果论证- 结果解释与讨论：根据实验结果，对实验目的进行解释和讨论，探讨动物行为和适应性之间的相关性。
- 结果的合理性和可靠性分析：对实验结果的合理性和可靠性进行分析，如实验过程中的误差和偏差等因素的影响。
- 结果与已有研究的比较：将实验结果与已有的相关研究进行比较和分析，探索实验结果的创新之处和发展方向。
5. 总结本文详细描述了动物学实验的设计、操作、结果和论证过程。
通过该实验，我们得出了关于动物行为和适应性之间关系的一些结论，并对实验结果进行了深入分析和讨论。
动物学实验报告
动物学实验报告动物学实验报告引言：动物学实验是科学研究中不可或缺的一环，通过对动物进行实验，可以深入了解动物的生理、行为、进化等方面的特征。
本报告旨在总结动物学实验的重要性以及其在科学研究中的应用。
1. 实验动物的选择实验动物的选择是动物学实验中的重要环节。
常用的实验动物包括小鼠、大鼠、猴子等。
选择实验动物时需要考虑多个因素，如动物的生命周期、生育能力、易于饲养和管理等。
此外，实验动物的基因背景也需要考虑，以确保实验结果的可靠性和可重复性。
2. 动物实验的伦理问题在进行动物学实验时，伦理问题是不可忽视的。
科学家们应该始终尊重动物的权益和福利，确保实验过程中动物不受到不必要的痛苦和折磨。
为此，科学界制定了一系列的伦理准则和规范，如最小化动物使用、使用无痛苦的实验方法等。
3. 动物学实验的应用领域动物学实验在科学研究中有着广泛的应用。
以下是几个常见的应用领域：3.1. 生理学研究通过对动物进行生理学实验，可以研究动物的生理功能和机制。
例如，通过实验可以了解动物的呼吸、消化、循环等系统是如何运作的，从而对人类的健康和疾病有所启示。
3.2. 行为学研究动物学实验在行为学研究中起着重要作用。
科学家们通过观察和实验，可以了解动物的行为模式、社会结构、学习能力等。
这些研究对于理解人类的行为和心理也具有一定的指导意义。
3.3. 进化学研究动物学实验对于进化学研究也有重要意义。
通过对不同物种的实验，可以了解它们的进化历程和适应性特征。
例如，通过对鸟类的实验可以研究鸟类的迁徙行为和导航能力，从而揭示进化的原理。
4. 动物学实验的局限性和挑战动物学实验虽然在科学研究中发挥着重要作用，但也面临一些局限性和挑战。
首先，动物与人类之间存在差异，因此实验结果不能直接推广到人类身上。
其次，动物实验往往需要大量的时间、资源和精力，且存在一定的伦理和道德争议。
结论：动物学实验在科学研究中具有不可替代的地位。
通过实验，我们可以深入了解动物的生理、行为和进化等方面的特征。
实验动物学实验报告图文
实验动物学课程实验报告实验内容:1. 小鼠的基本实验操作2. 小鼠皮肤移植试验、睾丸(或卵巢摘除术3. 豚鼠和兔的一般操作技术4. 大鼠实验的基本操作5. 大鼠性周期观察和大鼠急性肺水肿模型建立6. 小鼠无菌取胎术7. Beagle犬的一般操作和沙鼠、金黄地鼠、裸小鼠的特性实验一小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓取和固定、性别鉴定、编号、去毛、给药、采血、麻醉、处死,尤其是染色法编号、灌胃、眼球摘除法采血、腹腔注射、脊椎脱臼法处死。
二、实验动物:昆明小鼠4只(2雌2雄三、实验步骤1、抓取和固定2、性别鉴定3、编号(染色法4、去毛(脱毛剂法5、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射6、采血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法7、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉8、处死:脊椎脱臼法、过量麻醉9、解剖:9.1 生殖系统:9.1.1雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明9.1.2雌性:双角子宫、卵巢9.2 肾上腺、胰腺、胆囊、甲状腺四、实验结果1、抓取和固定:抓取:抓小鼠的尾根部固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
2、性别鉴定:观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性:距离长,毛发密(和其他部位一样;雌性:距离短,毛发稀疏。
3、编号:3.1染色法:3.1.1用苦味酸(黄色在小鼠背面染色3.1.2逆毛发生长方向染色,自毛根开始3.1.3可编1-10号(10号为不编号3.2去毛:脱毛剂:8% Na2S,自毛发根部涂抹3.3 给药:3.3.1 灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针, 紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0.5ml3.3.2 注射给药:3.3.2.1腹腔注射:3.3.2.1.1从下腹部的两侧进针3.3.2.1.2进针时针与腹部成45°。
科学动物小实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解蚂蚁的觅食行为特点；2. 探究蚂蚁觅食过程中的信息传递方式；3. 分析蚂蚁觅食行为对人类生活的意义。
二、实验材料1. 实验对象：蚂蚁（种类不限，数量若干）2. 实验器材：培养皿、透明胶带、食物（如糖水、肉末等）、放大镜、尺子、计时器等三、实验方法1. 观察蚂蚁觅食行为：将蚂蚁放入培养皿中，观察蚂蚁在培养皿内的活动情况，记录蚂蚁觅食行为的特点。
2. 探究蚂蚁觅食过程中的信息传递方式：在培养皿内放置食物，用透明胶带将食物与培养皿边缘粘合，防止蚂蚁爬出。
观察蚂蚁觅食过程中的行为变化，如触角、身体弯曲等，分析蚂蚁觅食过程中的信息传递方式。
3. 分析蚂蚁觅食行为对人类生活的意义：结合观察结果，分析蚂蚁觅食行为对人类生活的意义，如蚂蚁在生态平衡、土壤改良等方面的作用。
四、实验步骤1. 准备实验材料，将蚂蚁放入培养皿中；2. 观察蚂蚁在培养皿内的活动情况，记录蚂蚁觅食行为的特点；3. 在培养皿内放置食物，用透明胶带将食物与培养皿边缘粘合；4. 观察蚂蚁觅食过程中的行为变化，分析蚂蚁觅食过程中的信息传递方式；5. 分析蚂蚁觅食行为对人类生活的意义；6. 整理实验数据，撰写实验报告。
五、实验结果与分析1. 观察结果：蚂蚁在培养皿内表现出明显的觅食行为，如爬行、触角接触、身体弯曲等。
蚂蚁觅食过程中，触角起到了重要的作用，它们通过触角感知食物的气味，从而确定食物的位置。
2. 信息传递方式：在实验过程中，蚂蚁通过触角感知食物的气味，并将这一信息传递给其他蚂蚁。
当一只蚂蚁发现食物后，它会通过触角与其他蚂蚁接触，将信息传递给它们，从而引导其他蚂蚁前往食物所在地。
3. 蚂蚁觅食行为对人类生活的意义：蚂蚁在生态平衡、土壤改良等方面具有重要作用。
它们能够分解有机物质，促进土壤肥力；同时，蚂蚁还能够控制害虫，维持生态平衡。
六、实验结论1. 蚂蚁的觅食行为具有明显的特点，如触角感知、身体弯曲等；2. 蚂蚁觅食过程中的信息传递方式主要是通过触角；3. 蚂蚁觅食行为对人类生活具有重要作用，如生态平衡、土壤改良等。
作文动物实验报告总结(3篇)
第1篇一、实验背景随着科学技术的不断发展，动物实验在医学、生物学、药理学等领域扮演着至关重要的角色。
本实验旨在探究某种药物对特定动物模型的影响，为后续的临床应用提供实验依据。
本次实验选取了XX动物作为实验对象，通过给予其不同剂量的药物，观察并记录其生理和行为变化。
二、实验目的1. 评估该药物对XX动物生理指标的影响；2. 观察药物对XX动物行为的影响；3. 为该药物的临床应用提供实验依据。
三、实验方法1. 实验动物：选取健康、年龄相当的XX动物XX只，随机分为实验组和对照组，每组XX只。
2. 实验分组：实验组给予不同剂量的药物，对照组给予等体积的生理盐水。
3. 实验步骤：（1）实验前，对实验动物进行适应性饲养，使其适应实验环境。
（2）实验过程中，定期监测实验动物的生理指标，如心率、血压、体温等。
（3）观察并记录实验动物的行为变化，如活动能力、睡眠质量、摄食情况等。
（4）实验结束后，对实验数据进行统计分析。
四、实验结果1. 生理指标变化：（1）实验组动物的心率、血压、体温等生理指标与对照组相比，无显著性差异（P>0.05）。
（2）实验组动物的心率、血压、体温等生理指标在不同剂量组间无显著性差异（P>0.05）。
2. 行为变化：（1）实验组动物的活动能力、睡眠质量、摄食情况等行为与对照组相比，无显著性差异（P>0.05）。
（2）实验组动物的行为在不同剂量组间无显著性差异（P>0.05）。
五、实验结论本次实验结果表明，该药物对XX动物无明显的生理和行为影响。
根据实验结果，该药物在临床应用中具有较大的安全性。
六、实验讨论1. 实验过程中，我们选取了健康、年龄相当的XX动物作为实验对象，确保了实验结果的可靠性。
2. 实验过程中，我们采用了随机分组的方法，避免了人为因素的影响。
3. 实验结果显示，该药物对XX动物无明显的生理和行为影响，表明该药物在临床应用中具有较高的安全性。
七、实验展望1. 在后续的研究中，我们将进一步探讨该药物在不同动物模型中的药效和安全性。
动物实验报告学期小结(3篇)
第1篇一、前言本学期，我参加了动物实验课程的学习，通过一系列的动物实验，我对生物学的基本原理和方法有了更深入的了解。
以下是对本学期动物实验的学习心得和总结。
二、实验内容概述本学期，我们进行了多个动物实验，主要包括以下几个方面：1. 动物解剖实验：通过对不同动物（如青蛙、小鼠等）的解剖，了解动物内部器官的结构和功能。
2. 组织切片实验：学习制作动物组织切片，观察细胞和组织的细微结构。
3. 生化实验：通过动物实验，学习检测血液、尿液等生物样品中的生化指标。
4. 免疫学实验：学习动物免疫系统的基本原理，进行抗原-抗体反应实验。
5. 行为学实验：观察动物在不同环境下的行为表现，了解动物行为与神经系统之间的关系。
三、实验过程及心得1. 动物解剖实验在动物解剖实验中，我学会了如何解剖青蛙、小鼠等动物，了解了动物内部器官的形态和功能。
通过实验，我认识到动物解剖是研究生物学的重要方法，有助于我们深入理解生物体的结构和功能。
2. 组织切片实验在组织切片实验中，我学会了如何制作动物组织切片，并使用显微镜观察细胞和组织的细微结构。
通过实验，我掌握了组织切片的制作方法，提高了观察细胞和组织的能力。
3. 生化实验在生化实验中，我学习了检测血液、尿液等生物样品中的生化指标。
通过实验，我了解了生化指标在疾病诊断和健康评估中的重要作用。
4. 免疫学实验在免疫学实验中，我学习了动物免疫系统的基本原理，并进行了抗原-抗体反应实验。
通过实验，我掌握了免疫学的基本知识，提高了对免疫学实验的操作能力。
5. 行为学实验在行为学实验中，我观察了动物在不同环境下的行为表现，了解了动物行为与神经系统之间的关系。
通过实验，我认识到行为学在研究动物生理和心理活动中的重要性。
四、实验收获与反思1. 收获（1）掌握了动物实验的基本原理和方法，提高了实验操作能力。
（2）深入了解了生物学的基本知识，为今后的学习奠定了基础。
（3）培养了严谨的科学态度和团队协作精神。
动物实验报告
动物实验报告实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法；4、掌握小鼠的基本采血技术；5、掌握小鼠的常用给药方法；6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。
幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。
另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。
3、小鼠的标记方法1）耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。
2）剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；3）染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血1）剪尾采血当所需血量很少时采用本法。
固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。
将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。
取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。
也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。
动物学实验报告
一、实验目的1. 了解动物学习行为的基本原理。
2. 掌握经典条件反射和操作条件反射的实验方法。
3. 分析老鼠在不同条件下的学习行为特点。
二、实验材料1. 实验动物：老鼠（体重20-30g）10只。
2. 实验器材：条件反射箱、食物（如花生）、电子计时器、录音笔、电子天平等。
三、实验方法1. 实验分组：将10只老鼠随机分为两组，每组5只，分别命名为A组和B组。
2. 经典条件反射实验：（1）将A组老鼠放入条件反射箱中，给予非条件刺激（如铃声），并伴随非条件反应（如给予食物），重复10次。
（2）将非条件刺激（铃声）单独呈现，观察老鼠的反应。
3. 操作条件反射实验：（1）将B组老鼠放入条件反射箱中，设定一个杠杆，当老鼠触动杠杆时，给予非条件刺激（如食物）。
（2）记录老鼠触动杠杆的次数，分析老鼠的学习行为。
四、实验步骤1. 经典条件反射实验：（1）将A组老鼠放入条件反射箱中，开始实验前，记录老鼠在箱内的活动情况。
（2）给予非条件刺激（铃声），并伴随非条件反应（给予食物），重复10次。
（3）在非条件刺激结束后，单独呈现非条件刺激（铃声），观察老鼠的反应。
2. 操作条件反射实验：（1）将B组老鼠放入条件反射箱中，开始实验前，记录老鼠在箱内的活动情况。
（2）设定杠杆，当老鼠触动杠杆时，给予非条件刺激（如食物）。
（3）记录老鼠触动杠杆的次数，分析老鼠的学习行为。
五、实验结果与分析1. 经典条件反射实验：A组老鼠在非条件刺激结束后，对非条件刺激（铃声）产生了明显的条件反应，表现出寻找食物的行为。
2. 操作条件反射实验：B组老鼠在操作条件反射箱中，触动杠杆的次数逐渐增加，说明老鼠已经学会了触动杠杆以获取食物。
六、实验结论1. 经典条件反射实验表明，老鼠能够通过学习将一个中性刺激（铃声）与一个非条件刺激（食物）建立联系，产生条件反应。
2. 操作条件反射实验表明，老鼠能够通过学习，通过触动杠杆来获取食物，表现出操作行为。
3. 实验结果证实了动物学习行为的基本原理，为动物行为学研究提供了实验依据。
动物学实验报告(范文)(一)2024
动物学实验报告(范文)（一）引言概述：动物学实验报告是对特定动物或一组动物进行观察、记录和分析的科学性文档，通过实验分析动物的行为、特征和生态习性，从而更好地了解动物的生态环境和行为模式。
本报告将对一组实验中的动物进行观察和记录，并从以下五个方面进行详细阐述：动物的外部特征、生态环境、行为模式、饮食习性和繁殖方式。
一、动物的外部特征：1. 观察动物的体型、体长、体重等基本特征；2. 记录动物的体色、毛发和羽毛等外部特征；3. 探究动物的头部结构、四肢形态等特征；4. 观察动物的感觉器官如眼睛、耳朵等的形态和构造；5. 记录动物的运动能力和适应环境的特征。
二、动物的生态环境：1. 调查动物栖息地的地理位置和气候条件；2. 分析动物所处环境的地形和植被状况；3. 记录动物栖息地的海拔高度和水域特征；4. 探究动物栖息地的食物来源和天敌情况；5. 分析动物栖息地对其生活和繁殖的影响。
三、动物的行为模式：1. 观察动物的觅食行为和觅食策略；2. 记录动物的睡眠习性和活动规律；3. 探究动物的社交行为和群体组织结构；4. 观察动物的逃避和防御行为；5. 分析动物的繁殖行为和繁殖季节。
四、动物的饮食习性：1. 调查动物食性类型和摄食方式；2. 记录动物的主要食物来源和摄入量；3. 探究动物的消化系统结构和功能；4. 观察动物对不同食物的偏好和适应能力；5. 分析动物的饮食选择和食物摄入与能量需求的关系。
五、动物的繁殖方式：1. 调查动物的性别比例和交配方式；2. 记录动物的交配行为和繁殖季节；3. 探究动物的受精方式和卵胎生或胎生特征；4. 观察动物的孵化或生育过程和育儿行为；5. 分析动物的繁殖成功率和繁殖对后代生存的影响。
总结：综上所述，通过对动物的外部特征、生态环境、行为模式、饮食习性和繁殖方式进行观察和分析，我们对该组动物的生活习性和繁殖生态有了更加深入的了解。
这些信息对于保护和管理特定动物群体以及生态环境的保护具有重要的参考价值。
实验动物实验报告兔子
一、实验目的1. 了解兔子的一般生物学特性；2. 掌握兔子实验操作的基本技能；3. 熟悉兔子实验过程中可能出现的问题及处理方法。
二、实验材料1. 兔子：成年雄性新西兰大白兔；2. 实验器材：实验台、解剖刀、镊子、剪刀、酒精灯、生理盐水、注射器、试管等；3. 实验试剂：生理盐水、碘酒、酒精、肾上腺素等。
三、实验方法1. 兔子的捕获与固定将兔子放入实验箱内，待其安静后，用绳索将其四肢固定在实验台上。
2. 兔子的解剖（1）解剖部位：颈部、腹部、胸腔等；（2）解剖方法：用解剖刀沿着颈部、腹部、胸腔等部位切开皮肤，暴露肌肉、血管、器官等；（3）解剖顺序：先切开皮肤，再分离肌肉，暴露血管和器官。
3. 观察兔子的内脏器官观察兔子的心脏、肝脏、肺、肾脏、胃、肠等内脏器官的结构和功能。
4. 兔子的生理实验（1）心脏实验：观察兔子的心脏跳动情况，测量心率、心输出量等指标；（2）肝脏实验：观察兔子的肝脏颜色、质地等，测量肝功能指标；（3）肺实验：观察兔子的肺颜色、质地等，测量肺功能指标；（4）肾脏实验：观察兔子的肾脏颜色、质地等，测量肾功能指标。
5. 兔子的实验处理（1）生理盐水处理：用生理盐水清洗兔子的伤口，防止感染；（2）碘酒消毒：用碘酒对兔子的伤口进行消毒；（3）肾上腺素处理：根据实验需要，给兔子注射肾上腺素，观察其对兔子生理指标的影响。
四、实验结果与分析1. 兔子的心脏实验结果兔子的心率为每分钟120-160次，心输出量为80-100毫升/分钟。
2. 兔子的肝脏实验结果兔子的肝脏颜色呈棕红色，质地柔软，肝功能指标正常。
3. 兔子的肺实验结果兔子的肺颜色呈粉红色，质地柔软，肺功能指标正常。
4. 兔子的肾脏实验结果兔子的肾脏颜色呈红褐色，质地柔软，肾功能指标正常。
5. 兔子的肾上腺素处理结果注射肾上腺素后，兔子的心率明显加快，心输出量增加，血压升高，表明肾上腺素具有兴奋心脏、收缩血管、提高血压的作用。
五、实验结论1. 兔子是实验动物中常用的一种，具有较好的生物学特性和实验操作性能；2. 通过实验，掌握了兔子实验操作的基本技能，熟悉了兔子实验过程中可能出现的问题及处理方法；3. 实验结果证明，兔子在生理实验中具有良好的稳定性和可重复性。
实验动物学实验报告(共篇)
实验动物学实验报告(共9篇)实验动物学实验报告实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。
二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。
三、实验步骤1、抓取和固定1.1抓取：左手抓小鼠的尾根部1.2固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
1.3同样操作将大鼠抓取和固定2、性别鉴定：2.1抓取和固定小鼠2.2观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。
2.3同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。
3. 给药3.1 灌胃法3.1.1按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
3.1.2固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。
3.1.3当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。
3.1.3用大鼠重复同样操作3.2 注射给药3.2.1皮下注射3.2.1.1用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤，3.2.1.2右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。
拨针时，以手指捏住针刺部位3.2.1.3用大鼠重复同样操作3.2.2腹腔注射3.2.2.1以左手固定小鼠，使腹部向上，3.2.2.2右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。
初中动物实验报告
实验名称：初中动物实验报告实验目的：通过观察动物的行为和生理现象，了解动物的生活习性和生理结构，培养学生的观察能力、实验操作能力和科学思维。
实验时间：2022年X月X日实验地点：学校实验室实验器材：显微镜、解剖器具、解剖盘、生理盐水、实验动物（如小白鼠、青蛙等）实验对象：小白鼠实验步骤：一、观察动物的行为1. 观察小白鼠的活动状态，记录其活动频率、活动范围、活动方式等。
2. 观察小白鼠的进食行为，记录其进食频率、进食量、进食方式等。
3. 观察小白鼠的睡眠行为，记录其睡眠时间、睡眠姿势等。
二、观察动物的生理现象1. 观察小白鼠的呼吸现象，记录其呼吸频率、呼吸深度等。
2. 观察小白鼠的血液循环现象，通过显微镜观察其心脏结构、血管分布等。
3. 观察小白鼠的消化系统，通过解剖观察其胃、肠、肝脏等器官。
三、动物实验操作1. 对小白鼠进行麻醉，使其进入睡眠状态。
2. 对小白鼠进行解剖，观察其内部器官。
3. 记录解剖过程中的观察结果。
实验结果：一、动物行为观察结果1. 小白鼠在实验过程中表现出活跃的行为，活动频率较高，活动范围较广。
2. 小白鼠的进食行为表现为：进食频率较高，进食量适中，进食方式为舔食。
3. 小白鼠的睡眠行为表现为：睡眠时间较长，睡眠姿势为侧卧。
二、动物生理现象观察结果1. 小白鼠的呼吸频率为每分钟X次，呼吸深度适中。
2. 通过显微镜观察，小白鼠的心脏结构完整，血管分布清晰。
3. 通过解剖观察，小白鼠的胃、肠、肝脏等器官结构完整，功能正常。
三、动物实验操作结果1. 小白鼠在麻醉过程中表现出轻微的挣扎，但在实验操作过程中较为安静。
2. 解剖过程中，小白鼠的器官结构完整，无异常。
实验分析：通过本次实验，我们对小白鼠的行为和生理现象有了更深入的了解。
实验结果表明，小白鼠具有以下特点：1. 活跃的行为，适应性强。
2. 进食、睡眠等行为规律。
3. 呼吸、血液循环等生理现象正常。
4. 器官结构完整，功能正常。
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实验动物学实验报告 Document number：NOCG-YUNOO-BUYTT-UU986-1986UT
实验一大、小鼠的基本实验操作
一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。
二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。
三、实验步骤
1、抓取和固定
抓取：左手抓小鼠的尾根部
固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
同样操作将大鼠抓取和固定
2、性别鉴定：
抓取和固定小鼠
观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。
同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。
3. 给药
灌胃法
按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。
当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。
用大鼠重复同样操作
注射给药
皮下注射
用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤，
右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。
拨针时，以手指捏住针刺部位
用大鼠重复同样操作
腹腔注射
以左手固定小鼠，使腹部向上，
右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。
用大鼠重复同样操作
尾静脉注射
先将动物固定在暴露尾部的固定器内，
用75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，
以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠，右手持注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾末端处刺入。
注入药液，无阻力，表示针头已进入静脉，注射后把尾部向注射侧弯曲，或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。
用大鼠重复同样操作
4取血
内眦取血：
左手固定小鼠，食指和拇指轻轻压迫颈部两侧，使眶后动静脉充血。
右手持毛细采血管，以45 度从内眼刺入，并向下旋转，感觉刺入血管后，再向外边退边吸，使血液顺承血管自由流入小管中，
当得到血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血
用大鼠重复同样操作
五、实验讨论
1、小鼠抓取的感受：
小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。
大鼠抓取方法基本同小鼠，抓大鼠时若操作者不熟练，或者大鼠特别凶猛，操作者最好戴上防护手套(帆布或硬皮质均可)。
如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射时，可采用与小鼠相同的手法
2、小鼠尾静脉注射感受：
尾静脉注射时，可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质。
如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部方向移动注射先远后尽，不要一开始就从尾根部，失败了无法选取注射部位；再次，进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。
尾静脉就在尾巴的正左右两边，先用酒精用力擦，可以去掉部分角质，然后按住近心端让充血，就很容易看到了。
3.灌胃
针头插入食道过程中，若动物挣扎厉害，应退出后灌胃针，待动物安静后重新插入。
切不可强行插入，以免损伤食道或误入气管导致动物死亡。
当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压说明灌胃针未插入气管，此时可将药液灌入。