生理科学——家兔失血性休克及其抢救
家兔的失血性休克及其抢救
机能学实验报告家兔的失血性休克及其抢救摘要：【目的】：复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】：采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】：短时间内的少量的失血是可以恢复；大量失血是不可恢复的；自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】：短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词：失血性休克；代偿期；失代偿期引言：休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的原因。
1、实验材料1.1实验动物：家兔；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2、实验步骤2.1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统2通道。
启动RM6240系统，关闭其他通道，2通道模式为血压，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度100ml/s；采样频率800Hz。
2.2. 麻醉手术家兔称重，以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。
将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头，行气管插管手术，左侧颈总动脉，右侧颈外静脉，股动脉。
输液瓶充满一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5～10滴/min。
股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器。
2.3. 颈部手术2.3.1. 备皮：左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）2.3.2. 切开皮肤：术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
家兔失血性休克及其抢救(自己的)
失血性休克及其抢救[摘要]目的：复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响并探讨其发生机制。
用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。
待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。
结果：放血后，家兔血压下降，大量放血后血压明显下降，输液输血后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
结论：家兔少量放血后，家兔血压下降，但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。
家兔大量放血后，家兔血压明显下降。
输血、输液后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
[关键词]失血性休克抢救输液治疗休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的病因。
当机体失血量少于全身血量的10%时，机体可通过自身的代偿功能使血压和组织灌流量保持基本正常。
当机体快速失血超过总血量的20%左右时，血容量急剧减少，静脉回流不足，心输出量减少，血压下降；加之压力感受器反射性活动减弱，引起交感神经强烈兴奋，外周血管收缩，组织有效血液灌流量不足而发生休克。
休克对机体的影响是全方位的，临床上出现心脑功能障碍、心搏无力、皮肤发凉、紫绀的表现。
补充血容量是提高心输出量和改善组织灌流的基本措施。
本实验主要观察休克时心功能的改变，通过输血输液，了解休克的补液原则：需多少补多少。
1.实验材料1.1实验动物：家兔1.2主要试剂：生理盐水，氨基甲酸乙酯，肝素，微循环灌流液1.3仪器：家兔手术台，常用手术器械一套，止血钳，眼科剪，支架，动脉插管，动脉夹，血压换能器，生物信号采集处理系统，纱布，丝线，1ml、10ml、50ml注射器2.实验方法2.1系统连接打开RM6240生物信号采集处理系统，接通压力传感器。
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救实验报告实验题目：家兔失血性休克模型的制作及治疗实验目的：制作家兔失血性休克模型，观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化，进一步理解休克发生的病理生理机制，并了解失血性休克的治疗措施实验对象：家兔，体重1.92kg实验器材与药品：1、器材：兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器（20,5,1ml）、显微镜、手术线、纱布2、药品：20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水实验步骤：1、抓取家兔并称重，取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注2、待家兔四肢张力降低，无抵抗，角膜反射消失后，在兔手术台进行牢靠固定并备皮，备皮部位：颈部与腹部3、做颈部正中切口5cm，分层剪开，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，小心游离血管3-4cm，在血管的两端穿线备用4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝5、颈外静脉插管：先夹闭近心端，再结扎远心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm,NS维持，5-10滴/min6、颈总动脉插管：先结扎远心端，再夹闭近心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm7、腹部正中切口6-8cm，拉出一段肠系膜（不取盲肠肠系膜），固定于显微镜下观察微循环8稳定5min,记录此状态下BP、HR、R、微循环；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录9、颈总动脉放血10%（约13ml）,稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；继续放血至25%（约35ml），稳定约5min，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录10、NE0.25ml，用NS稀释至20ml，静脉滴注，并全血回输，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录实验结果:状态r、参数BP（mmHg）HR（次/min）R（次/min）微循环变化正常状态106190血流量及流速正常推注NE0.1ml11723254血管收缩，血流加速放血10%9222056血流量及流速变化不明显放血25%4617046血管收缩，血流量减少推注NE0.1ml56176血管进一步收缩，流速加快，流量减少全血回输6015844血管舒张，开始充盈分析讨论:正常状态下，推注NEO.Iml后，与心脏的（31受体结合，使心肌收缩力增强，心率加快，血压升高；与肠系膜血管a受体结合，使肠系膜血管收缩，血流速度加快。
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救（一）实验目的1.观察休克发展过程中机体的变化。
2.掌握急性失血性休克模型复制方法。
3.分析讨论急性失血性休克发病机制。
（二）实验原理抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。
实验中所采用的药物主要的作用是：●山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。
●异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。
③使收缩压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血压下降明显。
在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。
●去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩血管，使小动脉、小静脉收缩。
②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。
大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。
●此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。
可以逐一试加看动脉升高情况比较扩容升压效果。
（三）实验材料1.实验对象：家兔。
2.实验器材及药品静脉输液装置一套，三通开关，50 ml、20 ml、10 ml注射器各一个，肝素（500μ/ ml），1％普鲁卡因，生理盐水，动物手术器械一套，呼吸血压描记装置，低分子右旋糖苷，20％乌拉坦溶液、台氏液、去甲肾上腺素、山莨菪碱（654-2）。
（四）实验方法1.家兔称重后，以25％乌拉坦4ml/kg，经耳缘静脉注射。
麻醉后，将家兔仰卧背位固定于手术台上。
2.颈部手术：颈部剪毛，正中切口5～6cm，分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈外静脉（表浅、色深，较粗，刺激时可见血管收缩变细）。
穿两线，备用。
3.股部手术：一侧股三角区剪毛，触及股动脉搏动，辨明股动脉走向，沿动脉走向做长约3～5cm切口，在股三角区即可见股动脉、股静脉和股神经，分离股动脉。
穿两线备用。
4.肠系膜微循环标本的制备（示教）：腹正中切口，沿左腹直肌旁作约6cm长的纵行切口，钝性分离。
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救家兔失血性休克及其抢救【摘要】目的：复制兔失血性休克模型；观察兔在失血性休克时动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响；探讨失血性休克的发生机制及救治方法。
方法：麻醉家兔，行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管术，连接换能器，打开程序，记录正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化5min。
待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，记录并观察血压变化20min。
结果：少量放血时，家兔血压下降，但是在短时间内回升；大量放血时，血压下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。
结论：家兔少量失血，家兔血压下降，机体的自身代偿作用可以在短时间内使血压恢复正常；失血过多，家兔血压明显下降，机体会发生失代偿作用；进行输血输液等治疗措施后，血压急剧上升，可恢复基本正常。
【关键词】休克失血性休克抢救【abstract】objective: copy the rabbit model of uncontrolled hemorrhagic shock; Observe the rabbit in the arterial blood pressure and heart rate in uncontrolled hemorrhagic shock, the influence of the color of the skin and mucosa; To explore the mechanism of uncontrolled hemorrhagic shock and treatment methods. Anesthesia methods: rabbit, line left and right on both sides of common carotid artery and right external carotid venous cannula, connection transducer, open the program, record the normal blood pressure, rapid bloodletting, 60 MMHG keeping blood pressure, blood pressure stable, clip the right common carotid artery, 5 min record and observation of blood pressure change. Again after being stable blood pressure, bleeding, blood pressure reduced to 40 MMHG and maintain,record and observation of blood pressure changes in 20 min. Results: when a small amount of bleeding, the rabbit blood pressure to drop, but recovered in a short time; A large amount of bleeding, blood pressure drops faster and resilience reduces;After infusion treatment measures such as blood transfusion, roughly returned to normal. Conclusion: a small amount of blood loss on rabbit, rabbit blood pressure to drop, the body's own compensatory function can make blood pressure returned to normal in a short time; Bled, rabbit blood pressure significantly decreased, the body will happen decompensated role; After infusion treatment measures such as blood transfusion, blood pressure rose sharply, basic can return to normal.【key words】 shock ；uncontrolled hemorrhagic shock ；The rescue【引言】大量失血引起休克称为失血性休克,常见于外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等。
生理科学——家兔失血性休克及其抢救
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实验目的
相关知识
实验步骤 实验后处理
注意事项
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1.掌握家兔失血性休克病理模型的制 备方法、失血性休克的各项观察指标 及急救原则。 2.熟悉失血性休克的发病机理和抢救 药物的作用原理。 3.了解生物信号处理系统的使用要求 和实验中的注意事项。
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休克的定义 休克的临床表现
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第二次放血，使平均动脉压再次 下降到5.33kPa，立即观察并记录上 述指标，并在该水平上维持20min后， 再观察和记录上述指标的变化。
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停止放血，先从耳缘静脉注入与 放血量相等的右旋糖苷-40，然后从右 颈外静脉处输入生理盐水30~40滴/分， 同时依次从耳缘静脉注入5%NaHCO3 溶液10ml、1%山莨菪碱1mg/kg抢救， 观察20min，看上述各指标是否可恢复 正常。
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耻骨联合上方备皮，局麻后作下腹部 正中切口，找出膀胱，拉出后将膀胱顶端 向下，在背面膀胱三角区找出双侧输尿管 入口，沿此向上钝性分离出双侧输尿管， 分别置双线，结扎远心端。在靠近结扎线 处用眼科剪沿45度向前剪一小口，插入输 尿管插管并结扎固定（两侧相同）。每次 用试管收集10min尿量。
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作右侧颈外静脉插管，插入5cm长的 静脉导管，结扎固定。导管的外端用三通 管连接输液装置和压力换能器，用来输液 和测定中心静脉压。在测压前，关闭压力 换能器侧管，使导管与输液装置相通，缓 缓输入生理盐水5~10滴/分，以保持静脉 通畅。测压时，关闭输液侧管。
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作左颈总动脉插管，插入预先充满 0.2%肝素生理盐水的动脉导管，导管外侧 连接三通管，一侧连接压力换能器，用来 记录动脉血压，另一侧连接30ml注射器， 并暂时关闭，以备放血用。
家兔失血性休克及抢救-TL
淤 血 缺 氧 期 ： 灌多于流，血液淤滞 组织灌流状态 组织细胞淤血性缺氧
二、休克难治期
微循环的改变
二、休克难治期（微循环衰竭期）
微循环衰竭期 ： 不灌不流，血液高凝 组织灌流状态 组织细胞无血供
【实验步骤】
• 一、术前准备 • 1、称重 • 2、麻醉 • 药品：25%乌拉坦溶液 • 用量：4ml/kg • 途径：耳缘静脉注射 • 3、固定 • 4、手术（颈部、腹部、左侧腹股沟）
乱及器官功能障碍的病理过程。
休克的病因和分类
一、休克的病因
失血与失液 hemorrhagic shock
创伤 traumatic shock 过敏 anaphylactic shock 心脏和大血管病变 cardiogenic shock
烧伤 burn shock
感染 infectious shock 强烈神经刺激 neurogenic shock
正常
6---10
早期加 深加快， 35---45 放血后 晚期呼 吸抑制 回升， 未达到 正常水 平
减少
减慢
减少(0-4)
抢救后
减慢
增加
减小， 未恢复 有所增 但未恢 到正常， 加，但 复至正 仍然很 未恢复 常 慢 到正常
思考题目
• • 急性大量失血是如何引起休克发生的？ 为什么输回所失的全部血液后家兔血压仍 未能恢复至原来的水平？
以失血性休克为例，按照休克的发展过程分为三期： Ⅰ期： 休克的代偿期
Ⅱ期： 休克的进展期 Ⅲ期： 休克的难治期
一、休克的代偿期
微循环的改变
一、休克的代偿期（缺血性缺氧期）
缺 血 缺 氧 期 ： 少灌少流，灌少于流 组织灌流状态 组织缺血、缺氧
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救张丽丹（浙江中医药大学2010级口腔医学二班1组，20101160202）摘要【目的】：学会复制家兔失血性休克的动物模型；了解失血性休克的抢救，并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型，将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】短时间内的少量的失血是可恢复的，大量失血是不可恢复的，自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】短时间少量失血机体是处于代偿期的，较长时间的大量失血机体已处于失代偿期，而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词失血性休克；静脉输血；代偿期；失代偿期引言休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
[1]失血性休克后大量输液与自身血液的输血，可以改善微循环，使血压快速恢复正常值。
1．材料和方法1.1实验材料1.1.1 实验动物：家兔1.1.2实验仪器：家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器1.1.3实验药品：生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。
1.2实验方法1.2.1麻醉手术家兔称重，用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔，固定家兔，剪去颈部被毛，切开颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。
用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉，各穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉，穿两线，将两线分别拉至动脉两端备用。
1.2.2切开皮肤左手绷紧颈部皮肤，用粗剪刀紧贴皮肤，将手术部位及其周围的被毛剪去（不可用手提被毛，以免剪破皮肤）。
术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定，右手持手术刀，沿颈部正中线切开皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，长度约5-7cm。
机能学实验病理生理学部分-家兔失血性休克及其实验性治疗实验报告
实验报告9 家兔失血性休克及其实验性治疗评分实验目的：家兔失血性休克模型的制备并观察其表现，了解高晶高胶液体对家兔失血性休克的疗效并探讨其机制。
实验原理：采用对家兔股动脉处放血的方法，10min内使MAP（平均动脉压）降至5.33kPa （40mmHg），并维持20 min，此时放血量已经达到20%以上，复制失血性休克的动物模型，利用解剖显微镜动态观察肠系膜微循环血流动力学的改变，再采用高晶高胶液进行扩容治疗，观察其对家兔失血性休克的治疗作用。
实验动物：家兔，2-3kg实验设备与试剂：动物秤，哺乳动物手术器械，储血瓶，烧杯，注射器(20ml，10ml，5ml)，血压换能器，呼吸换能器，生物信号采集系统，体温计，针头，血管插管，动脉夹，输液装置，棉线若干，纱布。
25%乌拉坦，肝素，生理盐水，微循环灌流液，7.5%氯化钠与6%低分子右旋糖酐混合液（即高晶高胶液）。
实验步骤：1、分组：生理盐水治疗组、高晶高胶液治疗组。
2、取正常家兔，称重后于耳缘静脉注射25%乌拉坦（4ml/kg体重），使家兔全身麻醉。
3、将实验兔固定于操作台，颈部备皮，手术暴露气管和颈总动脉，分别与呼吸描记装置和压力传感器连接，使用生物信号采集与分析系统记录MAP、Ps-d、HR。
4、在左侧股三角区域触及股动脉后，沿动脉行走方向做长约2cm的切口，插入长度约为40cm股动脉导管至下腔静脉入右心房处，插入深度约为20cm，导管外端连接三通管，一侧同输液瓶相连后，缓缓输入生理盐水（5-8d/min）以保持导管及静脉通畅，一侧经压力传感器与生物信号采集与分析系统连接，记录CVP。
5、在剑突下方1.5cm处向下沿正中线做长约5cm的腹正中切口，沿腹白线打开腹腔，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻拉出，置于微循环灌流盒内，用解剖显微镜观察肠系膜微循环情况。
6、将温度计插入直肠，测体温。
7、记录各项指标后，降低储血瓶，松动动脉夹，快速从左股动脉放血，10min内使MAP 降低至40mmHg，并维持20min，记录各项指标及储血瓶内血量。
实验 家兔失血性休克及其抢救 gyx
实验家兔失血性休克及其抢救【实验目的】1. 复制失血性休克的动物模型。
2. 观察失血性休克时机体的一般状态及呼吸、血压、心率、中心静脉压的变化及微循环改变，了解失血性休克的病理生理过程。
3.了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。
【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血性休克是临床上常见的急症，由于血容量减少，机体有效循环血量降低，从而使机体重要脏器血液灌流减少，而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器官的缺血，使器官功能进一步障碍。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。
但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
本实验采用颈总动脉放血方法，造成机体有效循环血量减少，复制失血性休克。
通过实验进一步了解失血性休克时心、肺、肾等器官的功能障碍，加深对失血性休克的认识。
由于微循环障碍是失血性休克的基础，治疗的主要措施就是改善微循环灌流，因此，实验中采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌流状态，对失血性休克进行抢救。
【实验对象】家兔【实验学时】4学时【器械与药品】常规手术器械，气管插管，动脉套管，动脉夹，婴儿秤，兔固定台，5ml、20ml、50ml 注射器，输液装置，水检压计，二道生理记录仪，滤纸，烧杯，丝线，粗棉线。
20%乌拉坦，1%肝素，3.8%枸橼酸钠，生理盐水。
【步骤与方法】1. 麻醉和固定家兔称重后，自耳缘静脉注射20%乌拉坦（5ml/kg.bw）进行全身麻醉，动物仰卧固定，剪去手术部位被毛。
家兔的失血性休克与抢救
家兔失血性休克及抢救实验目的：1.学习哺乳类动物动脉血压的直接描述方法，观察神经和某些体液因素对微循环机能的影响。
2.复制几种类型休克的动物模型，并通过电视录像，观察休克发生发展过程中血压和微循环血流等的变化，加深对于”休克发病的关键不在于血压，而在于血流“的理论认识。
3.设计抢救方案，加深对休克防治原则及所用药物药理作用的理解，培养独立分析问题，解决问题的能力。
实验原理：1. 动脉血压是动脉血管内的血液对于单位面积血管管壁产生的压力。
影响动脉血压的因素有心脏每搏输出量、心率、外周阻力、主动脉与大动脉的顺应性以及循环血量和血管系统的比例。
2. 动脉血压是心血管系统活动的的反映，影响心血管系统的神经与体液因素有交感神经、迷走神经、交感缩血管神经、肾上腺素与去甲肾上腺素。
减压反射是神经调节主要方式，减压反射的构成为感受器：颈动脉窦与主动脉弓传入神经：减压神经与迷走神经神经中枢：延髓传出神经：交感神经与迷走神经效应器：心肌细胞膜上的受体。
而血管舒缩功能及神经体液调节异常将导致循环系统功能紊乱，引起血压改变，甚至导致休克的发生。
4.休克：各种强烈的致病因子作用于机体引起的急性循环衰竭，其特点是微循环障碍、重要器官灌流不足和细胞功能代谢障碍，由此引起的全身危重的病理过程。
5.休克的分期：一期:缺血性缺氧期二期:淤血性缺氧期三期:微循环衰竭期6.休克的防治原则：快速输血并且大量补液，快速扩充血容量。
在快速扩充血容量的基础上，选择性的运用血管活性药物。
实验对象：家兔（1.15kg）实验步骤：1.动物称重，麻醉，仰卧固定。
2.颈部手术操作：切开皮肤→分离组织与肌肉→分离一侧颈总动脉→全身肝素化→动脉插管→描记动脉血压3.分离颈外静脉，向颈外静脉输入生理盐水。
4.分离股动脉向心方向插管。
5.少量放血开放股动脉上动脉夹，自股动脉少量放血，当放血量达全身血量10%时夹闭股动脉，观察各指标15分钟。
6.大量放血放血量约为全身血量的25%，观察各指标15分钟。
家兔失血性休克及抢救
实验目的
1. 掌握失血性休克动物模型的复制方法。 2. 观察失血性休克时机体的一般状态及呼
吸、血压、心率、中心静脉压、尿量的变 化，了解失血性休克的病理生理过程。 3. 了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。 。
实验原理
失血性休克是临床上常见的急症，由于血容量减少， 机体有效循环血量降低，从而使机体重要脏器血液 灌流减少，而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器 官的缺血，使器官功能进一步障碍。本实验采用颈 总动脉放血方法，造成机体有效循环血量减少，复 制失血性休克。通过实验进一步了解失血性休克时 心、肺、肾等器官的功能障碍，加深对失血性休克 的认识。由于微循环障碍是失血性休克的基础，治 疗的主要措施就是改善微循环灌流，因此，实验中 采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌 流状态，对失血性休克进行抢救。
注意事项
1. 本实验手术较多，要减少手术性出血。对部分 项目（如输尿管插管），手术可少做或不做，以确 保实验的成功。
2. 各导管和注射器要肝素化并注意导管畅通，随 时缓慢推注，以防凝血。
3. 插动脉插管前必须先向动物体内注射肝素，否 则会造成插管内凝血，影响实验。
4. 插静脉插管时要小心，防止插管穿破静脉壁进 入胸腔或其他软组织。
3. 自耳缘静脉输入1%肝素1ml/kg. bw抗凝后，用丝线结扎颈总 动脉远心端，动脉夹夹闭近心端，插入充满枸橼酸钠的动脉套管 结扎固定，将套管一端连于压力换能器，经记录仪记录血压，另 一端备放血用。
4. 输液装置内加入生理盐水200ml，排净输液管道及水检压计内 的气泡，结扎颈浅静脉远心端，插入与输液装置及水检压计相连 的静脉插管，检查通畅后以10~15滴/分速度缓慢输入生理盐水， 以确保管道通畅。
实验四家兔失血性休克
实验四家兔失血性休克【实验目的】复制家兔失血性休克模型；观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化；探讨失血性休克的发病机制。
【实验原理】采用动脉放血的方法，造成家兔失血，使其组织血液灌流量急剧减少，导致微循环障碍，复制失血性休克。
通过及时输血、补液，补充血容量，抢救休克。
【实验对象】家兔。
【实验药品和器材】2%的普鲁卡因，生理盐水，肝素，动脉插管，BL-410生物机能实验系统等。
【实验步骤】1.选取健康家兔一只，称重，固定于兔台上，剪去颈部、腿部的兔毛，进行基础局部麻醉。
2.分离颈动脉，穿线以备插管。
3.分离股动脉，穿线以备插管。
4.从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。
5.插管生理盐水排气，选择通道，进行电脑调零。
6.结扎颈动脉和股动脉的远心端，止血夹夹住近心端，进行颈动脉插管，股动脉插管。
7.从股动脉取5ml血液，标记为①，以待测HCT。
8.观察血压、心率、呼吸、角膜反射，球结膜血管充盈度，HCT。
9.继续从股动脉放血（约30-40ml，加入混有生理盐水和肝素的杯子中），直到血压下1/2。
记录下此时的血压。
10.10-15min之后，观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结膜充盈度，取5ml血液标记为②，待测HCT。
11.将①②4000转离心五分钟，记录HCT的数据。
12.静脉快速回输血液救治，血压回升后再次观察上述各项指标，记录下观察结果。
【实验结果】放血量：30ml观察指标放血前（正常）放血后输血输液后（理论结果）角膜反射（+/-） + + +球结膜血管充盈度充盈充盈充盈心率（次/分）115 57 110呼吸正常加深加快逐渐恢复正常血压（详情见图）正常先下降后有所回升缓慢上升至正常HCT 44 32 43【实验讨论】1.机体一般失血多少可以引起休克？答：机体短时间内若失血超过总血量的25%-30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。
2.机体失血后为何导致相关生理指标的变化？答：①失血性休克时，刚开始血压降低，失血休克代偿期，血压有所恢复,心率加快。
家兔失血性休克及抢救
烦躁 不安
实验内容
一、术前准备 称重，麻醉，固定 手术野备皮：颈部，腹部，左侧腹股沟，剑突处 二、颈部手术 颈部正中切口，钝性分离皮下组织，分离气管（可以不插） 左侧颈总动脉插管记录血压，右侧颈外静脉插管建立输液通道 剑突处连张力换能器记录呼吸曲线 三、股部手术：股动脉插管 四、腹部手术：膀胱插管
休克分期
1. 休克早期：缺血性缺氧期 2. 休克进展期：淤血性缺氧期 3. 休克晚期：休克难治期
机制 交感-肾上腺髓质系统兴奋
儿茶酚胺↑
心率↑
腹腔内脏、皮 汗腺
心肌收缩力↑ 肤小血管收缩 分泌↑
外周阻力↑ 肾缺血 皮肤缺血
中枢神 经系统
兴奋
BP (–) 脉搏细速 脉压差↓
少尿 面色苍白 出冷汗 四肢冰冷
新实验操作1：
记录尿滴：膀胱插管
新实验操作2：
颈外静脉插管：建立输液通道
[观察指标] 实验结果
平均动脉压
（mmHg）
心率 呼吸 尿量 耳朵口唇 体温
(次/分) (次/分) （滴/分） 颜色
实验前 少量失血 大量失血 输血 输血后5分钟 输血后15分钟
少量失血(少于10%, 约10ml) 快速大量失血(20%-30%, BP30-40mmHg)，维持20分钟
பைடு நூலகம்
[实验注意]：
1. 动静脉插管是必须掌握的基本技术，是本 次实验的关键。插管不要堵塞，不能滑脱！ 固定要结实！
2. 耳缘静脉要保护好，多次注射
[思考]：
1. 休克模型是否复制成功？根据是什么？ 2.少量失血家兔是否发生休克？ 3.判断本实验组家兔处于哪一个期。为什么？
家兔失血性休克及抢救
[实验目的]：
1.复制家兔失血性休克的动物模型 2. 观察分析休克发生发展过程中家兔主要体 征和血压的变化
家兔失血性休克及抢救实验报告
--------------------- 精选公文范文------------------家兔失血性休克及抢救实验报告篇一：休克实验报告家兔失血性休克及其抢救实验人员5 人第2 组班一、实验目的1. 复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。
探讨其发生机制。
2. 用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
二、实验材料和方法实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通管，铁架台，棉线，纱布实验仪器：电脑，RM6240 生物信号采集系统---------- 精选公文范文----------实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水/10g三、实验对象家兔1 只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试：首先打开电脑，选择MedLab 生物信号处理系统；从第1、2、3 通道中选择1 个通道，记录动脉血压。
其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmH2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：，用20%氨基甲酸乙酯以5ml /Kg （体重）, 耳缘静脉缓慢注射麻醉, 共注射14ml, 至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。
把兔子以背位固定法固定。
3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管------- 精选公文范文----------23（1）颈部备皮，作颈部，正中 3～5cm 切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。
（2）左颈总动脉插管术 --- 测血压 动脉插管及换能器肝素化，左颈总 动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭， 动脉前壁倒 “V ”切口动脉插管插入， 结扎 固定。
放开动脉夹记录正常动脉血压。
（ 3）右颈外静脉插管术 —输血输液排掉输液管中的空气。
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救
安徽医科大学 病理生理学教研室
一.实验目的
•复制失血性休克的动物模， 分析休克发生机制。
烦躁
皮肤苍白 或花纹
少尿或 无尿
神态淡漠 或昏迷
脉压↓ 血压↓
四肢 湿冷
• 4.失血性休克的抢救 血液回输
三.实验材料
• 实验动物：家兔 • 实验材料：20%乌拉坦，肝素（500μ/ ml），
生理盐水，哺乳动物手术器材一套，BL-420 生物机能实验系统，输血输液装置，动、静脉 套管，1 m1、10 ml及50 ml注射器各1只，去 甲肾上腺素，654-2。
• 6. 休克模型复制： 打开连接颈动脉的三通开关，一次快速放血 于50 ml注射器内，边放血边观察血压的变 化，待血压降到40mmHg水平，并维持15-30 分钟，停止放血（记录失血量）。
• 7. 休克的抢救：
•对照组： 将放出的血自颈静脉全部快速输回，观察各指标变化。
•去甲肾上腺素组： (1)自颈静脉缓慢滴入去甲肾上腺素生理盐水25.0 ml
（含去甲肾上腺素1.0mg），20分钟内滴完， (2)将放出的血快速自颈静脉输回，观察各项指标。
•654-2组： (1)自颈静脉缓慢滴入654-2生理盐水25.0 ml
（含654-2 2.0mg），30分钟内滴完， (2) 将放出的血自颈静脉快速输回,观察各项指标。
五.实验结果
表1 放血及输血前后各项指标的变化
二.实验原理及相关知识
1.失血性休克(hemorrhagic shock) 由于大量失血失液所引起.见于外伤、溃
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1.列表显示相关实验结果。
2.分析实验结果，结合思考题写 出实验报告。ຫໍສະໝຸດ 1失血性休克实验结果
处 理因 素 放血前 第一次放血后 20min后 第二次放血后 20min后 抢救后
1
CVP 心率 动脉血压 (kPa) (cmH2O) (次/min)
尿量 (ml)
皮肤 颜色
注意事项
1.定标。实验过程中不可再随意进行零点设置。
1
作左颈总动脉插管，插入预先充满 0.2%肝素生理盐水的动脉导管，导管外侧 连接三通管，一侧连接压力换能器，用来 记录动脉血压，另一侧连接30ml注射器， 并暂时关闭，以备放血用。
1
放血前仔细观察并记录动脉 血压、中心静脉压、心率、 10min尿量、皮肤黏膜颜色等各 项指标，以作对照。
1
打开颈总动脉插管与注射器相连 接的三通管，使血液从颈总动脉流入 注射器内，快速放血到平均动脉压为 5.33kPa时，停止放血，立即观察并 记录上述指标的变化。20min后再次 观察和记录上述各项指标。
失血性休克
动物模型制备
1
1.实验计算机设置 2.称重，固定，颈部手术 3.下腹部手术
4.右侧颈外静脉插管
5.左侧颈总动脉插管
6.全身肝素化
1
7.记录放血前指标 8.第一次放血 9.第二次放血 10.抢救
1
颈部手术备皮，1%盐酸普鲁 卡因局麻，沿甲状软骨下正中开皮 肤，分离气管并做气管插管。钝性 分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉， 分别置双线备用。
1
耻骨联合上方备皮，局麻后作下腹部 正中切口，找出膀胱，拉出后将膀胱顶端 向下，在背面膀胱三角区找出双侧输尿管 入口，沿此向上钝性分离出双侧输尿管， 分别置双线，结扎远心端。在靠近结扎线 处用眼科剪沿45度向前剪一小口，插入输 尿管插管并结扎固定（两侧相同）。每次 用试管收集10min尿量。
1
作右侧颈外静脉插管，插入5cm长的 静脉导管，结扎固定。导管的外端用三通 管连接输液装置和压力换能器，用来输液 和测定中心静脉压。在测压前，关闭压力 换能器侧管，使导管与输液装置相通，缓 缓输入生理盐水5~10滴/分，以保持静脉 通畅。测压时，关闭输液侧管。
第十一次实验 家兔失血性休克及其抢救
1
实验目的
相关知识
实验步骤 实验后处理
注意事项
1
1.掌握家兔失血性休克病理模型的制 备方法、失血性休克的各项观察指标 及急救原则。 2.熟悉失血性休克的发病机理和抢救 药物的作用原理。 3.了解生物信号处理系统的使用要求 和实验中的注意事项。
1
休克的定义 休克的临床表现
1
第二次放血，使平均动脉压再次 下降到5.33kPa，立即观察并记录上 述指标，并在该水平上维持20min后， 再观察和记录上述指标的变化。
1
停止放血，先从耳缘静脉注入与 放血量相等的右旋糖苷-40，然后从右 颈外静脉处输入生理盐水30~40滴/分， 同时依次从耳缘静脉注入5%NaHCO3 溶液10ml、1%山莨菪碱1mg/kg抢救， 观察20min，看上述各指标是否可恢复 正常。
2.实验中动物进行了全身肝素化，手术操作应 轻柔，尽量减少手术性出血和不必要的创伤。 3.右颈外静脉插管深浅要适宜，插入的位置应 是右心房或腔静脉处，过深过浅均记录不到中 心静脉压。静脉输液速度要控制好，过多过快 的输液会增加心脏负荷，导致心衰。
4.观察指标多，分工，责任到人。
1